DE3830565A1 - Polypeptid-sequenzen, die mit immunologischer aktivitaet ausgestattet sind - Google Patents
Polypeptid-sequenzen, die mit immunologischer aktivitaet ausgestattet sindInfo
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Description
Die vorliegende Erfindung betrifft synthetische Polypeptide,
die mit immunologischer Aktivität ausgestattet
sind, die nützlich auf dem Sektor der Malaria ist.
Insbesondere betrifft die vorliegende Erfindung synthetische
Polypeptide, die in der Lage sind, in Säugetieren
eine hochtitrige Antikörperreaktion zu induzieren, die
nicht nur gegen diese, sondern auch gegen immuno-dominante
Epitope des circumsporozoitischen Proteins von Plasmodium
falciparum spezifisch ist.
Die vorliegende Erfindung betrifft auch die Verwendung
dieser Polypeptide zur Herstellung von Antimalaria-Vakzinen
und diagnostische Ausrüstungen (Kits) zur Ermittlung
von Antimalaria-Parasitenantikörpern in klinischen Proben.
Malaria, welche durch ein Protozoon des Genus Plasmodium
verursacht wird, stellt gegenwärtig eine der schwerwiegendsten
parasitären Erkrankungen beim Menschen dar.
Es wird geschätzt, daß diese Krankheit tatsächlich jedes
Jahr 100 bis 200 Millionen Individuen befällt und
eine Mortalitätsrate im frühen Kindesalter bzw. Säuglingsalter
verursacht, die 50% der Fälle erreichen kann.
Unter den vier Species des den Menschen infizierenden
Plasmodiums sind die üblichsten P. vivax und P. falciparum.
Besonders dieses letztere verursacht die meisten Erkrankungen
und Todesfälle, die mit Malaria verbunden sind,
und aus diesem Grunde ist eine Vakzine gegen einen solchen
Typ von krankheitsverursachendem Wirkstoff besonders erwünscht.
Die Infektion beginnt beim Menschen mit der Übertragung
von Sporozoiten durch die Stechmücke, welche sich rasch
in den Leberzellen festsetzen. Hier bringt jedes
Sporozoit 20 000 oder mehr Merozoiten hervor, von denen
jedes nach Verlassen der Leberzelle in der Lage
ist, einen Erythrozyten zu infizieren. Innerhalb des
Erythrozyten vermehrt sich der Parasit asexuell von Ringen bzw.
Blasen zu Schizonten.
Der reife Schizont enthält einzelne Merozoiten, die in
andere Erythrozyten eindringen können.
Ein solcher Zyklus von wiederholtem Aufbrechen der
Erythrozyten durch die asexuellen Parasiten verursacht
die klinischen Symptome.
Einige Merozoiten differenzieren sich, anstelle, daß sie
sich fortgesetzt fortpflanzen, zu Gametozyten, welche die
infizierende Form für die Moskitos darstellen.
Die komplexe Struktur und der Lebenszyklus der Malariaparasiten
haben es bisher schwierig gemacht, das Problem
einer wirksamen Antimalaria-Vakzine zu lösen.
Tatsächlich entwickeln sich die Malariaparasiten gemäß
einem Vielstufenzyklus und geben dem Wirt eine äußerst
große Zahl von Antigenkomponenten, und jede Form der Entwicklung
des Parasiten enthält Antigene, die voneinander
verschieden sind und stufenspezifisch sind.
Bei den Versuchen, die plasmodischen Antigene zu identifizieren,
haben die Forscher ihr Interesse auf solche Antigene
gerichtet, welche dem Immunsystem ausgesetzt sind
und sowohl auf der Oberfläche des Parasiten als auch auf
der Membran des infizierten Erythrozyten vorhanden sind.
Besonders interessant war die Untersuchung der Sporozoiten
von Plasmodium in der Hinsicht, daß die Herstellung
einer Antisporozoit-Vakzine, wenn sie mit vollständiger
Wirksamkeit ausgestattet ist, in der Lage ist, die Entwicklung
des Plasmodiums in dem Wirtsorganismus zu verhindern
und daher eine sterile Immunität zu induzieren.
Versuche von antisporozoitischer Impfung von Tieren und Menschen
wurde durchgeführt unter Verwendung von Sporozoiten
von P. falciparum und P. vivax, die mit Röntgenstrahlen
bestrahlt waren, wobei eine nicht-Stamm-spezifische
Immunität gegen die Krankheit erreicht wurde.
Jedoch scheint ein so formulierter Impfstoff nicht sehr geeignet
für eine Anwendung in großem Maßstab sowohl wegen
der begrenzten Zugänglichkeit der Sporozoiten als auch wegen
ihrer Instabilität.
Die Verwendung von monoklonalen Antikörpern machte es
möglich, das Hauptoberflächenprotein von Sporozoiten von
P. berghei [N. Yoshida, R. S. Nussenweig et al. (1980),
Science 209, 71] und von anderen Protozoen, die für Tiere
und den Menschen infektiös sind, einschließlich P. falciparum
[F. Santoro et al. (1983), J. Biol. Chem. 258, 3341]
zu identifizieren.
Dieses Protein, das als "circumsporozoitisches Protein"
oder CS bezeichnet wird, bedeckt vollständig die Oberfläche
des Sporozoiten und induziert eine spezifische Antikörperreaktion,
die einen Schutz gegen Malariainfektionen
liefert.
