DE2929018C2 - Einrichtung zur Messung der Adhäsion von dispergierten Partikeln an der Oberfläche einer Wand - Google Patents
Einrichtung zur Messung der Adhäsion von dispergierten Partikeln an der Oberfläche einer WandInfo
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Abstract
Die Erfindung betrifft eine Einrichtung zur Messung der Aggregation von dispergierten Partikeln mit der Oberflaeche einer Wand (Adhaesion) oder von dispers verteilten Partikeln untereinander in einer Fluessigkeits- oder Gasstroemung, wobei dieses fluessige oder gasfoermige Mehrphasensystem auf die Wand gerichtet ist. Die Einrichtung ist dadurch gekennzeichnet, dass die an der Wand und/oder aneinander haftenden Partikel mittels einer optischen Beleuchtungsvorrichtung in Auf- oder Durchlichttechnik beleuchtbar sind, und dass das gestreute, reflektierte oder durch Absorption geschwaechte Licht mit einem Objektiv auf einen Detektor richtbar und auswertbar ist. Mit der Einrichtung sind die Partikel/Wand - und Partikel/Partikel - Aggregabilitaet und auf diese Weise die Adhaesivitaeten messbar, wobei mit kleinen Probemengen gearbeitet werden kann und die Kollisionsrate Partikel/Partikel bzw. Partikel/Wand genau festgelegt ist. Anwendung der Einrichtung: Messung der Aggregationsneigung von Bestandteilen des zellulaeren und plasmatischen Gerinnungssystems wie Blutzellen (Thrombozyten) und kolloidal disperse Blutbestandteile (Fibrinogen). ...U.S.W
Description
Die Erfindung betrifft eine Einrichtung zur Messung der Adhäsion von dispergierten Partikeln an der Oberfläche
einer Wand in einer Flüssigkeits- oder Gasströmung gemäß dem Oberbegriff des Anspruchs 1.
Eine derartige Einrichtung ist aus Path. Res. Pract, 163, 9—33 1978 bekannt. Bei dem dort angewandten
Verfahren werden die Blutparlikel durch eine Staupunktströmung an einer Glaswand abgelagert Die an
der Wand haftenden Partikel werden fotographiert und ausgezählt. Dieses Verfahren mißt die Plättchen/Wand-Aggregation
oder Adhäsion unter definierten Strömungsbedingungen.
Die Aggregationsneigung der Partikel ist ein in der Klinik benötigter diagnostischer Parameter, da Thrombosen
in Blutgefäßen und Blutgefäßprothesen durch die Aggregation von Blutzellen und Bestandteilen des plasmatischen
Gerinnungssystems aus· dem strömenden Blut entstehen. Als Maß der Gerinnungsneigung gilt
unter anderem die Aggregationsneigung von Einzelbestandteilen des Gerinnungssystems wie z. B. Thrombozyten.
Zu ihrer Messung werden in der Klinik die sogenannten Aggregometer verwendet. Das Staupunktaggometer
dient zur Bestimmung der Adhäsivität u. a. von zellulären Bauelementen unter dem Einfluß vorgegebener
hydrodynamischer Kräfte. Rotationssymmetrische Staupunktströmungen von Blutzellensuspensionen erzeugen
mechanische Wechselwirkungen der zellulären Elemente untereinander und mit der Oberfläche der angeströmten
Wände. Die Wechselwirkungen lassen sich aufgrund von hydrodynamischen Meßwerten als Berührungshäufigkeit
(Kollosionsrate) und Berührungsdrucke quantitativ beschreiben.
Der Nachteil dieses Verfahrens liegt in dem Bedarf an großen Pröbemengen (ca. 500 ml Blut) sowie dem umständlichen
und zeitraubenden Auswerteverfahren. Es wird daher nur in der experimentellen Forschung angewandt.
Die der Erfindung zugrunde liegende Aufgabe besteht darin, eine Möglichkeit für den Routinebetrieb des
klinischen Labors zu bieten, mit der die Gefahr der Bildung von Thrombosen in Blutgefäßen und B'.utgefäßprothesen
verringert werden kann.
Die Lösung dieser Aufgabe ist im Merkmal des Anspruchs 1 beschrieben. Die Merkmale der Ansprüche 2
bis 4 geben vorteilhafte Weiterbildungen der erfindungsgemäß verwendeten Einrichtung an.
Die Erfindung wird im folgenden anhand eines Ausführungsbeispiels mittels der F i g. 1 bis 3 näher erläutert,
wobei die F i g. 1 die Anordnung schematisch wiedergibt Die F i g. 2 und 3 zeigen eine zeitliche Aggregationskurve
an Wolframsäureteilchen und die F i g. 3 dieselbe von Thrombozyten.
