EP1318825A2 - Piper methysticum pflanzenextrakt - Google Patents

Piper methysticum pflanzenextrakt

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Publication number
EP1318825A2
EP1318825A2 EP01956248A EP01956248A EP1318825A2 EP 1318825 A2 EP1318825 A2 EP 1318825A2 EP 01956248 A EP01956248 A EP 01956248A EP 01956248 A EP01956248 A EP 01956248A EP 1318825 A2 EP1318825 A2 EP 1318825A2
Authority
EP
European Patent Office
Prior art keywords
extract
forster
extracts
piper methysticum
leaf
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Withdrawn
Application number
EP01956248A
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
Bernd BÜTER
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Vitaplant AG
Original Assignee
Vitaplant AG
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Vitaplant AG filed Critical Vitaplant AG
Publication of EP1318825A2 publication Critical patent/EP1318825A2/de
Withdrawn legal-status Critical Current

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    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K36/00—Medicinal preparations of undetermined constitution containing material from algae, lichens, fungi or plants, or derivatives thereof, e.g. traditional herbal medicines
    • A61K36/18—Magnoliophyta (angiosperms)
    • A61K36/185—Magnoliopsida (dicotyledons)
    • A61K36/67—Piperaceae (Pepper family), e.g. Jamaican pepper or kava
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P21/00—Drugs for disorders of the muscular or neuromuscular system
    • A61P21/02—Muscle relaxants, e.g. for tetanus or cramps
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P23/00—Anaesthetics
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P25/00—Drugs for disorders of the nervous system
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P25/00—Drugs for disorders of the nervous system
    • A61P25/08—Antiepileptics; Anticonvulsants
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P25/00—Drugs for disorders of the nervous system
    • A61P25/22—Anxiolytics
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P29/00—Non-central analgesic, antipyretic or antiinflammatory agents, e.g. antirheumatic agents; Non-steroidal antiinflammatory drugs [NSAID]

Definitions

  • the present invention relates to an extract from Piper methysticum G.
  • Forster which differs from the known extracts from this plant and offers various advantages in terms of action and recovery.
  • Extracts from Piper methysticum G are known, e.g. from WO 92/04036 and from EP-A-0 987 026 and have anxiolytic, anticonvulsive, muscle relaxant, anesthetic-potentiating, analgesic, sleep-inducing and neuroprotective effects.
  • the effects are attributed to the occurrence of Kavapyrone or Kavalactone, and in particular to Kavain, 7,8-Dihydrokavain, Methysticin, 7,8-Dihydromethysticin, Yangonin and 5,6-Desmethoxyyangonin.
  • Kavapyrone in their entirety are responsible for the pharmacological effects.
  • the pharmacological examinations were carried out on the one hand with synthetically produced kavapyrones or mixtures thereof or on the other hand with plant extracts, as in particular by R. Hansel in "Kava-Kava in Modern Pharmaceutical Research", Zeitschrift für Phytotherapie (Hippokrates Verlag Stuttgart) 17 (1996 ), 180-195, where the chemical structures of the active ingredients are also described
  • the plant material used to produce these known plant extracts are the roots or the dried rhizome of Piper methysticum G.
  • Forster also known as kava-kava rhizoma or kavarhizom
  • the roots attached to the rhizome or the secondary roots or a mixture of Rhizome parts, secondary roots and the so-called "kava peelings", ie the strip-like peeled, partly rolled-up, partly gray-brown, yellowish-yellow parts of the rootstock on the inside.
  • kava peelings ie the strip-like peeled, partly rolled-up, partly gray-brown, yellowish-yellow parts of the rootstock on the inside.
  • Suitable extraction methods are described in the literature cited above.
  • the chemical structures of the main components of extracts from the rootstock the plant mentioned are described in Chimia 52 (1998) 443.
  • a first embodiment of the extract according to the invention is defined in claim 1.
  • Preferred embodiments of the extract according to the invention have the features specified in claims 2-5.
  • Another general embodiment of the extract according to the invention has the features specified in claim 6, preferred embodiments having the features specified in claim 7.
  • the invention further a method with the specified in claim 8
  • Extract is understood to mean a substance which is obtained by extraction or maceration or percolation of the plant material with a suitable solvent and, if appropriate, subsequent either partial or complete removal of the solvent.
  • Extracts according to the present invention are either so-called evaporated to dryness Suitable extracts, maceration or percolation or the like are known to the person skilled in the art, such as acetone, chloroform, ethyl acetate, lower alcohols with 1 to 4 carbon atoms, preferably methanol and ethanol, or mixtures thereof Water is particularly suitable, and carbon dioxide in liquid or supercritical form as well as other pressurized liquid gases with solvent properties.
  • above-ground plant material from Piper methysticum G.
  • Forster is understood to mean fresh or dried material from the leaves and / or stems, which can be harvested from the plants without significantly impairing the ability to grow, even if to a considerable extent , for example up to 90% and typically about 50%, which has the advantage over extracts from root material that crops of this perennial plant can be harvested repeatedly without replanting, but this is not the only advantage of the extracts according to the invention from above-ground growing
  • the extract according to the invention can be processed together with the usual pharmaceutical auxiliaries to form capsules, (film) tablets, coated tablets or the like. So it is understood that pharmaceutical auxiliaries in particular fillers, binders, lubricants and / or coating agents, e.g. for film-coated tablets and coated tablets.
  • pharmaceutical preparations produced with the extract according to the invention can contain further active pharmaceutical ingredients.
  • the extract according to the invention or the medicaments produced therewith have anxiolytic, anticonvulsive, muscle relaxant, anesthetic-potentiating, analgesic, sleep-inducing, anti-inflammatory and / or neuroprotective effects.
  • the extract according to the invention can be used as such or post-processed e.g. for removing coloring flavocavine. This can be achieved, for example, by cold precipitation or by extraction in the presence of suitable adsorbents, such as particulate ⁇ -aluminum oxide, or by other known measures.
  • FIG. 1 shows the HPLC diagram of an extract of Piper methysticum G. Forster from leaf material according to the invention
  • FIG. 2 shows the corresponding HPLC diagram of a known extract of Piper methysticum G. Forster from root material.
  • FIG. 3 shows the HPLC diagram of a further extract according to the invention of Piper methysticum G. Forster (morphotype Nene) from leaf material; and
  • FIG. 4 shows the FIPLC diagram of a further extract according to the invention of Piper methysticum G. Forster (morphotype PNG) from leaf material.
  • the HPLC analysis for recording the diagrams in FIGS. 1 and 2 was carried out as follows: 500 mg of dried powdered leaves (for FIG. 1) or dried powdered rhizome of Piper methysticum G. Forster were sonicated twice with 30 ml of methanol each time Extracted for 10 minutes. The combined extracts of the respective samples were filtered and, after evaporation of the solvent, redissolved in 10 ml of methanol. For HPLC analysis, an aliquot was regenerated through a membrane
  • the samples were eluted with a mixture of 22 vol.% Acetonitrile, 18 vol.% Methanol and 60 vol.% Phosphoric acid (H 3 PO) at a flow rate of 0.8 ml / minute at 60 ° C.
  • the Kavalactone was identified by comparing the retention times and the UV spectra with authentic samples. The chromatograms of both extracts showed different peaks, which as
  • Kavalactones could be identified.