Kürzlich wurde in der europäischen Patentanmeldung EP
166 410 das Klonen und Sequenzieren des Gens, das für
das CS-Protein von P. falciparum kodiert, geoffenbart,
und die Tatsache wurde betont, daß das immuno-dominante
Epitop, das darin vorhanden ist, aus dem Tetrapeptid
Asn-Ala-Asn-Pro (NANP), 37mal wiederholt, und aus vier
Asn-Val-Asp-Pro (NVDP)-Quartetten besteht.
Es wurde weiterhin berichtet, daß solche wiederholte Sequenzen
enthaltende Peptide, die über rekombinante DNA
erhalten sind, in der Lage waren, die Bildung von Anti-(NANP) n -Antikörpern
in vivo zu induzieren, welche in
vitro die Durchdringung der Hepatozyten durch die Sporozoiten
inhibierten, und durch mono- und polyklonale Antisporozoit-Antikörper
erkannt wurden.
Infolgedessen schienen diese Peptide besonders wertvolle
Immunogene zur Herstellung eines Antisporozoit-Impfstoffs
zu sein.
Jedoch hat die Verwendung von Proteinen, die durch Züchtung
von Wirtsorganismen, transformiert mittels der
Techniken der rekombinanten DNA, erhalten wurden, die
Nachteile, welche sowohl von der Schwierigkeit der Reinigung
des erhaltenen Produkts als auch von der Anwesenheit
von Aminosäuresequenzen darin, die dem nativen CS-Protein
fremd sind, herrühren.
Infolgedessen wurden im Stand der Technik andere Verfahren
zur Herstellung immunologisch aktiver Peptide, welche
diese wiederholten Sequenzen enthalten, vorgeschlagen.
In der schwebenden europäischen Patentanmeldung 209 643
sind Peptidsequenzen (sequentielle Peptide) beschrieben,
welche durch das (NANP)-Tetrapeptid, nmal, vorzugsweise
40mal, wiederholt, aufgebaut sind und mittels eines
Polykondensationsprozesses erhalten werden.
Diese Peptide werden durch Antisporozoit-Antikörper erkannt,
die in dem Serum der Individuen, die Malariainfektionen
ausgesetzt sind, vorhanden sind, und sind in der
Lage, die Bildung von Anti-(NANP) n -Antikörpern in Tieren
zu induzieren, selbst wenn die mit einem proteinischen
Träger nicht verbunden sind.
Jedoch sind Impfstoffe, die diese Peptide enthalten, überhaupt
nicht zufriedenstellend, insbesondere wenn man die
Tatsache in Betracht zieht, daß die Immunantwort auf
diese synthetischen Immunogene bei Mäusen genetische
Restriktionen hervorruft.
Tatsächlich wurde beobachtet, daß nur solche Mäuse, in
deren genetischem Komplement das I-Ab-Gen vorhanden ist,
das T-Epitop, das in der wiederholten Sequenz des CS-Proteins
enthalten ist, erkennen und daher in der Lage
sind, eine Anti-(NANP) n -Antikörperreaktion zu erzeugen.
Es ist tatsächlich bekannt, daß, damit eine Antikörperreaktion
gegen irgendwelche polypeptidischen Immunogene geschaffen
werden kann, eine zellulare Kooperation zwischen den Lymphozyten
vom T-Helfer-Typ und den Antikörper-Erzeuger-B-Lymphozyten
existieren muß, die jeweils durch die Erkennung ihrer
Epitope aktiviert sind.
Diese bei Mäusen erhaltenen Ergebnisse führen die Forscher
dazu, solche synthetischen Vakzine als nicht sehr
geeignet zu betrachten, um dem Menschen einen allgemeinen
Schutz zu verleihen, indem, selbst wenn die Immunantwort
beim Menschen unter genetischer Kontrolle
war, die mögliche Produktion von schützenden Antikörpern unter
der Bedingung des zellulären "boostings" verursacht durch
den Stich der infizierten Moskitos, nur in "Reaktions"-Individuen
auftreten würde.
Die Suche nach wirksamen, synthetischen Antimalaria-Impfstoffen
ist daher in Richtung der Synthese komplexerer Peptide
orientiert, in deren Molekül neben der (NANP) n -Sequenz,
die als Haupt-B-Sitz des CS-Proteins betrachtet wird,
auch peptidische Sequenzen des CS-Proteins vorhanden
sind, welche in der Lage sind, durch die T-Zellen erkannt
zu werden und daher eine hohe sekundäre Antikörperreaktion
als Folge des Eindringens des Sporozoiten und daher
des nativen Proteins durch die Stechmücke zu induzieren.
Solche komplexen Polypeptide, die eine Kombination von
Epitopen enthalten, die spezifisch für die B-Zellen und
die T-Zellen sind, werden als kritisch wichtig auch für
einen Schutz nicht nur in Abhängigkeit von den spezifischen
Anti-(NANP) n -Antikörpern betrachtet, sondern auch
von aspezifischen Faktoren, die durch die T-Zellen erzeugt
werden, wie Interleukine und dergl., und von der
Aktivierung von cytotoxischen T-Zellen, welche eine wichtige
Rolle in der Immunität gegen den Sporozoiten spielen
können.
Kürzlich haben M. F. Good et al. [Science, 236, 1059 (1987)
ein synthetisches Immunogen hergestellt, das aus der
PSDKHIEQYLKKIKNSIS-Sequenz besteht, die mittels einer
kovalenten Bindung an die NP(NANP)₅NA-Sequenz gebunden
ist.
