DE2600589A1 - Verfahren zur herstellung von weinsaeure - Google Patents

Verfahren zur herstellung von weinsaeure

Info

Publication number
DE2600589A1
DE2600589A1 DE19762600589 DE2600589A DE2600589A1 DE 2600589 A1 DE2600589 A1 DE 2600589A1 DE 19762600589 DE19762600589 DE 19762600589 DE 2600589 A DE2600589 A DE 2600589A DE 2600589 A1 DE2600589 A1 DE 2600589A1
Authority
DE
Germany
Prior art keywords
calcium
polyoxyethylene
cis
acid
epoxysuccinate
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
DE19762600589
Other languages
English (en)
Other versions
DE2600589C2 (de
Inventor
Noriaki Fujita
Ko Imai
Yoshio Kamatani
Katsuhiko Ogino
Hisayoshi Okazaki
Yoshio Yamazaki
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Takeda Pharmaceutical Co Ltd
Original Assignee
Takeda Chemical Industries Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Priority claimed from JP1373775A external-priority patent/JPS58878B2/ja
Priority claimed from JP5495775A external-priority patent/JPS51130590A/ja
Application filed by Takeda Chemical Industries Ltd filed Critical Takeda Chemical Industries Ltd
Publication of DE2600589A1 publication Critical patent/DE2600589A1/de
Application granted granted Critical
Publication of DE2600589C2 publication Critical patent/DE2600589C2/de
Expired legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07FACYCLIC, CARBOCYCLIC OR HETEROCYCLIC COMPOUNDS CONTAINING ELEMENTS OTHER THAN CARBON, HYDROGEN, HALOGEN, OXYGEN, NITROGEN, SULFUR, SELENIUM OR TELLURIUM
    • C07F3/00Compounds containing elements of Groups 2 or 12 of the Periodic Table
    • C07F3/003Compounds containing elements of Groups 2 or 12 of the Periodic Table without C-Metal linkages
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P7/00Preparation of oxygen-containing organic compounds
    • C12P7/40Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a carboxyl group including Peroxycarboxylic acids
    • C12P7/44Polycarboxylic acids
    • C12P7/46Dicarboxylic acids having four or less carbon atoms, e.g. fumaric acid, maleic acid
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215Microorganisms
    • Y10S435/822Microorganisms using bacteria or actinomycetales
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215Microorganisms
    • Y10S435/822Microorganisms using bacteria or actinomycetales
    • Y10S435/874Pseudomonas
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215Microorganisms
    • Y10S435/822Microorganisms using bacteria or actinomycetales
    • Y10S435/878Rhizobium

Landscapes

  • Organic Chemistry (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

VON KREISLER SCHÖNWALD MEYER EISHOLD FUES VONKREISLER KELLER SELTING
PATENTANWÄLTE Dr.-Ing. von Kreisler f 1973
D.-.-lng. K. Schönwald, Köln Dr.-Ing. Th. Meyer, Köln Dr.-Ing. K. W. Eishold, Bad Soden Dr. J. F. Fues, Köln Dipl.-Chem. Alek von Kreisler, Köln Dipl.-Chem. Carola Keller, Köln Dipl.-Ing. G. Selting, Köln
AvK/Ax 5 KÖLN 1
DEICHMANNHAUS AM HAUPTBAHNHOF
Takeda Chemical Industries, Ltd.
27, Doshomachi 2-chome, Higashi-ku, Osaka (Japan).
Verfahren zur Herstellung von Weinsäure
Die Erfindung betrifft ein verbessertes Verfahren zur Herstellung von L(+)-Weinsäure durch Hydrolyse von Epoxybernsteinsäure mit Hilfe von Mikroorganismen, wobei man Calcium-cis-epoxysuccinat als Ausgangsmaterial dem Kulturmedium zusetzt, den Mikroorganismus bebrütet und hierdurch Calcium-L(+)-tartrat bildet.
Bekannt ist bereits ein Verfahren zur Herstellung von meso-Weinsäure durch mikrobiologische Hydrolyse von trans-Epoxybernsteinsäure (Journal of Bacteriology jO (1955) 405). Von der Anmelderin wurde ferner ein Verfahren zur Herstellung von L(+)-Weinsäure durch mikrobiologische Hydrolyse von cis-Epoxybernsteinsäure entwickelt (Patentanmeldung entsprechend der japanischen Patentanmeldung 8149/1975 vom 17.1.1975).
Bei eingehenden Untersuchungen mit dem Ziel, das vorstehend genannte Verfahren zur mikrobiologischen Herstellung von L(+)-Weinsäure aus cis-Epoxybernsteinsäure zu verbessern, wurde gefunden, daß eine als Ausgangsmaterial verwendete Lösung von cis-Epoxysuccinat das Wachstum von
609832/0931
Telefon: (0221) 234541-4 · Telex: 6L32307 dopa d · Telegramm: Dompatent Köln
Mikroorganismen hemmt i-nd, wenn ihre Konzentration höher
ist als 3 bis 5%, das Wachstum beachtlich verzögert oder gelegentlich vollständig zum Stillstand bringt. Es ist | daher schwierig, dem Kulturmedium eine große Menge der leicht wasserlöslichen Salze, z.B. der Natrium-, Kalium- ! oder Ammoniumsalze oder ähnlicher Salze, auf einmal ι zuzusetzen.
Im Gegensatz hierzu hat Calcium-cis-epoxysuccinat eine . sehr geringe Wasserlöslichkeit von nur etwa 1% bei Raum- i temperatur, so daß auch dann, wenn eine große Menge Calcium-cis-epoxysuccinat auf einmal zugesetzt wird, keine Verzögerung oder Hemmung im Wachstum der Mikrobien in der Kultur noch eine Verzögerung oder Hemmung der Hydrolyse S festzustellen ist.
