DE4228389A1 - Gewinnung und Kultivierung transformierter Zellen und Herstellung gegen sie gerichteter Antikörper - Google Patents
Gewinnung und Kultivierung transformierter Zellen und Herstellung gegen sie gerichteter AntikörperInfo
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Description
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Gewinnung
transformierter Zellen aus dem Blutstrom eines menschlichen
oder tierischen Individuums, ein Verfahren zur Kultivierung
der so gewonnenen Zellen und die Herstellung von gegen diese
Zellen gerichteten monoklonalen Antikörpern.
Über die Bedeutung von im Blutstrom zirkulierenden
transformierten Zellen für die Ausbildung von Metastasen
berichtet A. J. Salsbury in "Significance of Circulating
Cancer Cells", William Heinemann Medical Books, New Aspects
of Breast Cancer, Bd. 3, S. 245 ff., 1977, daß diese im
Blutstrom zirkulierenden Krebszellen in einem Zeitraum bis zu
5-6 Stunden nach ihrer Freisetzung - z. B. durch bestimmte
operative und therapeutische Maßnahmen - noch keine
Metastasen ausbilden können. Das Vorhandensein großer Mengen
an Krebszellen allein genügt noch nicht für das Auftreten von
Metastasen, die Krebszellen müßten zuerst den vaskulären
Bereich verlassen. Dennoch wird die Verwendung von Mitteln
vorgeschlagen, die einerseits die Ausbildung von Thromben als
Ausgangspunkte für die Metastasenbildung aus dem Blutstrom
verhindern und andererseits die malignen Zellen abtöten
sollen.
Neuere Erkenntnisse (P. M. Gullino, Dev. Oncol., 49, 251-271
(1986)) legen jedoch nahe, daß zirkulierende Tumorzellen in
den meisten Fällen bereits lange bevor der Primärtumor
klinisch nachgewiesen werden kann, im Blutstrom auftreten.
Auch wenn nicht alle dieser transformierten Zellen zur
Auslösung von Metastasen in der Lage sind, ist es
erforderlich, die Ausbreitung von zirkulierenden Tumorzellen
und damit das Metastasenwachstum so früh wie möglich zu
bekämpfen. Der Grund, warum bislang noch keine eindeutige
Korrelation zwischen der Anzahl transformierter Zellen im
peripheren Blut und der Auslösung der Metastasenbildung
aufgestellt werden konnte, liegt zu einem großen Teil in der
Schwierigkeit des Nachweises der transformierten Zellen im
Blutstrom.
Ferner ist bekannt, daß schon bei üblichen Diagnoseverfahren,
wie Abtasten des soliden Tumors, und insbesondere bei
bioptischen und operativen Eingriffen die Freisetzung
transformierter Tumorzellen deutlich erhöht wird, was zu
einer verstärkten Metastasenbildung führen kann.
Das Metastasierungs-Verhalten von soliden Tumoren in das
Lymph- und/oder Kreislauf-System hinein ist bisher in vivo
nur in eröffneten Blutgefäßen bei Operationen studiert
worden. Zirkulierende Tumorzellen in diagnostisch oder gar
therapeutisch verwertbarem Umfang wurden dabei nicht
gewonnen. Das Metastasierungs-Verhalten von soliden Tumoren
in den Kreislauf ließ sich daher nur in Tierversuchen oder
beim Menschen nur postmortal durch den Pathologen
untersuchen.
Transformierte Zellen lassen sich prinzipiell mit einer
Dichtegradienten-Zentrifugation, wie sie z. B. üblicherweise
zur Isolierung von Lymphozyten in einem Ficollgradienten
eingesetzt wird, gewinnen. Hierfür sind jedoch große
Blutmengen ab 1500 ml Blut erforderlich, was für den
Patienten sehr belastend ist. Ferner ist auch trotz eines
hohen apparativen Aufwands die Ausbeute aufgrund der geringen
Anzahl transformierter Zellen, die zudem durch das
konventionelle Zentrifugationsverfahren leicht beschädigt und
verunreinigt werden, äußerst niedrig. Daher ist ein
Dichtegradienten-Zentrifugationsverfahren routinemäßig zur
Gewinnung größerer Mengen von transformierten Zellen nicht
einsetzbar. Die bekannten Methoden zeigen auch insbesondere
den Mangel, daß man nicht feststellen konnte, ob eine
transformierte Zelle aus dem peripheren Kreislauf zum
Zeitpunkt ihrer Gewinnung vital war oder nicht.
Es existiert somit bislang kein einfach durchzuführendes und
reproduzierbares Verfahren, das es erlaubte, auf nicht
chirurgische Weise eventuell im peripheren Kreislauf
zirkulierende transformierte metastasierte Zellen zu
erkennen, zu gewinnen, diese außerhalb des Körpers zu
kultivieren und für Untersuchungen und andere Anwendungen
weiter einzusetzen.
Der Erfindung liegt daher die Aufgabe zugrunde, ein Verfahren
zur Verfügung zu stellen, mit dem es auf einfache und
ungefährliche Weise möglich ist, aus einem menschlichen oder
tierischen Individuum im Blutstrom zirkulierende
transformierte Zellen zu gewinnen.
Damit verbunden ist die Aufgabe, die so gewonnenen Zellen in
Kultur zu vermehren und gegen Antigene auf ihrer Oberfläche
gerichtete monoklonale Antikörper herzustellen, die dann für
diagnostische und/oder therapeutische Zwecke eingesetzt
werden können.
Die Erfindung beruht auf der Erkenntnis, daß es möglich ist,
transformierte Zellen durch ein kontinuierliches
Zentrifugationsverfahren von Blut zu gewinnen.
Die Aufgabe wird somit gelöst durch ein Verfahren zur
Gewinnung und Kultivierung von im Blutstrom zirkulierenden
transformierten Zellen, indem man
durch Zentrifugation von einem Individuum entnommenen Blut
mittels einer für die Abtrennung von Lymphozyten geeigneten,
kontinuierlichen Zentrifuge einen Buffy-coat, der die
transformierten Zellen, Leukozyten und Lymphozyten enthält,
über einen der Zentrifuge nachgeschalteten Bypass entnimmt
und den Buffy-coat unter Vermehrung der transformierten
Zellen kultiviert.
Zur Herstellung der individuum-spezifischen, gegen
Tumorantigene gerichteten monoklonalen Antikörper bringt man
in einer in vitro-Immunisierung aus demselben Individuum
isolierte B-Lymphozyten mit den kultivierten transformierten
Zellen in Kontakt, um die Produktion von gegen Tumorantigene
auf den transformierten Zellen gerichteten Antikörpern zu
stimulieren, immortalisiert, vermehrt und selektiert die
stimulierten B-Lymphozyten, und isoliert und reinigt die
Antikörper aus der immortalisierten B-Lymphozytenkultur.
