EA015794B1 - Термофильные микроорганизмы вида geobacillus с инактивированным геном лактатдегидрогеназы (ldh) для производства этанола - Google Patents

Термофильные микроорганизмы вида geobacillus с инактивированным геном лактатдегидрогеназы (ldh) для производства этанола Download PDF

Info

Publication number
EA015794B1
EA015794B1 EA200702153A EA200702153A EA015794B1 EA 015794 B1 EA015794 B1 EA 015794B1 EA 200702153 A EA200702153 A EA 200702153A EA 200702153 A EA200702153 A EA 200702153A EA 015794 B1 EA015794 B1 EA 015794B1
Authority
EA
Eurasian Patent Office
Prior art keywords
microorganism
gene
ethanol
lactate dehydrogenase
plasmid
Prior art date
Application number
EA200702153A
Other languages
English (en)
Other versions
EA200702153A1 (ru
Inventor
Энтони Аткинсон
Роджер Криппс
Кирстин Элей
Брайан Рудд
Мартин Тодд
Энн Томпсон
Original Assignee
Тмо Реньюаблз Лимитед
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Priority claimed from GBGB0509068.3A external-priority patent/GB0509068D0/en
Priority claimed from GB0511603A external-priority patent/GB0511603D0/en
Application filed by Тмо Реньюаблз Лимитед filed Critical Тмо Реньюаблз Лимитед
Publication of EA200702153A1 publication Critical patent/EA200702153A1/ru
Publication of EA015794B1 publication Critical patent/EA015794B1/ru

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P7/00Preparation of oxygen-containing organic compounds
    • C12P7/02Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a hydroxy group
    • C12P7/04Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a hydroxy group acyclic
    • C12P7/06Ethanol, i.e. non-beverage
    • C12P7/065Ethanol, i.e. non-beverage with microorganisms other than yeasts
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/0004Oxidoreductases (1.)
    • C12N9/0006Oxidoreductases (1.) acting on CH-OH groups as donors (1.1)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/20Bacteria; Culture media therefor
    • C12N1/205Bacterial isolates
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P7/00Preparation of oxygen-containing organic compounds
    • C12P7/02Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a hydroxy group
    • C12P7/04Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a hydroxy group acyclic
    • C12P7/06Ethanol, i.e. non-beverage
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12RINDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/01Bacteria or Actinomycetales ; using bacteria or Actinomycetales
    • C12R2001/07Bacillus
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02EREDUCTION OF GREENHOUSE GAS [GHG] EMISSIONS, RELATED TO ENERGY GENERATION, TRANSMISSION OR DISTRIBUTION
    • Y02E50/00Technologies for the production of fuel of non-fossil origin
    • Y02E50/10Biofuels, e.g. bio-diesel

Abstract

Получен мутированный термофильный микроорганизм с модификацией, инактивирующей ген лактатдегидрогеназы микроорганизма дикого типа. Этот мутированный микроорганизм применяют при продуцировании этанола, используя С, Сили Ссахара в качестве субстрата.