Wenn ferner Calcium-cis-epoxysuccinat als Ausgangsmaterial zur Herstellung von L(+)-Tartrat verwendet wird, ist die Löslichkeit von Calcium-L(+)-tartrat in Wasser so gering, daß das Reaktionsprodukt leicht ausgefällt wird und sehr leicht aus dem Reaktionssystem entfernt werden kann. Eine Hemmung der Hydrolyse durch das Reaktionsprodukt findet nicht mehr statt, noch wird die L(+)-Weinsäure durch den | Mikroorganismus weiter abgebaut, so daß die Hydrolysen- ' reaktion in kürzerer Zeit abläuft und daher bessere Aus- ' beuten erzielt werden. ;
VJas andererseits das Materialproblem anbelangt, so ist festzustellen, daß cis-Epoxybernsteinsäure, das Ausgangsmaterial, im allgemeinen nach einem üblichen Verfahren j hergestellt wird, bei dem Maleinsäure in wäßriger Lösung .
mit Wasserstoffperoxyd in Gegenwart von Katalysatoren wie
i Wolframsäure, Molybdänsäure,Molybdän- oder Wolfram-hetero-
polysäure oder Salzen dieser Säuren oxydiert wird. Bei > einem anderen möglichen Verfahren wird Maleinsäure der
Epoxydation in Form von Natrium-, Kalium- oder Calcium- ;.
salzen oder ähnlichen Salzen mit anschließendem Ionen- |
609832/0931
austausch oder Zusatz anderer Metallsalze unterworfen, ■ wodurch die Maleinsäure wirksam in die gewünschte eis- ! Epoxybernsteinsäure oder das cis-Epoxysuccinat umgewan- ; delt wird. Wie bereits erwähnt, sind verschiedene Verfah-; ren zur Herstellung von cis-Epoxybernsteinsäure verfügbar. Für das Verfahren zur Umwandlung von cis-Epoxybernstein- . säure in L(+)-Weinsäure unter Verwendung von Mikroorganismen ist es jedoch zweckmäßig, daß das Ausgangsmaterial | keine aus der Epoxydation stammenden Verunreinigungen, ;
i z.B. Maleinsäure, DL-Weinsäure, Epoxydationskatalysator u.dgl., enthält, weil die Anwesenheit dieser Verunreini- i gungen das Wachstum von Mikroorganismen oder die Enzymaktivität hemmt. Schließlich wird hierdurch die Reinigung· der erhaltenen L(+)-Weinsäure übermäßig kompliziert. · cis-Epoxybernsteinsäure und ihre Natrium- und Kaliumsalze und ähnlichen Salze haben eine so hohe Wasserlöslichkeit, daß die Isolierung dieser Verbindungen aus wäßriger Lösung schwierig wird, während Calcium-cis-epoxysuccinat sowohl als normales Salz als auch als saures Salz eine genügend geringe Löslichkeit hat, um leicht von der wäßrigen Lösung isoliert werden zu können. Das nach diesem Verfahren her-; gestellte Calcium-cis-epoxysuccinat hat daher den Vorteil j daß es in hoher Reinheit und guter Ausbeute erhalten wird j und demzufolge keine Verunreinigungen, die das Wachstum des Mikroorganismus oder die Enzymaktivität hemmen würden, und keine Verunreinigungen enthält, die die Reinigung ' komplizieren.
Dieses Calcium-cis-epoxysuccinat kann nach einem der beiden folgenden Verfahren hergestellt werden: Bei einem dieser Verfahren kann Calciummaleat als Ausgangsmaterial '■. verwendet werden, wie oben beschrieben, und beim zweiten .
Verfahren werden Maleinsäure oder ihre Natrium- oder Kaliumsalze oder ähnlichen Salze der Epoxydationsreaktion ; unterworfen, worauf das gebildete Produkt isoliert oder ohne Isolierung durch Zusatz von Calciumsalz, Calciumhydroxyd, Calciumoxyd o.dgl. in Calcium-cis-epoxysuccinat
609832/0931
umgewandelt wird. Bei Verwendung von Calciummaleat als
Ausgangsmaterial ist es zweckmäßig, zuerst die Epoxydationsreaktion unter Verwendung einer wäßrigen Lösung oder Aufschlämmung, die 0,2 bis 1 g-Atom Calcium pro Mol Malein säure enthält, durchzuführen und nach der Reaktion die
Calciumverbindung zuzusetzen. Anstatt die Calciumverbin- ' dung zuzusetzen, ist es auch möglich, das gebildete Produkt in Form von Verbindungen wie Calciumhydrogen-cisepoxysuccinat oder Calcium-cis-epoxysuccinat oder auch j als Gemisch dieser Verbindungen zu isolieren. Insbesonde-i
re bei Durchführung der Epoxydationsreaktion unter Verwendung einer wäßrigen Lösung oder Suspension, die 0,4 bis !
— - Calcium
0,8 g-Atom/pro Mol Maleinsäure enthält, kann Calcium-cisepoxysuccinat von hoher Reinheit in guter Ausbeute erhalten werden, ohne daß eine besondere Reinigung erforderlich ist. Wie die vorstehenden Ausführungen zeigen, ermöglicht j das unter Verwendung von Calcium-cis-epoxysuccinat als ;
Ausgangsmaterial durchgeführte Verfahren die Umwandlung
des kristallinen Rohmaterials in kristallines Calcium- : L(+)-tartrat, das gewünschte Produkt, in hoher Konzentra-j
tion und mit verbesserter Ausbeute sowie bei schnellem :
Verfahrensablauf. Ferner läßt sich das gebildete Produkt |
leicht isolieren. Alle diese Vorteile lassen erkennen, |
daß das Verfahren sich zur Großherstellung von ·
L(+)-Weinsäure eignet. ■
ι Als zweite Verbesserung des Verfahrens zur Herstellung von
L( + )-Weinsäure wurde gefunden, daß bei. Verwendung von Calcium-cis-epoxysuccinat als Ausgangsmaterial durch
Im Kulturmedium
Anwesenheit eines nichtionogenen Tensids/die Fermentationsdauer erheblich verkürzt und Calcium-cis-epoxysuccinat von hoher Konzentration in Calcium-L(+)-tartrat mit
hohem Wirkungsgrad umgewandelt werden kann.