Der Organismus wäre prinzipiell in der Lage, das
"Arzneimittel", d. h. die Antikörper, mit seinem Immunsystem
selbst herzustellen. Die Zahl der im Blutstrom zirkulierenden
transformierten Zellen, und damit die Zahl der entsprechenden
Antigene, ist jedoch gerade im für die Diagnostik und
Therapie wichtigen Frühstadium im allgemeinen viel zu gering,
um eine ausreichende Immunantwort auslösen zu können. Das
erfindungsgemäße Verfahren erlaubt dagegen die Bereitstellung
einer großen Menge an tumorspezifischen Antigenen in Form
einer Kultur der transformierten Zellen, die sich beliebig
vermehren läßt.
Bisher war man der Annahme, daß die an sich bekannten
Zentrifugationsverfahren nur für die im Kreislauf ohnehin
ständig peripher zirkulierenden weißen Blutkörperchen
geeignet seien. Die Erfinder haben nun überraschenderweise
festgestellt, daß sich unter diesen Milliarden von
Lymphozyten und Leukozyten bei an Krebs erkrankten Patienten
auch abgesiedelte transformierte Zellen des Primärtumors
befinden.
Für das vorliegende Verfahren ist jede kontinuierliche
Zentrifuge einsetzbar, die üblicherweise auch zur
Lymphozytenseparation vom Blutplasma und von den Erythrozyten
und anderen Bestandteilen des Blutes ohne chemischen
Dichtegradienten und anschließender Anreicherung verwendet
wird.
Solche Zentrifugen wurden bislang z. B. in einem Verfahren zur
Verminderung der Lymphozytenpopulation bei Patienten mit
Lymphozytenleukämie in Kombination mit einem extracorporalen
Bestrahlungsverfahren eingesetzt (EP-A 30358). Hierzu wird
dem Patienten Blut entnommen und dieses in Gegenwart einer
lichtreaktiven chemischen Verbindung, wie z. B. einem
Psoralenderivat, das zuvor oral verabreicht wurde oder nach
der Entnahme dem Blut zugegeben wurde, mit UV-Licht
bestrahlt. Das Psoralen interkaliert mit der DNA der Zellen
und vermag nach Lichtaktivierung mit der DNA zu reagieren und
dabei Onkogene auszuschalten. Anschließend führt man das
bestrahlte Blut dem Patienten wieder zu.
Durch das erfindungsgemäße Verfahren der kontinuierlichen
Zentrifugation werden nur ca. 100 bis 200 ml Blut,
entsprechend dem Füllungsvolumen der kontinuierlichen
Zentrifuge benötigt. Ferner ist es möglich, nur die
Leukozyten, Lymphozyten und die in dieser Fraktion
enthaltenen transformierten Zellen schonend aus dem Blut
abzutrennen, die übrigen Blutbestandteile werden dem
Patienten wieder zurückgegeben. Bevorzugt geschieht dies in
einem Arbeitsgang. Auf diese Weise wird die Belastung des
Patienten so gering wie möglich gehalten, andererseits
gelingt es, in kurzer Zeit ausreichende Mengen an
transformierten Krebszellen zu isolieren, die dann
entsprechend weiterverarbeitet werden können.
Vor der Blutzuführung wird die Zentrifuge mit einer
pharmazeutisch annehmbaren, isotonischen Lösung gefüllt, die
mit einem gerinnungshemmenden Mittel, z. B. Heparin, versetzt
ist, üblicherweise reichen hierfür 1000 bis 2000 Einheiten
aus. Für die Separation von transformierten Zellen aus dem
Blutstrom werden über einen geeigneten, am Zentrifugenausgang
angebrachten Bypass-Mechanismus beliebig viele weiße
Blutkörperchen mit darunter vermischten transformierten
Zellen entnommen, wobei der Fachmann ohne weiteres in der
Lage ist, die Leukozytenfraktion zu identifizieren:
Bei Erscheinen einer weißen Bande, die sich deutlich von den
roten Erythrozyten abhebt, wird der Bypass der Zentrifuge
geöffnet und ca. 40 ml der weißen Blutkörperchen bei einer
Zentrifuge mit einem Fassungsvermögen von 120 ml entnommen
Die roten Blutkörperchen, das Plasma und die anderen
Blutbestandteile werden dem Körper wieder zurückgegeben.
Für das erfindungsgemäße Verfahren besonders geeignet ist
eine kontinuierliche Zentrifuge (UVAR-Gerät von Therakos
Inc.) aus einem durchsichtigen Material und einem
Fassungsvermögen von 100-150 ml, welche es erlaubt, nach
Füllung mit dem erwünschten Volumen an Blut dieses in ca.
10 min bei einer Umdrehungszahl von 3600 bis 3800 Upm in die
Hauptbestandteile aufzutrennen. Im übrigen wird für die
Isolierung der Zellen entsprechend den Herstellerangaben
verfahren. Das Zellsorting zur Gewinnung maligner Zellen kann
beliebig oft, unabhängig von einer Operation, vor oder nach
dieser, erfolgen. Die einzige Voraussetzung zur Gewinnung
maligner Zellen ist das Vorhandensein dieser im Kreislauf.
Die Leukozytenfraktion mit den darin enthaltenen Leukozyten,
Lymphozyten und transformierten Zellen, der sogenannte
"Buffy-coat", wird in eine Kulturlösung überführt. Zur Kultur
der transformierten Zellen kann jedes Basiszellkulturmedium
eingesetzt werden, welches eine Kohlenstoff- und
Stickstoffquelle sowie weitere notwendige anorganische und
organische Bestandteile, wie Vitamine, Aminosäuren und
Spurenelemente enthält. Bevorzugt sind handelsübliche Medien,
wie z. B. RPMI 1640-Medium, ggf. mit einem Supplement wie
fötalem Kälberserum ergänzt. Die Kulturbedingungen werden
nach den Herstellerangaben eingestellt, üblicherweise werden
Standardbedingungen von 5% CO2, 37°C und 95% Luftfeuchtigkeit
verwendet.
Die Zugabe von Macrophagen-Inhibierendem-Peptid verhindert,
daß die wenigen transformierten Zellen im großen Überschuß
von Lymphozyten durch Macrophagen zerstört werden. Dagegen
hemmt der Zusatz von B- und T-zellenspezifischen Antikörpern
(CD 8-, CD-25-, Interleukin- und Interferon-spezifische
Antikörper) die Vermehrung der Lymphozyten, die schließlich
absterben. Über bekannte Zellsorting-Verfahren können
alternativ die Leukozyten, Lymphozyten und andere störende
Zellen aus dem Buffy-coat abgetrennt werden. Die Ansätze
werden auf Microtiterplatten verteilt, und schon nach ca.
vier Tagen sind die Klone der transformierten Zellen gut
sichtbar. Die transformierten Zellen lassen sich aufgrund
ihrer Morphologie eindeutig von eventuell noch vorhandenen
Lymphozyten unterscheiden und ähneln sehr stark den
Primärtumorzellen. Nach ca. einer Woche stehen bereits genug
transformierte Zellen für die anschließende in vitro-
Immunisierung zur Verfügung. Für eine Verwendung zu einem
späteren Zeitpunkt können die Klone auch eingefroren werden.