Description

Данное изобретение относится к продуцированию этанола как продукта бактериальной ферментации. В частности, изобретение относится к продуцированию этанола термофильными бактериями.
Предшествующий уровень техники
Бактериальный метаболизм может осуществляться посредством ряда различных механизмов в зависимости от вида бактерий и условий окружающей среды. Гетеротрофные бактерии, которые включают все патогены, получают энергию от окисления органических соединений, причем самыми распространенными окисляемыми соединениями являются углеводы (в частности, глюкоза), липиды и белок. Результатом биологического окисления этих органических соединений бактериями является синтез АТФ как химического источника энергии. Этот процесс также дает возможность образования более простых органических соединений (молекул-предшественников), которые требуются бактериальной клетке для реакций биосинтеза. Общим процессом, посредством которого бактерии метаболизируют подходящие субстраты, является гликолиз, который представляет собой последовательность реакций, превращающих глюкозу в пируват с образованием АТФ. Судьба пирувата при генерировании метаболической энергии зависит от микроорганизма и условий окружающей среды. Существует три основных реакции пирувата.
Во-первых, в аэробных условиях многие микроорганизмы будут генерировать энергию, используя цикл лимонной кислоты и превращение пирувата в ацетилкоэнзим А, катализируемое пируватдегидрогеназой (ΡΌΗ).
Во-вторых, в анаэробных условиях некоторые образующие этанол микроорганизмы могут осуществлять спиртовую ферментацию путем декарбоксилирования пирувата до ацетальдегида, катализируемого пируватдекарбоксилазой (ΓΌΟ), и последующего восстановления ацетальдегида до этанола посредством НАДФ (никотинамиддинуклеотидфосфата), катализируемого алкогольдегидрогеназой (ΆΌΗ).
Третьим процессом является превращение пирувата в лактат, которое происходит посредством катализа лактатдегидрогеназой (ΓΌΗ).
Существует большой интерес в использовании микроорганизмов для продуцирования этанола либо с использованием микроорганизмов, которые претерпевают анаэробную ферментацию естественным путем, либо посредством использования рекомбинантных микроорганизмов, которые включают гены пируватдекарбоксилазы и алкогольдегидрогеназы. Хотя достигнут некоторый успех в продуцировании этанола путем использования этих микроорганизмов, ферментация часто подвергается риску за счет повышенной концентрации этанола, в частности, когда микроорганизм обладает низким уровнем толерантности к этанолу.
Для продуцирования этанола предложены термофильные бактерии, их применение обладает тем преимуществом, что ферментацию можно проводить при повышенных температурах, которые дают возможность удаления продуцированного этанола в виде пара при температурах выше 50°С; это также дает возможность проведения ферментации с использованием высоких концентраций сахара. Однако поиск подходящих термофильных бактерий, которые могут эффективно продуцировать этанол, проблематичен.
В \УО 01/49865 раскрыта грамположительная бактерия, которая трансформирована гетерологичным геном, кодирующим пируватдекарбоксилазу, и которая обладает нативной функцией алкогольдегидрогеназы, для продуцирования этанола. Эта бактерия представляет собой термофильную Вас111ик, и эта бактерия может быть модифицирована инактивацией гена лактатдегидрогеназы с использованием вставки транспозона. Все бактерии, раскрытые в \УО 01/49865, имеют происхождение от штамма ВаеШик БЕО-Я штамма с дефицитом споруляции, который возник спонтанно из культуры и в котором ген 1бЬ инактивирован спонтанной мутацией или химическим мутагенезом. Штаммы Б-Ν и ΤΝ раскрыты в качестве улучшенных производных штамма ЬГО-К.. Однако все штаммы содержат рестрикционные системы типа Нае III, что затрудняет плазмидную трансформацию и, следовательно, предотвращает трансформацию неметилированной ДНК.
В \УО 01/85966 раскрыты микроорганизмы, которые получают путем метилирования ίη νίνο, чтобы преодолеть проблемы рестрикции. Это требует трансформации метилтрансферазы Нае III из НаешорНПик аедурБик в штаммы ΓΓΌ-Κ, ΌΝ и ΤΝ. Однако штаммы ЬГО-К, ΌΝ и ΤΝ являются нестабильными мутантами и спонтанно ревертируют к продуцирующим лактат штаммам дикого типа, в частности, при низком рН и при высоких концентрациях сахара.
Результатом этого являются изменения продукта ферментации с этанола на лактат, что делает эти штаммы непригодными для продуцирования этанола.
В \УО 02/29030 раскрыто, что штамм ЬГО-К. и его производные включают встречающийся в природе инсерционный элемент (БЕ) в кодирующей области гена ИН. Транскрипция этого элемента внутри гена ИН (и вне его) и последующая инактивация гена является нестабильной, приводя к реверсии. В качестве решения была предложена интеграция плазмидной ДНК в последовательность ГЕ.
Таким образом, на уровне техники получение микроорганизмов для продуцирования этанола основано на модификации полученных в лаборатории мутированных химическим путем микроорганизмов ВаеШик, их обработке ίη νίνο с помощью методик метилирования и последующей модификации этих микроорганизмов интеграцией плазмидной ДНК в последовательность БЕ. Эта процедура сложна, ненадежна, а также существуют спорные предписания по использованию этих штаммов.
- 1 015794
Таким образом, существует необходимость в усовершенствованных микроорганизмах для продуцирования этанола.
Краткое изложение сущности изобретения
Согласно первому аспекту настоящего изобретения термофильный микроорганизм модифицирован таким образом, чтобы дать возможность повышенного продуцирования этанола, где эта модификация представляет собой инактивацию гена лактатдегидрогеназы термофильного микроорганизма дикого типа.
Согласно второму аспекту настоящего изобретения этот микроорганизм депонирован как Νί'ΊΜΒ. номер по каталогу 41275.
Согласно третьему аспекту настоящего изобретения способ продуцирования этанола включает культивирование микроорганизма в соответствии с приведенным выше определением в пригодных условиях в присутствии С3, С5 или С6 сахара.
Согласно четвертому аспекту настоящего изобретения плазмида является такой, как определено здесь как рИВ190-Ий (депонирована как Νί'ΊΜΒ. номер по каталогу 41276).
Согласно пятому аспекту настоящего изобретения термофильный микроорганизм содержит плазмиду, определенную здесь как рИВ190 (фиг. 4).
Описание графических материалов
Настоящее изобретение описано со ссылкой на сопроводительные графические материалы, где фиг. 1 представляет собой график, показывающий продуцирование этанола микроорганизмом по изобретению (Ий 35) с различными субстратами;
фиг. 2 представляет собой график, показывающий продуцирование этанола микроорганизмом по изобретению (Ий 58) с различными субстратами;
фиг. 3 представляет собой график, показывающий продуцирование этанола нокаут-мутантом по 1.11Н 11955;
фиг. 4 и 5 представляют собой схематические изображения плазмид рИВ, используемых в изобретении; фиг. 4 представляет собой мутант Ий согласно изобретению;
фиг. 6 представляет собой график, показывающий стабильность нокаут-мутанта ЙЭН в различных условиях культивирования.
Описание изобретения
Настоящее изобретение основано на модификации термофильного микроорганизма дикого типа, прерывающей экспрессию гена лактатдегидрогеназы.
Инактивация гена лактатдегидрогеназы способствует предотвращению расщепления пирувата до лактата и, следовательно, стимулирует (в подходящих условиях) расщепление пирувата до этанола с использованием пируватдекарбоксилазы и алкогольдегидрогеназы. Предпочтительно, если ген лактатдегидрогеназы прерывают путем делеции внутри гена или всего гена.
Микроорганизм дикого типа может представлять собой любой термофильный микроорганизм, но предпочтительно, если этот микроорганизм представляет собой ВасШик крр. В частности, предпочтительно, если этот микроорганизм принадлежит к виду ОеойасШик, в частности ОеойасШик (йсгтодйюокИакищ.
Микроорганизмы, выбранные для модификации, указаны как микроорганизмы дикого типа, т.е. они не являются мутантами, полученными в лаборатории. Эти микроорганизмы могут быть выделены из образцов окружающей среды, которые, как ожидают, содержат термофилы. Изолированные микроорганизмы дикого типа будут обладать способностью к продуцированию этанола, но, если они не модифицированы, лактат, вероятно, является основным продуктом ферментации. Изоляты также отбирают на их способность к росту на сахарах гексозах и/или пентозах и их олигомерах при термофильных температурах.
Предпочтительно, чтобы микроорганизм по изобретению обладал некоторыми желательными характеристиками, которые дают возможность использования этого микроорганизма в процессе ферментации. Предпочтительно этот микроорганизм не должен иметь систему рестрикции, посредством чего избегают необходимости в метилировании ίη у1уо. Кроме того, микроорганизм должен быть стабильным по меньшей мере к 3% этанолу и должен обладать способностью к утилизации С3, С5 и С6 сахаров (или их олигомеров) в качестве субстрата, включая целлобиозу и крахмал. Предпочтительно, если этот микроорганизм является трансформируемым при высокой частоте. Кроме того, этот микроорганизм должен иметь скорость роста в непрерывной культуре для поддержания степеней разбавления 0,3 ч-1 и выше (типично 0,3 ОП500).
Микроорганизм является термофилом и растет в температурном диапазоне 40-85°С. Предпочтительно этот микроорганизм растет в температурном диапазоне 50-70°С. Кроме того, желательно, чтобы этот микроорганизм рос в условиях рН 7,2 или ниже, в частности рН 6,9-4,5.
Микроорганизм может быть спорообразующим либо может не спорулировать. Успех процесса ферментации не обязательно зависит от способности микроорганизма к споруляции, хотя при некоторых обстоятельствах может быть предпочтительно иметь спорообразующий микроорганизм, когда желательно использовать микроорганизмы в качестве корма для животных по окончании процесса ферментации. Это является следствием способности спорообразующих микроорганизмов к обеспечению хорошей им
- 2 015794 муностимуляции при использовании в качестве корма для животных. Спорообразующие микроорганизмы также обладают способностью к осаждению во время ферментации, и, следовательно, их можно выделить без необходимости в центрифугировании. Соответственно эти микроорганизмы можно использовать в корме для животных без необходимости в сложных или дорогостоящих методиках выделения.