  • the leaf extract (Fig. 1) differs significantly from the root extract (Fig. 2). So there is no methysticin in the methanolic leaf extract and the proportions of the Kavalactone are clearly different in both extracts.
  • Dihydrometysticin and dihydrokavain predominate in the leaf extract compared to the root extract.
  • the leaf extract shows a characteristic additional peak, which is presumably significant and is completely absent from the root extract. -
  • the mobile phase consisted of two solvent systems with a flow rate of 0.6 ml min, namely a mixture (A) of 19 vol.% Acetonitrile, 80 vol.% Water and 1 vol.% H 3 PO on the one hand, and a mixture (B ) from 59 vol.% acetonitrile, 40 mvol.% methanol and 1 vol.% H 3 PO 4 on the other hand with a linear gradient (0 - 8 minutes 100 vol.% A, 8 - 30 minutes 50 vol.% A, 30 - 75 minutes 0 vol.% A). 10 ⁇ l were injected with an autosampler. The detection was carried out at UV / VIS 200-600 nm.
  • the identification of the compounds was carried out at 253 nm either by external standard methods or by the UV spectra. Rutoside, hyperoside, isoquertcitrin, quercitrin, quervetin (all from Roth, Germany), Kaempferol (Sigma and Fluka, Switzerland), amentoflavone (Extrasynthese, France) were used as external standards. Accuracy and selectivity were determined by analyzing the individual compounds and their mixture. The chromatograms of both extracts of Figures 3 and 4 are the same in different essential peaks, and comparably showed different peaks in the more lipophilic range.
  • extract from Piper methysticum G. Forster is characterized by an HPLC diagram, which essentially has the features of Figure 1.
  • plant material of Piper methysticum G preferably leaf material, growing above ground is used.
  • morphotypes preferably of this plant are used which have a sufficiently high active ingredient content through breeding.
  • the present invention is explained in more detail below with the aid of receptor-ligand interaction or binding studies.
  • the receptor-ligand interaction studies in particular illustrate the increased pharmacological effectiveness of extracts from leaf material from Piper methysticum G. Forster compared to extracts from root material of Piper methysticum G. Forster.
  • the leaves and the root material were harvested and dried with the aid of a ventilation dryer at 35 ° C. for a period of 48 hours.
  • the dried samples were pulverized and extracted twice with methanol in an ultrasonic bath for 15 minutes each. After the solvent had been spun in to dryness, the residues were again taken up in methanol and a concentration of 50 mg / ml was established.
  • the extracts obtained in this way were kept at -20 ° C. until used in the receptor studies and for HPLC analyzes. A methanol concentration of 2% was not exceeded in the receptor studies.
  • Table 1 lists the percentage of selected Kavapyrone based on the dry weight of the leaf and root material examined in the four cultivars of Piper methysticum G. Forster mentioned, which was determined by HPLC analysis. For this purpose, a Jasco-HPLC system was used, which was coupled to a diode array detector (Jasco-MD-910), the measurements being carried out on an analytical Spherisorb-5 ODS column (5 mm, 250 x 4.6 mm). The samples were eluted with a mixture of 22% acetonitrile, 18% methanol and 60% H 3 PO 4 (50 M) at a flow rate of 0.8 ml / minute at 60 ° C within 50 minutes.
  • Methysticin occurs in the root extracts on a similar scale to Kavain, ie between 1% and 2%, whereas it could not be detected in the leaf extracts.
  • the percentage of DHM and DHK is usually higher in the leaf extracts than in the root extracts. Exceptions are the Mahakea plant and the NG plant in the case of DHK.
  • the sum of the relative content of the six Kavapyrones based on the dry weight of the leaf extract is 2.4% for Purple Moi, 4.4% for PNG and 5.0% for Nene.
  • the sum of the relative content of the six Kavapyrones based on the dry weight of the root extract is in a range between 5.1% (for Purple Moi) and 9.1 (for M ⁇ h ⁇ ke ⁇ ).
  • GABA A and dopamine D 2 receptors the receptors used for the study were formed using the Semliki Forest Virus Expression System (hereinafter abbreviated as SFV).
  • SFV Semliki Forest Virus Expression System
  • Benzodiazepine receptors were made from rat cortex (rat cortex), GABA A receptors from rat cerebellum (rat cerebellum), and dopamine D 2 receptors from calf striatum (calf striatum).
  • Electroporation method introduced. After 24 hours, the recombinant virus particles were collected.
  • CHO-infected cells (CHO stands for Chinese hamster ovary) were washed within 16-48 hours after infection with 5 mM Hepes buffer pH 7.4, 2 mM EDTA and lysed in the same buffer for 20 minutes at 4 ° C. The lysed cells were transferred to 10 ml centrifuge tubes, centrifuged at 40,000 g for 15 minutes and in 50 mM Tris / HCl buffer pH 7.8, 1 mM EDTA and 5 mM MgCl 2 using a Polytron homogenizer . suspended again. After renewed Centrifugation at 40,000 g for 15 minutes, the sediment or pellet was collected and stored at -80 ° C.
  • the GABAA receptor was produced from rat brains by Wistar Ratten from Biological Research Laboratories Ltd., Bushingdorf, Switzerland. After isolation of the cerebellum, this was in a 50-fold volume of a Tris-HCl buffer (50 mM Tris-HCl, pH 7.4, 0.32 M sucrose, 1 mM EDTA 0.02% NaN 3 , and 0.1 mM PMSF) with a Polytron homogenizer over the Homogenized for 30 seconds, and then centrifuged at 4 ° C at 500 g for 10 minutes.
  • Tris-HCl buffer 50 mM Tris-HCl, pH 7.4, 0.32 M sucrose, 1 mM EDTA 0.02% NaN 3 , and 0.1 mM PMSF
  • the supernatant or the supernatant liquid was then diluted with twice the volume of the buffer and centrifuged again at 4 ° C., 18,000 g for 45 minutes. The supernatant thus obtained was discarded and the pellet washed twice with the buffer, the suspension being centrifuged under the same conditions for 30 minutes and the supernatant liquid being discarded to obtain the membrane pellet.
  • the benzodiazepine receptor was produced from cortex material from rat brains. This was then homogenized in 40-fold volume of a Tris-HCl buffer (15 mM Tris-HCl, pH 7.4, 118 mM NaCl, 4.8 mM KCl, 1.2 mM CaCl 2 , 1.2 mM MgCl 2 ) over a period of 30 seconds. The suspension was then further diluted with 120 times the volume of the buffer and centrifuged at 4 ° C, 18000 g for 10 minutes. After decanting the supernatant or the supernatant liquid, the membrane pellets were obtained.
  • Tris-HCl buffer 15 mM Tris-HCl, pH 7.4, 118 mM NaCl, 4.8 mM KCl, 1.2 mM CaCl 2 , 1.2 mM MgCl 2
  • the suspension was then further diluted with 120 times the volume of the buffer and centrifuged at 4 ° C, 18000 g for 10 minutes
  • the preparation of the dopamine D 2 receptor was carried out from the striatum of the calf brain, which was in 40 times the volume of a Tris-HCl buffer (50 mM Tris-HCl, pH 7.4, 0.1% ascorbic acid, 120 mM NaCl, 5 mM KCl, 2 mM CaCl 2 , 1 mM MgCl 2 ) was homogenized over a period of 60 seconds. The homogenate was then centrifuged at 4 ° C, 18000 g for 10 minutes. After decanting the supernatant or the supernatant liquid, the membrane pellets were obtained.