Die Krebszellen können dem Körper in modifizierter
nicht-pathogener Form als Immunogen wieder zugeführt werden.
Hierfür können z. B. isolierte Membranfraktionen, die noch die
Tumorantigene tragen, verwendet werden. Es besteht auch die
Möglichkeit, mit diesen Antigenen einen anderen
Fremdorganismus, z. B. Maus, Kaninchen oder Ziege, zu
immunisieren und hieraus nach üblichen Methoden polyklonale
oder monoklonale Antikörper zu gewinnen, die dann zur
Diagnostik oder Therapie verwendet werden können.
Erfindungsgemäß werden die kultivierten Krebszellen dazu
benutzt, aus demselben Organismus isolierte B-Lymphozyten in
einer in vitro-Immunisierung, d. h. außerhalb des Körpers, zu
stimulieren und aus den so stimulierten B-Lymphozyten
Hybridoma-Zellklone herzustellen, die zur permanenten
Sekretion monoklonaler Antikörper in der Lage sind. Neben der
Hybridoma-Technik ist auch die Immortalisierung der B-
Lymphozyten mit Epstein-Barr-Viren möglich. Die Erfindung
bildet somit das körpereigene Immunsystem in technisch
kontrollierbarer Weise nach.
Die in Kultur vermehrten malignen Zellen werden zu einem
gegebenen Zeitpunkt, jedoch vorzugsweise möglichst früh nach
der Entnahme, d. h. nach ca. 8 bis 10 Tagen, mit körpereigenen
B-Lymphozyten des Patienten in Kontakt gebracht. Nachdem für
die Isolierung der B-Lymphozyten nur etwa 50 ml Blut
notwendig sind und die B-Zellen in einem großen Überschuß im
Gegensatz zu den transformierten Zellen vorhanden sind,
können diese auch durch Zentrifugation in einem
Dichtegradienten, z. B. einem Ficollgradienten, erfolgen. Die
Entnahme der B-Lymphozyten erfolgt jedoch bevorzugt ebenso
mit der kontinuierlichen Zentrifuge. Bevorzugt werden die
Verfahrensschritte der Anlegung der Krebszellenkultur und die
Isolierung der B-Zellen so aufeinander abgestimmt, daß eine
in vitro-Immunisierung zu einem möglichst frühen Zeitpunkt
nach der Zellentnahme, d. h. nach ca. 8 bis 10 Tagen, erfolgen
kann.
Für die in vitro-Immunisierung kann der gesamte Buffy-coat
verwendet werden (T- und B-Lymphozyten), da nur die
stimulierten B-Lymphozyten die Antikörper sezernieren, wobei
der Buffy-coat und die transformierten Zellen in einem
Verhältnis bezogen auf die Anzahl der Zellen bevorzugt von
100 : 1 bis 1 : 1 und besonders bevorzugt im Verhältnis von ca.
10 : 1 eingesetzt werden. Durch Zugabe von Interleukinen wie
IL-2, IL-4, IL-5, IL-6 und gamma-Interferon wird die
Stimulierung der antikörperbildenen Zellen begünstigt. Die
Konzentration dieser Hilfsstoffe im Immunisierungsansatz
beträgt jeweils 0,1 bis 10 mM, bevorzugt ca. 1 mM.
Zur unbegrenzten Vermehrung müssen die stimulierten B-
Lymphozyten immortalisiert werden. Dies kann bevorzugt durch
Transformation der B-Lymphozyten mit Epstein-Barr-Viren
analog dem Verfahren wie in der deutschen Patentschrift
DE 39 28 769 C2 beschrieben. Besonders bevorzugt zur
Produktion großer Antikörpermengen ist die Herstellung einer
Hybridomakultur. Für die Fusion mit den B-Zellen werden je
nach Spenderorganismus spezienspezifische Myelomazellen
verwendet. Beim Menschen hat sich die Myelomazellinie U-266
für diesen Zweck besonders bewährt. Die B-Zellen werden mit
den Myelomazellen in dem optimalen Verhältnis von 1 : 1
vereinigt. Zur Unterstützung der Zellfusion können
Hilfsstoffe wie Polyethylenglycol zugesetzt werden.
Anschließend wird der Ansatz zur Selektion auf Hybridomaklone
auf Microtiterplatten ausgesät und der Kulturüberstand nach
Antikörpern getestet. Die Kulturbedingungen sind wie für
Hybridomakulturen üblich.
Durch Epitop-Screening werden Hybridomaklone selektiert, die
verschiedene antigene Determinanten auf der Oberfläche der
transformierten Zelle erkennen, und die Spezifität der
Antikörper verifiziert. Die auf diese Weise erhaltenen
Hybridomazellinien können zur Gewinnung von monoklonalen
Antikörpern weiter vermehrt und/oder für eine spätere
Verwendung eingefroren werden.
Die Antikörper werden nach konventionellen Verfahren aus dem
Kulturüberstand isoliert und mit üblichen Proteinreinigungs-
Methoden, wie Ammoniumsulfatfällung, Gelchromatographie,
Ionenaustausch-Chromatographie, Affinitätschromatographie
und/oder FPLC und elektrophoretischen Verfahren möglichst bis
zur Homogenität gereinigt.
Die extracorporale in vitro-Immunisierung erfolgt ohne
Passagen in Fremdorganismen und liefert große Mengen an
Antikörpern, die für den speziellen Tumor aus dem
Spenderindividuum spezifisch und somit zur Verwendung für
seine Diagnose und seine Bekämpfung in diesem speziellen
Individuum optimal geeignet sind. Andererseits stammen die
Antikörper aus B-Lymphozyten, die ebenfalls demselben
Individuum entnommen wurden. Die erfindungsgemäßen Antikörper
sind daher, obgleich außerhalb des Körpers hergestellt,
"körpereigene" Proteine, die nach Applizierung im Organismus
keine gegen sie gerichtete Immunantwort auslösen, was sonst
zu ihrem raschen Abbau und damit zu einer verringerten
therapeutischen Wirksamkeit führen könnte.
Die nach dem erfindungsgemäßen Verfahren hergestellten
Antikörper umfassen alle Subklassen wie IgG, IgM und IgE,
bevorzugt sind Antikörper vom IgG-Typ. Die Antikörper können
ferner chemisch oder enzymatisch modifiziert werden, solange
ihre physiologische Aktivität, d. h. Erkennung und Bindung an
die krebszellen-spezifische antigene Determinante, erhalten
bleibt.
An die Antikörper können nach dem konventionellen
Glutaraldehyd-Verfahren Immuntoxine, wie z. B. Ricin oder
Diphtherie-Toxin gekoppelt werden. Ferner können die
Antikörper mit radioaktiven Substanzen, z. B. ¹²⁵J oder
Markerenzymen für einen RIA oder ELISA markiert werden.