Der Erfindung liegen die vorstehenden Feststellungen zugrunde.
609832/0931
Gegenstand der Erfindung ist demgemäß die Herstellung von L(+)-Weinsäure nach einem verbesserten Verfahren, bei dem1 die Kultivierung der Mikroorganismen und die Hydrolyse ! von Calcium-cis-epoxysuccinat zu Calcium-L(+)-weinsäure ί gleichzeitig vonstatten gehen, wobei die Hydrolyse des
Calcium-cis-epoxysuccinats zu Calcium-L(+)-tartrat bei ; hoher Konzentration des Materials, mit besserer Ausbeute
und in kürzerer Zeit durchgeführt werden kann. ,
Das Verfahren gemäß der Erfindung zur Herstellung von j L(+)-Weinsäure ist dadurch gekennzeichnet, daß man
Calcium-cis-epoxysuccinat als Ausgangsmaterial dem Nähr- i
medium zusetzt und einen Mikroorganismus, der cis-Epoxy- j succinat zu L(+)-Weinsäure zu hydrolysieren vermag,
bebrütet und hierdurch das Calcium-cis-epoxysuccinat in !
Calcium-L(+)-tartrat umwandelt. I
Gemäß einer verbesserten Ausführungsform des Verfahrens
gibt man eine nichtionogene oberflächenaktive Verbindung
in Kombination mit Calcium-cis-epoxysuccinat zum Nährmedium, bebrütet den Mikroorganismus und wandelt hierdurch das Calcium-cis-epoxysuccinat in Calcium-L(+)-tartrat um.
Für die Zwecke der Erfindung können alle Arten von Mikroorganismen verwendet werden, die cis-Epoxybernsteinsäure
zu hydrolysieren und L(+)-Weinsäure zu bilden vermögen.
Geeignet sind beispielsweise Acinetobacter tartarogenes
KB-82 (IFO 13644; FERM 2854; ATCC 31105); die gleiche
Spezies KB-99 (IFO 13650; FERM 2860; ATCC 31111); die
gleiche Spezies KB-111 (IFO 13656; PERM 2866; ATCC 31117); die gleiche Spezies KB-112 (IFO 13657; FERM 2867;
aureum
ATCC 31118); Agrobacterium/KB-91 (IFO 13647; FERM 2857; \ ATCC 31108); Agrobacterium viscosum KB-105 (IFO 13652;
FERM 2862; ATCC 31113); Rhizobium validum KB-97 (IFO
13648; FERM 2858; ATCC 31109); die gleiche Spezies KB-106. (IFO 13653; FERM 2863; ATCC 31114); und Pseudomonas
species KB-86 (IFO 13645; FERM 2855; ATCC 31106).
Nachstehend werden die einzelnen bakteriologischen ! Charakteristiken dieser Mikroorganismen genannt.
i 1. Taxonomische Eigenschaften der Stämme KB-82, KB-99, :
KB-111 und KB-112. !
a) Zellmorpholoqie ·
1) Kugelförmig bis stäbchenförmig, 0,8-1,0 χ 1,0-1,3 um
2) In jungen Kulturen sind kurze stäbchenförmige Zellen und große unregelmäßige Zellen zu finden. In älteren Kulturen sind die Zellen nahezu kugelförmig.
3) Unbeweglich
4) Keine Sporenbildung
5) Gramnegativ
6) Nicht säurefest
b) Kulturmerkmale
1) Nähragarplatte: kreisrund, ausgefüllt (entire),
konvex, glatt, gräulich weiß, undurchsichtig,
glänzend.
2) Schrägagar: Wachstum mäßig, fadenförmig, glatt,
gräulich weiß, glänzend.
3) Brühe: leicht trübe; kein Oberflächenwachstum;
Sediment.
4) Gelatine-Stichkultur: keine Verflüssigung.
5) Lackmusmilch: alkalisch; keine Peptonisierung.
c) Physiologische Eigenschaften
1) Nitratreduktion: Im Nitratmedium sind KB-111 und
KB-112 positiv, jedoch KB-82 und KB-99 negativ.
2) Denitrifikation findet nicht statt.
3) Methylrottest: negativ.
4) Acetylmethylcarbinol wird nicht gebildet.
5) Indol wird nicht gebildet.
6) Schwefelwasserstoff wird nicht gebildet.
7) Stärke wird nicht hydrolysiert.
8) Citrat wird verwertet. '
9) Nitrate und Ammoniumsalze werden als Stickstoff- ι quellen verwertet. j
10) Keine Farbstoffbildung.
11) Urease wird gebildet. . '
12) Oxidase: positiv.
13) Katalase: positiv
14) Kein Wachstum bei pH 4,5 und 8,6. Optimaler pH-Wert j etwa 7. Kein Wachstum bei 8°C und 4O°C. Optimale ,
Temperatur etwa 3O°C.
15) Aerob.
16) Hugh-Leifson-Test: oxydativ. !
17) Säure, aber kein Gas aus L-Arabinose, D-Xylose und i D-Fructose. Geringe Säurebildung, aber kein Gas aus
D-Glucose, D-Mannose, D-Galactose und Glycerin.
Keine Säure und kein Gas aus Maltose, Lactose,
Trehalose, D-Sorbit, D-Mannit, Inosit und Stärke.
d) Andere taxonomische Eigenschaften
1) Resistent gegen 5 Penicillineinheiten.