Ein solches Immunogen ist in der Lage, die Bildung von
Anti-(NANP) n -Antikörpern in zwei Stämme von Mäusen hervorzurufen,
die auf reines (NANP) n nicht reagieren.
Diese Ergebnisse zeigen daher an, daß in der Sequenz des
CS-Proteins einige Hauptepitope außer (NANP) n vorhanden
sind, die in der Lage sind, sowohl die T-Zellen zu stimulieren
als auch den B-Zellen zu helfen, Anti-(NANP) n -Antikörper
zu produzieren, und die T-Zellen-Vermehrung
zu verursachen, was für die Antikörper-unabhängige
zellulare Immunität wichtig ist.
Es wurde nun gefunden, daß sequentielle Polypeptide
(Polypeptid-Sequenzen), welche die Aminosäurereste des
dominanten Epitops des CS-Proteins, (NANP) n , ohne die
von Alanin (Ala), enthalten, potentielle bzw. wirksame
Immunogene sind.
Daher besteht ein Ziel der vorliegenden Erfindung darin,
Polypeptide zu schaffen, die mit immunologischer Aktivität
ausgestattet sind und in der Lage sind, in Säugetieren
eine hochtitrige Antikörperreaktion zu induzieren, was
auf dem Sektor der Malaria nützlich ist.
Ein weiteres Ziel der vorliegenden Erfindung ist ein Verfahren
zur Herstellung dieser synthetischen Polypeptide.
Noch ein weiteres Ziel der vorliegenden Erfindung ist
die Verwendung dieser Polypeptidsequenzen zur Herstellung
einer Antimalaria-Vakzine.
Ein weiteres Ziel der vorliegenden Erfindung ist
die Verwendung dieser Polypeptidsequenzen (sequentielle Polypeptide)
zur Herstellung diagnostischer Ausrüstungen (Kits) zur
Bestimmung von Antisporozoit-Antikörpern in klinischen
Humanproben.
Noch weitere Ziele der vorliegenden Erfindung werden aus
der folgenden Beschreibung und den folgenden Beispielen
ersichtlich.
Insbesondere bestehen die Polypeptide gemäß der vorliegenden
Erfindung aus wenigstens zwei aufeinanderfolgenden,
wiederholenden Einheiten der
H-Asn-Asn-Pro-OH
Sequenz, worin
Asn = L-Asparagin und
Pro = L-Prolin;
sie können durch die Formel
Asn = L-Asparagin und
Pro = L-Prolin;
sie können durch die Formel
H-(Asn-Asn-Pro) n -OH (I)
definiert werden.
Gemäß der vorliegenden Erfindung können diese Polypeptide
durch ein Verfahren hergestellt werden, das umfaßt:
- (a) die Synthese eines Tripeptids, das am Aminogruppen-Ende von Asn geschützt ist, mit der folgenden Formel X-Asn-Asn-Pro-OH (II)worin X eine säurestabile Schutzgruppe ist;
- (b) Aktivierung des Tripeptids (II) durch Reaktion
mit halogenierten Derivaten des Phenols, um den
aktiven Ester dieses Tripeptids am Carboxygruppen-Ende
von Pro zu bilden, mit der folgenden Formel
X-Asn-Asn-Pro-OY (III)worin
X die oben angegebene Bedeutung hat; und
Y der Rest des halogenierten Derivats des Phenols ist; - (c) Entfernung der Schutzgruppe aus dem Tripeptid (III) durch saure Spaltung, um das Tripeptid HCl · H-Asn-Asn-Pro-OY (IV)zu erhalten;
- (d) Polykondensation dieses Tripeptids (IV) in Anwesenheit einer Base organischer Natur und schließlich
- (e) Abtrennung der Fraktionen, welche das Polypeptid, bestehend aus wenigstens zwei aufeinanderfolgenden, wiederholten Einheiten der Asn-Asn-ProSequenz, enthalten, durch Chromatographie.
Beim Schritt (a) des Verfahrens der vorliegenden Erfindung
wird das Tripeptid (II) durch Kondensation in homogener
Phase gemäß einer der allgemeinen Techniken,
die auf diesem Gebiet bekannt sind, hergestellt.
In der Praxis erfolgt die Herstellung durch Auflösung in
einem inerten (nicht-reaktionsfähigen), organischen Lösungsmittel
der Aminosäuren, die an ihren reaktiven Funktionen
in geeigneter Weise geschützt sind, in Anwesenheit
von Kondensationsmitteln.
Organische Lösungsmittel, die für den vorgesehenen Zweck
geeignet sind, werden ausgewählt aus chlorierten, aliphatischen
Kohlenwasserstoffen, aliphatischen Aldehyden,
Alkylestern.
Spezielle Beispiele solcher Lösungsmittel sind N,N-Dimethylformamid,
Chloroform, Ethylacetat, Tetrahydrofuran.
Schutzgruppen für die Aminfunktionen werden im allgemeinen
unter solchen ausgewählt, welche mittels saurer
Hydrolyse (säurelabile Gruppen) entfernt werden können.
Unter diesen ist besonders bevorzugt tert.-Butyloxycarbonyl
(Boc), das unter milden Hydrolysebedingungen
entfernt werden kann.
Die Temperaturen, bei denen die Kondensationsreaktion
durchgeführt wird, liegen im allgemeinen im Bereich von
-10 bis 40°C, und die entsprechenden Zeiten sind solche
Zeiten, welche erforderlich sind, um die Reaktion zu beenden
oder im wesentlichen zu beenden.