In einer bevorzugten Ausführungsform werden die Antikörper
ohne weitere Modifikationen zur Herstellung eines
Arzneimittels verwendet, wobei in einer pharmazeutischen
Zusammensetzung eine oder mehrere monoklonale
Antikörperarten, die jeweils gegen ein bestimmtes Epitop
gerichtet sind, enthalten sein können.
Nach Verabreichung an einen Patienten sind sie in der Lage,
an abgesiedelte Tumorzellen zu binden und auf diese Weise
Macrophagen oder körpereigene Killerzellen anzulocken, die
dann ihrerseits die Krebszellen zerstören.
Die Antikörper werden in einer pharmazeutisch annehmbaren
Formulierung zusammen mit hierfür üblichen Trägern,
Verdünnern, Stabilisatoren und gegebenenfalls weiteren
Hilfsstoffen dem Patienten verabreicht. Das Arzneimittel kann
in jeder geeigneten Formulierung, bevorzugt in Form einer
intravenösen, intramuskulär oder subkutan injizierbaren
Lösung vorliegen. Besonders bevorzugt werden die Antikörper
nach ihrer Gewinnung lyophilisiert und in einer Einheitsdosis
in Ampullen gefüllt und versiegelt. Kurz vor der Verwendung
werden Antikörper mit einer für die Injektion geeigneten
Trägerlösung gelöst oder suspendiert. Die Trägerlösung,
üblicherweise eine sterile, gepufferte wäßrige Lösung, kann
in einer eigenen Ampulle zusammen mit den lyophilisierten
Antikörpern in einer Arzneimittelpackung beigegeben sein. Der
behandelnde Arzt wird hierbei je nach Alter und Zustand des
Patienten, nach Art des Tumors und Schwere der Erkrankung
eine geeignete Dosierung und Verabreichungsform wählen.
Für die Herstellung eines Arzneimittels zur Tumorbehandlung
kann auch bevorzugt die Eigenschaft eines Antikörpers
ausgenutzt werden, hochspezifisch sein entsprechendes Antigen
zu erkennen und daran zu binden. Ein Wirkstoff, der mit dem
Antikörper in geeigneter Weise, d. h. nicht über den für die
Antigenerkennung wichtigen Bereich, kovalent verbunden ist,
läßt sich somit via Antikörper als Transportvehikel direkt an
den gewünschten Wirkort transportieren, um nur dort und nicht
unspezifisch im Organismus verteilt seine Wirkung zu
entfalten. Durch Ankoppelung von Immuntoxinen, z. B. Ricin,
oder Radiotherapeutika an diese monoklonalen Antikörper nach
an sich bekannten Verfahren können somit die Tumorzellen
zerstört werden.
Durch Verabreichung dieser monoklonalen modifizierten
und/oder nicht-modifizierten Antikörper können Tumorzellen
erfaßt und zerstört werden, die am Endothel angeheftet waren.
Ferner erlaubt dieses Verfahren auch die Zerstörung eventuell
nicht operabler solider Tumoranteile oder des gesamten
soliden Tumors, wie auch bereits gebildeter Metastasen. Nach
operativen Eingriffen können Antikörpergaben über einen
entsprechenden Zeitraum vorbeugend gegeben werden, um die
Neuansiedelung zirkulierender transformierter Zellen bzw. die
Entstehung von Metastasen zu verhindern. Eine Verabreichung
kann auch zusammen mit anderen üblichen Arzneimitteln zur
Tumorbehandlung wie Cytostatika oder ähnlichen und
begleitenden therapeutischen Maßnahmen, Bestrahlungen usw.
erfolgen.
Für diagnostische Zwecke können diese Antikörper an
radioaktive oder nicht-radioaktive Marker gekoppelt werden
und in vivo und in vitro der Suche und Markierung von
Tumorzellen dienen. Die hohe Selektivität und
Bindungsaffinitität der Antikörper erlaubt auf einfache Weise
die Anzahl transformierter Zellen im Blutstrom eines Patienten
in einem in vitro-Testsystem quantitativ und qualitativ zu
bestimmen. Dank der Empfindlichkeit eines solchen Tests, mit
dem in einer Probe bereits wenige transformierte Zellen
nachgewiesen werden können, muß dem Patienten nur wenig Blut
entnommen werden, und durch die ständige Verfügbarkeit der
Antikörper kann der Test regelmäßig über einen längeren
Zeitraum zur Diagnose durchgeführt werden.
Es ist ein wesentliches Kennzeichen der Erfindung, daß die
nach diesem Verfahren gewonnenen Produkte, wie z. B. die
Kultur der transformierten Zellen, die Hybridomakultur und
die monoklonalen Antikörper, hochspezifisch für den
betreffenden Organismus sind. Dies bedeutet insbesondere für
die monoklonalen Antikörper, daß sie sich von solchen aus
einem anderen Organismus, z. B. aus einem anderen Patienten mit
derselben Tumorerkrankung, mehr oder weniger stark
hinsichtlich ihrer Struktur wie auch ihrer Antigenerkennung
unterscheiden. Hierdurch wird es möglich, innerhalb eines
relativ kurzen Zeitraums und mit vertretbarem Aufwand für
einen bestimmten Patienten, z. B. durch die Verwendung der
individual-spezifischen Antikörper, ein speziell für ihn
zugeschnittenes Arzneimittel oder Diagnostikum herzustellen.
Dies bedeutet jedoch andererseits nicht, daß die Verwendung
monoklonaler Antikörper, die aus und für ein bestimmtes
Individuum hergestellt wurden, für andere Individuen
prinziell ausgeschlossen wäre. Es ist bekannt, daß humane
monoklonale Antikörper innerhalb der gleichen Spezies
verträglicher sind als Chimären oder gar tierische
Antikörper. Werden die Antikörper zur in vitro-Diagnose
eingesetzt, spielt die Verträglichkeit sowieso keine Rolle.
Man wird daher bei einem Patienten, bei dem der Verdacht auf
eine bestimmte Tumorerkrankung besteht oder eine solche
bereits diagnostiziert wurde, zunächst versuchsweise bereits
aus einem anderen Patienten gewonnene Antikörper einsetzen.
Sprechen diese in gewünschter Weise an und werden sie gut
vertragen, ist es nicht mehr notwendig, für diesen Patienten
ebenfalls, wie oben beschrieben, eigene Antikörper
herzustellen.
Die vorliegende Erfindung stellt somit ein Verfahren zur
Herstellung eines Mittels zur Verfügung, das zur Diagnose
und/oder Therapie einer bestimmten Krebserkrankung bei einer
Vielzahl von Individuen einer bestimmten Säugerspezies
eingesetzt werden kann.