Ein Beispiel für ein erfindungsgemäß verwendetes Gerät ist in F i g. 1 dargestellt In der Kammer zwischen
den Wänden 4 und 4' herrscht eine rotationssymmetrische Staupunktströmung 11, 12. Für die Antransporte
der Partikel 5 gegen die Wand 4 gilt näherungsweise die Gleichung 1:
1-
ARJ
C-t,
wobei rp — Partikelradius, y = Scherrate am Ort R
(R = Abstand vom Staupunktzentrum), C = Konzentration der Partikel, ί = Zeit ist. Die Gültigkeit der Gleichung
1 v-urde experimentell nachgeprüft
Die Scherrate y wird als Funktion von R für die Geometrie der betreffenden Staupunktströmung ausgemessen, die von der Form der Kammer sowie dem Volumenstrom abhängig ist.
Die Scherrate y wird als Funktion von R für die Geometrie der betreffenden Staupunktströmung ausgemessen, die von der Form der Kammer sowie dem Volumenstrom abhängig ist.
Die Menge der an der Wand 4 abgelagerten Partikel 5 (z. B. Thrombozyten) wird mit der Streulichttechnik gemessen.
Das von der Suspension angeströmte Deckgläschen 4 wird hierbei im Auflicht- oder Durchlicht (gestrichelt
gezeichneter Kondensator 13 und Strahlung 2) -Dunkelfeld beleuchtet und die Intensität des Streulichts
6 mit einem Photodetektor 10 gemessen.
Zur Abschätzung der Thrombozytenzahl wird angenommen,
Zur Abschätzung der Thrombozytenzahl wird angenommen,
1) daß die Thrombozytenkonzentration Cund die Volumina
Vder Einzelthrombozyten für alle Plättchen 4 einer Probe annähernd gleich sind,
2) daß der Brechungsindex nr und die Konzentration
der kolloiddispersion intrazellulären Proteine, die als Streuzentren wirken, bei al'en Thrombozyten
einer Probe gleich sind und
so 3) daß der Durchmesser der streuenden Proteine kleiner als die Wellenlänge λ des Beleuchtungslichtes 2
bzw. 3 ist.
Unter diesen Umständen kann in erster Näherung die Beugungstheorie von Rayleigh nach Gleichung 2 angewendet
werden:
'2-(4trV)2-sin2tf (2)
\n2 T+2nlJ
'Ka
A4Zf2
dabei ist: Ir11 = Intensität der Streustrahlung 6 von einem
Plättchen, /o = Intensität des einfallenden Lichtes 2 bzw. 3, λ = Wellenlänge des einfallenden Lichtes 2
bzw. 3, R = Abstand des Objektivs vom Streuzentrum 18, V = Thrombozytenvolumen, ητ = Brechungsindex
der intrazellulären Proteine, n„ = Brechungsindex der
Elektrolytlösung, <x Winkel zwischen Dipol-Schwingung und Beobachtungsrichtung. Ist die Verdünnung der Teil-
3 4
chen 5 hinreichend groß, so daß sie sich weder für das Ultropak U-O 22 mit Auflichtkondensor 22—100 und
Primärlicht 2 bzw. 3 noch für das Streulicht 6 gegensei- als Lichtquelle eine Xenon-Lampe verwendet (25 A
tig abschatten, so errechnet sich die Anzahl N der abge- Gleichstrombetrieb). Im vorliegenden Experiment bc-
lagerlciiThroiiibo/yliMi wii'folgl iuu-li(ilcicliiiiin i:
Iriij·, der Aiislrillsiluivliniossoi ιΐιτ Hisse 19 0.1» mm und
- - 5 der Wandabstund der Düse 19 0/>
mm und dir VoIu
ir _Ig~1um n\ menstrom im Staupunktaggregomeier 0,06 mm/s.