2) Vom Boden isoliert. j
2. Taxonomische Eigenschaften des Stammes KB-86 !
a) ZeIlmorphologie '■■
1) Stäbchen 0,6-0,8 χ 1,5 χ 3,0 .um ,
2) Nicht pleomorph
3) Beweglich mit polarer monotricher Geißel i
4) Keine Sporenbildung
5) Gramnegativ
6) Nicht säurefest i
b) Kulturmerkmale '
1) Nähragarplatte: kreisrund, ausgefüllt (entire), konvex, glatt, durchscheinend, cremeweiß, glänzend. ]
2) Schrägagar: Mäßiges Wachstum, fadenförmig, glatt,
cremeweiß, glänzend. [
©!03 % 3 2.Il %% 311
3) Brühe: leicht trübe, kein Oberflächenwachstum; Sediment.
4) Gelatine-Stichkultur: keine Verflüssigung.
5) Lackmusmilch: unverändert.
c) Physiologische Eigenschaften
1) Nitrate werden in Nitratmedium nicht reduziert.
2) Denitrifikation findet nicht statt.
3) Methylrot-Test ist negativ.
4) Acetylmethylcarbinol wird nicht gebildet.
5) Indol wird nicht gebildet.
6) Schwefelwasserstoff wird nicht gebildet.
7) Stärke wird nicht hydrolysiert.
8) Citrat wird verwertet.
9) Nitrate und Ammoniumsalze werden als Stickstoff- I quellen verwertet. '
10) Wasserlösliche Pigmente werden nicht gebildet. :
11) Urease wird gebildet. ,
12) Oxidase: positiv
'13) Katalase: positiv
14) Bei pH 6,0 und 10,5 kein Wachstum. Optimaler pH-Wert etwa 7. Kein Wachstum bei 40°C. Wachstum bei 100C. Optimale Temperatur zwischen 25 und 300C.
15) Aerob
16) Hugh-und-Leifson-Test: oxydativ
17) Säure, aber kein Gas aus L-Arabinose, D-Xylose, D-Glucose, D-Mannose, D-Fructose, D-Galactose, Maltose, Saccharose, Trehalose, D-Sorbit, D-Mannit und Glycerin. Keine Säure und kein Gas aus Lactose, Inosit und Stärke. i
d) Andere taxonomische Eigenschaften
1) Stickstoffbindung findet nicht statt.
2) Aminosäuren und Vitamine werden zum Wachstum nicht benötigt.
3} Vom Boden isoliert.
609832/0931
3. Taxonomische Eigenschaften des Stammes KB-91
a) Zellmorphologie
1) Stäbchen 0,5-0,7 χ 1,0-3,0 um
2) nicht pleomorph '
3) beweglich mit 1 bis 3 peritrichen Geißeln
4) keine Sporenbildung
5) gramnegativ -^.
6) nicht säurefest i
b) Kulturmerkmale i
1) Nähragarplatte: kreisrund, sich ausbreitend, konvexj, transparent, gelb, glänzend.
2) Schrägagar: Wachstum mäßi,g, sich ausbreitend ! (spreading), glatt, gelb, glänzend. j
3) Brühe: trübe, kein Oberflächenwachstum, Sediment.
4) Gelatine-Stichkultur: schichtweise Verflüssigung.
5) Lackmusmilch: neutral bis leicht alkalisch ohne
Serumzone. Keine Peptonisierung. Gräulichbraune
Farbe nach 2 Wochen.
c) Physiologische Eigenschaften
1) Nitrate werden in Nitratmedium nicht reduziert.
2) Denitrifikation findet nicht statt.
3) Methylrot-Test negativ ,
4) Acetylmethylcarbinol wird nicht gebildet.
5) Indol wird nicht gebildet.
6) Schwefelwasserstoff wird nicht gebildet.
7) Stärke wird nicht hydrolysiert.
8) Citrat wird verwertet.
9) Nitrate und Ammoniumsalze werden als Stickstoff- , quellen verwertet.
10) Chromogen '
11) Urease wird gebildet.
12) Oxidase: positiv
13) Katalase: positiv
609832/0931
14) Kein Wachstum bei pH 4,5 und 10,5. Optimaler
pH-Wert etwa 7. Kein Wachstum bei 4O°C. Wachstum ; bei 100C. Optimale Temperatur etwa 3O0C. ;
15) aerob
16) Hugh-Leifson-Test: oxydativ
17) Säure, aber kein'Gas aus L-Arabinose, D-Glucose, ·, D-Mannose, D-Fructose, D-Galactose, Lactose, ; Trehalose, D-Sorbit, D-Mannit, Inosit. Keine Säure! und kein Gas aus D-Xylose, Maltose, Saccharose, j Glycerin und Stärke. :
.d) Andere taxonomische Eigenschaften
1) 3-Ketolactosebildungstest: positiv.
2) Aminosäuren und Vitamine werden zum Wachstum nicht i benötigt. ;
3) Wachstum auf Anilinblau-Glucoseagar. Farbstoff wird! nicht absorbiert. ·
4) Cellulose wird nicht abgebaut. S
5) Vom Boden isoliert. j
6) Nicht parasitisch für die untersuchten Pflanzen. !
h. Taxonomische Eigenschaften des Stammes KB-105 j
a) Zellmorphologie :
1) Stäbchen, 0,5-0,7 χ 1,0-3,0 ,um
2) nicht pleomorph · '
3) beweglich mit 1 bis 3 peritrichen Geißeln .
4) keine Sporenbildung
5) gramnegativ !
6) nicht säurefest
b) Kulturmerkmale ;
1) Nähragarplatte: kreisrund, geschlossen (entire),
konvex, glatt, undurchsichtig, gelblich weiß, !
glänzend.
IB (09832^10)9311
" αι " 260Ό589
2) Schrä'gagar: Wachstum mäßig, fadenförmig, gelblich
weiß, glänzend. j
3) Brühe: Sediment, Pellucula.
4) Gelatine-Stichkultur: keine Verflüssigung. ■
5) Lackmusmilch: alkalisch mit Serumzone. ι
c) Physiologische Eigenschaften !