In einer bevorzugten Ausführungsform des erfindungsgemäßen
Verfahrens werden verschiedene Hybridomazellinien von einem
oder mehreren Patienten mit demselben Tumor etabliert und
nach solchen monoklonalen Antikörpern selektiert, die
spezifische antigene Determinanten auf den Krebszellen
unterscheiden. Auf diese Weise läßt sich auch feststellen, ob
auf transformierten Zellen, welche aus verschiedenen
Patienten mit der gleichen Tumorerkrankung isoliert wurden,
identische Determinanten vorkommen. Diese Antikörper können
dann zur Diagnose auch bei anderen Patienten verwendet
werden, ohne daß bei ihnen zuerst eine in vitro-Immunisierung
durchgeführt werden muß.
Die Antikörper können in modifizierter und nicht-
modifizierter Form nach üblichen Methoden, wie oben
beschrieben, in pharmazeutische Zusammensetzungen formuliert
werden.
Das Verfahren ist auch geeignet, bei Krebsverdacht im
Routinebetrieb auf das Vorhandensein von transformierten
Zellen hin zu untersuchen oder beim Vorhandensein eines
röntgenologisch erkennbaren soliden Organtumors
festzustellen, ob der Tumor bereits maligne Zellen in den
Kreislauf gestreut hat oder nicht. Ferner kann bei
zweifelhaftem Befund (maligne oder nicht-maligne) auf das
Vorhandensein peripher zirkulierender transformierter Zellen
hin untersucht werden. Für diesen Zweck werden die Antikörper
bzw. ihre hierfür speziell geeigneten Derivate in einem
Diagnose-Kit, vorzugsweise für einen ELISA, bereitgestellt.
Das vorstehende Verfahren ist nicht nur im humanmedizinischen
Bereich am Menschen, sondern auch an Säugern allgemein in der
Tiermedizin und verwandten wissenschaftlichen Disziplinen
anwendbar. Die beispielhafte Bezugnahme auf einen Patienten
als Vertreter für einen lebendes Individuum in der
Beschreibung soll daher nicht beschränkend ausgelegt werden.
Mit dem erfindungsgemäßen Verfahren ist es möglich, auf
ungefährliche Weise ohne Zusatz von Chemikalien oder
sonstigen Hilfsmitteln aus einem lebenden Organismus von
Mensch und Tier transformierte Zellen für diagnostische und
therapeutische Zwecke zu gewinnen. Das Verfahren erlaubt die
Entnahme einer großen Zahl im Kreislauf zirkulierender
Tumorzellen. Damit wird die Tumorlast, die üblicherweise zur
Metastasierung beiträgt, reduziert.
Das erfindungsgemäße Verfahren bietet insbesondere die
folgenden Vorteile:
- - Die Gewinnung der transformierten Zellen ist für den Organismus äußerst schonend durchführbar, d. h. es kommt zu keiner vermehrten Freisetzung solcher Zellen in den Blutstrom.
- - Die kontinuierliche Arbeitsweise des Isolierungsverfahrens erlaubt, die Anzahl der peripheren transformierten Zellen im Blutstrom sehr stark abzusenken, und verringert somit das Risiko einer Metastasenbildung, z. B. nach operativer Entfernung des Primärtumors.
- - Die optimale Abstimmung der einzelnen Verfahrensschritte ermöglicht die Erzeugung der Antikörper in relativ kurzer Zeit und unter niedrigen Kosten.
- - Die gewonnenen Antikörper sind individual-spezifisch, d. h. sie stellen für den betreffenden Organismus keine Fremdkörper dar. Es kommt weder zu Unverträglichkeitsreaktion, noch werden die Antikörper im Gegensatz zu anderen Fremdproteinen übermäßig rasch abgebaut, wodurch ihre Effizienz wesentlich erhöht wird.
- - Die Antikörper sind tumor-spezifisch, d. h. sie erkennen nur die spezifischen Antigene des speziellen Tumors aus dem betreffenden Individuum, die Antigene nicht- transformierter Zellen werden nicht erkannt.
- - Die an die Antikörper gekoppelten pharmazeutischen Wirkstoffe entfalten ihre Aktivität nicht unspezifisch über den Organismus verteilt, sondern im wesentlichen nur am gewünschten Wirkort (cell-targeting); unerwünschte Nebenwirkungen werden somit weitgehend vermieden.
- - Das aus den Antikörpern hergestellte Arzneimittel kann nicht nur gegen im Blutstrom zirkulierende transformierte Zellen, sondern auch zur Bekämpfung des Primärtumors und eventuell bereits gebildeter Metastasen eingesetzt werden.
- - Das aus den Antikörpern hergestellte Arzneimittel wird aus körpereigenen Resourcen gewonnen, das Risiko von Fremdinfektionen, z. B. durch Hepatitis oder AIDS, ist ausgeschlossen.
- - Die Gewinnung der für den individuellen Patienten tumor spezifischen Antikörper gelingt mit einem vertretbaren Aufwand, so daß diese nicht nur zur Herstellung patienten spezifischer Arzneimittel, sondern auch für Früherkennung, Diagnostik oder Nachbehandlung nach operativen Eingriffen einsetzbar sind.
- - Die Verwendung der aus einem individuellen Organismus gewonnenen Antikörper für andere Organismen als den "Erzeugerorganismus" ist möglich.
Die folgenden Beispiele dienen der Illustration des
erfindungsgemäßen Verfahrens.
1. Benötigte Geräte
1.1. Zellkultur:
sterile Werkbank, CO2-Inkubator, Wärmeschrank, Wärmeplatte, Fluoreszenzmikroskop, Phasenkontrastmikroskop, Zentrifuge für variable Rotoren, Kühlschränke (4,-20, -80°C), flüssiger Stickstoff, Autoklav
1.2. ELISA:
Microplattenphotometer, Pipette, 8-Kanal
1.3. Reinigung der monoklonalen Antikörper:
FPLC, HPLC
1.4. Biochemische Analyse:
IEF-Gerät, Midget System, Elektroblot, 2dim. Gelelektrophorese, Transformator
1.5. Kontinuierliche Zentrifuge (Apherese):
UVAR-Zentrifuge von Therakos Inc., Fassungsvermögen 120 ml, mit Bypass
2. Reagentien
2. 1. Gewebekultur:
Medium RPMI 1640, fötales Kälberserum, L-Glutamin Na-Pyruvat, Phosphatpufferlösung (PBS), pH 7,0, 20 mM, HAT-Medium
2.2. Monoklonale Antikörper:
Anti-CD 8, Anti-CD 25, Anti-IL-2, Anti-IFN gamma (alle erhältlich von Fa. Serva)
Rekombinantes IL-2, IL-4, IL-5, IL-6, IFN gamma (alle erhältlich von Fa. Serva)
Macrophagen-Inhibierendes-Peptid (Thr-Lys-Pro, Tuftsin-Fragment 1-3) (erhältlich von Fa. Sigma)
2.3. Zellfusion:
50% Polyethylenglycol 1500 in HEPES-Puffer, 75 mM, (50% Gew/Vol).