ha
Meßbeispiel 2 wobei Ic = gesamte gemessene Streulichtintensität
und Ium = Streulicht des Untergrundes, bedingt durch 10 Im folgenden Fall (Fig.3) strömt plättchenreiches
Plasmaproteine und Reflexe am Glas 4, ist Rinder-Plasma durch das Staupunktaggregometer. Die
Das aus dem Staurohr 1 mit der Düse 19 ausströmen- Thrombozytenaktivätät ist durch Zugabe von
de flüssige oder gasförmige Mehrphasensystem 11, 12 3,5 χ 10~6 M ADP zum Plasma angeregt Im ersten
(z. B. Plättchenreiches Plasma) wird senkrecht gegen die Teil der Kurve (0—32 min) findet sich ein langsamer
Glaswand 4 der Küvette 4,4' gerichtet (Staupunktströ- 15 Anstieg der Lichtstreuung 6 mit der Zeit, der durch
mung). Sofern die Adhäsivität zwischen Partikel 5 und Adhäsion von einzelnen Thrombozyten an der Wand 4
Glaswand 4 einen Minimalwert überschreitet und ge- bedingt ist (Befund der Einzelzellablagerungen durch
eignete Strömungsgeschwindigkeiten herrschen, führt konventionelle Nachuntersuchung mikroskopisch über-
dk- Staupunktströmung zu einer Anlagerung der Teil- prüft). Die Wandschubspannung beträgt am Meßorl
chen an die Glaswand 4 und zwar in einer., Flächenbe- 20 0,7 dyn/cm2. Aus diesem Kurvenabschnitt iäßt sich die
reich 15!der der ebenen Projektion der Öffnung der Thrombozyten-Wand Adhäsivität ermitteln. Erhöht
Düse 19 auf die Glaswand 4 entspricht (Staufläche). Der man die Wandschubspannung auf 3 dyn/cm2, so lagern
Durchlichtkondensator 13 (gestrichelt gezeichnet) bzw. sich Blutplättchen 5, die mit der Strömung in Wandnähe
der Auflichtkondensor 14 fokussiert das Licht 2 bzw. 3 gleiten, an die bereits abgelagerten Blutplättchen an.
einer starken Lichtquelle (Xenon-Lampe, nicht näher 25 Es kommt zu einem steilen Anstieg der Streulichtin-
dargestellt) auf die Höhe der Grenzfläche Wand/Fluid tensität 6. Dieser zweite Kurvenabschnitt (32—40 min)
Das Objektiv 7 fängt das von den abgelagerten Parti- repräsentiert vorzugsweise die Plättchen-Plättchen-Ad-
keln 5 gestreute Licht 6 auf und erzeugt ein Bild der häsivität (Befund der polyzellulären Ablagerungen mi-
Partikel 5 in der Ebene der Zentralblende 8. Das durch kroskopisch bestätigt).
die Zentralblende 8 durchtretende Licht 20 wird durch 30 Benutzt wurde ein Objektiv UO 52 W Leitz; die Teil-
die Feldlinse 9 gebündetl 21 und fällt auf die Photoka- chenkonzentration betrug 50 000 Plättchen/mm3.
thode eines Photoelektronen-Vervielfachers 10. Dessen
Ausgangssignal wird verstärkt und mit Hilfe eines Di- Hierzu 3 Blatt Zeichnungen
rektschreibers als Funktion der Zeit registriert (nicht
dargestellt). 35
Beleuchtungsapparat 2,3,13,14, Abbildungssystem 6,
7, 8, 9 und Photokathode 10 sind derart miteinander
konjungiert, daß nur das in der Ebene 8 entstehende
Streulicht 6 ein photoelektrisches Signal erzeugt (Verminderung der Schärfentiefe auf 1 μΐη bis 50 μπι). Da die 40
Zentralblende 8 auf den Staupunkt 15 zentriert wird,
herrschen wegen der rotationssymmetrischen Strömung 11,12 in der ringförmigen Meßebene 16 überall
gleiche Beträge der Geschwindigkeitskomponenten
(gleiche Antransportrate und gleiche Scherraten). 45
7, 8, 9 und Photokathode 10 sind derart miteinander
konjungiert, daß nur das in der Ebene 8 entstehende
Streulicht 6 ein photoelektrisches Signal erzeugt (Verminderung der Schärfentiefe auf 1 μΐη bis 50 μπι). Da die 40
Zentralblende 8 auf den Staupunkt 15 zentriert wird,
herrschen wegen der rotationssymmetrischen Strömung 11,12 in der ringförmigen Meßebene 16 überall
gleiche Beträge der Geschwindigkeitskomponenten
(gleiche Antransportrate und gleiche Scherraten). 45
, Meßbeispiel 1
ι Fig.2 zeigt üie zeitliche Aggregationskurve einer
wäßrigen Suspension von ca. 3 μπι großen Wolframsäu- 50
re-Plättchen (Teilchenkonzentration = 50 000 Teilj
chen/mm3). Der erste Abschnitt der Kurve (0—3,2 min)
j zeigt die photoelektrischen Signalschwingungen der
ι vorbeiströmenden stabilen Ausgangssuspewsion. Die
" Photospannung (Photodiode 10) beträgt im Mittel etwa 55
j zeigt die photoelektrischen Signalschwingungen der
ι vorbeiströmenden stabilen Ausgangssuspewsion. Die
" Photospannung (Photodiode 10) beträgt im Mittel etwa 55
21 V. Die Schwankungen gehen auf statistische Konzen-
trationsschwankungen der Partikel 5 im Meßfeld 16 zu-
rück.