Последовательность нуклеиновой кислоты для лактатдегидрогеназы сейчас известна. Используя эту последовательность, специалист в данной области техники имеет возможность использовать ген лактатдегидрогеназы в качестве мишени для достижения инактивации этого гена посредством различных механизмов. Предпочтительно, если ген лактатдегидрогеназы инактивируют либо путем инсерции транспозона, либо предпочтительно путем делеции последовательности этого гена или участка последовательности этого гена. Делеция является предпочтительной, поскольку позволяет избежать трудностей повторной активации последовательности гена, которая часто происходит при использовании транспозонной инактивации. В предпочтительном воплощении ген лактатдегидрогеназы инактивируют путем интеграции термочувствительной плазмиды (плазмиды рИВ190-1бй), которая достигается естественной гомологичной рекомбинацией или интеграцией между плазмидой и хромосомой микроорганизма. Хромосомные интегранты можно отобрать на основании их устойчивости к антибактериальному агенту (например к канамицину). Интеграция в ген лактатдегидрогеназы может происходить посредством события рекомбинации по типу одиночного кроссинговера или посредством события рекомбинации по типу двойного (или более чем двойного) кроссинговера.
В предпочтительном воплощении микроорганизм содержит гетерологичный ген алкогольдегидрогеназы и гетерологичный ген пируватдекарбоксилазы. Результатом экспрессии этих гетерологичных генов является продуцирование ферментов, которые меняют направление метаболизма таким образом, что этанол является основным продуктом ферментации. Эти гены могут быть получены из микроорганизмов, которые типично претерпевают анаэробную ферментацию, включая виды Ζν то шопах, включая Ζνηιοιηοηαχ тоЬШк.
Способы получения и включения этих генов в микроорганизмы известны, например, в 1пдтат с1 а1., Вю1есй & ВюЕпд, 1998; 58 (2+3): 204-214 и И8 5916787, где содержание каждой публикации включено здесь путем ссылки. Эти гены могут быть введены на плазмиде или интегрированы в хромосому, как должно быть известно специалистам в данной области техники.
Микроорганизмы по изобретению можно культивировать в общепринятых условиях культивирования в зависимости от выбранного термофильного микроорганизма. Выбор субстратов, температуры, рН и других условий роста можно произвести на основании известных требований к культивированию, например, см. XVО 01/49865 и ХУО 01/85966, где содержание каждой публикации включено здесь путем ссылки.
Теперь настоящее изобретение будет описано только путем примера со ссылкой на сопроводительные графические материалы в приведенных ниже примерах.
Инактивация гена ЬИН.
Пример 1. Мутация в результате одиночного кроссинговера.
Разработка нокаут-вектора ЬИН.
Частичный фрагмент гена Ий примерно 800 п.о. субклонировали в термочувствительном векторе доставки риВ190 (8ЕО ΙΌ N0: 1), используя ΗίηάΙΙΙ и ХЬа1, с получением в результате плазмиды 7,7 кб рИВ190-Ий (фиг. 4 и 8ЕО ΙΌ N0: 2). Плазмида рИВ190 депонирована в ΝΟΜΒ, как указано ниже. Десять предполагаемых трансформантов Е.еой 1Μ109 (рИВ190-Ий) проверяли с помощью рестрикционного анализа, и две культуры использовали для получения плазмидной ДНК для целей трансформации. В результате переваривания рИВ 190-Ий рестриктазами ΗίηάΙΙΙ и ХЬаГ высвобождается ожидаемый фрагмент Ий.
Трансформация СсоЬаеШих ИеттодИсокИакшк 11955 плазмидой рИВ190-Ий.
Трансформанты были получены со всеми тремя плазмидами, протестированы после 24-48 ч при 54°С селекцией канамицином. Трансформанты Ий очищали из СеоЬасШик ИеттодИсокИакшк (Οί) 11955 и проверяли с помощью рестрикционного анализа, используя ΗίηάΙΙΙ и ХЬаЕ
Нокаут гена ЬИН.
Нокаут гена осуществляли посредством интеграции термочувствительной плазмиды в ген Ий на хромосоме.
Плазмида рИВ 190-Ий реплицируется при 54°С в СП 1955, но не реплицируется при 65°С. Селекцию поддерживали канамицином (кап) (12 мкг/мл). Затем температуру роста повышали до 65°С (плазмида больше не является репликативной). Естественная рекомбинация или интеграция происходит между плазмидой и хромосомой. Хромосомные интегранты отбирали по их устойчивости к канамицину. Интеграция была направлена в сторону гена Ий, поскольку на плазмиде находится гомологичная последовательность. Направленная интеграция в ген Ий происходила посредством процесса, известного как рекомбинация по типу одиночного кроссинговера. Плазмида становится встроенной в ген Щй, результатом чего является неактивный ген Ий. Тандемные повторы могут встречаться, если интегрирует несколько копий плазмиды.
- 3 015794
Методология и результаты.
Для интеграции предпринимали два различных метода.
Метод 1. 4x50 мл культур ТОР (кап) выращивали при 54°С в течение 12-18 ч. Клетки осаждали центрифугированием и ресуспендировали в 1 мл ТОР. Эту суспензию высевали на чашки (5x200 мл) ТОР (кап) и инкубировали в течение ночи при 68°С. Интегранты собирали и высевали на 50-квадратную решетку на свежих чашках ТОР (кап) и инкубировали в течение ночи при 68°С.
Метод 2. 1x50 мл культуры ТОР (кап) выращивали при 54°С в течение 12-18 ч. 1 мл этой культуры использовали для инокуляции 50 мл свежих культур ТОР (кап), которые выращивали при 68°С в течение 12-18 ч. Эту культуру субкультивировали на следующие сутки в 50 мл свежих культур ТОР (кап) и выращивали при 68°С еще в течение 12-18 ч. Эту культуру высевали на чашки ТОР (кап) и инкубировали при 68°С в течение ночи. На чашках был получен конфлюентный рост. Отдельные колонии высевали на 50-квадратную решетку на свежие чашки ТОР (кап) и инкубировали в течение ночи при 68°С.
Скрининг.
Предполагаемые интегранты подвергали скринингу на нокаут гена Ий, используя приведенное ниже.
1) Скрининг на чашках.
Несколько сотен интегрантов перепечатывали на чашки 8ЛМ2 (с кап) при 68°С. Отрицательные по лактату клетки продуцируют меньше кислоты и могут обладать ростовым преимуществом по сравнению с диким типом на ферментационных средах без буферов.
2) Скрининг с помощью ПЦР.
ПЦР колоний использовали для определения того, интегрировали ли плазмида в ген Ий. Путем подбора праймеров, которые фланкируют сайт интеграции, возможно определить, произошла ли интеграция гена Ий (для вставок фрагмент ПЦР не амплифицируется).
3) Анализ на лактат.
Данный анализ определяет, продуцируют ли интегранты лактат при росте в течение ночи на 8АМ2 (кап) при 68°С. Надосадочную жидкость культуры тестировали на концентрацию лактата реагентом на лактат фирмы 81дша для определения лактата. Отрицательные по лактату интегранты дополнительно характеризовали с помощью ПЦР и оценивали в ферментере на стабильность.
Протокол электропорации для ОеойасШиз ИегтоцИсобИабШб Ν0ΙΜΒ 11955.
Замороженную исходную культуру ΝΟΙΜΒ 11955 получали путем выращивания ночной культуры в среде ТОР (250 об/мин при 55°С, объем 50 мл в конической колбе на 250 мл, ОП600), добавления равного объема 20% глицерина и деления на аликвоты по 1 мл и хранения в пробирках для криоконсервации при -80°С. 1 мл этой исходной культуры использовали для инокуляции 50 мл ТОР в конической колбе на 250 мл, инкубация при 55°С, 250 об/мин, до достижения культурой ОП600 1,4.
Колбу охлаждали на льду в течение 10 мин, затем культуру центрифугировали в течение 20 мин при 4000 об/мин при 4°С. Осадок ресуспендировали в 50 мл охлажденной во льду среды для электропорации и центрифугировали при 4000 об/мин в течение 20 мин. Проводили три дополнительных отмывки, 1x25мл и 2x10 мл, а затем осадок ресуспендировали в 1,5 мл охлажденной во льду среды для электропорации и делили на аликвоты по 60 мкл.
Для электропорации 1-2 мкл ДНК добавляли к 60 мкл электрокомпетентных клеток в пробирке типа Эппендорф, которую держали на льду, и мягко перемешивали. Эту суспензию переносили в предварительно охлажденную кювету для электропорации (щель 1 мм) и проводили электропорацию при 2500 В, емкости 10 мФ и сопротивлении 600 Ом.
Сразу после импульса добавляли 1 мл ТОР, перемешивали и суспензию переносили в пробирку с завинчивающейся крышкой, инкубировали при 52°С в течение 1 ч в водяной бане с качалкой. После инкубации суспензию либо высевали непосредственно (например, 2x0,5 мл), либо центрифугировали при 4000 об/мин в течение 20 мин, ресуспендировали в 200-500 мкл ТОР и высевали на агар ТОР, содержащий соответствующий антибиотик.
Среда для электропорации
Среда Т6Р
0,5 М сорбит
0,5 М маннит
10% глицерин
Триптон 17 г/л Соевый пептон 3 г/л
КсНРО, 2,5 г/л
МаС1 5 г/л рН до 7,3
Добавки после автоклавирования:
Пируват натрия 4 г/л Глицерин 4 мл/л
Инактивация гена ЬЭН.
Мутация в результате двойного кроссинговера.
Праймеры разрабатывали на основе доступной последовательности 11955 ЬЭН. Нокаут-стратегия была основана на создании внутренних делеций внутри гена ЬЭН путем двух подходов.
При стратегии 1 два существующих уникальных сайта рестрикции вблизи середины кодирующей последовательности ЬЭН использовали для образования делеций. Из геномной ДНК получали один
- 4 015794 большой продукт ПЦР, покрывающий большую часть доступной последовательности ЬБИ, и клонировали в сайте 8ша1 во множественном сайте клонирования в рИС19, Затем клон рИС19 последовательно переваривали ΒδΐΕΙΙ и ΒδτΘΙ и повторно лигировали после переваривания фрагментом Кленова с образованием внутренней делеций в гене ΕΌΗ между ΒδΐΕΙΙ и ΒδτΘΙ.
При стратегии 2 (см. пример 2) ген ΕΌΗ клонировали в виде 2 продуктов ПЦР, вводя сайты ΝοΐΙ на олигопраймерах, чтобы образовать 2 продукта ПЦР для совместного лигирования в рИС19 с образованием делеций в середине последовательности ΕΌΗ. Два гена ΕΌΗ с внутренними делециями субклонировали в трех потенциальных системах доставки для ОеоЬасШиз.
Плазмида Подробное описание
рси1 4,94 кб, челночный вектор на основе рС194, несет са! и Ыа
рВТ2 6,97 кб, челночный вектор, полученный из термочувствительного мутанта рЕ194, несет са! и Ыа
рТУОтсз 4,392 кб, получен из рЕ1941з, несет са( (без грамотрицательного репликона).
Векторы доставки трансформировали в 11955 путем электропорации.
Информация по генетической стратегии: разработка систем доставки для гомологичной рекомбинации.
Для создания нокаутов необходима эффективная система для доставки мутированного гена в организм-мишень и отбора на интеграцию в геном в результате гомологичной рекомбинации с геноммишенью дикого типа. В принципе, это может быть достигнуто путем введения ДНК на векторе Е.со11 без грамположительного репликона, но который несет грамположительный селективный маркер. Для этого необходима высокая эффективность трансформации. Метод электропорации, разработанный для ОеоЬасШиз 11955, создает 3х104 трансформантов на 1 мкг ДНК с ρΝ^33Ν. Грамположительный репликон выделен из рВС1 по каталогу ВО8С и из рТНТ15 по базе данных последовательностей.
Ген са! на ρΝ^33Ν используют для селекции как в Е.со11, так и в ОеоЬасШиз. Термочувствительные мутанты ρΝ^33Ν были получены с помощью пассажей плазмиды через штамм-мутатор ВКДадепе ХЬ1г еб.
Пример 2. Получение мутанта ΕΌΗ путем замещения гена.
Для получения стабильной мутации гена ΕΌΗ в ОеоЬасШиз Шегшо§1исо81ба8Ш8 ΝίΊΜΒ 11955 была разработана дополнительная стратегия путем замещения гена. В эту стратегию вовлечено создание делеции 42 п.о. вблизи середины кодирующей последовательности и инсерции 7 п.о. в данном положении, вводящей новый сайт рестрикции ^ΐΙ. Эта последовательность вставки была предназначена для того, чтобы вызвать мутацию сдвига рамки считывания правее. В данную стратегию вовлечено создание делеции с использованием 2 фрагментов ПЦР, используя олигопраймеры, вводящие сайт рестрикции ^ΐΙ. Праймеры были разработаны на основании частичной последовательности кодирующей области ΕΌΗ из 11955. Последовательность использованных праймеров показана ниже.