3. Verfahren
3.1. Isolierung und Vermehrung von Krebszellen mit Hilfe der Apherese:
1.1. Zellkultur:
sterile Werkbank, CO2-Inkubator, Wärmeschrank, Wärmeplatte, Fluoreszenzmikroskop, Phasenkontrastmikroskop, Zentrifuge für variable Rotoren, Kühlschränke (4,-20, -80°C), flüssiger Stickstoff, Autoklav
1.2. ELISA:
Microplattenphotometer, Pipette, 8-Kanal
1.3. Reinigung der monoklonalen Antikörper:
FPLC, HPLC
1.4. Biochemische Analyse:
IEF-Gerät, Midget System, Elektroblot, 2dim. Gelelektrophorese, Transformator
1.5. Kontinuierliche Zentrifuge (Apherese):
UVAR-Zentrifuge von Therakos Inc., Fassungsvermögen 120 ml, mit Bypass
2. Reagentien
2. 1. Gewebekultur:
Medium RPMI 1640, fötales Kälberserum, L-Glutamin Na-Pyruvat, Phosphatpufferlösung (PBS), pH 7,0, 20 mM, HAT-Medium
2.2. Monoklonale Antikörper:
Anti-CD 8, Anti-CD 25, Anti-IL-2, Anti-IFN gamma (alle erhältlich von Fa. Serva)
Rekombinantes IL-2, IL-4, IL-5, IL-6, IFN gamma (alle erhältlich von Fa. Serva)
Macrophagen-Inhibierendes-Peptid (Thr-Lys-Pro, Tuftsin-Fragment 1-3) (erhältlich von Fa. Sigma)
2.3. Zellfusion:
50% Polyethylenglycol 1500 in HEPES-Puffer, 75 mM, (50% Gew/Vol).
3. Verfahren
3.1. Isolierung und Vermehrung von Krebszellen mit Hilfe der Apherese:
Unter Verwendung einer mit einem Bypass versehenen
UVAR-Zentrifuge wurden bei drei Patienten mit
unterschiedlichen Tumortypen (Prostatakarzinom,
Adenokarzinom der Niere, Adenokarzinom des Kolons)
nach dem vorstehend beschriebenen Verfahren ein
Buffy-coat aus jeweils 120 ml Blut gewonnen.
Bei den Patienten war durch vorherige Operation das
histologische Stadium bekannt. Zwei der Patienten
(der Patient mit Prostatakarzinom und der Patient
mit Adenokarzinom der Niere) wiesen aufgrund
derzeit bekannter bildgebender Verfahren noch keine
Anzeichen von Fernmetastasen im Gewebe auf. Beim
dritten, dem an Adenokarzinom erkrankten Patienten,
hatte man bereits multiple Lungenmetastasen und
eine Metastase im Bereich der Nebenniere
diagnostiziert.
2,4·109 weiße Blutzellen aus dem Buffy-coat werden
in ein Röhrchen mit Zellkulturmedium (RPMI 1640)
aufgenommen und wie folgt untersucht.
Die Zellen wurden über Nacht unter
Standardbedingungen (37°C, 5% CO2, 95%
Luftfeuchtigkeit) kultiviert. Als Medium wurde RPMI
1640 mit 10% fötalem Kälberserum unter Zusatz von
B- und T-zellspezifischen Antikörpern (CD 8-,
CD 25-, IL-2- und IFN gamma-spezifische Antikörper)
und Zugabe von Macrophagen-Inhibierendem-Peptid in
den folgenden Konzentrationen verwendet:
Anti-IFN: 100 µg/500 ml Medium
Anti-CD 25: 100 µg/500 ml Medium
Anti-CD 8: 1 mg/500 ml Medium
Macrophag.-Inhib.-Peptid (MIP): 50 mg/500 ml Medium.
Anti-IFN: 100 µg/500 ml Medium
Anti-CD 25: 100 µg/500 ml Medium
Anti-CD 8: 1 mg/500 ml Medium
Macrophag.-Inhib.-Peptid (MIP): 50 mg/500 ml Medium.
Der Ansatz wurde auf Microtiterplatten mit je
200 000 Zellen in 100 µl pro Well verteilt. Am
vierten Tag nach Inokulation wurden die Zellen mit
je 100 µl Medium (ohne Antikörper- und MIP-Zusatz)
gefüttert. Während der gesamten Kulturzeit wurde
ständig mit 5% CO2 bei 37°C begast. Die Krebszellen
waren nach Teilung als Klone bereits nach vier
Tagen im Phasenkontrastmikroskop gut sichtbar.
Zur Kontrolle wurde derselbe Ansatz in Medium ohne
Zusatz von Antikörpern und Macrophagen-
Inhibierendem-Peptid ausplattiert, wobei die
Krebszellen erst nach drei Wochen im
Phasenkontrastmikroskop als Klone erkennbar waren.
Ein Klon des Ansatzes mit zugegebenen Antikörpern
und Macrophagen-Inhibierendem-Peptid wurde
entnommen und vermehrt, bis eine Zellzahl von 108
erreicht war. Weitere Klone wurden vermehrt und
eingefroren.
3.2. Immunisierung:
3.2. Immunisierung:
Die weißen Blutzellen mußten dazu veranlaßt werden,
Antikörper gegen krebszellspezifische Antigene zu
sezernieren. Hierzu wurden bei einem der
Photophoresezyklen 109 weiße Blutzellen entnommen,
mit 108 Krebszellen vereinigt und 4 Tage in 100 ml
humanem heparinisiertem Plasma in Rollerkultur bei
37°C, 5% CO2 inkubiert. Durch Zugabe von IL-2,
IL-4, IL-5, IL-6 und IFN gamma wurde die Reifung zu
antikörperbildenden Zellen stimuliert. Die
Konzentrationen betrugen jeweils 100 µg pro 100 ml
Immunisierungsansatz.
3.3. Zellfusion:
3.3. Zellfusion:
Die B-Lymphozyten wurden mit Hilfe eines FACS von
den übrigen Zellen abgetrennt. Einige Tage vor der
Fusion wurden die menschlichen Myelomazellen (U266)
in einer Zelldichte von 3·105 Zellen/ml in der
logarithmischen Wachstumsphase gehalten. Die
Myelomazellen wurden gleichzeitig mit den
B-Lymphozyten geerntet und dreimal in PBS
gewaschen. Es wurden vier Fusionsansätze
vorbereitet, wobei jeweils 5·107 Myelomazellen mit
5·107 B-Lymphozyten zusammen zentrifugiert und
anschließend mit jeweils 1 ml 50% Polyethylenglycol
in HEPES fusioniert wurden. Hierauf folgte die
langsame Zugabe von 10 ml RPMI 1640. Der
Fusionsansatz wurde in RPMI 1640 gewaschen, 2
Minuten bei 200·g bei RT zentrifugiert, in jeweils
50 ml HAT-Medium aufgenommen und zu jeweils 0,1 ml
pro Well in 96-Well-Microtiterplatten ausgesät. Als
Feederzellen wurden humane Macrophagen in einer
Anzahl von 104 pro Well eingesetzt.