  • Tris-HCl buffer 50 mM Tris-HCl, pH 7.4, 0.1% ascorbic acid, 120 mM NaCl, 5 mM KCl, 2 mM CaCl 2 , 1 mM MgCl 2
  • the protein concentration was determined in all cases by the BCA method according to the report by P.K. Smith et al. in Analytical Biochemistry 150 (1985), 76-85.
  • the receptor-ligand interaction studies were repeated in triplicate (experiment 1-3) in a total volume of 500 ⁇ l among the in Table 2 conditions carried out.
  • the binding experiments were terminated by rapid filtration with a GF / C filter under reduced pressure and subsequent washing three times with ice-cooled 5 ml Tris HCl pH 7.4 buffer.
  • the radioactivity in the filter was determined by liquid scintillation analysis (Tri-Carb 2100 TR, Packard Bioscience Company).
  • the IC JO values were determined from curves which were based on the individual measurements and approximated to these (P ⁇ 0.01). They are to be understood as mean + standard deviation.
  • Mahakea leaf extract 510 ⁇ 35 68 ⁇ 4 4 ⁇ 1 19 ⁇ 5 240 ⁇ 30 36 ⁇ 7 4 ⁇ 1> 1000 127 ⁇ 32
  • IC50 inhibitory concentration, 50% of the specific binding are displaced.
  • the root extracts investigated were less strongly inhibited, where IC50 values in the range from 5 ⁇ g / ml (Nene) to 87 ⁇ g / ml (Mahakea) were determined.Histamine H 2 receptors for leaf extracts from Mahakea with an IC 50 value of approximately 4 were also able to inhibit very strongly ⁇ g / ml are observed, while the Mahakea root extracts only have an IC 50 value of approximately 806 ⁇ g / ml.
  • Leaf extracts also more strongly inhibit binding to dopamine D 2 , opioid, serotonin (5-HT 7 ) and histamine receptors (Hi and H 2 ) than
  • Root extracts So moderate to strong affinities of the leaf extracts could be determined (1 ⁇ IC50 values ⁇ 100 ⁇ g / ml), whereas the root extracts showed only weak activities with ICso values from 100 ⁇ g / ml to more than 1000 ⁇ g / ml. There are major differences in the inhibition of binding between the individual cultivars. The strongest inhibition at the histamine receptors (Hi and H 2 ) for the leaf extracts of the Mahakea and the lowest inhibition for the root extracts of the Purple Moi and Nene were detected.
  • Hi and H 2 histamine receptors
  • benzodiazepine and serotonin receptors (5-HT ⁇ and 5-HT 7 ) was only slightly inhibited by the extracts of Piper methysticum G. Forster.
  • the IC 50 values were 500 ⁇ g / ml and higher
  • Serotonin 5-HT ⁇ receptors even at> 1000 ⁇ g / ml.
  • the IC50 values for leaf extracts were between 127 ⁇ g / ml (Mahakea) and 395 ⁇ g / ml (Purple Moi).

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Abstract

Extrakt von Piper methysticum G. Forster, der aus oberirdisch wachsenden Teilen dieser Pflanze, insbesondere den Blättern, gewonnen wird, bietet Vorteile in Bezug auf Wirkung sowie Gewinnung und unterschneidet sich ausweislich HPLC-Analyse deutlich von den bekannten Extrakten aus Wurzelmaterial. Ein solcher Extrakt ist durch Extraktion von oberirdisch wachsendem Pflanzenmaterial von Piper methysticum G. Forster, vorzugsweise dem Blattmaterial, erhältlich und eignet sich für Arzneimittel mit anxiolytischerm antikonvulsiver, muskelrelaxierender, narkosepotenzierender, schmerzstillender, schlafinduzierender, entzündungshemmender und/oder neuroprotektiver Wirkung.

Description

Pflanzenextrakt
Die vorliegende Erfindung betrifft einen Extrakt aus Piper methysticum G. Forster, der sich von den bekannten Extrakten aus dieser Pflanze unterscheidet und verschiedene Vorteile bezüglich Wirkung und Gewinnung bietet.
Extrakte aus Piper methysticum G. Forster (Rauschpfeffer) sind bekannt, z.B. aus WO 92/04036 und aus EP-A-0 987 026 und besitzen anxiolytische, antikonvulsive, muskelrelaxierende, narkosepotenzierende, schmerzstillende, schlafinduzierende und neuroprotektive Wirkungen. Die Wirkungen werden dabei dem Vorkommen der Kavapyrone bzw. Kavalactone, und hierbei insbesondere dem Kavain, 7,8-Dihydro- kavain, Methysticin, 7,8-Dihydromethysticin, Yangonin und 5,6-Desmethoxyyangonin zugeschrieben. Dabei wird angenommen, dass vor allem die genannten Kavapyrone in ihrer Gesamtheit für die pharmakologischen Wirkungen verantwortlich sind. Die pharmakologischen Untersuchungen wurden dabei einerseits mit synthetisch hergestellten Kavapyronen bzw. Mischungen derselben oder andererseits mit Pflanzen- Extrakten durchgeführt, wie insbesondere von R. Hansel in „Kava-Kava in der modernen Arzneimittelforschung", Zeitschrift für Phytotherapie (Hippokrates Verlag Stuttgart) 17 (1996), 180-195 umfassend beschrieben ist, wo auch die chemischen Strukturen der Wirkstoffe beschrieben sind
Das zur Herstellung dieser bekannten Pflanzen-Extrakte verwendete Pflanzenmaterial sind die Wurzeln bzw. der getrocknete Wurzelstock von Piper methysticum G. Forster (wird auch als Kava-Kava rhizoma oder Kavarhizom bezeichnet), die am Wurzelstock anhängenden Wurzeln oder die Nebenwurzeln, oder ein Gemisch aus Rhizomteilen, Nebenwurzeln und die sogenannten „Kava-Peelings", d.h. die streifenförmig abgeschälten, zum Teil eingerollten, aussen graubraunen, innen gelblichen Rindenteile des Wurzelstocks. Geeignete Extraktionsverfahrensind in der oben zitierten Literatur beschrieben. Die chemischen Strukturen der hauptsächlichen Komponenten von Extrakten aus dem Wurzelstock der genannten Pflanze sind in Chimia 52 (1998) 443, beschrieben.
Neuere Untersuchungen haben gezeigt, dass die auf dem Markt erhältlichen Arznei- oder Heilmittel bzw. Kava-Präparate, die in der Regel zum Erlangen einer pharmakologischen Wirksamkeit auf einen bestimmten Kavapyron-Gehalt der sechs genannten Kavapyrone standardisiert sind, und die aus dem Wurzelmaterial von Piper methysticum G. Forster gewonnen worden sind, zu Leberschädigungen fuhren können.
Darüber hinaus führt die Verwendung des Wurzelstocks, der Wurzeln, oder Teilen davon zur Herstellung der Extrakte bzw. der Arznei- oder Heilmittel zur Zerstörung der Pflanzen.
Es ist daher eine Aufgabe der vorliegenden Erfindung einen Extrakt Piper methysticum G. Forster anzugeben, der die Nachteile der bekannten Extrakte verringern oder vermeiden kann.