Фрагмент 1:
Праймер 1 (прямой): ССАМТСССТТАТСААССААССААТАССА Ц) ]уо: 3· затененная последовательность указывает основания, введенные для создания нового сайта ЕсоВЦ.
Праймер 2 (обратный): ССС(ЭССССАССС6СТСТТТС6СТААСССССТ ш ΝΟ; 4_ затененная после_ довательность указывает основания, введенные для создания нового сайта ^П).
Фрагмент 2:
Праймер 3 (прямой): ли (§Ер ΙΌ ΝΟ: 5; затененная последовательность указывает основания, введенные для создания нового сайта ^П).
Праймер 4 (обратный): СТОСАСССТСААТТССАТСАСТТСАСбА ^Е(^ ш Νθ. 6_ затененная последовательность указывает основания, введенные для создания нового сайта ΡδΐΙ).
Получение препарата геномной ДНК.
Препарат геномной ДНК, который служит матрицей для ПЦР, получали из 11955. Клетки из 20 мл ночной культуры 11955, выращенной в среде ΤΘΡ при 52°С, собирали центрифугированием при 4000 об/мин в течение 20 мин. Клеточный осадок ресуспендировали в 5 мл буфера 8ΤΕ 0,3 М сахароза, 25 мМ Трис 11С1 и 25 мМ ЭДТА, доведенного до рН 8,0, содержащего 2,5 мг лизоцима и 50 мкл 1 мг/мл рибонуклеазы А. Эту смесь инкубировали в течение 1 ч при 30°С, затем добавляли 5 мл протеиназы К и 50 мкл 10% ДСН с последующей инкубацией при 37°С в течение 1 ч. Затем лизированную культуру последовательно экстрагировали равными объемами фенола/хлороформа, а затем хлороформом, после чего осаждали изопропанолом. После отмывки дважды охлажденным во льду 70% этанолом осадок ДНК снова растворяли в 0,5 мл буфера ТЭ.
- 5 015794
Создание конструкции с делецией БЭН.
ПЦР проводили, используя ВоЬосус1ет СтаФеп! 96 (8!та!адепе), и условия реакции были следующими: цикл 1: денатурация при 95°С в течение 5 мин, отжиг при 47°С в течение 1 мин, элонгация при 72°С в течение 2 мин; циклы 2-30: денатурация при 95°С в течение 1 мин, отжиг при 47°С в течение 1 мин, элонгация при 72°С в течение 2 мин, последующая инкубация при 72°С в течение 5 мин. Используемые ферменты представляли собой равную смесь полимеразы РГи (Рготеда) и полимеразы Тад (Иете Епд1аиб Вю1аЬ§, ΝΕΒ). Используемые буфер, состав и концентрация 6ΝΤΡ были такими, как рекомендовано для РГи поставщиками. Продукты ПЦР, полученные с использованием геномной ДНК из Νί'ΊΜΒ 11955 в качестве матрицы, очищали путем электрофореза в агарозном геле и элюировали из агарозного геля с использованием набора О1Ас.|шск Се1 ЕхйасДоп Κίΐ (01адеп). Очищенные продукты ПЦР лигировали с риС19 (Νονν ЕпДапб Вю1аЬ§), предварительно переваренной 8та1, и лигазную смесь использовали для трансформации ЕксйепсЫа сой ΌΗ10Β Цпуйтодеп). Отбирали колонии, устойчивые к ампициллину, и содержащиеся плазмиды выделяли и характеризовали рестрикционным анализом и устанавливали ориентацию вставок.
Плазмиду (рТМ002) с фрагментом 2, встроенным в рИС19 (с новым сайтом РШ, введенным на праймере 4 ближе всего к сайту РбН в сайте поликлонирования (тс§) рИС19), переваривали №ΐΙ и РШ. Полученный в результате фрагмент (примерно 0,4 кб) лигировали в плазмиду рИС19 (рТМ001), несущую фрагмент 1 (с новым сайтом ЕсоШ, введенным на праймере 1 ближе всего к сайту ЕсоР1 в тс§ рИС19), переваренную и РШ для линеаризации плазмиды. Лигазную смесь использовали для трансформации
Е.сой ΌΗ10Β. Отбирали колонии, устойчивые к ампициллину, и содержащиеся плазмиды выделяли и характеризовали рестрикционным анализом. Плазмиду (рТМ003) с ожидаемым паттерном рестрикции для желаемой конструкции (кодирующая область ЬОН, несущая делецию и введенный сайт идентифицировали и проверяли секвенированием, используя прямой и обратный праймеры М13тр18.
Мутированный ген ЬОН вырезали из рТМ003 путем переваривания ΗίηάΙΙΙ и ЕсоР1 и очищали путем электрофореза в агарозном геле с последующей элюцией из агарозного геля с использованием набора р^цшск Се1 Ех1тасйоп Κίΐ (в виде фрагмента примерно 0,8 кб). Этот фрагмент обрабатывали полимеразой Кленова ЩЕВ, согласно инструкциям изготовителей) с образованием тупых концов и вводили в вектор риВ190. Это было достигнуто путем лигирования по тупым концам с рИВ190, линеаризованной перевариванием ХЬа!, а затем обработанной фрагментом Кленова с последующей очисткой из геля, как описано выше. Лигазную смесь использовали для трансформации Е.сой 8С8110 (81та!адепе). Отбирали колонии, устойчивые к ампициллину, и содержащиеся плазмиды выделяли и характеризовали рестрикционным анализом. Плазмиду (рТМ014) с ожидаемым паттерном рестрикции для желаемой конструкции идентифицировали и использовали для трансформации NСIМΒ 11955 путем электропорации, используя протокол электропорации, как описано в примере 1.
Получение и характеристика мутанта ЬОН с замещением гена посредством двойного кроссинговера.
Предполагаемый первичный интегрант рТМ014, полученный таким способом (штамм ТМ15), использовали для получения двойных рекомбинантов (замещения гена). Это было достигнуто с помощью серийной субкультуры ТМ15 в среде ТСР без канамицина. Использовали пять последовательных культур при качании, чередуя 8 ч при 54°С и 16 ч при 52С°, используя 5 мл ТСР в пробирках на 50 мл (Еа1соп) при 250 об/мин, 1% пересев на каждой стадии. После этих 5 пассажей полученную в результате культуру серийно разводили в ТСР и высевали пробы по 100 мкл на чашки с агаром ТСР для инкубации при 54°С. Перепечатку полученных в результате колоний на агар ТСР, содержащий 12 мкг/мл канамицина, использовали для идентификации колоний, чувствительных к канамицину. После рассева истощающим штрихом на агаре до отдельных колоний для очистки эти производные, чувствительные к канамицину, тестировали на продуцирование лактата, и, как ожидали, оказалось, что они представляют собой смесь БЭН' и БЭН-. Одно производное ЬОН-, ТМ89, было дополнительно охарактеризовано с помощью ПЦР и Саузерн-блоттингов.
Геномную ДНК получали из ТМ15 (первичный интегрант) и ТМ89 (предполагаемый двойной рекомбинант ЬОН-) и использовали в качестве матрицы для ПЦР с использованием праймеров 1 и 4 и условий, описанных выше. Геномную ДНК из 11955 использовали в качестве контроля. Продукты ПЦР (полосы примерно 0,8 кб получены для всех 3 матриц) очищали электрофорезом в агарозном геле и элюировали из агарозного геля, используя набор р1Адшск Се1 Ех!тас1юп Κίΐ. Образцы переваривали №П и разгоняли на 0,7% агарозном геле для визуализации продуктов. Продукт ПЦР 11955 не показал данных рестрикции №1Е как ожидали, тогда как продукт ПЦР ТМ89 дал 2 полосы примерно по 0,4 кб, что указывает на замещение гена дикого типа мутированным аллелем. Переваривание продукта ПЦР ТМ15, первичного интегранта, дало преимущественно 2 полосы, наблюдаемые для ТМ89, со следом нерестрицированной (0,8 кб) полосы. Это можно объяснить результатом, полученным Саузерн-блоттингом геномной ДНК ТМ15.
Геномную ДНК 11955, ТМ15 и ТМ89 переваривали №ΐΙ, Рб!! и №11 и НшбШ и №11 и подвергали электрофорезу в агарозном геле. ДНК переносили на положительно заряженную нейлоновую мембрану (Восйе) и гибридизовали с меченым Э1С зондом, полученным с помощью ПЦР гена БЭН 11955, исполь
- 6 015794 зуя праймеры 1 и 4, с мечеными ИЮ 6ΝΤΡ, следуя инструкциям поставщиков (Коейе Мо1еси1аг ВюсйепйсаЕ ИЮ аррйсайоп тапиа1). Гибридизовавшиеся полосы визуализировали, используя поставляемый набор для обнаружения (Косйе). Данные Саузерн-блоттинга показали наличие множественно амплифицированной полосы примерно 7,5 кб в переваре №Й ТМ15 с так же амплифицированными полосами примерно 7 и 0,4 кб в переварах Нтй111/№11 и РШ/ШЙ ТМ15, что указывает на интеграцию множественных тандемных копий рТМ014, интегрированных при локусе ЬИН в данном первичном интегранте. Со всеми 3 рестрикционными переварами ТМ89 показала наличие другого паттерна рестрикции, показывающего дополнительную полосу гибридизации по сравнению с11955, соответствующую замещению гена. ТМ89 депонирована в NСIМΒ под номером по каталогу 41275, как указано ниже.
Пример 3. Продуцирование этанола термофилом дикого типа.
Воспроизводимый рост и образование продукта было достигнуто в культурах с подпиткой и непрерывных культурах для термофила дикого типа. В табл. 1, 2 и 3 показаны условия, используемые для процесса ферментации.
Таблица 1
Хи м и чес кие веще ства об/л Конечная концентрация
МаН2РО4.2Н2О 25 мМ
К2ЗО4 10 мМ
Лимонная кислота.Н;О 2мМ
МдЗО42О 1,25 мМ
СаС122О 0,02 мМ
Сульфатный раствор микроэлементов 5 мл См. ниже
2МоО4.2Н2О 1,65 мкМ
Дрожжевой экстракт 10 г
Пеногаситель 0,5 мл
Добавки после автоклавирования:
4 М мочевина 25 мл 100 мМ
1% биотин 300 мкл 12 мкМ
20% глюкоза2 50 мл 1%
Таблица 2
Сульфатный концентрированный раствор микроэлементов
Химические вещества гл1 (мл) Концентрация в среде
Конц. Н24 5 мл
ΖηδΟ4.7Η2Ο 1,44 25 мкМ
Ее5О4.7Н2О 5,56 100 МКМ
МпЗО420 1,69 50 мкМ
Си5О4.5Н2О 0,25 5 мкМ
Со5О4.7Н2О 0,562 10 мкМ
Νί3Ο4.6Η2Ο 0,886 16,85 мкМ
Н3ВО3 0,08
Деионизованная Н2О (конечный об.) 1000 мл
Таблица 3
Условия ферментера
Инокулят 10% об/об
Объем 1000 мл
Температура 60°С
РН 7,0 регулируется Ν3ΟΗ
Аэрация 0,4 обг/мин
Ν, скорость потока 0,05 л/мин
Перемешивание 400 об/мин
Среда Мочевина сульфаты для ферментеров
Подача сахара 100 мл 50% глюкозы
- 7 015794
Таблица 4
Суммирование улучшений р в пеоиодическс эста Вас Й КУЛЬТ' |||119 дикого типа /ое
Среда Суммарный добавленный сахар, мМ ОП600 мМ
пир пакт форм ацет этанол
Ксилоза 603 8,5 9 187 5 75 22
Глюкоза 1 504 4 2 295 36 28 39
Глюкоза 2 504 3,7 19 322 111 55 123
Пример 4. Повышение продуцирования этанола термофилами.
С целью достижения целевых выходов этанола и производительности термофила продуцирование молочной кислоты было минимизировано посредством нокаута активности Ь-лактатдегидрогеназы (БЭН) путем инактивации гена 1Й11. Имело место два подхода, предпринятых для инактивации гена Ιάΐι: рекомбинация ДНК-маркера по типу одиночного кроссинговера в области 1Й11 хромосомы, предотвращающая ее транскрипцию, или рекомбинация по типу двойного кроссинговера гомологичных областей ДНК в гене 1Й11 с образованием мутации внутри области этого гена, делающая его нефункциональным.
В результате метода одиночного кроссинговера были быстро получены ЬИН-отрицательные мутанты, которые проявляли повышение продуцирования этанола по сравнению со штаммом дикого типа (ΝΟΙΜΒ 11955).
Улучшения продуцирования этанола мутантами БЭН.
ЬИН-отрицательные мутанты выращивали в культурах с подпиткой в разработанной минимальной среде для изверения повышения продуцирования этанола в результате нокаута активности БЭН. Изменения профиля метаболитов мутантов БЭН показано в табл. 5 в сравнении с оптимальным продуцированием этанола из штамма дикого типа. Профили продуцирования метаболитов двух мутантов БЭН показаны на фиг. 1 и 2. В табл. 6 показано повышение продуцирования этанола, вызванное нокаутом активности БЭН.
Таблица 5
Суммирование повышения продуцирования этанола, достигнутого мутантами по лактату