Bei dem Schritt (b) des erfindungsgemäßen Verfahrens wird
das Tripeptid (II), das an der End-Aminogruppe geschützt
ist, durch Reaktion mit einem Derivat des Phenols aktiviert,
um den aktiven Ester dieses Tripeptids an der End-Carboxygruppe
von Pro:
X-Asn-Asn-Pro-OY (III)
zu bilden, worin
X die oben angegebene Bedeutung hat und
Y der Rest des halogenierten Derivats des Phenols ist.
X die oben angegebene Bedeutung hat und
Y der Rest des halogenierten Derivats des Phenols ist.
Halogenierte Derivate des Phenols, welche bei dem erfindungsgemäßen
Verfahren verwendet werden können, sind
fluorierte oder chlorierte Derivate des Phenols.
Besonders nützlich für den vorgesehenen Zweck sind Pentachlorphenol,
Trichlorphenol und Pentafluorphenol.
Die Reaktion der Aktivierung der Carboxygruppe von Pro
wird durchgeführt, indem das Tripeptid (II) in Kontakt
mit dem halogenierten Derivat des Phenols in einem wechselseitigen
Molverhältnis, das gleich oder etwa gleich 1
ist, in einem flüssigen Medium in einem organischen Lösungsmittel
und bei einer Temperatur im Bereich von -10°
bis 40°C gebracht wird. Die Reaktion wird vorzugsweise
bei Raumtemperatur (20-25°C) oder bei Temperaturen nahe
Raumtemperatur durchgeführt.
Beispiele organischer Lösungsmittel, die für den vorgesehenen
Zweck geeignet sind, werden ausgewählt aus den
aprotischen Lösungsmitteln, wie Ethylacetat, oder aliphatischen
Kohlenwasserstoffen oder DMF.
Die so erhaltene Lösung wird auf eine Temperatur von
etwa 0°C gekühlt, und dann wird dazu ein Kondensationsmittel
gegeben, wobei das Molverhältnis zwischen dem
Kondensationsmittel und den jeweiligen Ausgangsreaktanten
gleich oder etwa gleich 1 ist. Das bevorzugte Kondensationsmittel
ist Dicyclohexylcarbodiimid (DCCI).
Die so erhaltene Lösung wird dann bei einer Temperatur im
Bereich von -10°C bis 40°C während einer Zeit im Bereich
von 4 Stunden bis 15 Minuten gehalten.
Am Ende der Reaktion wird der während dieser Reaktion gebildete
Dicyclohexylharnstoff (DCU) aus dem Reaktionsgemisch
abgetrennt, und das Lösungsmittel wird abgedampft.
Der erhaltene Rückstand wird dann durch Kristallisation
mit Isopropylalkohol und Ethylacetat gereinigt.
Es wird so ein Produkt in einer Ausbeute von etwa 94%
erhalten, das bei H¹-NMR und Massenspektroskopie die
erwartete Struktur zeigt.
Bei dem Schritt (c) des erfindungsgemäßen Verfahrens wird
die Schutzgruppe aus der endständigen, aminischen Gruppe
des Tripeptids (III) mittels saurer Hydrolyse entfernt.
Die Reaktion wird unter Verwendung von Trifluoressigsäure
oder einer Lösung von Salzsäure in Ethylacetat und bei
Raumtemperatur (20-25°C) während einer Reaktionszeit von
etwa 1 Stunde durchgeführt.
Durch die Lösung wird dann Stickstoff während einer Zeit
im Bereich von 30 Minuten bis 60 Minuten durchgeblasen,
und das ausgefällte Produkt wird dann aus dem Reaktionsgemisch
abgetrennt, wiederholt gewaschen und unter Vakuum
zur Trockene eingeengt.
Das Produkt der Di-Formel (IV) wird so in einer Ausbeute von
etwa 91% erhalten; bei der TLC-Analyse zeigt es sich als
homogen.
In diesem Schritt wird das aktivierte und von Schutzgruppen
befreite Tripeptid (IV) in der flüssigen Phase in
einem organischen Lösungsmittel gelöst und in Anwesenheit
einer Base organischer Natur polykondensiert.
Geeignete organische Basen für den vorgesehenen Zweck
sind tertiäre Alkylamine, wobei die Alkylgruppe durch
eine Kohlenstoffatom-Anzahl im Bereich von 1 bis 4 gebildet
ist. Besonders bevorzugt ist Triethylamin.
Die Polykondensationsreaktion wird in einem organischen
Lösungsmittel durchgeführt, ausgewählt unter Dimethylsulfoxid,
Dimethylformamid oder Hexamethylphosphoramid,
bei Temperaturen im Bereich von -10°C bis 40°C während
einer Zeit von 4 Tagen bis 24 Stunden.
In der Praxis wird die Reaktion bei Raumtemperatur oder
nahe Raumtemperatur durchgeführt, und in diesem Fall sind
die erforderlichen Zeiten zur Vervollständigung oder zur im
wesentlichen Vervollständigung der Reaktion in der
Größenordnung von 96 Stunden.
Wenn die Polykondensationsreaktion beendet ist, wird die
Lösung tropfenweise zu absolutem Ethylalkohol, der unter
leichtem Rühren gehalten wird, zugesetzt, und der so erhaltene,
weiße Niederschlag wird abfiltriert, gewaschen
und unter Vakuum getrocknet. Das getrocknete Produkt wird
dann in einer Wasser/Dioxan-Lösung gelöst und gefriergetrocknet.