Überraschenderweise wurde bei den zur vorliegenden Erfindung fuhrenden Untersuchungen gefunden, dass sich die aus Wurzelmaterial von Piper methysticum G. Forster gewonnen Extrakte von den aus dem oberirdisch wachsenden Material dieser Pflanzen, insbesondere den Blättern hergestellten Extrakten deutlich unterscheiden, was anhand chromatographischer Analysen verifiziert werden kann.
Eine erste Ausführungsform des erfindungsgemässen Extraktes ist in Anspruch 1 definiert. Bevorzugte Ausfuhrungsformen des erfindungsgemässen Extraktes haben die in den Ansprüchen 2 - 5 angegebenen Merkmale.
Eine weitere allgemeine Ausführungsform des erfindungsgemässen Extraktes hat die in Anspruch 6 angegebenen Merkmale, wobei bevorzugte Ausführungsformen die in Anspruch 7 angegebenen Merkmale haben. Die Erfindung ferner ein Verfahren mit den in Anspruch 8 angegebenen
Merkmalen.
Schliesslich betrifft die Erfindung die in Anspruch 9 definierte Verwendung und das in Anspruch 10 umschriebene Arzneimittel.
Unter „Extrakt" wird ein Stoff verstanden, der durch Extraktion oder Mazeration oder Perkolation des Pflanzenmaterials mit einem geeigneten Lösungsmittel, und gegebenenfalls nachfolgendem entweder partiellen oder völligen Entfernen des Lösungsmittels, gewonnen wird. So sind Extrakte gemäss der vorliegenden Erfindung entweder bis zur Trockne eingedamfte sogenannte Trockenextrakte oder mit Lösungsmittel aufbereitete Fluidextrakte. Geeignete Lösungsmittel für die Extraktion, Mazeration oder Perkolation oder dergleichen sind dem Fachmann bekannt. So sind insbesondere Aceton, Chloroform, Ethylacetat, Niedrigalkohole mit 1 bis 4 C-Atomen, vorzugsweise Methanol und Ethanol, oder deren Gemische mit Wasser besonders geeignet. Ebenfalls als Extraktionsmittel geeignet sind Kohlendioxid in flüssiger oder überkritischer Form sowie andere unter Druck flüssigen Gase mit Lösungsmitteleigenschaften.
Unter „oberirdisch wachsendes Pflanzenmaterial" von Piper methysticum G. Forster wird für die Erfindung frisches oder getrocknetes Material aus den Blättern und/oder Stengeln verstanden, das von den Pflanzen geerntet werden kann, ohne der Wachstumsfähigkeit signifikant zu beeinträchtigen, auch wenn es in erheblichem Masse, z.B. bis 90% und typisch etwa 50%, geerntet wird. Die bietet gegenüber Extrakten aus Wurzelmaterial den Vorteil, dass Kulturen dieser mehrjährigen Pflanze wiederholt ohne Neuanpflanzung abgeerntet werden können. Dies ist jedoch nicht der einzige Vorteil der erfindungsgemässen Extrakte aus oberirdisch wachsendesm
Pflanzenmaterial, insbesondere dem Blattmaterial, von Piper methysticum G. Forster. Es versteht sich, dass zur Herstellung von pharmazeutischen Zubereitungen der erfindungsgemässe Extrakt zusammen mit den üblichen pharmazeutischen HilfsstofFen zu Kapseln, (Film-)Tabletten, Dragees oder dergleichen verarbeitet werden kann. So versteht es sich, als pharmazeutische HilfsstofFe insbesondere Füll-, Binde-, Schmier- und/oder Überzugsmittel, z.B. für Filmtabletten und Dragees einzusetzen. Die mit erfindungsgemässem Extrakt hergestellten pharmazeutischen Zubereitungen können ausser dem erfindungsgemässen Extrakt weitere pharmazeutische Wirkstoffe enthalten. Der erfindungsgemässe Extrakt bzw. die damit hergestellten Arzneimittel haben anxiolytische, antikonvulsive, muskelrelaxierende, narkosepotenzierende, schmerzstillende, schlafinduzierende, entzündungshemmende und/oder neuroprotektive Wirkungen.
Der erfindungsgemässe Extrakt kann als solcher verwendet oder nachbearbeitet werden z.B. zur Entfernung färbender Flavokavine. Dies kann beispielsweise durch Kältefällung oder durch Extraktion in Gegenwart geeigneter Adsorbentien, wie teilchenförmiges γ-Aluminiumoxid, oder durch andere bekannte Massnahmen erreicht werden.
In den beiliegenden Zeichnungen zeigen: Figur 1 das HPLC-Diagramm eines erfindungsgemässen Extraktes von Piper methysticum G. Forster aus Blattmaterial;
Figur 2 das entsprechende HPLC-Diagramm eines bekannten Extraktes von Piper methysticum G. Forster aus Wurzelmaterial. Figur 3 das HPLC-Diagramm eines weiteren erfindungsgemässen Extraktes von Piper methysticum G. Forster ( Morphotypus Nene) aus Blattmaterial; und Figur 4 das FIPLC-Diagramm eines weiteren erfindungsgemässen Extraktes von Piper methysticum G. Forster ( Morphotypus PNG) aus Blattmaterial.
Auf den Abszisse der HPLC-Diagramme der Figuren 1 - 4 ist in der üblichen Weise auf der Absziosse die Retentionszeit in Minuten und auf der Ordinate der Adsorptionswert in Microeinheiten (μAU) aufgetragen.
Die HPLC-Analyse für die Aufnahme der Diagramme der Figuren 1 und 2 wurde wie folgt durchgeführt: 500 mg getrocknete pulverisierte Blätter (für Fig. 1) bzw. getrockneter pulverisierter Wurzelstock von Piper methysticum G. Forster wurden zweimal mit je 30 ml Methanol unter Beschallung 10 Minuten extrahiert. Die vereinigten Extrakte der jeweiligen Probe wurden filtriert und nach Verdampfen des Lösungsmittels erneut in 10 ml Methanol gelöst. Für die HPLC-Analyse wurde ein Aliquot durch eine Membran aus regenerierter
Cellulose (Porenweite 0,45 μm) filtriert. Dann wurde eine HPLC-Analyse mit
Phasenumkehr nach der von Ross et al ( siehe ) beschriebenen Arbeitsweise an einer Sperrisorb-5 ODS Säule (5 μm, 250 x 4,6 mm) unter Verwendung eines Jasco- HPLC-Systems durchgeführt, das mit einem Autosampier und einem Diodenarray- Detektor ausgerüstet war.