Организм Источник углерода Суммарный сахар опвоо мМ
пир пакт форм ацет этанол
Дикий тип Глюкоза 603 3,7 19 322 111 55 123
1сНп35 Глюкоза 336 4,7 82 22 128 37 220
Ι8Π 58 Глюкоза 336 5,2 57 3 40 23 215
Таблица 6
Повышенное продуцирование этанола мутантами 1_ОН в культуре с подпиткой
Организм Источник углерода ОП600 Глюкоза в подпитке, г Остаточная глюкоза, г Лактат, г Лактат, г/г клеток Лактат, г/г глюкозы Этанол, г Этанол, г/г клеток Этанол, г/г глюкоз ы
Дикий Глюкоза 3.7 60.48 1.62 37.89 48.89 0.64 4.05 5.22 0.07
1с!Ь35 Глюкоза 4.7 60.48 17.80 1.98 1.36 0.05 10.12 6.95 0.24
ИН 58 Глюкоза 5.2 60,48 28,26 0,27 0,17 0.01 9,89 6,14 0,31
Мутанты БЭН продуцировали значительно более высокие выходы этанола, чем термофил дикого типа, демонстрируя успешное переключение пути метаболизма этих термофилов. Дополнительная оптимизация условий культивирования и состава сред для мутантных штаммов ЬИН будет приводить к повышенным выходам этанола.
Продуцирование этанола мутантами ЬИН в непрерывной культуре.
Наиболее стабильный из мутантов по лактату в результате одиночного кроссинговера выращивали в непрерывной культуре, чтобы оценить его долговременную стабильность в качестве продуцента этанола. Этот штамм культивировали в минимальной среде с глюкозой в качестве источника углерода. Стабильное состояние культуры наблюдали в течение примерно 290 ч до появления реверсии к продуцированию лактата.
Пример 5.
Мутант ТМ89, представляющий собой двойной кроссовер (пример 2), оценивали на продуцирование этанола, как изложено в примере 4. Результаты представлены в табл. 8, и они показывают, что этот мутант достигал значительных уровней продуцирования этанола (выше чем 200 мМ). Этот мутант также оценивали на продуцирование этанола с утилизацией глюкозы или ксилозы в качестве источника углерода. Результаты представлены в табл. 7.
- 8 015794
Таблица 7
Организм Источник углерода Суммарный сахар/мМ Остаток сахара/ мМ ОПеоо Концентра ция/мМ
этанол лактат пируват ацетат формиат
ДТ Глюкоза 794 130 5,3 46 279 7 69 9
ДТ Ксилоза 953 122 8,5 22 187 9 75 5
ТМ89 Глюкоза 862 53 6,5 214 5 109 10 88
ТМ89 Ксилоза 1045 142 4,9 130 14* 24 36 39
Было показано, что глюкоза является лучшим источником углерода, но результаты четко показывают, что организмы способны к ферментации ксилозы без дополнительной модификации.
Стабильность мутанта, отрицательного по лактатдегидрогеназе, также тестировали при ряде условий в непрерывной культуре в течение периода 1500 ч. Результаты показаны на фиг. 6 и демонстрируют, что отрицательный фенотип по лактатдегидрогеназе остается стабильным, несмотря на значительное заражение культуры, и не основан на сохранении отбора по антибиотику. В процессе непрерывного культивирования степень разведения варьировала между 0,1 и 0,5 ч-1, и культуру переключали с кислородных условий (подача воздуха) на бескислородные (подача Ν2) условия без изменений в концентрации лактата. Более значимо варьировал рН культуры и падал до рН 4,4, что находится вне нормального интервала рН для роста организма дикого типа. Однако культура быстро восстанавливалась без изменения фенотипа, а именно концентрация лактата не менялась.
Микроорганизм, определенный здесь как ТМ89, и плазмида рИВ 190-Ий депонированы под номером по каталогу ΝΟΙΜΒ 41275 и 41276 соответственно. Хранилище представляет собой ΝΟΙΜΒ ЬИ, Регщ.15оп ВшИшд, СгаИйоие Е§1а1е, ВисккЬиш, АЬеИееи, АВ21 9ΥΑ, Ипйеб Кшдбош.
Таблица 8
Организм Непрерывная Воздух Сахар Биомасса Использованный сахар г/л г/г сахара г/г биомассы г/л/ч
Скорость подачи тем г/л г/л пакт этанол биомасса лакт этанол лакт этанол лакт этанол
Дикий тип Ц=0,04 0,06 глюк 2% 0,68 20,00 11,25 1,56 0,03 0,56 0,08 16,50 2,29 0.45 0,06
Дикий тип Ц=0,09 0,06 глюк 2% 1,02 20,00 7,29 1,79 0,05 0,36 0,09 7.13 1,75 0,66 0,16
1.6(1-21 Б=0,1 0,02 глюк 2% 0,51 10,00 0 3,15 0,05 0,00 0,32 0,00 6,18 0,00 0,32
- 9 015794
Перечень последовательностей <110> тмо ВтоТес йппГед <120? тНегторЫ 1Ή с μι сгоогдапт 5ΙΊ5 Тог ЕТКапо1 ргойцсттоп <130> 1Μ01150ΝΟ <150> 6В0511603.3 <151? 2005-06-07 <150> СВ0509068.3 <151> 2005-05-04 <160> 6 <170> ратептш νβΓ5ΐοη 3.3 <210> 1 <211> 6744 <212> ДНК <213> 6еоЬасП1и5 ТНегтодТисоБтОазтиь <400> 1
даа£Ссд£аа СсаТддТсаТ адсхдхххсс гдХдХдаааг ТдигаТссдс ТсасааТТсс 60
асасаасаТа сдадссддаа дсаХааадгд хааадссгдд ддгдссТаас дадТдадсТа 120
асТсасасга аТгдсдТТдс дсХсасхдсс сдсхХХссад гсдддааасс ТдТсдгдсса 180
дсТдсабТаа СдааТсддсс аасдсдсддд дададдсддт ндсдгаТТд ддсдсгсТТс 240
сдсЬТссссд стсастдаст сдсТдсдсгс ддхсдххсдд стдсддсдад сддсатсадс 300
тсасгсааад дсддтаатас ддххахссас адаахсаддд датаасдсад дааадаасат 360
дтдадсаааа ддссадсааа аддссаддаа ссдхааааад дссдсдггдс тддсдтстгг 420
ссатаддстс сдсссссстд асдадсахса сааааахсда сдсТсаадбс ададдТддсд 480
ааасссдаса ддасТаТааа даХассаддс дхххсссссх ддаадстссс £сд£дсдс£с 540
ТссТдстссд асссТдссдс ххассддаха ссХдХссдсс 1«с1ссс« сдддаадсдТ 600
ддсдсс-стст саТадсТсас дсхдхаддха хсхсадххсд дТдГаддтсд сссдсгссаа 660
дстдддсгдт дТдсасдаас сссссдтхса дсссдассдс тдсдсспат ссдд(:аас1:а 720
гсдссстдад гссаасссдд хаадасасда схгахсдсса стддсадсад ссассддтаа 780
саддатсадс ададсдаддг ахдхаддсдд Хдехасадад СТсТТдаадГ ддгддссТаа 840
сТасддсТас асТадаадда садхахххдд хахсхдсдсх сТдсТдаадс садТгассТТ 900
сддааааада дтгддтадст схгдагссдд сааасааасс ассдсгддта дсддгддгхт 960
ггггдгггдс аадсадсада ХХасдсдсад ааааааадда ТсТсаадаад атссмгдат 1020
сТТТТсгасд дддТсТдасд схсадхддаа сдаааасХса сдгтааддда ££££дд£са£ 1080
дадатгатса ааааддаТсТ ХсассХадаХ ссххххааах ТаааааТдаа дТТТгаааТс 1140
аа£с1ааадт а£ата£дадт ааасххддхс хдасадххас сааТдсТТаа ТсадТдаддс 1200
ассТабссса дсдасстдсс хагххсдххс аХссаХадХХ дссТдасГсс ссдГсдТдТа 1260
- 10 015794
дахаасхасд ахасдддадд дсххассахс хддссссадх дсхдсаахда Хассдсдада 1320
сссасдсЕса ссддсЕссад аЕЕЕаЕсадс ааХааассад ссадссддаа дддссдадсд 1380
садаадхддх ссЕдсаасЕЕ ЕаЕссдссЕс сахссадхсх аххааххдхх дссдддаадс 1440
ХададХаадХ адЕЕсдссад ЕЕааЕадЕЕЕ дсдсаасдхх дхгдссаХЕд сХасаддсаХ 1500
сдгддхдхса сдсЕсдЕсдЕ ХХддХаХддс ХХсаХХсадс ХссддХХссс аасдахсаад 1560
дсдадгхаса ЕдаЕссссса хдххдхдсаа аааадсддхх адсхссххсд дхссхссдах 1620
сдххдхсада адхаадххдд ссдсадхдхх ахсасхсахд дххахддсад сасхдсахаа 1680
ХХсХсХХасХ дХсаЕдссаЕ ссдхаадахд схгххсхдхд асХддХдадХ асХсаассаа 1740
дХсаЕХсХда дааЕадЕдЕа Хдсддсдасс дадххдсхсх ХдсссддсдХ сааХасддда 1800
хаахассдсд ссасаЕадса даасХХХааа адХдсХсаХс аХХддаааас дХХсХХсддд 1860
дсдаааасЕс ЕсааддаЕсЕ хассдсхдхг дадаХссадЕ хсдахдхаас ссасЕсдхдс 1920
асссаасЕда ЕсЕЕсадсаЕ сххххасххх сассадсдХХ хсгдддхдад сааааасадд 1980
ааддсааааЕ дссдсааааа адддаахаад ддсдасасдд ааахдххдаа хасхсахасх 2040
СХХССХХХХХ саахаххахх даадсаххха хсадддххах хдхсхсахда дсддахасах 2100
ахххдаахдх аЕЕЕадаааа ахааасааах аддддххссд сдсасаХХХс сссдаааадх 2160
дссассЕдас дЕсЕаадааа ссаххаххах саЕдасахха ассХаХаааа аХаддсдХаХ 2220
сасдаддссс ХХХсдХсХсд сдсдХХЕсдд ЕдасдасддХ даааассХсХ дасасаХдса 2280
дсЕсссддад асддЕсасад сххдхсхдха адсддахдсс дддадсадас аадсссдхса 2340
дддсдсдхса дсдддХдХХд дсдддХдХсд дддсХддсХХ аасХаХдсдд саХсададса 2400
даххдхасхд ададЕдсасс аХаХдсддХд ХдаааХассд сасадахдсд Хааддадааа 2460
аХассдсагс аддсдссаЕЕ сдссаХХсад дсхдсдсаас ХдХХдддаад ддсдахсддх 2520
дсдддссХсХ ХсдсХаХХас дссадсХддс даааддддда ХдХдсХдсаа ддсдаХХаад 2580
ххдддгаасд ссадддЕЕЕЕ сссадХсасд асдххдхааа асдасддсса дЕдссаадсх 2640
ХдсаХдссЕд саддЕсдасЕ схадаааахс аахсхсххгх хссааадххх дххххххааа 2700
ХЕЕадсхдхс ЕсааЕаЕдЕЕ ХасддХсада дссасдХХса ссасдсХХса асХсаааасс 2760
СЕдХЕХХХХС аЕаЕдсЕсдд ддаахххахс ХХдХадссаХ аасадххсхх дасдаххааа 2820
сасаЕЕЕЕЕЕ ссЕЕдсадЕЕ ХЕссаЕсасд сахаддсаса асассхааах дсахдхдадд 2880
ддЕЕЕдсЕса хсаххахдаа схдххдсаха адсаахаххх ХдсХХдссаХ ахсдххсдда 2940
аааЕааЕЕЕа ЕаасЕЕЕссЕ сааааааХсд ЕЕХХЕдХХСХ ссхддахсса дххдсхсааа 3000
ааааЕстсдд хсадахдхха схадсаасхс ахххасаада асадсахсхс Ессхсдхххх 3060
ЕсЕЕдЕассЕ дЕЕЕЕЕЕдЕд аХХсааХааХ ХЕсХХХдаса сдЕЕсдХХдХ аахсаахахх 3120
ЕЕЕаЕсаЕЕЕ ХХсаааХсаХ ааХХХЕсасд хдххсдсхса ХддХсааХаЕ сахсаххсдх 3180
ХсХасХХХХХ сдсХсХсХХХ даххахдааа ххдсахдссх хххадхссад схдахххсас 3240
- 11 015794
бббббдсабб сбасааасгд сабаасбсаб абдбааабсд сбссббббба ддбддсасаа 3300
абдбдаддса ббббсдсбсб ббссддсаас сасббссаад бааадбабаа сасасбабас 3360
бббабаббса бааадбдбдб дсбсбдсдад дсбдбсддса дбдссдасса ааассабааа 3420
ассбббаада ссбббсбббб ббббасдада ааааадааас ааааааассб дсссбсбдсс 3480
ассбсадсаа аддддддббб бдсбсбсдбд сбсдбббааа аабсадсаад ддасаддбад 3540
баббббббда даадабсасб саааааагсг ссассбббаа асссббдсса абббббаббб 3600
бдбссдбббб дбсбадсбба ссдааадсса дасбсадсаа даабаааабб бббаббдбсб 3660
ббсддббббс бадбдбаасд дасаааасса сбсаааабаа аааадабаса адададдбсб 3720
сбсдбабсбб ббаббсадса агсдсдсссд аббдсбдаас адаббаабаа бадаббббад 3780
сбббббаббб дббдаааааа дсбаабсааа ббдббдбсдд дабсааббас бдсааадбсб 3840
сдббсабссс ассасбдабс ббббаабдаб дбапддддб дсаааабдсс саааддсбба 3900
абабдббдаб абааббсабс ааббсссбсб асббсаабдс ддсаасбадс адбассадса 3960
абааасдасб ссдсассбдб асааассддб даабсаббас басдададсд ссадссббса 4020
бсасббдссб сссабадабд аабссдаасс бсаббасаса ббадаасбдс даабссабсб 4080
бсабддбдаа ссааадбдаа ассбадббба бсдсаабааа аассбабасб сбббббааба 4140
бссссдасбд дсаабдссдд дагадасбдб аасаббсбса сдсабааааб ссссбббсаб 4200
бббсбаабдб ааабсбабба ссббаббабб ааббсааббс дсбсабаабб ΗΗΐεεΐΐΐΐΐ 4260
сббаббасдс аааабддссс дабббаадса сасссбббаб бссдббаабд сдссабдаса 4320
дссабдабаа ббасбаабас баддадаадб баабааагас дбаассааса гдаббаасаа 4380
ббаббададд бсабсдббса ааабддбабд сдббббдаса сабссасбаб абабссдбдб 4440
сдббсбдбсс асбссбдааб сссаббссад аааббсбсба дсдаббссад аадбббсбса 4500
дадбсддааа дббдассада саббасдаас бддсасадат ддбсабаасс бдааддаада 4560
бсбдаббдсб баасбдсббс адббаадасе даадсдсбсд бсдбабааса дабдсдабда 4620
бдсадассаа бсаасабддс ассбдссабб дсбассбдба садбсаадда бддбадаааб 4680
дггдгсддбс сббдсасасд аабаббасдс сабббдссбд сабаббсааа садсбсббст 4740
асдабааддд сасааабсдс абсдбддаас дбббдддсбб сбассдаббб адсадбббда 4800
гасасбббсх сбаадгагсс ассгдаабса гааагсддса ааагададаа аааббдасса 4860
бдбдбаадсд дссаабсбда ббссассбда дабдсабааб сбадбадааб сбсббсдсба 4920
бсааааббса сббссассбб ссасбсассд дббдбссабб сабддсбдаа сбсбдсббсс 4980
бсбдббдаса бдасасасаб сабсбсааба бссдаабадд дсссабсадб сбдасдасса 5040
адададссаб ааасассааб адссббааса бсабссссаб абббахссаа баббсдбЕсс 5100
ббаабббсаб даасаабсбб саббсбббсб бсбсбадбса ббаббаббдд бссаббсасб 5160
аббсбсаббс ссббббсада бааббббада бббдсббббс бааабаадаа бабггддада 5220
- 12 015794
дсассдНсб 1а£±садс£а ХГааТаасСс дтстгсскаа дсагссггса агсстнгаа 5280
1аасаа11а1 адсабсгаа! сНсаасааа с1ддсссд« 1д££даасса стстааг.а 5340
ааа£ааГ1:Г£ 1ссд1гссса анссасан дсаа1аа!ад аааагссабс Нсагсддсг 5400
ГТТГсдГсаГ сагс1д£агд аа£сааа£сд ссНсНсТд ТдГсаГсаад дИТГааНП 5460
пагдганг с66£1аасаа ассассаГад даданаасс «ггасддгд гааасстгсс 5520
тссааагсад асааасдттг салаг 1. с г τι: гснсатсаг сддссасааа атссдтаксс 5580
ГНасаддаГ а£££1дсад£ «сдгсаан дссдагтдба гагссда£1г агаггкатгг 5640