Das Lyophil, das aus einem Gemisch von Polypeptiden mit
verschiedenen Molekulargewichten besteht, kann als solches
zur Herstellung von Antimalaria-Vakzinen und von
diagnostischen Ausrüstungen verwendet werden, oder es kann
nach allgemein bekannten Techniken fraktioniert werden,
so daß Polypeptide mit einer engeren Molekulargewichtsverteilung
(M. W.) erhalten werden [der Schritt (e)].
Insbesondere wird gemäß der Erfindung die Fraktionierung
des Lyophils durch Chromatographie auf einer Säule von
Sephadex® G-50 bei einer Temperatur von 20 bis 25°C unter
Elution mit 0,1 M Essigsäure mit einer Fließgeschwindigkeit
von 36 ml/h durchgeführt.
Wenn in solcher Weise gearbeitet wird, werden Fraktionen
gesammelt und abgetrennt, welche einem Molekulargewicht
von 1600 - entsprechend Polypeptiden, die aus vier Tripeptiden
bestehen - entsprechen, und Fraktionen mit einem
Molekulargewicht von etwa 4000 - entsprechend Polypeptiden,
die aus 11 ± 2 aufeinanderfolgenden Tripeptiden bestehen
- gesammelt und abgetrennt.
Alle diese Peptide sind besonders nützlich für die Zwecke
der vorliegenden Erfindung.
Insbesondere sind die (NNP)₁₁-Polypeptide geeignet, die
sich in Labortieren als außerordentlich wirksame Immunogene
zeigten.
Die Antikörper, die bei einem hohen Titer produziert werden,
erkennen, neben dem synthetischen Antigen (NNP)₁₁,
auch das (NANP)₄₀-Antigen.
Diese Ergebnisse zeigen, daß die (NNP) n -Sequenz ein Epitop
enthält, das in der Lage ist, die B-Zellen bei der
Produktion von Anti-(NANP)₄₀-Antikörpern sehr wirksam zu
stimulieren und infolgedessen in der Lage ist, auch die
T-Helferzellen zu stimulieren.
Eine solche Eigenschaft macht die sequentiellen Polypeptide
der vorliegenden Erfindung besonders geeignet zur
Entwicklung von synthetischen Antisporozoit-Vakzinen.
Die sequentiellen Polypeptide gemäß der vorliegenden Erfindung
können als solche verwendet werden, oder sie können
in eine komplexere Vakzine, die aus verschiedenen
Epitopen besteht, eingearbeitet werden.
Die folgenden Ausführungsbeispiele sind erläuternd und
nicht beschränkend für die Erfindung.
24,06 g (100 mMol) HCl · Pro-OBzl, 25,5 g (110 mMol) Boc-Asn-OH,
16,2 g (120 mMol) 1-Hydroxybenzotriazol (HOBt)
und 12,12 ml (110 mMol) N-Methylmorpholin (NMM) werden in
350 ml N,N-Dimethylformamid (DMF) gelöst.
Die Lösung wird auf 0°C gekühlt, und dazu werden 22,7 g
(110 mMol) Dicyclohexylcarbodiimid (DCCI), gelöst in
60 ml DMF, gegeben.
Die Lösung wird dann bis auf eine Temperatur von 20°C erwärmt,
und die Reaktion wird 16 h bei dieser Temperatur
unter Rühren fortschreiten gelassen. Am Ende dieses Zeitraums
wird das Reaktionsgemisch filtriert, um den ausgefällten
Dicyclohexylharnstoff (DCU) zu entfernen, und
das Lösungsmittel wird zur Trockene eingedampft.
Der so erhaltene Rückstand wird in 30 ml Ethylacetat
(EtOAc) gesammelt und nacheinander zweimal mit 5 ml einer
wäßrigen Lösung von NaHCO₃ (5% Gew./Vol.), zweimal mit
5 ml einer wäßrigen Lösung von Citronensäure (5% Gew./Vol.)
und mit Wasser gewaschen, bis für die Wasserphase
ein neutrales pH erhalten wird.
Die organische Phase wird dann abgetrennt, gründlich mit
etwa 10 g wasserfreiem MgSO₄ getrocknet und unter Vakuum
eingeengt.
Beim Arbeiten, wie oben beschrieben, wird ein gelartiger
Rückstand erhalten, der anschließend mit EtOAc gewaschen
und mit 20 ml Ethylether (Et₂O) verrieben wird, bis ein
weißer Feststoff erhalten wird, der unter Vakuum getrocknet
wird.
30,6 g (73 mMol) (73%) des gewünschten Produktes mit einem
Schmelzpunkt von 106 bis 108°C werden erhalten. Die analytischen
Daten (TLC, HPLC und H¹-NMR) bestätigen die Identität
und Reinheit des Produkts.
20,32 g (48,4 mMol) Boc-Asn-Pro-OBzl, erhalten wie in der
vorstehenden Stufe (a) beschrieben, werden 1 h mit 200 ml
EtOAc, gesättigt mit HCl, bei 20°C umgesetzt. Am Ende dieser
Zeit wird durch die Lösung, die unter Rühren gehalten
und bei Raumtemperatur (20-25°C) gehalten wird, wasserfreier
Stickstoff während etwa 3 h durchgeblasen.
Es wird so ein weißer Niederschlag erhalten, der von dem
Reaktionsgemisch abfiltriert, wiederholt mit Et₂O gewaschen
und schließlich unter Vakuum 20 h getrocknet wird.
Ausbeute: 16,4 g (45,9 mMol), 95%,
[α] = -50,2° (c = 1, DMF).