Die Proben wurden mit einer Mischung aus 22 Vol.% Acetonitril, 18 Vol.% Methanol und 60 Vol.% Phosphorsäure (H3PO ) mit einer Strömungsgeschwindigkeit von 0,8 ml/Minute bei 60°C eluiert. Die Identifikation der Kavalactone erfolgte durch Vergleich der Retentionszeiten und der UV-Spektra mit authentischen Proben. Die Chromatogramme beider Extrakte zeigten verschiedene Peaks, die als
Kavalactone identifiziert werden konnten. Der Blattextrakt (Fig. 1) unterscheidet sich deutlich vom Wurzelextrakt (Fig. 2). So finden sich im methanolischen Blattextrakt kein Methysticin und die Anteile der Kavalactone sind in beiden Extrakten deutlich verschieden. So findet sich im Blattextrakt ein nur geringer Anteil an Kavain, der das hauptsächliche Kavalactone des Wurzelextraktes darstellt. Dihydrometysticin und Dihydrokavain überwiegen im Blattextrakt deutlich gegenüber dem Wurzelextrakt. Ferner zeigt der Blattextrakt eine charakteristischen zusätzlichen Peak, der vermutlich sigifikant ist und beim Wurzelextrakt völlig fehlt. - Die HPLC-Analyse für die Aufnahme der Diagramme der Figuren 2 und 3 wurden wie folgt durchgeführt: 500 mg getrocknete pulverisierte Blätter vom Morphotyp Nene (Fig. 3) bzw. PNG (Fig.4) von Piper methysticum G. Forster wurden zweimal mit je 30 ml Methanol unter Beschallung 10 Minuten extrahiert. Die vereinigten Extrakte der jeweiligen Probe wurden filtriert und nach Verdampfen des Lösungsmittels erneut in 10 ml Methanol gelöst.
Für die HPLC-Analyse wurde ein Aliquot durch eine Membran aus regenerierter Cellulose (Porenweite 0,45 μm) filtriert und mit einem HPLC-System (Jasco) analysiert, und zwar mit einem Diodenarraydetektor nach Hölzl und Ostrowski mit Hypersil 120-5 ODS (250 x 4,6 mm ) als stationärer Phase und mit einer vorgeschalteten Säule des gleichen Materials (beide von Macheray Nagel). Die mobile Phase bestand aus zwei Lösungsmittelsystemen mit einer Durchflussgeschwindigkeit von 0,6 ml min, nämlich einer Mischung (A) aus 19 Vol.% Acetonitril, 80 Vol.% Wasser sowie 1 Vol.% H3PO einerseits, und einer Mischung (B) aus 59 Vol.%Acetonitril, 40 mVol.% Methanol und 1 Vol% H3PO4 andererseits mit einem linearen Gradienten ( 0 - 8 Minuten 100Vol.% A, 8 - 30 Minuten 50 Vol.%A, 30 - 75 Minuten 0 Vol.% A). Es wurden 10 μl mit einem Autosampier injiziert. Die Detektion erfolgte bei UV/VIS 200 - 600 nm. Die Identifikation der Verbindungen wurde bei 253 nm entweder durch externe Standardmethoden oder durch die UV- Spektren durchgeführt. Als externe Standards wurden Rutosid, Hyperosid, Isoquertcitrin, Quercitrin, Quervetin (alle von der Firma Roth, Deutschland), Kaempferol (Sigma und Fluka, Schweiz), Amentoflavon (Firma Extrasynthese, Frankreich) verwendet. Genauigkeit und Selektivität wurden durch Analyse der Einzelverbindungen und deren Mischung bestimmt. Die Chromatogramme beider Extrakte von Fig. 3 und 4 stimmen in verschiedenen wesentlichen Peaks übereinsind vergleichbar zeigten verschiedene Peaks im mehr lipophilen Bereich. In beiden Extrakten der Fig. 3 und 4 konnten keine Flavanoide, wie insbesondere die hydrophilen Flavanoide, z.B. Hyperosid, Isoquercitrin, Quercitrin und Rutosid, festgestellt werden Erfindungsgemässer Extrakt aus Piper methysticum G. Forster ist gemäss einer ersten Ausführungsform durch ein HPLC-Diagramm gekennzeichnet, das im wesentlichen die Merkmale von Figur 1 besitzt.
Als wesentliche Merkmale gelten hier insbesondere die folgenden: der Extrakt ist ausweislich des HPLC-Diagramms praktisch frei von Methysticin (RT = 14,8 - 15,9; typisch 15,70); das HPLC-Diagramm zeigt ferner einen für Dihydromethysticin charakteristischen Peak bei RT = 15,8 - 16,7, typisch 16,35 und einen für Dihydrokavain charakteristischen Peak bei RT = 19,0 - 21,3, typisch 20,14.
Der für Desmethoxyyangonin charakteristische Peak bei RT = 27,6 - 29,0, typisch 28,69 und der für Yangonin charakteristische Peak bei RT = 29,3 - 31,1, typisch 30,25 ist bei erfindungsgemässen Extrakten in der Regel nicht besonders signifikant.
Im allgemeinen zeigt das HPLC-Diagramm ferner vorzugsweise einen Peak bei RT = 25,0 - 25,9, typisch 25,7.
Die in Figur 1 im Bereich von RT Werten unter 10 min auftretenden kleinen Peaks stammen vermutlich vom Lösungsmittel und gelten hier nicht als wesentliche Merkmale.
Der Vergleich der HPLC-Diagramme erfindungsgemässer Extrakte aus Blattmaterial und bekannter Extrakte aus Wurzelmaterial zeigt allgemein klare Unterschiede, indem der erfindungsgemässe methanolische Extrakt offensichtlich kein Methysticin enthält und sich auch die Anteile an Kavalactonen unterscheiden. Während Kavain das hauptsächliche Kavalacton im Wurzelextrakt ist, enthält der Blattextrakt nur geringe Anteile davon. Im Blattextrakt überwiegen hingegen Dihydrometysticin und Dihydrokavain. Ferner zeigt der Blattextrakt einen zusätzlichen Peak bei RT = 25,0 - 25,9, typisch 25,07, der im Wurzelextrakt nicht zu finden ist.
Zur Herstellung eines erfindungsgemässen Extraktes wird wie bereits angedeutet oberirdisch wachsendes Pflanzenmaterial von Piper methysticum G. Forster, vorzugsweise Blattmaterial, verwendet. Zweckmässigerweise werden Morphotypen („Varietäten") dieser Pflanze verwendet, die durch Züchtung einen ausreichend hohen Wirkstoffgehalt haben..
Im folgenden wird die vorliegende Erfindung mit Hilfe von Rezeptor-Ligand- Wechselwirkungs- bzw. Bindungsstudien näher erläutert. Dabei verdeutlichen insbesondere die Rezeptor-Ligand- Wechselwirkungsstudien die erhöhte pharma- kologische Wirksamkeit von Extrakten aus Blattmaterial von Piper methysticum G. Forster im Vergleich zu Extrakten aus Wurzelmaterial von Piper methysticum G. Forster.
Für diese Studie wurden die Wechselwirkungen von Blatt- und Wurzelextrakten von vier Morphotypen (Kultivaren oder Varietäten) von Piper methysticum G. Forster, nämlich den von den Hawaii-Inseln stammenden Mahakea, Nene, Purple Moi und PNG, mit ausgewählten und insbesondere auf das Zentralnervensystem wirkenden Rezeptoren, wie Benzodiazepin-, GABAA-, Dopamin D2-, Serotonin- (5-HT6 und 5- HT7), Opioid- (μ und δ), und Histaminrezeptoren (Hi und H2) vergleichend untersucht. Dreijähriges αAα&eα-Blattmaterial und Mahakea- Wurzelmaterial wurde von der Wainani-Farm, Hawaii erhalten. Pflanzen von Nene, Purple Moi und PNG konnten aus Stengelmaterial in einem Gewächshaus in Witterswil, Schweiz vermehrt werden (25 + 3°C, Photoperiode: 16h/Tag); die für die Studien eingesetzten Proben wurden dabei von 18-monatigen Pflanzen erhalten.