иссддбсдаа гсантдаас шгасаииг дда£са1:адг стаангсаг гдссппгс 5700
сааааНдаа гссандш ггдаГГсасд гадтлнггд та1..1с1.1.ааа атааднддс 5760
СссасасаГа ссааГасаСд са£д£дс£да тгагаадаа! та-ссгиап а££1аНд£с 5820
аснссдггд сасдсаГааа ассаасаада ггкггагсаа £Г«1МаГа НдсатсаГГ 5880
сддсдааагс с£Гдадсса£ аТсГдасааа «сИаШа аГ1:с1:1.сдсс аТсаГаааса 5940
тггаасгд Т1аа£д£дад ааасаассаа сдаасСдПд дсННдШ аа£аас£1са 6000
дсаасаассГ ГГГдГдасГд аа£дсса1дг г (.саПдстс 1сс1.ссадгг дсасандда 6060
сааадсс£дд агггасаааа ссасасГсда гасааснгс гсгсдссгд! КГсасдагн 6120
тдгггатасг стаанагггс адсасаа1с1: ггга.сг.сгтг садссИИ! ааансаада 6180
абагдсадаа дггсааадга агсаасана дсдаННСГ гтгсгстсса Еддтстсас!: 6240
ШссасШ игдисндгс сасГаааасс сггд,н ι.ττι сатс£даа£а аа£дсгас!а 6300
1гаддасаса баагаггааа адааассссс аГсХаНТад Г1а1«дг£1 адГсасСГаГ 6360
аастмааса дагддддГгг ггсгдгдсаа ссааНзНаа дддГТНхаа 1асб«аааа 6420
сасагасага ссаасасггс аасдсассИТ ТсадсаасТа аааТаааааГ дасдмант 6480
сиа1а£д£а£ саадатаада аадаасаадх Гсаааасса! сааааааада сассггггса 6540
ддгдсМГИ иг а. г. г. Нага аасгсаггсс ссдагсгсда с£1сдг£с££ £11г1асс£с 6600
£сдд£6а£да дМадгксаа аг1сдггс1£ Г£Тадд£ГС£ аааТсдгдгг ГНсГГддаа 6660
Нд£дс£дН ИаПсШа ссНд-ЕсЬас ааассссгга аааасдШб 1аааддсГ1Г 6720
£аадссд£сг д£асдГ£сс£ Саад 6744
<210> 2 <211> 7673 <212> ДНК <213> СеоЬаст11и5 1Негтод1исо514а51и5 дааМсдбаа <400>
гааадсссдд
бсаиддтса!
асасаасаТа
дс£сас£дсс
1д££а£ссдс тсасааНсс
120 асГсасаШа
ГдааГсддсс сдсгггссад
180
1ГдсдСаГ£д ддсдсиспс дсСдса££аа аасдсдсддд дададдсддб
240
- 13 015794
сдсххссхсд сХсасХдасХ сдсхдсдсхс ддГсдгссдд схдсддсдад сддХаХсадс 300
хсасхсааад дсддхаахас ддххахссас адааюаддд дахаасдсад дааадаасах 360
дхдадсаааа ддссадсааа аддссаддаа ссдХааааад дссдсдХХдс хддедххххх 420
ссаХаддсХс сдссссссХд асдадсаХса сааааагсда сдсХсаадХс ададдХддсд 480
ааасссдаса ддасхахааа даХассаддс дГГХсссссГ ддаадсХссс ХсдХдсдсХс 540
ХссХдХХссд асссхдссдс ХХассддаха ссгдхссдсс ХХХСХСССХХ едддаадедх 600
ддсдсхххсх саХадсХсас деХдХаддХа Ис1:сад1:1сд дхдхаддхсд ххсдсхссаа 660
дсхдддсхдх дХдсасдаас сссссдххса дсссдассдс хдсдссххах ссддхаасха 720
ХсдХсХХдад Хссаасссдд хаадасасда сгхатхдсса схддсадсад ссасхддхаа 780
саддаххадс ададсдаддх ахдхаддедд тдсгасадад ххеххдаадх ддхддссхаа 840
схасддсхас асхадаадда садХаХХХдд ГаГсгдсдс! сХдсХдаадс садХХассХХ 900
сддааааада дххддхадсх сХХдаХссдд сааасааасс ассдсХддХа деддХддХХХ 960
ххххдхххдс аадсадсада ХХасдсдсад ааааааадда ХсХсаадаад аХссХХХдаХ 1020
сХХХХсХасд дддХсХдасд сХсадХддаа сдаааасгса едХХааддда ххххддхсах 1080
дадаХХаХса ааааддаХсХ ХсассХадах ссг^ааах хааааахдаа дххххааахс 1140
аахсхааадх аХаХаХдадХ аааеХХддХе тдасад^гас сааХдсХХаа хсадхдаддс 1200
НСС иЗ и С иСа деда ис ид и с хахххедххе а иССЗиад и и дссидасисс ссдисд ид иа 1 1 ел и νν
даГаасГасд аХаедддадд дсХХассаХс хддссссадх дсТдсааТда Хассдсдада 1320
сссасдсТса ссддсХссад аХХХаХсадс ааХааассад ссадссддаа дддссдадсд 1380
садаадГддГ ссХдсаасХХ ХаХссдссХс сахссадхсх атгааггдгг дссдддаадс 1440
•СададГаадГ адХХсдссад ххаахадххх дсдсаасдхх дгидссаегд схасаддсах 1500
сдгддхд^са сдсХсдХсдХ ХХддХаХддс ХХсаХХсадс тссддгиссс аасдаХсаад 1560
дсдадТТаса ХдаХссссса хдххдхдсаа аааадеддхх адсгссггсд дхссхссдах 1620
сдътдгсада адХаадХХдд ссдсадхдхх аХсасХсаХд дТГаГддсад сасхдсахаа 1680
ГГстситасХ дХсаХдссаХ ссдХаадаХд еХХХХеХдХд аехддгдадг асХсаассаа 1740
д1сагхсхда даахадхдха хдсддсдасс дадххдехех гдсссддсдг саахасддда 1800
Гаа1:ассдсд ссасахадса дааеХХХааа адХдсХсаХс аххддаааас дХХеХХеддд 1860
дсдаааасТс ХсааддаХсХ хассдсхдхх дадахссадх ТсдаТдЕаас ссасхсдхдс 1920
асссаасЕда хсххсадсах еххххаеххх сассадсдХХ гегдддгдад сааааасадд 1980
ааддсааааг дссдсааааа адддаахаад ддсдасасдд ааа1дТ:Г:даа хасхсахасх 2040
σιχαζΐΐΐΐΐ саахаххахх даадсаххха ХсадддХХаХ гдгсгсагда дсддаХасаХ 2100
аШдааГдГ ахххадаааа аХааасаааХ аддддТзИссд сдсасатс сссдаааадх 2160
дссасс1:дас дхсхаадааа ссаххаххах сагдасахга ассгаиаааа ахаддедхах 2220
- 14 015794
сасдаддссс хххсдхсхсд сдсдхххсдд хдахдасддх даааассхсх дасасахдса 2280
дсХсссддад асддхсасад сххдхсхдха адсддахдсс дддадсадас аадсссдхса 2340
дддсдсдхса дсдддхдххд дсдддхдхсд дддсхддсхх аасХаХдсдд саХсададса 2400
даххдхасхд ададХдсасс ахахдсддхд хдаааХассд сасадаХдсд Хааддадааа 2460
ахассдсахс аддсдссахх сдссаххсад дсхдсдсаас хдххдддаад ддсдахсддх 2520
дсдддссХсХ ХсдсХаНас дссадсхддс даааддддда ХдгдсХдсаа ддсдаХХаад 2580
ххдддхаасд ссадддхххх сссадхсасд асдххдхааа асдасддсса дхдссаадсх 2640
ХддХассдад схсасхадхс асддссдсса дХдХдсХдда аххсдсссхх ддахссхххд 2700
сссххахдаа ссааддааха дсадаХдад! хадхаххдах хдахдхааах аадаахаадд 2760
сададддсда хдхдахддах ХХаааХсасд даааадХаХХ сдсдссдаад ссдахдааха 2820
хххддсххдд адаххахсаа дандссаад асдссдаххх ддхддТдаХХ хдтдсадддд 2880
схаассаааа дссдддадаа асаадасхдд ахсххдххда сааааахахх аахахсххса 2940
ааасдаХХдХ сдаХХсХдХд аХдаааХссд даХХХдаХдд сдхххххсхх дХддсаасда 3000
асссадХдда хаххххаасд ХаХдсХасХХ ддаааТГГад сдддххассд ааададсддд 3060
хаахсддсхс аддаасдахх сххдахасад саадаххссд сххсххдсха адхдаахахх 3120
ххсаадхддс хссдассаах дхасахдсдх аХаХХаХХдд сдадсахддд дахасададс 3180
ХдссхдХХХд дадссахдсд даааххддаа дсаХХссадХ хдадсаааха ХХдахдсааа 3240
асдахаасха хадаааадад дахххадаса аХаХсХХХдХ хаахдххсдх дахдсддсах 3300
ахсааахсах хдадаааааа ддддсаасдх аххасддсах хдсаахддда ххадхссдха 3360
ХсасХсдХдс ХаХХХХдсас ааХдааааХд ссаХсХХаас сдхххсхдсх сахххддасд 3420
дссааХаХдд сдаасдааах дхххахаххд дсдхдссхдс саХХаХсаас сдааасддха 3480
ХХсдХдаадХ даХддааХХд асдсХаааХд ааасадааса адддсдаахх сХдсадаХаХ 3540
ссахсасасх ддсддссдсх сдадсаХдса дсахдссхдс аддХсдасХс ХадааааХса 3600
ахсхсххххх ссааадХХХд ХХХХХХаааХ ХХадсХдХсХ сааХаХдХХХ асддХсадад 3660
ссасдххсас сасдсххсаа сХсаааассс ХдХХНХХСа хахдсхсддд даахххатсх 3720
ХдХадссаХа асадххсххд асдаХХааас асаххххххс сххдсадххх Хссахсасдс 3780
аХаддсасаа сассХаааХд саХдХдаддд дхххдсхсах саХХаХдаас хдххдсахаа 3840
дсаахахххх дсххдссаха ХсдХХсддаа ааХааХХХаХ аасхххссхс ааааааХсдХ 3900
1Хххд1Лс.х<. схддахссад ххдсхсаааа ааахсхсддх садахдххас хадсаасхса 3960
хххасаадаа садсаХсХХХ ссхсдхххгх с1Лдтасс1:д ХХХХХХдХда «саахаахх 4020
ХсХХХдасас дххсдххдха ахсаахаххх ххахсахххх хсааахсаха аХХХХсасдХ 4080
дХХсдсХса! ддХсааХаХс аХсаХХсдХХ схасхххххс дсХсХсХХХд аххахдааах 4140
ХдсаХдссСХ ХХадХссадс ХдаХХХсасХ ХХХХдсаХХс ХасааасХдс аХаасХсаХа 4200
- 15 015794
ЕдЕаааЕсдс гссгш.тад дЕддсасааа ЕдЕдаддсаЕ ЕЕЕСдсЕСЕЕ Ессддсаасс 4260
асЕЕссаадЕ ааадЕаЕаас асасЕаЕасЕ ЕЕаЕаЕЕсаЕ ааадЕдЕдЕд СЕсЕдсдадд 4320
сЕдЕсддсад Едссдассаа аассагаааа ссЕЕЕаадас СЕЕЕСЕЕЕЕЕ ЕЕЕасдадаа 4380
аааадаааса аааааассЕд сссЕсЕдсса ссЕсадсааа ддддддич дсЕсЕсдЕдс 4440
ЕсдЕЕЕаааа аЕсадсаадд дасаддЕадЕ аЕЕЕЕЕЕдад аадагсасЕс ааааааЕсЕс 4500
сассЕЕЕааа сссЕЕдссаа ЕЕЕСЕаЕЕЕЕ дЕссдЕЕЕЕд ЕсЕадсЕЕас сдааадссад 4560
асЕсадсаад ааЕааааЕЕЕ ЕЕаЕЕдЕсЕЕ ЕсддЕЕЕЕсЕ адЕдЕаасдд асаааассас 4620
ЕсааааЕааа ааадаЕасаа дададдЕсЕс ЕсдЕаЕсЕЕЕ ЕаЕЕсадсаа Есдсдсссда 4680
ЕЕдсЕдааса даЕЕааЕааЕ адаЕЕЕЕадс ЕЕЕЕЕЭЕЕЕд ЕЕдаааааад сЕааЕсаааЕ 4740
ЕдЕЕдЕсддд аЕсааЕЕасЕ дсааадЕсЕс дЕЕсаЕссса ссасЕдаЕсЕ ЕЕЕааЕдаЕд 4800
ЕаЕЕддддЕд сааааЕдссс аааддсЕЕаа ЕаЕдЕгдаЕа ЕааЕЕсаЕса аЕЕсссЕсЕа 4860
сЕЕсааЕдсд дсаасЕадса дЕассадсаа ЕааасдасЕс сдсассЕдЕа сааассддЕд 4920
ааЕсаЕЕасЕ асдададсдс садссЕЕсаЕ сасЕЕдссЕс ссаЕадаЕда аЕссдаассЕ 4980
саЕЕасаса! ЕадаасЕдсд ааЕссаЕсЕЕ саЕддЕдаас сааадЕдааа ссЕадЕЕЕаЕ 5040
сдсааЕаааа ассЕаЕасЕс ЕЕСЕЕааЕаЕ ссссдасЕдд сааЕдссддд аЕадасЕдЕа 5100
асаЕЕСЕсас дсаЕааааЕс сссЕЕЕсаЕЕ ЕЕсЕааЕдЕа ааЕсЕаЕЕас сЕЕаЕЕаЕЕа 5160
4-4-4--. -4-4-4-4. гээл
агЕсааЕЕсд СΐΟαΐααιΐα ЗЕССЕЕЕЕЕС ЕЕЗЕЕасдса ЗаасууСССу а***аауСаС Л. 4,ν
асссЕЕЕаЕЕ ссдЕЕааЕдс дссаЕдасад ссаЕдаЕааЕ ЕасЕааЕасЕ аддадаадЕЕ 5280
ааЕаааеасд ЕаассаасаЕ даггаасааг ЕаЕЕададдЕ саЕсдЕЕсаа ааЕддЕаЕдс 5340
дЕЕЕЕдасас аСссасЕаЕа ЕаЕссдЕдЕс дЕЕсЕдЕсса сЕссЕдааЕс ссаЕЕссада 5400
ааЕЕсЕсЕад сдаеЕссада адЕЕЕсЕсад адЕсддааад ЕЕдассадас аЕЕасдаасЕ 5460
ддсасадагд дЕсаЕаассЕ дааддаадаЕ сЕдаЕЕдсЕЕ аасЕдсЕЕса дЕЕаадассд 5520
аадсдсЕсдЕ сдЕаЕаасад аЕдсдаЕдаЕ дсадассааЕ саасаЕддса ссЕдссаЕЕд 5580
сгассЕдЕас адгсааддаЕ ддЕадаааЕд ЕЕдЕсддгсс ЕЕдсасасда аЕаЕЕасдсс 5640
аЕЕЕдссЕдс аЕаЕЕсааас адсЕСЕЕсЕа сдаЕаадддс асаааЕсдса ЕсдЕддаасд 5700
ЕЕЕдддсЕЕс ЕассдаЕЕЕа дсадЕЕЕдаЕ асасЕЕЕсЕс ЕаадЕаЕсса ссЕдааЕсаЕ 5760
аааЕсддсаа ааЕададааа ааЕЕдассаЕ дЕдЕаадсдд ссааЕсЕдаЕ ЕссассЕдад 5820
аЕдсаЕааЕс ЕадЕадааЕс ЕсЕЕсдсЕаЕ сааааЕЕсас ЕЕССЭССЕЕС сасЕсассдд 5880
ЕЕдЕссаЕЕс аЕддсЕдаас ЕсЕдсЕЕссЕ сЕдЕЕдасаЕ дасасасаЕс аЕсЕсааЕаЕ 5940
ссдаатаддд сссатсадЕс Едасдассаа дададссага аасассааЕа дссЕЕаасаЕ 6000
саЕссссаЕа ЕЕЕаЕссааЕ аЕЕсдЕЕссЕ ЕааЕЕЕсаЕд аасааЕСЕЕС ЭЕЕсЕЕЕСЕЕ 6060
сЕсЕадЕсаЕ ЕаЕЕаЕЕддЕ ссаЕЕсасЕа ЕЕсЕсаЕЕсс сЕЕЕЕсадаЕ ааЕЕЕЕадаЕ 6120
ЕЕдсЕЕЕЕсЕ аааЕаадааЕ аЕЕЕддадад сассдЕЕсЕЕ аЕЕсадсЕаЕ ЕааЕаасЕсд 6180
- 16 015794
1сисс1аад сагссисаа Гсстл-ссаа! аасааНата дса1с1аа1с Исаасааас 6240
гддсссдш дХТдаасгас гсХ11аа1аа аагааТТИТ ссдИсссаа ПссасаГТд 6300
саатаагада ааатссагст ТсаГсддсИ 111:сд1са1с а1с1д1атда аисааатсдс 6360
сгтсггсгдг дгсагсаадд ΐΐΐββΐϊΐΐΐ татдтатггс гтгтаасааа ссасса1адд 6420
адаттаасст ггтасддтдт ааассТТссТ ссаааГсада сааасдТТТс аааггснт 6480
сС1:са1са1с ддгсагаааа Гссд1а1:сс1 ттасаддата гтидсадн Ьсдтсааттд 6540
ссдагтдта! аГссдаПГа ΓθϊΙΐαΐΐΐΐ 1сдд1сдааг саИтдаасг £гтаса1£тд 6600
датсатадгс таатсатт дссСГТГТсс ааааТГдаа! ссамдгш ГдаТГСасдГ 6660
адтггтсгдг аТ1сГ1аааа гаадГ£дд1:1 ссасаса!ас сааТасабдс аГдТдсЕдаГ 6720
1а1аадаа11: акхпана Шатгдюа сттссддтдс асдсатаааа ссаасаада! 6780
ттттахгаат «инатат т.дсатсаТ1с ддсдаааГсс ТТдадссаГа 1с£дасааас 6840
Гс11аГ11аа Пстгсдсса ссагаааса! ииаасгд! 1аа1д1дада аасаассаас 6900
даастдттдд сттттдттта а1аас61сад саасаасс« ттдтдастда агдссагдгг 6960
1са11дс1с1 сс!ссадГ1д сасаИддас ааадсстдда Шасаааас сасасгсдат 7020
асаасТГГсГ гтсдсстдтг гсасдаг«т дГ.СГаГасГс г.аагагггса дсасаатси 7080
гтасгстттс адссттттта ааггсаадаа гатдсадаад (ГсааадГаа гсаасаттад 7140
сдаттттстт ГтсСсгссат ддгстсастт ттссасгстг тдтсхсдгсс асгаааассс 7200
гтдапггтс атс£даа1аа атдстастат 1аддасаса1 аатахтаааа дааассссса 7260
тсгагсгадг гашдгиа дтсасгтата асШаасад а£ддддг«1 Тс’ЬдГдсаас 7320
сааттттаад ддттттсаат астттаааас аса!асатас саасасттса асдсассттг 7380
садсаас!аа ааТаааааТд асдггаиггс 1а1а1д1:а1с аадатаадаа адаасаадтт 7440
саааассагс ааааааадас ассттттсад д1дст1«« 1ат11га1аа астсаттссс 7500
1да1сСсдас 11сдГ1с(« 1Шасс1ст сддтгатдад 1тадттсааа Т1сд11с1г1 7560
ттаддггеса аатсдсдгт! Г1ст1ддаат гдгдстдиг татссттгас стгдгс±аса 7620
аасссссгаа ааасдштг аааддсгт аадссдгсгд гасдтгссиг аад 7673
<210> 3 <211> 29 <212> ДНК <213? искусственная <220?
<223> олигонуклеотидный лраймер <400>3 ддааггссст гагдаассаа ддаа£адса <2104 <211>31 <212> ДНК <213> искусственная <22О>
<223? олигонуклеотидный праймер <400>4 дсддссдсас ссдсисгтгс ддгаасссдс ΐ <210>5 <211>31 <212> ДНК <213> искусственная <220>
<223> олигонуклеотидный праймер <400> 5
дсддссдс!Т дс!аад£даа 1а£тсаад т 31
<210 6 <211> 28 <212> ДНК <213> искусственная <220> <223> олигонуклеотидный праймер <400 6 сгдсадсд1с ааП.ссаТса сИсасда 28
- 17 015794