Ausbeute: 16,4 g (45,9 mMol), 95%,
[α] = -50,2° (c = 1, DMF).
16,4 g (45,9 mMol) der Verbindung: HCl · Asn-Pro-OBzl, erhalten
in der vorstehenden Stufe (b), werden in 250 ml
DMF zusammen mit 11,75 g (50,6 mMol) Boc-Acn-OH, 7,47 g
(55,2 mMol) HOBt und 5,57 ml (50,6 mMol) NMM gelöst.
Zu der auf 0°C gekühlten Lösung werden 50 ml DMF, enthaltend
10,44 g (50,6 mMol) DCCI, zugesetzt. Die Lösung wird
16 h bei 20°C unter Rühren gehalten. Das gebildete DCU
wird dann aus dem Reaktionsgemisch abgetrennt, das Lösungsmittel
wird unter Vakuum abgedampft, der Rückstand
wird mit 30 ml EtOAc suspendiert, und die so erhaltene,
feinverteilte Suspension wird von dem Lösungsmittel abfiltriert.
Der entstandene Feststoff, der durch H¹-NMR charakterisiert
wird, ist in Übereinstimmung mit der vorgeschlagenen
Struktur und erweist sich weiter bei TLC als homogen
(Butanol/Wasser/Essigsäure = 4/1/1); Rf = 0,27. Das so
erhaltene Produkt hat einen Schmelzpunkt von 175 bis
177°C und [α] = -48,8° (c = 1, DMF).
In ein Reaktionsgefäß mit einer Kapazität von 200 ml und
ausgestattet mit Rührmitteln werden 100 ml DMF, 5,0 g
(9,35 mMol) Boc-Asn-Asn-Pro-OBzl und 2 g Pd-Katalysator
(10% Pd auf Kohle) gegeben. Die Masse in dem Gefäß wird
gerührt und eine Suspension erhalten.
Durch diese Suspension, die bei 25°C unter Rühren gehalten
wird, wird dann 7 h Wasserstoffgas durchgeblasen.
Wenn die Reaktion beendet ist, wird der Katalysator abfiltriert
und das Lösungsmittel zur Trockene eingedampft.
Man erhält 4,07 g (9,16 mMol) (98%) eines öligen, farblosen
und TLC-homogenen Produkts.
4,07 g (9,16 mMol) Boc-Asn-Asn-Pro-OH, erhalten wie in
Beispiel 1 berichtet, werden in 150 ml DMF, enthaltend
2,71 g (10,2 mMol) Pentachlorphenol, gelöst. Die Lösung
wird auf 0°C abgekühlt und dazu 25 ml DMF, enthaltend
1,92 g (9,3 mMol) DCCI, gegeben, und das ganze Gemisch
wird 16 h bei dieser Temperatur gehalten. Aus dem Reaktionsgemisch
wird dann das ausgefallene DCU abgetrennt
und das Lösungsmittel unter Vakuum eingedampft.
Der so erhaltene Rückstand wird bei etwa 70°C mit 100 ml
Isopropylalkohol und dann mit EtOAc bis zur baldigen
Kristallisation behandelt. Man erhält 5,96 g (8,6 mMol)
(93,8%) eines weißen Feststoffs mit einem Schmelzpunkt
von 180 bis 181°C und [α] = -49,9° (c = 1, DMF).
Das Produkt, charakterisiert durch H¹-NMR und Massenspektroskopie,
hat die erwartete Struktur und ist weiterhin
bei TLC (Butanol/Wasser/Essigsäure = 4/1/1) homogen;
Rf = 0,56.
5,75 g (8,3 mMol) Boc-Asn-Asn-Pro-OPCP werden in 100 ml
EtOAc, gesättigt mit HCl, gelöst, und die entstandene Lösung
wird 1 h bei Raumtemperatur reagieren gelassen.
Nach 3stündigem Durchblasen von Stickstoff durch die Lösung
wird das ausgefallene Produkt abfiltriert, wiedergeholt
mit Et₂O gewaschen und schließlich zur Trockene unter
Vakuum 16 h eingedampft.
Man erhält 4,76 g (7,57 mMol) (91%) des erwarteten Produkts,
das sich in einem Temperaturbereich von 213 bis
217°C zersetzt und eine [α] = -54,9° (c = 1, DMF) hat.
Bei der Analyse durch TLC zeigt sich das Produkt als
homogen.
2,5 g (3,97 mMol) HCl · H-Asn-Asn-Pro-OPCP, erhalten wie in
Stufe (b) beschrieben, werden in 5 ml Dimethylsulfoxid (DMSO) gelöst,
0,55 ml Triethylamin (TEA) werden zugesetzt, und das entstandene
Gemisch wird unter leichtem Rühren 96 h bei
20°C gehalten.
Am Ende der Reaktion wird die Lösung, welche viskos und
opaleszierend ist, tropfenweise während eines Zeitraums
von 5 min oder etwa 5 min zu 200 ml absolutem EtOH, der
unter leichtem Rühren gehalten wird, zugesetzt.
Es wird ein weißer Niederschlag erhalten, der abfiltriert,
mit EtOH gewaschen und unter Vakuum getrocknet wird.
Der Feststoff wird dann in 30 ml Wasser/Dioxan (5/2,V/V)
gelöst und gefriergetrocknet.