Zur Herstellung der methanolischen Extrakte wurden die Blätter und das Wurzelmaterial, insbesondere die Nebenwurzeln geerntet und mit Hilfe eines Ventilationstrockners bei 35°C über eine Dauer von 48 Stunden getrocknet. Die getrockneten Proben wurden pulverisiert und zweimal mit Methanol in einem Ultraschall-Bad für jeweils 15 Minuten extrahiert. Nach Einrotieren des Lösungsmittels zur Trockne wurden die Rückstände wiederum in Methanol aufgenommen und eine Konzentration von 50 mg/ml eingestellt. Die so erhaltenen Extrakte wurden bis zur Verwendung in den Rezeptorstudien sowie für HPLC-Analysen bei -20°C aufbewahrt. In den Rezeptorstudien wurde eine Methanol-Konzentration von 2% nicht überschritten.
In Tabelle 1 ist prozentuale Gehalt ausgewählter Kavapyrone bezogen auf das Trockengewicht des untersuchten Blatt- und Wurzelmaterials der genannten vier Kultivare von Piper methysticum G. Forster aufgelistet, welcher durch HPLC-Analyse ermittelt wurde. Dazu wurde ein Jasco-HPLC-System verwendet, das mit einem Diodenarray-Detektor (Jasco-MD-910) gekoppelt war, wobei die Messungen auf einer analytischen Spherisorb-5 ODS Säule (5 mm, 250 x 4.6 mm) erfolgten. Die Proben wurden mit einem Gemisch aus 22% Acetonitril, 18% Methanol und 60% H3PO4 (50 M) mit einer Durchflussgeschwindigkeit von 0.8 ml/Minute bei 60°C innerhalb 50 Minuten eluiert. Ein standardisierter Kava-Extrakt der Firma Addipharma GmbH, Hamburg, BRD, EKP 001; Ch.B. 602140 wurde zur Identifizierung und Kalibrierung der sechs wesentlichen Kavapyrone, d.h. Kavain, 7,-8-Dihydrokavain, Methysticin, 7,8- Dihydromethysticin, Yangonin und 5,6-Desmethoxy- Yangonin verwendet. Yangonin und 7,8-Dihydromethysticin wurden bei einer Wellenlänge von 360 nm, und die anderen vier Kavapyrone bei einer Wellenlänge von 240 nm detektiert. Hinsichtlich der in Tabelle 1 verwendeten Abkürzungen bedeutet:
K: Kavain
DHK: 7,8-Dihydrokavain
M: Methysticin
DHM: 7,8-Dihydromethysticin
Y: Yangonin
DMY: 5,6-Desmethoxy- Yangonin
Total: Summe von K+DHK+M+DHM+Y+DMY
Tabelle 1.
Die HPLC-Diagramme der erhaltenen Präparate entsprechen den obigen Erläuterungen.
Aus Tabelle 1 ist ersichtlich, dass in den Wurzeln der vier Kultivare von Piper methysticum G. Forster die sechs wesentlichen Kavapyrone in ähnlichen Quantitäten auftreten, wobei jedes der sechs Kavapyrone ungefähr zwischen 10% und 20% zum Total, d.h. zur Gesamtsumme der sechs Kavapyrone, beiträgt. Andererseits zeigte die HPLC-Analyse, dass im Blattmaterial der vier Kultivare von Piper methysticum G. Forster die beiden Kavapyrone DHK und DHM für mehr als 70% der Gesamtsumme verantwortlich sind. Darüber hinaus konnte Kavain nur in Spuren (<0.2%) in den Blattextrakten detektiert werden, während die Wurzelextrakte zwischen 1.1% (Nene) und 1.9% (Mahakea) bezogen auf das Trockengewicht enthielten. Methysticin tritt in den Wurzelextrakten in zu Kavain ähnlicher Grössenordnung auf, d.h. zwischen 1% und 2%, wohingegen es in den Blattextrakten nicht detektiert werden konnte. Der prozentuale Gehalt an DHM und DHK ist in der Regel in den Blattextrakten grösser als in den Wurzelextrakten. Ausnahmen ist die Mahakea-Püanze und die NG-Pflanze im Falle von DHK. Die Summe des relativen Gehaltes der sechs Kavapyrone bezogen auf das Trockengewicht des Blattextraktes ist 2.4% für Purple Moi, 4.4% für PNG und 5.0% für Nene. Die Summe des relativen Gehaltes der sechs Kavapyrone bezogen auf das Trockengewicht des Wurzelextraktes liegt dagegen in einem Bereich von zwischen 5.1% (für Purple Moi) und 9.1 (für Mαhαkeα).
Mit Ausnahme der Benzodiazepin-, GABAA- und Dopamin D2-Rezeptoren erfolgte die Bildung der für die Studie eingesetzten Rezeptoren unter Verwendung des Semliki Forest Virus Expressionssystemsrim folgenden als SFV abgekürzt). Benzodiazepin-Rezeptoren wurde aus Cortex der Ratte (rat cortex), GABAA- Rezeptoren aus Cerebellum der Ratte (rat cerebellum), und Dopamin D2-Rezeptoren aus Striatum des Kalbes (calf striatum) hergestellt.
Die Expression der Rezeptoren unter Verwendung des SFV-Systems erfolgte wie von U. Simmen, W. Burkard, K. Berger, W. Schaffner, K. Lundstrom in Journal of Receptor and Transduction Research 19 (1999) 59-74 beschrieben. So wurden menschliche Rezeptor cDΝAs in pSFVl / pSFV2gen durch herkömmliche molekularbiologische Verfahren subkloniert. Zur Generierung der Virus-Partikel wurde RΝA mit SP6RΝA-Polymerase von den rekombinanten Rezeptor und pSFV-Helper2 tragenden Plasmiden transkribiert und in Zellen von BHK (baby hamster kidney) mit Hilfe der
Methode der Elektroporation eingebracht. Nach 24 Stunden wurden die rekombinanten Virus-Partikel gesammelt.
CHO-infizierte Zellen (CHO steht für Chinese hamster ovary) wurden innerhalb 16-48 Stunden nach der Infektion kurz mit 5 mM Hepes-Puffer pH 7.4, 2 mM EDTA gewaschen und in demselben Puffer für 20 Minuten bei 4°C lysiert. Die lysierten Zellen wurden in 10 ml Zentrifügen-Röhrchen überführt, bei 40,000 g für 15 Minuten zentrifugiert und in 50 mM Tris/HCl Puffer pH 7.8, 1 mM EDTA und 5 mM MgCl2 unter Verwendung eines Polytron-Homogenisators. wieder suspendiert. Nach erneuter Zentrifugation bei 40,000 g für 15 Minuten, wurde der Bodensatz bzw. das Pellet gesammelt und bis zur Verwendung in den Rezeptor-Ligand- Wechselwirkungsstudien bzw. Bindungsstudien bei -80°C aufbewahrt (derartige Bedingungen für die Aufbewahrung wurde analog für die anderen Rezeptoren angewendet). Die Herstellung des GABAA-Rezeptors erfolgte aus Rattenhirn von Wistar Ratten der Biological Research Laboratories Ltd., Füllingdorf, Schweiz. Nach Isolierung des Cerebellum wurde dieses in 50-fachem Volumen eines Tris-HCl Puffers (50 mM Tris- HCl, pH 7.4, 0.32 M Sucrose, 1 mM EDTA 0.02% NaN3, und 0.1 mM PMSF) mit einem Polytron-Homogenisator über die Dauer von 30 Sekunden homogenisiert, und daraufhin bei 4°C bei 500 g für 10 Minuten zentrifügiert. Der Überstand bzw. die überstehende Flüssigkeit wurde dann mit zweifachem Volumen des Puffers verdünnt und erneut bei 4°C, 18,000 g für 45 Minuten zentrifügiert. Der so erhaltene Überstand wurde verworfen und das Pellet zweimal mit dem Puffer gewaschen, wobei jeweils die Suspension unter gleichen Bedingungen für 30 Minuten zentrifügiert und die über- stehende Flüssigkeit zum Erhalt des Membran-Pellets verworfen wurde.