1) Nitrate werden in Nitratnährmedium nicht reduziert.j
2) Denitrifikation findet nicht statt.
3) Methylrottest: negativ [
4) Acetylmethylcarbinol wird nicht gebildet. j
5) Indol wird nicht gebildet.
6) Schwefelwasserstoff wird nicht gebildet. \
7) Stärke wird nicht hydrolysiert. j
8) Citrat wird in Christensen-Medium, aber nicht ! in Koser-Medium verwertet. '
9) Nitrate und Ammoniumsalze werden als Stickstoffquellen verwertet.
10) Kein Farbstoffbildner
11) Urease wird gebildet.
12) Oxidase: positiv ,
13) Katalase: positiv ;
14) Kein Wachstum bei pH 4,5 und 10,5. Optimaler pH-Werjt etwa 7. Kein Wachstum bei 400C. Wachstum bei 10°C. j Optimale Temperatur etwa 3O°C.
15) aerob
16) Hugh-Leifson-Test: oxydativ :
17) Säure, aber kein'Gas aus L-Arabinose, D-Xylose,
D-Glucose, D-Mannose, D-Fructose, D-Galactose, ; Maltose, Saccharose, Trehalose, D-Sorbit, D-Mannit ι und Glycerin. Keine Säure und -kein Gas aus Lactose,
i Inosit und Stärke. '
d) Andere taxonomische Eigenschaften
1) 3-Ketolactosebildungstest: positiv !
2) Vitamin zum Wachstum benötigt.
609832/0331
3) Wachstum auf Anilinblau-Glucoseagar. Farbstoff wird j nicht absorfciert. ΐ
4); Auf" Zucrkermedien werden viskose Kolonien gebildet. > 5) Cellulose wird nicht abgebaut« ι
6). Vom Boden: isoliert.
77 Nicht parasitisch für die untersuchten Pflanzen.
5« Taxonomisehe Eig;err.schaf ten der Stamme. KB-97 und KB—ΙΟβ
a)· Zellmorphalog-ie ι
U= Kurze Stäbchen: Q-tB-lrO κ IxQ-1IfS um. [
2Ϊ In jungen Kulturen: werdteni große unregelmäßige I
ZeIlern gefunden* In alteren Kulturen werden die
Zellen zu kokfceKförtnigert Stäbchen«
3) Unbeweglich i
4) Keine Sporenbildung j
5) Gramnegativ
6) Nicht säurefest j
b) ·Kulturmerkmale " I
1) Nähragarplatte: kreisrund, geschlossen (entire), : konvex, glatt, gräulich weiß, undurchsichtig, j glänzend. !
2) Schrägagar: mäßiges Wachstum, fadenförmig, glatt, gräulich weiß, glänzend. i
3) Brühe: leicht trübe, kein Oberflächenwachstum; Sediment. !
4) Gelatine-Stichkultur: keine Verflüssigung. !
5) Lackmusmilch: leicht alkalisch, nicht peptonisiert; ; keine Serumzone. ■
c) Physiologische Eigenschaften I
1) Reduktion von Nitrat: KB-1O6 positiv, jedoch KB-97 negativ in Nitratbrühe.
2) Denitrifikation findet nicht statt.
609832/0931
33 ^ethylrot-Test: negativ
,Acetylimethylcarbinol wird nicht gebildet. ;
Imdol wird nicht gebildet, '
63 Schwefelwasserstoff wird nicht gebildet.
7) Stärke wird nicht hydrolysiert.
8) Citrat wird nicht verwertet. I Nitrate und Ammoniumsalze werden als Stickstoff- ;
quellen verwertet.
10) Achromogen "~~~ :
11) Urease wird gebildet. .
12) Oxidase: positiv
13) Katalase: positiv '
14) Kein Wachstum bei pH 4,5 und 8,6. Optimaler pH-Wert etwa 7. Kein Wachstum bei 40°C. Wachstum bei 100C.
Optimale Temperatur etwa 30°C.
15) Aerob >■
16) Hugh-Leifson-Test: oxydativ
17) Säure, aber kein Gas aus L-Arabinose und D-Fructosel. Etwas Säure, aber kein Gas aus D-Xylose, D-Glucose,
D-Mannose, D-Galactose und Glycerin. Keine Säure und kein Gas aus Maltose, Saccharose, Lactose, j Trehälose, D-Sorbit, D_Mannit, Inosit und Stärke.
d) Andere taxonomische Eigenschaften
1) 3-Ketolactose wird nicht gebildet.
2) Wachstum auf Hefeextrakt-Medien innerhalb von ' 3 Tagen.
3) Von Wurzelknoten von Klee isoliert.
Das Verfahren gemäß der Erfindung wird durchgeführt, indem Calcium-cis-epoxysuccinat dem Kulturmedium im Verlauf der1 Bebrütung des Mikroorganismus zugesetzt wird, wodurch es j möglich ist, die Vorgänge der Bebrütung der Mikrobien und; der chemischen Reaktion gleichzeitig durchzuführen.
Für die Kultivierung der Mikroorganismen kann ein flüssi-
603832/0931
ges oder festes Nährmedium verwendet werden. Gebräuchlicher und zweckmäßiger ist jedoch die Schüttelkultur oder ' das unter Belüften und Rühren durchgeführte Kulturverfall-, ren. Bei beiden Verfahren wird ein flüssiges Nährmedium verwendet.