3.4. Screening:
3.4. Screening:
Der Kulturüberstand der Hybridomazellen wurde mit
einem ELISA auf Antikörper getestet. Hierfür wurde
ein Zell-ELISA etabliert. Krebszellen wurden mit
geeigneten Methoden an die Plastikoberfläche der
Microtiterplatten beschichtet, eventuell daran
bindende Antikörper über einen zweiten Antikörper
detektiert.
ELISA:
ELISA:
Im ersten Screening nach der Fusion wurde nach
Klonen gesucht, die Immunglobulin sezernieren.
1. Inkubation von Kulturüberstand in Microtiterplatten zu je 100 µl pro Well über Nacht bei 4°C
2. Dreimal waschen mit PBS
3. Absättigen mit Albumin oder Blotto, 2 h, 37 C
4. 3×waschen mit PBS
5. Inkubation mit spezifischen Antikörpern gegen humanes Immunglobulin, 2 h bei 37°C
6. Inkubation mit einem enzymkonjugierten zweiten Antikörper (Peroxidase oder alkalische Phosphatase) 1 h bei 37°C
7. Entwickeln durch Zugabe von Substrat und Messung im Ablesegerät
1. Inkubation von Kulturüberstand in Microtiterplatten zu je 100 µl pro Well über Nacht bei 4°C
2. Dreimal waschen mit PBS
3. Absättigen mit Albumin oder Blotto, 2 h, 37 C
4. 3×waschen mit PBS
5. Inkubation mit spezifischen Antikörpern gegen humanes Immunglobulin, 2 h bei 37°C
6. Inkubation mit einem enzymkonjugierten zweiten Antikörper (Peroxidase oder alkalische Phosphatase) 1 h bei 37°C
7. Entwickeln durch Zugabe von Substrat und Messung im Ablesegerät
Die positiven Klone werden nun auf
krebszellspezifische Antikörper getestet. Hierzu
wurde ein Zell-ELISA etabliert:
1. Herstellung einer Poly-L-Lysinlösung von 1 mg/ml in dest. Wasser
2. Inkubation der Microtiterplatten mit Poly-L- Lysin für 15 Minuten
3. Waschen mit Wasser. Lagerung bei RT nach Trocknung
4. Zweimal waschen der Zellen in Suspension in PBS, Zentrifugation bei 400·g
5. Resuspendieren des Zellpellets in PBS zu 105 Zellen pro ml. Einfüllen in die Microtiterplatten, Inkubation 10 min bei RT
Fixierung:
1. Herstellung einer Poly-L-Lysinlösung von 1 mg/ml in dest. Wasser
2. Inkubation der Microtiterplatten mit Poly-L- Lysin für 15 Minuten
3. Waschen mit Wasser. Lagerung bei RT nach Trocknung
4. Zweimal waschen der Zellen in Suspension in PBS, Zentrifugation bei 400·g
5. Resuspendieren des Zellpellets in PBS zu 105 Zellen pro ml. Einfüllen in die Microtiterplatten, Inkubation 10 min bei RT
Fixierung:
Jeweils 200 µl eines Aceton/Methanolgemisches
(50/50 Vol.-%) wurden in die Wells der
Microtiterplatten eingefüllt und 2 Min. bei RT
inkubiert. Anschließend wurde einmal mit PBS
gewaschen.
Die weiteren Schritte wurden wie beim ersten
Screening ausgeführt.
3.5. Biochemische Analyse:
3.5. Biochemische Analyse:
Monoklonale Antikörper wurden direkt aus dem
Kulturüberstand analysiert. Die Subklassen der
leichten und der schweren Kette wurden mit Hilfe
eines Subklassentestkits im ELISA bestimmt. Mit
Hilfe der isoelektrischen Fokussierung konnte die
Monoklonalität der Antikörper sichergestellt werden
(Hoffmann et al., Human Genetics, Springer
Verlag, 1990, 84, 137-146).
3. 6. Epitopscreening:
3. 6. Epitopscreening:
Es wurden Krebszellen kultiviert, 107 Zellen wurden
entnommen, dreimal mit PBS gewaschen und in zwei
Fraktionen aufgeteilt. Eine Fraktion wurde
homogenisiert und in der nativen Gelelektrophorese
(pH 8,8, 9% Acrylamid im Trenngel und 3% Acrylamid
im Sammelgel) analysiert, die andere wurde
denaturiert (Harnstoff, SDS) und mit der
eindimensionalen und zweidimensionalen
Gelelektrophorese (Waldinger et al.,
Electrophoresis, 1986) aufgetrennt.
Nach anschließendem Westernblot wurde mit dem
Kulturüberstand detektiert. Die erkannte Bande bzw.
der erkannte Spot wurde extrahiert und
ansequenziert und so das tumorspezifische Antigen
identifiziert. Als Kontrolle wurden Proben anderer
Gewebe und weiße Blutzellen verwendet (E. Harlowe,
D. Lane Antibodies, A Laboratory Manual Cold Spring
Harbor Laboratory, 1988; D. Baron, U. Hartlaub,
Humane monoklonale Antikörper, Gustav Fischer
Verlag, Stuttgart, New York 1987).
4. Ergebnisse
4. Ergebnisse
In allen drei Fällen (Prostatakarzinom, Adenokarzinom der
Niere und Adenokarzinom des Kolons) waren bereits nach
vier Tagen in ca. 30% der Wells der Zellkulturplatten
Klone transformierter Zellen im Phasenkontrast sichtbar.
Als Kontrolle diente der Buffy-coat eines Patienten mit
einer nicht-malignen Erkrankung (autoimmune
Regulationsstörung der Lymphozyten), bei dem die weißen
Blutkörperchen aus anderen Gründen außerhalb des Körpers
behandelt werden mußten. In diesem Falle wurden keinerlei
Zellteilungen festgestellt.
Claims (20)
1. Verfahren zur Isolierung und Kultivierung von im
Blutstrom eines Individuums zirkulierenden
transformierten Zellen, dadurch gekennzeichnet, daß man
durch Zentrifugation von Blut mittels einer zur
Abtrennung von Lymphozyten geeigneten, kontinuierlichen
Zentrifuge einen Buffy-coat, der die transformierten
Zellen, Leukozyten und Lymphozyten enthält, über einen
der Zentrifuge nachgeschalteten Bypass entnimmt und den
Buffy-coat unter Vermehrung der transformierten Zellen
kultiviert.
2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß
man einem Individuum Blut entnimmt, dieses zur Gewinnung
des Buffy-coats durch die kontinuierliche Zentrifuge
leitet und die übrigen Blutbestandteile dem Individuum
wieder zurückgibt.