Die Herstellung des Benzodiazepin-Rezeptors erfolgte aus Cortex-Material von Rattenhirnen. Dieses wurde daraufhin in 40-fachem Volumen eines Tris-HCl Puffers (15 mM Tris-HCl, pH 7.4, 118 mM NaCl, 4.8 mM KCl, 1.2 mM CaCl2, 1.2 mM MgCl2) über die Dauer von 30 Sekunden homogenisiert. Die Suspension wurde dann weiter mit 120-fachem Volumen des Puffers verdünnt und bei 4°C, 18000 g für 10 Minuten zentrifügiert. Nach Dekantieren des Überstandes bzw. der überstehenden Flüssigkeit wurden die Membran-Pellets erhalten.
Die Präparation des Dopamin-D2-Rezeptors erfolgte aus dem Striatum des Kalbshirns, welches in 40-fachem Volumen eines Tris-HCl Puffers (50 mM Tris-HCl, pH 7.4, 0.1% Ascorbinsäure, 120 mM NaCl, 5 mM KCl, 2 mM CaCl2, 1 mM MgCl2) über die Dauer von 60 Sekunden homogenisiert wurde. Das Homogenat wurde daraufhin bei 4°C, 18000 g für 10 Minuten zentrifügiert. Nach Dekantieren des Überstand bzw. der überstehenden Flüssigkeit wurden die Membran-Pellets erhalten.
Die Bestimmung der Proteinkonzentration erfolgte in allen Fällen durch die BCA- Methode gemäss dem Bericht von P. K. Smith et al. in Analytical Biochemistry 150 (1985), 76-85.
Die Rezeptor-Ligand- Wechselwirkungsstudien wurden in dreifacher Wiederholung (Experiment 1-3) in einem Gesamtvolumen von 500 μl unter den in Tabelle 2 angegebenen Bedingungen durchgeführt. Die Bindungsexperimente wurden durch rasche Filtration mit einem GF/C Filter unter reduziertem Druck und anschliessendem dreimaligen Waschen mit eisgekühlten 5 ml Tris HCl pH 7.4 Puffer beendet. Die Radioaktivität im Filter wurde durch Flüssigkeitsszintillationsanalyse bestimmt (Tri-Carb 2100 TR, Packard Bioscience Company). Die ICJO- Werte wurden aus Kurven ermittelt, die auf den Einzelmessungen basierten und diesen angenähert wurden (P < 0,01). Sie sind hierin als Mittel + Standardabweichung zu verstehen.
Tabelle 2. Rezeptoren, radioaktiv-markierte Liganden und Bedingungen für die kompetitiven Bindungsstudien
Tabelle 3 zeigt summarisch die ICso-Werte aus den kompetitiven
Wechselwirkungsexperimenten zwischen den spezifischen radioaktiv-markierten Liganden und den Blatt- bzw. Wurzelextrakten der vier Kultivare von Piper methysticum G. Forster. Tabelle 3
rr Wσ to Opioid Histamin Serotonin l , 50-weιιe ßenzodiazepin . Dopamin GABAA ;
' (μg/ml) D2 μ δ H, H2 5-HT6 5-HT7
Mahakea Wurzelextrakt 860 ±60 850 + 22 87 ±17 592 ±34 185 ±61 850 ±37 806 ±53 >1000 492 ±13
Mahakea Blattextrakt 510 ±35 68 ±4 4±1 19 ±5 240 ±30 36 ±7 4±1 >1000 127 ±32
PNG Wurzelextrakt 556 ±88 101 ±32 83 ± 15 256 ±69 168 ± 16 603 ±64 630 ±59 >1000 472 ±13
PNG Blattextrakt 710 ±36 36 ±18 1 ±0.5 74 ±11 161 ±39 206 ±33 215 ±23 >1000 338 ±17
Purple Moi Wurzelextrakt 900 ± 97 374 ±61 23 ±4 980 ±79 340 ±32 >1000 >1000 >1000 700 ±34
Purple Moi Blattextrakt 860 ±89 43 ± 16 6 ±2 263 ±42 71 ±23 404 ±91 240 ±17 >1000 395 ± 18
Nene Wurzelextrakt 830 ±89 380 ±82 5 ±2 424 ±16 390 ±33 >1000 >1000 >1000 905 ±65
Nene Blattextrakt 490 ±68 37 ±8 3 + 1 22S±22 134 ±28 337 ±23 374 ±80 >1000 326 ±38
Die stärkste Hemmung der Bindung konnte für Blattextrakte an GAB AA-Rezeptoren mit IC50- Werten von ungefähr 3 μg/ml beobachtet werden (IC50: „Inhibitory Concentration", 50% der spezifischen Bindung sind verdrängt). Die untersuchten Wurzelextrakte hemmten weniger stark, wobei IC50- Werte im Bereich von 5 μg/ml (Nene) bis 87 μg/ml (Mahakea) ermittelt wurden. Eine sehr starke Hemmung konnte auch an Histamin H2-Rezeptoren für Blattextrakte von Mahakea mit einem IC50- Wert von ungefähr 4 μg/ml beobachtet werden, während die Wurzelextrakte von Mahakea lediglich einen ICso-Wert von ungefähr 806 μg/ml aufweisen.
Die Bindung an Dopamin D2-, Opioid- , Serotonin (5-HT7) und Histamin- rezeptoren (Hi und H2) wird ebenfalls von Blattextrakten stärker gehemmt als von
Wurzelextrakten. So konnten moderate bis starke Affinitäten der Blattextrakte ermittelt werden (1 < IC50- Werte < 100 μg/ml), wohingegen die Wurzelextrakte lediglich schwache Aktivitäten mit ICso-Werten von 100 μg/ml bis mehr als 1000 μg/ml zeigten. Es sind grosse Unterschiede in der Hemmung der Bindung zwischen den einzelnen Kultivaren festzustellen. So wurde die stärkste Hemmung an den Histamin- rezeptoren (Hi und H2) für die Blattextrakte der Mahakea und die geringste Hemmung für die Wurzelextrakte der Purple Moi und Nene detektiert. Unterschiedliche Affinitäten wurden auch für die Bindung an die Opioid-Rezeptoren gefunden, wobei die stärkste Affinität an den μ-Opioid-Rezeptor für den Blattextrakt der Mahakea (ICso= 19 ± 5 μg/ml) und die schwächste Affinität für den Blattextrakt der Purple Moi (IC50 = 263 + 42 μg/ml) festgestellt wurde. Im Falle des μ-Opioid-Rezeptors wurde die stärkste Affinität für das Blattextrakt der PNG (IC50 = 71 + 23 μg/ml) festgestellt.