Die Wahl der Art oder des Zustandes des Nährmediums bzw. Kulturmediums unterliegt keiner besonderen Begrenzung ι oder Bedingung, d.h. beliebige Arten von Nährmedien können verwendet werden, vorausgesetzt, daß sie an die Mikrobien! so angepaßt sind, daß sie normal und zuverlässig zu wach-j sen vermögen, und daß das Enzymsystem, das das Calcium- ! cis-epoxysuccinat in Calcium-L(+)-tartrat umzuwandeln vermag, in ausreichendem Maße darin gebildet werden kann.i
Als Kohlenstoffquellen eignen sich beispielsweise < Calcium-cis-epoxysuccinat, Glucose, Lactose, Glycerin, Saccharose, Melasse, organische Säuren und Kohlenwasserstoffe. Als Stickstoffquellen eignen sich beispielsweise Proteinhydrolysate, z.B.Pepton, Casaminosäure ^Hersteller. Difco) und N-Z-Amin (Hersteller Schefield) sowie Stoffe wie Hefeextrakt, Sojabohnenkuchen, Maisquellwasser, ' Aminosäuren, verschiedene Ammoniumsalze, verschiedene Arten von Nitraten und andere organische oder anorganische Stickstoffverbindungen. Ferner können als anorgani- I sehe Salze verschiedene Arten von Phosphaten, Magnesium-_ sulfat, Natriumchlorid u.dgl. als geeignete Zusätze züge-' geben werden. Zur Begünstigung des Wachstums von Bakte- | rien können ferner verschiedene Vitamine, Verbindungen, an die Nucleinsäuren gebunden sind,u.dgl. zugesetzt werden. Unabhängig davon, welches Kulturverfahren in der i Praxis angewandt wird, ist es zweckmäßig, zu Beginn der Bebrütung oder Kultivierung cis-Epoxysuccinat wenn auch nur in geringer Menge dem Nährmedium zuzusetzen, da [
hierdurch bessere Ergebnisse erzielt werden. ,
Zur Einleitung der Kultivierung wird außerdem das Nähr—
medium vorzugsweise mit einer geeigneten Menge eines j Kulturmediums geimpft, das durch'eine vorher im kleineren!
Maßstab durchgeführte Vorkultur erhalten worden ist.
Die Kultivierungsbedingungen einschließlich Kultivierungsund -dauer
temperatur/und Acidität-Alkalinität der Flüssigkeit im Kulturmedium und andere Faktoren sind verschieden in ■ Abhängigkeit von der Art der verwendeten Mikroorganismen j oder von der Zusammensetzung oder den Elementen des Nährmediums. Es genügt jedoch, die Wahl und Einstellung so ■ vorzunehmen, daß das Ziel, d.h. maximale Bildung des j Enzymsystems, erreicht wird. In vielen Fällen der Praxis '. werden gute Ergebnisse erzielt, wenn die Kultivierung ί 1 bis 7 Tage unter aeroben Bedingungen bei etwa 20 bis ; 400C durchgeführt wird, während der pH-Wert des Kulturmediums bei etwa 5 bis 9 gehalten wird. I
Das als Ausgangsmaterial verwendete Calcium-cis-epoxy- ' succinat kann in beliebiger Form als normales Salz, saures Salz oder Gemisch dieser Salze verwendet werden. Bei
Verwendung eines Ausgangsmaterials, das ein saures Salz ;
enthält, ist es jedoch im allgemeinen vorteilhaft, das j
Medium vorher mit Calciumchlorid, Calciumcarbonat u.dgl. '
zu neutralisieren* Es ist jedoch auch möglich, das Um- !
wandlungsverfahren so durchzuführen, daß Natrium-cis- {
epoxysuccinat, Kalium-cis-epoxysuccinat u.dgl. dem Reak— : K ■ ' werden
tlonsgemisch .'zugesetzt/, das Calciumchlorid oder andere ' Calciumsalze in äquimolaren Mengen gegenüber den Succi- I naten enthält, wodurch die Succinate in die entsprechenden Calciumsalze umgewandelt werden.
Wenn das als Ausgangsmaterial dienende Calcium-cis-epoxy— succinat dem Kulturmedium im Verlauf des Kultivierungsprozesses zugesetzt wird, erfolgt die Zugabe entweder vor Beginn der Bebrütung oder zu einem geeigneten Zeitpunkt während der Bebrütung. In diesem Fall wird das j Ausgangsmaterial beispielsweise in Form von kristallinem ' Calciumsalz oder auch in Form einer Suspension in einem !
609832/0931
geeigneten Lösungsmittel, z.B. Wasser, verwendet» Die j Kristalle oder die Suspension werden entweder auf einmal j oder kontinuierlich über einen bestimmten Zeitraum oder : intermittierend in regelmäßigen Abständen während der : Kultivierungszeit des Mikroorganismus zugesetzt. j
Die Gesamtmenge des Calcium—eis—epaxysuccinats, die während der Kultivierung des Mikroorganismus verwendet ; wird, liegt bei nicht weniger als 5% (Gewv/Vol.) und kann bis zu 50% (als freie Säure) betragen.