Claims (17)

  1. ФОРМУЛА ИЗОБРЕТЕНИЯ
    1. Термофильный микроорганизм, модифицированный для возможности повышенного продуцирования этанола, где модификация представляет собой инактивацию гена лактатдегидрогеназы термофильного микроорганизма дикого типа, где нативный ген лактатдегидрогеназы или его участок делетирован и где этот микроорганизм представляет собой вид ОеоЬасШик.
  2. 2. Микроорганизм по п.1, где этот микроорганизм не содержит систему рестрикции.
  3. 3. Микроорганизм по любому из пп.1, 2, где этот микроорганизм представляет собой ОеоЬасШик 1йегтод1исо81ба8Ш8.
  4. 4. Микроорганизм по любому из пп.1-3, где этот микроорганизм представляет собой спорообразующий микроорганизм.
  5. 5. Микроорганизм по любому из пп.1-4, где этот микроорганизм способен к метаболизму целлобиозы, и/или крахмала, или их олигомера.
  6. 6. Микроорганизм по любому из пп.1-5, где этот микроорганизм растет при температуре 40-85°С, предпочтительно 50-70°С.
  7. 7. Микроорганизм по любому из пп.1-6, где этот микроорганизм содержит ненативный ген пируватдекарбоксилазы.
  8. 8. Микроорганизм по любому из пп.1-7, где этот микроорганизм содержит ненативный ген алкогольдегидрогеназы.
  9. 9. Микроорганизм по любому из пп.1-8, где этот микроорганизм не содержит интегративный элемент в гене лактатдегидрогеназы.
  10. 10. ОеоЬасШш 1йегтод1исо81ба8Ш8, обеспечивающий повышенное продуцирование этанола, депонированный в ΝΟΙΜΒ под номером 41275.
  11. 11. Способ продуцирования этанола, при котором культивируют микроорганизм по любому из пп.1-10 в подходящих условиях в присутствии С3, С5 или С6 сахара или его олигомера.
  12. 12. Способ по п.11, где этот способ осуществляют при температуре между 40 и 70°С.
  13. 13. Способ по п.11, где температура составляет от 52 до 65°С.
  14. 14. Способ по любому из пп.11-13, где микроорганизм поддерживают в культуре при рН между 4 и 7,5.
  15. 15. Плазмида для делетирования нативного гена лактатдегидрогеназы, определенная здесь как 8ЕО ΙΌ N0: 2.
  16. 16. Термофильный микроорганизм, содержащий плазмиду по п.15.
  17. 17. Корм для животных, содержащий микроорганизм по любому из пп.1-10.
EA200702153A 2005-05-04 2006-05-03 Термофильные микроорганизмы вида geobacillus с инактивированным геном лактатдегидрогеназы (ldh) для производства этанола EA015794B1 (ru)