Fraktionen von etwa 50 g des so erhaltenen Lyophils werden
dann in 2 ml 0,1 M Essigsäure gelöst und an einer Säule
(85 cm × 2,6 cm) von Sephadex® G-50 (Pharmacia) bei
Raumtemperatur (20-25°C) chromatographiert, mit 0,1 M
Essigsäure bei einer Fließgeschwindigkeit von 36 ml/h
eluiert und die Fraktionen in Zeitintervallen von 5 min
gesammelt.
Die ersten Fraktionen, die aus Säule eluiert werden, werden
miteinander vereinigt und gefriergetrocknet, wobei
eine Gesamtmenge von 100 mg des Polypeptids erhalten wird,
das ein mittleres Molekulargewicht von etwa 4000 KD, entsprechend
einer Zahl wiederholender (Asn-Asn-Pro)-Einheiten
von 11 ± 2, hat.
Das Molekulargewicht dieser Fraktion wird durch Chromatographie
auf einer Agarosesäule BIOGEL A5M (BIORAD) (86 × 0,8 cm),
mit 6M Guanidiniumchlorid äquilibriert, unter
Elution bei einer Fließgeschwindigkeit von 2,5 ml/h und
unter Verwendung von Standards mit bekanntem Molekulargewicht
im Bereich von 70 000 bis 3000 KD festgestellt.
Die Fähigkeit von (Asn-Asn-Pro)₁₁ [(NNP)₁₁], eine Antikörperreaktion
bei Testtieren zu induzieren, wird getestet,
indem 5 Wochen alte männliche Kaninchen mit dem synthetischen
Polypeptid immunisiert werden, während die Spezifität
der gebildeten Antikörper durch den immuno-enzymatischen
ELISA-Test sowohl mit (Asn-Asn-Pro)₁₁ als auch mit
(Asn-Ala-Asn-Pro)₄₀ bestimmt wird, was das immuno-dominante
Epitop des CS-Proteins von Plasmodium falciparum, synthetisiert
wie in der europäischen Patentanmeldung Nr. 209 643
vom 28. Januar 1987 beschrieben, erzeugt (reproduziert).
6 Kaninchen werden intramuskulär (1 Impfung) und subkutan
(4 Impfungen) beimpft, wobei 3 Kaninchen mit 1 ml Phosphatpuffer-Salzlösung
bei pH 7,8 (PBS), enthaltend 1 mg
(NNP)₁₁ + 1 ml komplettes Freund-Adjuvans (CFA), und 3
Kaninchen (Kontrolltiere) mit 1 ml PBS + 1 ml CFA beimpft
werden.
21 Tage nach der ersten Impfung werden die Tiere erneut
mit den gleichen Dosen und nach den gleichen Modalitäten,
wie oben beschrieben, geimpft.
Am 35. Tag nach der ersten Impfung wird in die Tiere intramuskulär
und subkutan 1 ml PBS, enthaltend 1 mg (NNP)₁₁, dem
1 ml unvollständiges Freund-Adjuvans zugesetzt war, injiziert.
Die Seren der so behandelten Tiere werden an den Tagen 0,
20, 34 und 48 abgezogen und durch den ELISA-Test analysiert,
um die gebildeten Antikörper zu quantifizieren und
sie auf ihre Spezifität zu testen.
In der Praxis werden die synthetischen Antigene (NANP)₄₀
und (NNP)₁₁ in Vertiefungen von Polystyrolplatten zur
Mikrotitration (Nunc-Immunoplate I, Nunc, Roskilde, Dänemark)
an 50 µl PBS-Lösung absorbiert, die 4 µg/ml dieser
Antigene enthält, die in jeder Vertiefung verteilt sind,
wobei die Platten 16 h bei Raumtemperatur gehalten werden.
Die Platten werden dann dreimal mit PBS-Tween (0,05%
Tween bei 20 Vol/Vol, pH 7,4) gewaschen und die aspezifischen
Bindungssitze werden durch Inkubieren bei Raumtemperatur
während 1 h mit PBS-Tween-1% (Gew./Vol.) Milchpulver
blockiert.
Scalare Verdünnungen von Kaninchenserum werden in 100 µl
PBS-1% Milchpulver hergestellt, und 50 µl jeder Verdünnung
werden zu den Vertiefungen der Mikroplatten zugegeben und
1 h bei Raumtemperatur bebrütet. Nach der Bebrütung werden
die Platten dreimal mit PBS-Tween gewaschen und mit
50 µl Kaninchen-Anti-Ig-Antikörper, verdünnt mit PBS-Tween-Milchpulver,
1 h bei Raumtemperatur bebrütet. Die
Platten werden erneut, wie oben beschrieben, gewaschen,
und zu jeder Vertiefung werden dann 50 µl Peroxidase-Antiperoxidase-Komplexe,
entstanden in Kaninchen,
verdünnt in PBS-Tween-Milch, zugesetzt.
Die Platten werden 1 h bei Raumtemperatur bebrütet und
dann dreimal mit PBS-Tween gewaschen.
Schließlich werden den Platten 50 µl Orthophenylendiamin
in Methanol + Wasserstoffperoxid zugesetzt, und nach etwa
30 min wird die Absorptionsfähigkeit der Lösungen bei
492 nm auf einem ELISA-Ableseinstrument bestimmt. Die erhaltenen
Ergebnisse sind in der folgenden Tabelle I aufgeführt.
Aus dem Obigen wird ersichtlich, daß das synthetische
Polypeptid (NNP)₁₁ ein wirksames Immunogen bei Testtieren
ist, das in der Lage ist, eine hochtitrige Antikörperreaktion
nicht nur gegen sich selbst, sondern auch gegen das
synthetische Antigen (NANP)₄₀ zu induzieren.