Als bevorzugte Ausführungsform der vorliegenden Erfindung I wird ein nichtionisches oberflächenaktives Mittel in das Kulturmedium gegeben, um die Inkubationszeit zu verkürzen ; und das Calcium-cis-epoxysuccinat besonders wirkungsvoll j in das Calcium-L(+)-tartrat umzuwandeln. |
Die verschiedensten nichtionogenen oberflächenaktiven Verbindungen können für das Verfahren gemäß der Erfindung1 verwendet werden. Geeignet sind beispielsweise Sorbitan— j fettsäureester (z.B. Sorbitanmonooleat,und Sorbitantrioleat), Polyoxyäthylensorbitanfettsäureester (z.B. Polyoxyäthylensorbitanmonolaurat und Polyoxyäthylensor— · bitanmonooleat), Polyoxyäthylensorbitfettsäureester (z.B.Polyoxyäthylensorbitmonolaurat) , Polyoxyäthylen- '' fettsäureester (z.B. Polyoxyäthylenstearat und Polyoxyäthylenlaurat), Polyoxyäthylenalkoholäther (mit höheren Alkoholen) (z.B. Polyoxyäthylenlaurylalkoholäther und '-. Polyoxyäthylenoleylalkoholäther), Polyoxyäthylenalkyl- ,
aryläther (z.B. Polyoxyäthylen-nonylphenoläther und ; Polyoxyäthylenoctylphenoläther), Glycerylfettsäureester ί ,_ (z.B. Glycerylmonostearat), Alkylenglykolfettsäureester 0^ (z.B. Propylenglykolmonostearat), Polyoxypropylen-poly- ; oxyäthylenalkyläther (z.B. Polyoxypropylenpolyoxyäthylencetylalkoholäther), Kondensationsprodukte von Polyoxyäthylenalkylphenol und Formaldehyd (z.B. Polyoxyäthylennonylphenol-Formaldehyd-Harze und Polyoxyäthylenoctylphenol-Formaldehyd-Harze), Polyoxyäthylenalkylamin oder -amid (z.B..Polyoxyäthylenoleylamin und Polyoxyäthylenoleylamid), Polyoxyäthylen-Lanolin-Derivate, Polyoxyäthylen-LanolinalkohoIderivate, Polyoxyäthylensorbit— Bienenwachs-Derivate, Polyoxyäthyleh-Rizinusöl-Derivate, Polyoxyäthylenpolyole, Polyoxypropylenpolyole, Polyoxy—
cn ο co
athylenoxypropylenpolyole (z-B. Xthylendiamin-oxypropylenoxyäthylentetraol), Polyoxyäthylentetrahydrofurfuryl- ; alkohol und Polyoxypropylenfettsaureester. ;
Im allgemeinen werden die oberflächenaktiven Verbindungen in einer Menge von 0,O5 bis 5,0% (Gewi/Vol.), vorzugsweise 0,05 bis 2,O% verwendet. Die oberflächenaktiven Verbindungen können auf einmal vor Beginn der Kultivierung oder portionsweise im Verlauf der Kultivierung züge-: setzt werden.
Wie bereits erwähnt, kann dgs im Kulturmedium oder im Reaktionsgemisch gebildete Calcium-L(+)-tartrat leicht durch Filtration oder Zentrifugieren isoliert werden.
Bevorzugte Ausführungsformen des Verfahrens gemäß der Erfindung werden in den folgenden.Beispielen beschrieben.
Beispiel 1
Stamme von Spezies wie Acinetobacter tartarogenes KB-82, Pseudomonas species KB-86, Agrobacterium aureum KB-91 und Rhizobium validum KB-106 werden in 30 ml Nährmedium ge- ,
impft, das in 200 ml-Erlenmeyerkolben enthalten ist und 0,05% Casaminosäure, 0,5% Natriumnitrat, 0,1% Dikaliumhydrogenphosphat, 0,05% Magnesiumsulfat und 0,001% Eisen-(Il)-sulfat enthält und einen pH-Wert von 7,0 hat. Gleichzeitig wird kristallines Calcium-, Dinatrium- und Dikalium-cis-epoxysuccinat so zugesetzt, daß die Endkonzentration jeweils 5%, gerechnet als freie Säure, beträgt. Das Gemisch wird dann 2 Tage bei 30°C in rotierender Schüttelkultur bebrütet. Bei Herstellung des Nährmediums unter Zusatz von Calcium-cis-epoxysuccinat wird das Endprodukt durch Zentrifugieren abgetrennt, nachdem das Calciumsalz vorher mit Schwefelsäure löslich gemacht
worden, ist. Bei Verwendung des Dikaliumsalzes oder Dinatriumsalzes beim Ansetzen des Nährmediums wird das Kulturmedium ohne jede Vorbehandlung zentrifugiert. Die
609832/0931
Menge der L(+)-Weinsäure wurde an Hand des Wertes der optischen Drehung bei 436 rau bestimmt, während die nicht ; umgesetzte cis-Epoxybernsteinsäure nach der Methode von Payne und Williams bestimmt wurde (G.B.Payne und P.H. Williams, Journal of Organic Chemistry 24 (1959) 54). Die Ergebnisse sind nachstehend genannt.
cis-Epoxybernsteinsäure
Mikroorganismus
Calciumsalz
Natriumsalz
Kaliumsalz
(A) (B) * (A) (B) (A) (B) 00 00 00 00 (%) (<*)
Acinetobacter tartarogenes Kß-82
Pseudomonas species
KB-86
Affrobacterium aureum
KB-91
Ehizobium
90
10 85
87
4-2
95
92
75
22
92
92
validum
11
KB-106
Mol ;
* (A): Ausbeute an L( + )-Weinsäure. Hierbei gelten 100% für den Fall, in dem die (gesamte eis—Epoxybernsteinsäure vollständig in L(+)-Weinsäure umgewandelt worden ist. \
**(B): Restliche cis-Epoxybernsteinsäure, bezogen auf die zugesetzte Menge-, Hierbei gelten 100% für den : Fall, in dem 1,5 g cis-Epoxybernsteinsäure als , freie Säure zurückbleibt.
609832/0931
Beispiel 2 j
Mit einem Stamm von Acinetebacter tartarogenes KB-111 j werden 500 ml eines flüssigen Nährmediums geimpft, das ' in einem 2 1-Sakaguchikolben enthalten ist und 0,6% j Calcium-cis-epoxysuccinat, 0,5% Ammoniumsulfat, 0,1% Dikaliumhydrogenphosphat und 0,05% Magnesiumsulfat ent- ■ hält und einen pH-Wert von 7,0 hat. Das Gemisch wird i 24 Stunden bei 30°C in hin- und hergehender Schüttel- ( kultur bebrütet, wobei 500 ml Kulturmedium erhalten werden. Dieses Kulturmedium wird in einen 50 1-Tank über- | führt, der 30 1 eines flüssigen Nährmediums enthält, das ■ 0,1% Polypepton, 0,5% Ammoniumsulfat, 0,1% Dikaliumphos- : phat, 0,05% Magnesiumsulfat, 0,001% Eisen(II)-sulfat und ■ 0,2% Glucose enthält und einen pH-Wert von 7,0 hat. Gleichzeitig werden 180 g Calcium-cis-epoxysuccinat zugesetzt. Das erhaltene Produkt wird unter Belüften und ; Rühren bei 300C kultiviert, wobei etwa 20 g des Schaumverhütungsmittels "Actocol 31-56" (hergestellt von der Anmelderin) zugesetzt werden. 24 Stunden nach Beginn der ■ Kultivierung werden 3 kg (gerechnet als freie Säure) ; Calcium-cis—epoxysuccinat zugesetzt, worauf weitere ! 48 Stunden kultiviert wird. Etwa 30 1 des erhaltenen 1
Kulturmediums werden mit einer Filterpresse filtriert.