Die Bindung an Benzodiazepin- und Serotonin-Rezeptoren (5-HTÖ und 5-HT7) wurde nur schwach durch die Extrakte von Piper methysticum G. Forster gehemmt. Bei den Benzodiazepin-Rezeptoren lagen die ICso-Werte bei 500 μg/ml und höher, bei
Serotonin 5-HTβ-Rezeptoren sogar bei >1000 μg/ml. Beim Serotonin 5-HT7-Rezeptor lagen die IC50- Werte für Blattextrakte zwischen 127 μg/ml (Mahakea) und 395 μg/ml (Purple Moi).
Diese Bindungsstudien mit ausgewählten, im Zentralen Nervensystem vorkommenden Rezeptoren zeigen die unerwartete pharmakologische Wirkung in vitro von Blattextrakten von Piper methysticum G. Forster im Vergleich zu den Wurzelextrakten. Dies ist umso überraschender, da die Summe des relativen Gehaltes der sechs - in der Regel für die pharmakologische Wirksamkeit des Wurzelstocks bzw. des Wurzelmaterials von Piper methysticum G. Forster verantwortlich gemachten - Kavapyrone bezogen auf das Trockengewicht der Extrakte im Falle der Blattextrakte tiefer als für die entsprechenden Wurzelextrakte ist. Letztere Tatsache und der fehlende Zusammenhang zwischen der in den Studien ermittelten Wirkung der Extrakte und den mittels HPLC gemessenen Kavapyron-Gehalten in diesen Extrakten weist auf weitere insbesondere in den Blättern vorkommende und pharmakologisch wirksame Substanzen hin.
Nachfolgend sind die genauen Zahlenwerte der HPLC-Chromatogramme zu den Figuren 1 - 4 zusammengestellt.
Peak No. Substanz RT Peakfläche RT-Range
Figur 1
Blattextr .
Peak l Methysticin fehlt 0 nd
Peak 2 Dihydromethysticin 16.35 17914 15.8-16.7
Peak 3 Davain 18.43 3582 17.5-18.9
Peak 4 Dihydrokavain 20.14 14776 19.0-21.3
Peak 5 unbekannt 25.07 3655 25.0-25.9
Peak 6 Desmethoxyyangonin 28.69 384 27.6-29.0
Peak 7 Yangonin 30.25 854 29.3-31.1
Wurzelextr .
Figur 2
Peak l Methysticin 15.70 14527 14.8-15.9
Peak 2 Dihydromethysticin 16.37 6124 16.1-17.2
Peak 3 Davain 18.40 22923 17.3-19.1
Peak 4 Dihydrokavain 20.17 6592 19.2-20.5
Peak 5 unbekannt fehlt 0 nd
Peak 6 Desmethoxyyangonin 28.65 5651 27.3-29.6
Peak 7 Yangonin 30.24 5112 29.3-31.3 Fig.3
Bezeichnung RT Fläche [μAU-sec]
A 32.730 921223.500
B 38.177 15648714.336
C 38.813 4784182.200
D 39.477 15473329.942
E 40.240 1017960.516
F 41.250 2795177.600
G 41.627 1364085.585
H 41.983 1954062.604
I 42.467 463513.879
J 44.433 1456578.693
K 44.727 283436.785
L 48.463 870611.600
Gesamtfläche der Peaks = 47032877.240 [μAU-sec]
Fig.4
Bezeichnung RT Fläche [μAU-sec]
M 8.410 38789L479
N 28.547 509802.186
0 32.567 1449506.466
P 37.413 15132578.200
Q 37.880 5310814.000
R 38.443 14880170.730
S 39.117 1328780.200
T 39.940 4019500.540 u 40.333 2180868.169
V 40.637 3920823.431 w 42.673 1514505.232
X 42.983 242147.510
Y 47.533 1295667.212 z 57.837 469412.619
Gesamtfläche der Peaks = 52642467.974 [μAU-sec]

Claims

PATENTANSPRÜCHE
1. Extrakt aus Piper methysticum G. Forster, welcher Extrakt durch ein HPLC- Diagramm gekennzeichnet ist, das im wesentlichen die Merkmale von Figur 1 besitzt.
2. Extrakt nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, dass er ausweislich des HPLC-Diagramms praktisch frei von Methysticin (RT = 14,8 - 15,9, insbesondere 15,70) ist.
3. Extrakt nach Anspruch 1 oder 2 , dadurch gekennzeichnet, dass das HPLC- Diagramm einen für Dihydromethysticin charakteristischen Peak bei RT = 15,8 - 16,7, insbesondere 16,35, besitzt.
4. Extrakt nach einem der Ansprüche 1 - 3, dadurch gekennzeichnet, dass das HPLC-Diagramm einen für Dihydrokavain charakteristischen Peak bei RT = 19,0 - 21,3, insbesondere 20,14 besitzt.
5. Extrakt nach einem der Ansprüche 1 -6, dadurch gekennzeichnet, dass das HPLC-Diagramm einen Peak bei RT = 25,0 - 25,9, insbesondere 25,07, besitzt.
6. Extrakt aus Piper methysticum G. Forster, dadurch gekennzeichnet, dass er durch Extraktion von oberiridisch wachsenden Teilen, insbesondere dem Blattmaterial, von Piper methysticum G. Forster mit einem Extraktionsmittel gewonnen ist.
7. Extrakt nach Anspruch 6, welcher Extrakt durch ein HPLC-Diagramm gekennzeichnet ist, das im wesentlichen die Merkmale von Figur 3 oder 4 besitzt.
8. Verfahren zur Herstellung eines Extraktes gemäss einem der Ansprüche 1 - 7, dadurch gekennzeichnet, dass man den Extrakt aus oberirdisch wachsendem
Pflanzenmaterial von Piper methysticum G. Forster, vorzugsweise dem Blattmaterial, gewinnt, vorzugsweise durch Extraktion des Pflanzenmaterials mit Niederalkanol, insbesonderevorzugsweise Methanol oder Ethanol, "gegebenenfalls in Mischung mit anderen organischen Lösungsmitteln oder mit Wasser, oder mit Kohlendioxid in flüssigem oder überkritischem Zustand, gegebenenfalls in Mischung mit einem Niederalkanol.
9. Verwendung eines Extraktes gemäss einem der Ansprüche 1 - 7 zur Herstellung eines Arzneimittels mit anxiolytischer, antikonvulsiver, muskelrelaxierender, narkosepotenzierender, schmerzstillender, schlafinduzierender, entzündungshemmender und/oder neuroprotektiver Wirkung.
10. Arzneimittel mit anxiolytischer, antikonvulsiver, muskelrelaxierender, narkosepotenzierender, schmerzstillender, schlafinduzierender, entzündungshemmender undoder neuroprotektiver Wirkung, dadurch gekennzeichnet, dass es mindestens teilweise aus einem Extrakt besteht, der durch Extraktion von oberiridisch wachsenden Teilen, insbesondere dem Blattmaterial, von Piper methysticum G. Forster gewonnen ist.
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