Claims (17)
1. Synthetische Polypeptid-Sequenzen (sequentielle
Polypeptide), die mit immunologischer Aktivität ausgestattet
sind und in der Lage sind, bei Säugetieren eine
hochtitrige Antikörper-Reaktion gegen das circumsporozoitische
Protein von Plasmodium zu induzieren, die
durch die Formel
H-(Asn-Asn-Pro) n -OH (I)definiert werden können, worin
Asn L-Asparagin ist und
Pro L-Prolin ist und
n einen Wert nicht kleiner als 2 hat.
Asn L-Asparagin ist und
Pro L-Prolin ist und
n einen Wert nicht kleiner als 2 hat.
2. Synthetische Polypeptid-Sequenzen gemäß Anspruch 1,
worin n nicht größer als 100 ist.
3. Synthetische Polypeptid-Sequenzen gemäß Anspruch 1
und 2, worin n 11 ist.
4. Verfahren zur Herstellung synthetischer Polypeptide,
die mit immunologischer Aktivität ausgestattet
sind, gemäß den Ansprüchen 1, 2 oder 3, dadurch gekennzeichnet,
daß folgende Schritte ausgeführt werden:
- (a) durch Kondensation wird das Tripeptid, das an der endständigen Aminogruppe geschützt ist, mit der folgenden Formel X-Asn-Asn-Pro-OH (II)synthetisiert in einer homogenen Phase, worin X eine säurelabile Schutzgruppe ist;
- (b) das Tripeptid (II) wird durch Reaktion mit
halogenierten Derivaten des Phenols aktiviert, um den
aktiven Ester dieses Tripeptids an der endständigen Carboxygruppe
von Pro zu bilden, mit der folgenden Formel
X-Asn-Asn-Pro-OY (III)worin
X die oben angegebene Bedeutung hat und
Y der Rest des halogenierten Derivats des Phenols ist; - (c) die Amino-Schutzgruppe aus dem Tripeptid (III) durch Säurespaltung entfernt und das Tripeptid HCl · H-Asn-Asn-Pro-OH (IV)abgetrennt wird;
- (d) das Tripeptid (IV) wird in flüssiger Phase in einem organischen Lösungsmittel in Anwesenheit einer Base organischer Struktur polykondensiert und das Polykondensationsprodukt der Formel (I) wird ausgefällt; und gegebenenfalls
- (e) das Lyophil wird fraktioniert in der Weise, daß Polypeptide mit engerer Molekulargewichtsverteilung erhalten werden.
5. Verfahren gemäß Anspruch 4, dadurch gekennzeichnet,
daß im Schritt (a) die Amino-Schutzgruppe tert.-Butyloxycarbonyl
ist.
6. Verfahren gemäß Anspruch 4, dadurch gekennzeichnet,
daß im Schritt (b) die halogenierten Derivate des
Phenols ausgewählt sind aus fluorierten und chlorierten
Derivaten.
7. Verfahren gemäß Anspruch 6, dadurch gekennzeichnet,
daß im Schritt (b) die halogenierten Derivate des
Phenols Pentachlorphenol, Trichlorphenol und Pentafluorphenol
sind.
8. Verfahren gemäß Anspruch 4, dadurch gekennzeichnet,
daß im Schritt (b) das Molverhältnis des Tripeptids
(II) zum Derivat des Phenols gleich oder etwa gleich 1
ist und die Reaktion in flüssiger Phase in einem inerten,
organischen Lösungsmittel bei einer Temperatur im Bereich
von -10 bis 40°C durchgeführt wird.
9. Verfahren gemäß Anspruch 4, dadurch gekennzeichnet,
daß im Schritt (d) das organische Lösungsmittel
Dimethylsulfoxid ist.
10. Verfahren gemäß Anspruch 4, dadurch gekennzeichnet,
daß im Schritt (c) die Amino-Schutzgruppe durch
Acidolyse mit entweder Trifluoressigsäure oder Salzsäure
in EtAc entfernt wird.
11. Verfahren gemäß Anspruch 10, dadurch gekennzeichnet,
daß die acidolytische Reaktion bei Raumtemperatur
(20-25°C) durchgeführt wird.
12. Verfahren gemäß Anspruch 4, dadurch gekennzeichnet,
daß im Schritt (d) die organische Base ausgewählt
aus tertiären Alkylaminen, wobei die Alkylgruppe durch
eine Kohlenstoffatom-Anzahl im Bereich von 1 bis 4 gebildet
ist.
13. Verfahren gemäß Anspruch 12, dadurch gekennzeichnet,
daß das tertiäre Amin Triethylamin ist.
14. Verfahren gemäß Anspruch 4, dadurch gekennzeichnet,
daß im Schritt (d) die Reaktion bei Raumtemperatur
(20-25°C) oder bei Temperaturen nahe Raumtemperatur
durchgeführt wird.
15. Verfahren gemäß Anspruch 4, dadurch gekennzeichnet,
daß im Schritt (e) die die Polypeptide enthaltenden
Fraktionen mit einer engeren Molekulargewichtsverteilung
durch Gelchromatographie erhalten werden.
16. Verwendung der Polypeptide gemäß den Ansprüchen 1
bis 3 zur Herstellung von Antimalaria-Vakzinen.
17. Verwendung der Polypeptide gemäß den Ansprüchen 1
bis 3 zur Herstellung von diagnostischen Ausrüstungen (Kits)
zur Bestimmung von Antisporozoit-Antikörpern in klinischen
Humanproben.
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