3. Verfahren nach Anspruch 1 oder 2, dadurch gekennzeichnet,
daß man für die Gewinnung des Buffy-coats
100 bis 150 ml Blut verwendet.
4. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß
man bei der Kultur des Buffy-coats zur Vermehrung der
transformierten Zellen das Wachstum und/oder die Funktion
der Lymphozyten und Leukozyten inhibiert.
5. Verfahren nach Anspruch 4, dadurch gekennzeichnet, daß
man zur Inhibierung Macrophagen-Inhibierendes-Peptid,
B-zellenspezifische und/oder T-zellenspezifische
Antikörper zugibt.
6. Verfahren nach Anspruch 4, dadurch gekennzeichnet, daß
man die Leukozyten und Lymphozyten aus dem Buffy-coat
durch ein Zellsortingverfahren abtrennt.
7. Individuum-spezifische Zellinie transformierter Zellen,
erhältlich durch ein Verfahren nach einem oder mehreren
der Ansprüche 1 bis 6.
8. Verwendung einer zur Abtrennung von Lymphozyten
geeigneten, kontinuierlichen Zentrifuge für die
Isolierung von im Blutstrom zirkulierenden
transformierten Zellen.
9. Verfahren zur Herstellung individuum-spezifischer, gegen
Tumorantigene gerichteter monoklonaler Antikörper,
dadurch gekennzeichnet, daß man durch Zentrifugation von
Blut mittels einer zur Abtrennung von Lymphozyten
geeigneten, kontinuierlichen Zentrifuge einen Buffy-coat,
der die transformierten Zellen, Leukozyten und
Lymphozyten enthält, über einen der Zentrifuge
nachgeschalteten Bypass entnimmt und den Buffy-coat unter
Vermehrung der transformierten Zellen kultiviert,
in einer in vitro-Immunisierung aus demselben Individuum
isolierte B-Lymphozyten mit den kultivierten
transformierten Zellen zur Produktion von gegen
Tumorantigene auf den transformierten Zellen gerichteten
Antikörpern stimuliert,
die stimulierten B-Lymphozyten immortalisiert, vermehrt
und selektiert,
und die Antikörper aus der immortalisierten
B-Lymphozytenkultur isoliert und reinigt.
10. Verfahren nach Anspruch 9, dadurch gekennzeichnet, daß
man die B-Lymphozyten unter Anwendung einer für die
Abtrennung von Lymphozyten geeigneten, kontinuierlichen
Zentrifuge isoliert.
11. Verfahren nach Anspruch 9 oder 10, dadurch
gekennzeichnet, daß man zur Immortalisierung die
stimulierten B-Lymphozyten mit einer speziesspezifischen
Myelomakultur unter Erhalt einer die Antikörper
produzierenden Hybridomakultur fusioniert und selektiert.
12. Verfahren nach Anspruch 9 oder 10, dadurch
gekennzeichnet, daß man die stimulierten B-Lymphozyten
durch Transformation mit Epstein-Barr-Viren
immortalisiert.
13. Hybidomazellkultur, erhältlich durch ein Verfahren nach
Anspruch 9.
14. Individuum-spezifischer, gegen Tumorantigene gerichteter
monoklonaler Antikörper, erhältlich durch ein Verfahren
nach Anspruch 9.
15. Modifizierter Antikörper nach Anspruch 14, der noch zur
Bindung an das tumorspezifische Antigen in der Lage ist.
16. Modifizierter Antikörper nach Anspruch 15, an den ein
Immunotoxin und/oder ein Nachweismarker gekoppelt wurde.
17. Arzneimittel, das einen oder mehrere Antikörper gemäß
Anspruch 14 und/oder einen oder mehrere modifizierte
Antikörper gemäß Anspruch 15, einen pharmazeutisch
annehmbaren Träger und ggf. weitere Hilfsstoffe enthält.
18. Arzneimittel gemäß Anspruch 17 zur Behandlung von Krebs.
19. Diagnostikum, das einen oder mehrere Antikörper gemäß
Anspruch 14 und/oder einen oder mehrere modifizierte
Antikörper gemäß Anspruch 15 enthält.
20. Verwendung von einem oder mehreren Antikörpern gemäß
Anspruch 14 und/oder einem oder mehreren modifizierten
Antikörpern gemäß Anspruch 15 zur Herstellung eines
Arzneimittels für die Therapie von Krebs.
Priority Applications (11)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE4244715A DE4244715C2 (de) | 1992-08-26 | 1992-08-26 | Verfahren zur Herstellung individuum-spezifischer, gegen Tumorantigene gerichtete monoklonale Antikörper |
DE4228389A DE4228389C2 (de) | 1992-08-26 | 1992-08-26 | Gewinnung und Kultivierung transformierter Zellen |
DK93113227T DK0584715T3 (da) | 1992-08-26 | 1993-08-18 | Fremgangsmåde til isolering og dyrkning af transformerede celler og anvendelse af disse til fremstilling af antistoffer ret |
ES93113227T ES2126618T3 (es) | 1992-08-26 | 1993-08-18 | Procedimiento para el aislamiento y cultivo de celulas transformadas asi como empleo de estas celulas para la obtencion de anticuerpos especificos para el individuo. |
AT93113227T ATE174959T1 (de) | 1992-08-26 | 1993-08-18 | Verfahren zur isolierung und kultivierung von transformierten zellen sowie verwendung dieser zellen zur herstellung individuumsspezifischer antikörper |
DE59309239T DE59309239D1 (de) | 1992-08-26 | 1993-08-18 | Verfahren zur Isolierung und Kultivierung von transformierten Zellen sowie Verwendung dieser Zellen zur Herstellung individuumsspezifischer Antikörper |
DE9321535U DE9321535U1 (de) | 1992-08-26 | 1993-08-18 | Gewinnung und Kultivierung transformierter Zellen und Herstellung gegen sie gerichteter Antikörper |
EP93113227A EP0584715B1 (de) | 1992-08-26 | 1993-08-18 | Verfahren zur Isolierung und Kultivierung von transformierten Zellen sowie Verwendung dieser Zellen zur Herstellung individuumsspezifischer Antikörper |
US08/111,520 US5529903A (en) | 1992-08-26 | 1993-08-25 | Extraction and cultivation of transformed cells and production of antibodies directed against them |
JP21135293A JP3502125B2 (ja) | 1992-08-26 | 1993-08-26 | 形質転換細胞の抽出および培養ならびにそれらに対する抗体の製造 |
GR990400861T GR3029774T3 (en) | 1992-08-26 | 1999-03-23 | Method of preparing a radioactive rhenium complex solution. |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
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DE4228389A DE4228389C2 (de) | 1992-08-26 | 1992-08-26 | Gewinnung und Kultivierung transformierter Zellen |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE4228389A1 true DE4228389A1 (de) | 1994-03-03 |
DE4228389C2 DE4228389C2 (de) | 1994-07-21 |
Family
ID=6466484
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