Applications Claiming Priority (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
GBGB0509068.3A GB0509068D0 (en) 2005-05-04 2005-05-04 Ethanol production
GB0511603A GB0511603D0 (en) 2005-06-07 2005-06-07 Ethanol production
PCT/GB2006/001586 WO2006117536A1 (en) 2005-05-04 2006-05-03 Thermophilic microorganisms with inactivated lactate dehydrogenase gene (ldh) for ethanol production

Publications (2)

Publication Number Publication Date
EA200702153A1 EA200702153A1 (ru) 2008-06-30
EA015794B1 true EA015794B1 (ru) 2011-12-30

Family

ID=36637070

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
EA200702153A EA015794B1 (ru) 2005-05-04 2006-05-03 Термофильные микроорганизмы вида geobacillus с инактивированным геном лактатдегидрогеназы (ldh) для производства этанола

Country Status (12)

Country Link
US (1) US20090042265A1 (ru)
EP (1) EP1880004A1 (ru)
JP (2) JP2008539710A (ru)
KR (1) KR20080012934A (ru)
AU (1) AU2006243052B2 (ru)
BR (1) BRPI0610988A2 (ru)
CA (1) CA2607052A1 (ru)
EA (1) EA015794B1 (ru)
MX (1) MX2007013673A (ru)
NO (1) NO20076123L (ru)
NZ (1) NZ563043A (ru)
WO (1) WO2006117536A1 (ru)

Families Citing this family (19)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB0511602D0 (en) 2005-06-07 2005-07-13 Tmo Biotec Ltd Microorganisms
GB0605889D0 (en) * 2006-03-24 2006-05-03 Bioconversion Technologies Ltd Regulation Of Thermophile Ethanol Fermentation
MY149506A (en) 2006-05-22 2013-09-13 Biogasol Ipr Aps Thermoanaerobacter mathranii strain bg1
NZ574635A (en) * 2006-09-28 2011-08-26 Tmo Renewables Ltd Thermophilic microorganisms for ethanol production
JP2010508013A (ja) 2006-10-31 2010-03-18 メタボリック エクスプローラー グリセロールから1,3−プロパンジオールを高収量で生物学的に製造する方法
GB2460983B (en) * 2007-03-30 2012-05-02 Council Scient Ind Res A process for the preparation of ethanol from starch
BRPI0811556A2 (pt) 2007-05-09 2017-05-02 Mascoma Corp inativação de genes de organismos mesofílicos e termofílicos, e métodos de uso dos mesmos.
GB0715751D0 (en) 2007-08-13 2007-09-19 Tmo Renewables Ltd Thermophilic micro-organisms for ethanol production
GB2461495A (en) * 2008-02-13 2010-01-06 Bioconversion Technologies Ltd Ethanol production by lactate dehydrogenase-deleted thermophilic microorganisms
EP2250273B1 (en) 2008-02-28 2016-04-13 Green Biologics Limited Enzymatic production of C4-C8 alcohols and acids
GB0806093D0 (en) * 2008-04-03 2008-05-14 Green Biologics Ltd Production of butanol
RU2011106789A (ru) 2008-07-24 2012-08-27 Биогасоль Ипр Апс (Dk) Повышенная продукция этанола в рекомбинантных бактериях
GB0820262D0 (en) 2008-11-05 2008-12-10 Tmo Renewables Ltd Microorganisms
EP2529003A2 (en) 2010-01-26 2012-12-05 Scale Biofuel APS Methods for producing and harvesting ethanol and apparatus for producing and harvesting the same
GB2489967A (en) 2011-04-13 2012-10-17 Ensus Ltd Method of producing an animal feed by hydrolysis and fermentation
CN103582787B (zh) 2011-05-18 2016-09-14 斯科尔生物燃料公司 太阳能辅助的挥发性发酵产物的生产工艺
KR101871464B1 (ko) * 2011-09-02 2018-06-26 한국생명공학연구원 글리세롤 또는 폐글리세롤로부터 에탄올 고생성능을 가지는 개량된 변이 미생물 및 이를 이용한 에탄올의 제조방법
CA2936252C (en) * 2014-01-30 2019-08-20 Lanzatech New Zealand Limited Recombinant acetogenic bacterium with mutated lactate biosynthesis pathway enzyme and methods of use thereof
EP2977471A1 (en) 2014-07-23 2016-01-27 PURAC Biochem BV Genetic modification of (S)-lactic acid producing thermophilic bacteria

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2001083784A2 (en) * 2000-05-01 2001-11-08 Midwest Research Institute Method of site-specific insertion in zymomonas mobilis
WO2002029030A2 (en) * 2000-10-06 2002-04-11 Elsworth Biotechnology Limited Ethanol production

Family Cites Families (16)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5238833A (en) * 1983-07-06 1993-08-24 Gist-Brocades, Nv Molecular cloning and expression in industrial Bacillus species
US5482846A (en) * 1988-08-31 1996-01-09 University Of Florida Ethanol production in Gram-positive microbes
EP0626012B1 (en) * 1992-02-11 2003-07-09 Cell Genesys, Inc. Homogenotization of gene-targeting events
FR2722210B1 (fr) * 1994-07-08 1996-08-14 Rhone Poulenc Rorer Sa Nouvelles streptogramines et procede de preparation de streptogramines par mutasynthese
US6280986B1 (en) * 1997-12-01 2001-08-28 The United States Of America As Represented By The Secretary Of Agriculture Stabilization of pet operon plasmids and ethanol production in bacterial strains lacking lactate dehydrogenase and pyruvate formate lyase activities
GB0000185D0 (en) * 2000-01-06 2000-03-01 Agrol Limited Ethanol production
GB0011186D0 (en) * 2000-05-09 2000-06-28 Agrol Limited Modification of bacteria
GB0024554D0 (en) * 2000-10-06 2000-11-22 Agrol Ltd Ethanol production
EP1419258A2 (en) * 2001-08-13 2004-05-19 DTU, Technical University of Denmark Plasmids from an extremely thermophilic microorganism and derived expression vectors
CA2498381C (en) * 2002-09-27 2013-04-16 Dsm Ip Assets B.V. Acc gene
ATE394477T1 (de) * 2002-09-27 2008-05-15 Dsm Ip Assets Bv Squalene synthase (sqs) gen
GB0511602D0 (en) * 2005-06-07 2005-07-13 Tmo Biotec Ltd Microorganisms
GB0520344D0 (en) * 2005-10-06 2005-11-16 Tmo Biotec Ltd Microoganisms
NZ574635A (en) * 2006-09-28 2011-08-26 Tmo Renewables Ltd Thermophilic microorganisms for ethanol production
GB0715751D0 (en) * 2007-08-13 2007-09-19 Tmo Renewables Ltd Thermophilic micro-organisms for ethanol production
GB0820262D0 (en) * 2008-11-05 2008-12-10 Tmo Renewables Ltd Microorganisms

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2001083784A2 (en) * 2000-05-01 2001-11-08 Midwest Research Institute Method of site-specific insertion in zymomonas mobilis
WO2002029030A2 (en) * 2000-10-06 2002-04-11 Elsworth Biotechnology Limited Ethanol production

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
BISWAS I. ET AL.: "HIGH-EFFICIENCY GENE INACTIVATION AND REPLACEMENT SYSTEM FOR GRAM-POSITIVE BACTERIA", JOURNAL OF BACTERIOLOGY, WASHINGTON, DC, US, vol. 175, no. 11, 1 June 1993 (1993-06-01), pages 3628-3635, XP000563688, ISSN: 0021-9193, the whole document *

Also Published As

Publication number Publication date
BRPI0610988A2 (pt) 2010-08-10
JP2012040016A (ja) 2012-03-01
JP2008539710A (ja) 2008-11-20
EA200702153A1 (ru) 2008-06-30
CA2607052A1 (en) 2006-11-09
MX2007013673A (es) 2008-03-10
AU2006243052A1 (en) 2006-11-09
US20090042265A1 (en) 2009-02-12
NZ563043A (en) 2010-04-30
NO20076123L (no) 2007-11-27
KR20080012934A (ko) 2008-02-12
AU2006243052B2 (en) 2010-07-08
WO2006117536A1 (en) 2006-11-09
EP1880004A1 (en) 2008-01-23

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EA015794B1 (ru) Термофильные микроорганизмы вида geobacillus с инактивированным геном лактатдегидрогеназы (ldh) для производства этанола
JP4801151B2 (ja) 不活性化された乳酸デヒドロゲナーゼ遺伝子を有する改変微生物
US8900835B2 (en) Engineering of thermotolerant Bacillus coagulans for production of D(−)-lactic acid
US9469858B2 (en) Sporulation-deficient thermophilic microorganisms for the production of ethanol
Tian et al. Metabolic engineering coupled with adaptive evolution strategies for the efficient production of high-quality L-lactic acid by Lactobacillus paracasei
KR20100061460A (ko) 에탄올 생산을 위한 호열성 미생물
JP2010504747A (ja) エタノール生成のための好熱性微生物
CN111154705B (zh) 热葡萄糖苷酶地芽孢杆菌工程菌及其构建方法及应用
CN101775363B (zh) 乙醇生产
CN102925398A (zh) 烟酰胺腺嘌呤二核苷酸营养缺陷型大肠杆菌的构建及其应用
CN101522889A (zh) 用于乙醇生产的嗜热微生物

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A Lapse of a eurasian patent due to non-payment of renewal fees within the time limit in the following designated state(s)

Designated state(s): AM AZ BY KZ KG MD TJ TM

MM4A Lapse of a eurasian patent due to non-payment of renewal fees within the time limit in the following designated state(s)

Designated state(s): RU