Wird die NaCl-Konzentration der Suspension 5 durch
Wird die NaCl-Konzentration der Suspension 5 durch
Zugabe (s. Pfeil) einer konzentrierten NaCI-Lösung von eo
ca. Null auf 0,9 M Mol erhöht, so wird die Dispersion
instabil: Einige Partikel 5 haften an der Wand und aneinander: Die Partikel/Wand- und die Partikel/Partikel-
Adhäsivität ist erhöht. Der Aggregationsvorgang führt
während der dargestellten Zeit zu einem annähernd Ii- 65
nearen zeitlichen Anstieg der Photospannung V.
Als Mikroskop-Photometer wird das Gerät MPV
Als Mikroskop-Photometer wird das Gerät MPV
Leitz (300 V Betriebsspannung), als Objektiv ein Leitz
Claims (4)
1. Einrichtung zur Messung der Adhäsion von dispergierten
Partikein an der Oberfläche einer Wand in einer Flüssigkeits- oder Gasströmung, wobei dieses
flüssige oder gasförmige Mehrphasensystem auf die Wand gerichtet ist, mit einer die an der Wand
haftenden Partikel in Auf- oder Durchlichttechnik beleuchtenden Beleuchtungsvorrichtung, einem das
gestreute, reflektierte oder durch Absorption geschwächte Licht auf einen Detektor richtenden Objektiv
und einer Auswertevorrichtung, gekennzeichnet durch ihre Verwendung zum Prüfen von Kunststoff oder einem lebenden oder präparierten
organischen Gewebe, aus dem jeweils die Wand gebildet ist, mit standardisierten Teilchen.
2. Einrichtung nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet,
daß die Beleuchtung mit Infrarotlicht (2 bzw. 3) erfolgt
3. Einrichtung nach Anspruch 1 und 2, dadurch gekennzeichnet, daß die Beleuchtungsvorrichtung
(13 bzw. 14) ein ringförmiger Kondensor ist
4. Einrichtung nach Anspruch 1 und 2, dadurch gekennzeichnet, daß in der Bildebene des Objektivs
(7) eine Zentralblende (8) angeordnet ist
Priority Applications (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE19792929018 DE2929018C2 (de) | 1979-07-18 | 1979-07-18 | Einrichtung zur Messung der Adhäsion von dispergierten Partikeln an der Oberfläche einer Wand |
GB8014212A GB2059051B (en) | 1979-07-18 | 1980-04-30 | Apparatus for measuring the aggregation of dispersed particles |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE19792929018 DE2929018C2 (de) | 1979-07-18 | 1979-07-18 | Einrichtung zur Messung der Adhäsion von dispergierten Partikeln an der Oberfläche einer Wand |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE2929018A1 DE2929018A1 (de) | 1981-02-05 |
DE2929018C2 true DE2929018C2 (de) | 1985-11-21 |
Family
ID=6076041
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
DE19792929018 Expired DE2929018C2 (de) | 1979-07-18 | 1979-07-18 | Einrichtung zur Messung der Adhäsion von dispergierten Partikeln an der Oberfläche einer Wand |
Country Status (2)
Country | Link |
---|---|
DE (1) | DE2929018C2 (de) |
GB (1) | GB2059051B (de) |
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-
1979
- 1979-07-18 DE DE19792929018 patent/DE2929018C2/de not_active Expired
-
1980
- 1980-04-30 GB GB8014212A patent/GB2059051B/en not_active Expired
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DE3739247A1 (de) * | 1987-11-19 | 1989-06-01 | Goltz Volker Freiherr Von | Durchflussvorrichtung fuer die verwendung in einer blutungszeitmesseinrichtung und verfahren zur messung der blutungszeit |
DE10019833A1 (de) * | 2000-04-20 | 2001-10-31 | Acm Biotech Gmbh | Simulationsvorrichtung und -verfahren |
DE10019833C2 (de) * | 2000-04-20 | 2003-07-03 | Acm Biotech Gmbh | Vorrichtung und Verfahren zur Simulation von Fluidströmungsverhältnissen |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
GB2059051B (en) | 1983-10-19 |
DE2929018A1 (de) | 1981-02-05 |
GB2059051A (en) | 1981-04-15 |
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