Der erhaltene feste Anteil wird mit Wasser gewaschen. !
Das Zentrifugieren und Waschen werden wiederholt, worauf '. die erhaltenen festen Anteile gut verrieben und getrocknet werden. Nach Abschluß aller vorstehend beschriebenen Arbeitsgänge wird kristallines Calcium-L(+)-tartrat in einer Menge von 4,2 kg (gerechnet als Anhydrid; Reinheit 99%) erhalten. (Bei Berechnung nach der in Beispiel 1 (A) beschriebenen Methode beträgt die Ausbeute 93%.)
Als Vergleich zu dem vorstehenden Beispiel wird ein weiterer Versuch durchgeführt, bei dem der Stamm KB-111 verwendet wird. Bei diesem Versuch wird die Kultivierung
609832/0931
unter den gleichen Bedingungen wie im vorstehenden Beispiel mit Ausnahme des verwendeten Materials durchgeführt. An Stelle von Calcium-cis-epoxysuccinat wird die
gleiche molare Menge Dinatrium-cis-epoxysuccinat verwen-
det- Etwa 30 1 des erhaltenen Kulturmediums werden mit
einer Filterpresse filtriert. Unter gutem Rühren werden ! 3,5 kg kristallines Calciumchlorid (Dihydrat) portions- j weise zugesetzt. Die hierbei gebildete Fällung wird mit . : der Filterpresse abfiltriert, wobei 5,8 kg feste Substanz: erhalten wird. Am Dünnschichtchromatogramm dieser festen ' Substanz ist die restliche cis-Epoxybernsteinsäure fest- :- zustellen. (Dünnschicht: feine kristalline Cellulosefolie^ Hersteller Tokyo Kasei Chemical Ind. Co.; Lösungsmittel:
Isopropyläther-Tetrahydrofuran-Ameisensäure-Wasser
(10:10:5:4); entwickelt mit Bromkresolgrün.) Auf der I Grundlage dieser Bestimmungen wird der Gehalt an L(+)-Weinsäure nach der in Beispiel. 1 beschriebenen Methode,
d.h. nach der Methode der optischen Drehung, bestimmt. ! Hierbei wird festgestellt, daß die Menge der gebildeten
L ('+)-Weinsäure 1,3 kg als wasserfreies Calciumsalz beträgt. (Bei Berechnung nach der in Beispiel 1 (A) be- j
schriebenen Methode beträgt die Ausbeute 30%.) '
Beispiel 3
Mit einem Stamm von Acinetobacter tartarogenes Kß-112 j werden je 500 ml eines flüssigen Nährmediums geimpft, das, in zwei 2 1-Sakaguchikolben enthalten ist und 0,6%
Calcium-cis-epoxysuccinat, 0,2% Casaminosäure, 0,5% ; Ammoniumnitrat, 0,1% Dikaliumhydrogenphosphat und 0,05%
Magnesiumsulfat enthält und einen pH-Wert von 7,0 hat.
Dieses Gemisch wird 30 Stunden in hin- und hergehender ; Schüttelkultur bei 300C bebrütet, wobei 1 1 Kulturmedium
erhalten wird. Dieses Kulturmedium wird in einen 50 1- ' Tank überführt, de'r 30 1 eines flüssigen Nährmediums ent-; hält, das 0,1% Casaminosäure, 0,5% Ammoniumnitrat, 0,1%
Dikaliumphosphat und 0,05% Magnesiumsulfat enthält und
609832/0931
einen pH-Wert von 7,0 hat. Gleichzeitig wird Calciumcis-epoxysuccinat in einer als freie Säure gerechneten Menge von 9 kg zugesetzt. Nach der Zugabe des Succinats wird die Kultivierung unter Belüftung und Rühren 3 Tage bei 3O0C durchgeführt. Während der gesamten Kultivierungsdauer werden etwa 20 g des Schaumverhütungsmittels "Actocol 31-56" portionsweise zugesetzt. Etwa 38 1 des erhaltenen Kulturmediums werden mit der Filterpresse filtriert. Der feste Anteil wird gewaschen, in 40 1 ! Wasser suspendiert und gut gerührt.. Das Gemisch wird stehen gelassen, wobei der feste Anteil sich absetzt. Nachdem etwa 25 1 Überstand verworfen worden sind, werden erneut 25 1 Wasser zugesetzt, worauf gerührt wird. Das Gemisch wird mit der Filterpresse filtriert. Die hierbei erhaltene feste Substanz wird zerkleinert, verrieben und getrocknet. Hierbei werden 11,9 kg kristallines Calcium-L(+)-tartrat erhalten (gerechnet als Anhydrid; Reinheit 98%).
Beispiel 4
Mit einem Stamm von Rhizobium validum KB 97 werden 500 ml eines flüssigen Nährmediums geimpft, das in einem 2 1— Sakaguchikolben enthalten ist und 0,5% Hefeextrakt und 0,5% Glucose enthält und einen pH-Wert von 7,0 hat. Das Kulturmedium wird in hin- und hergehender Schüttelkultur 24 Stunden bei 30°C bebrütet. Das erhaltene Kulturmedium wird in einen 50 1-Tank überführt, der- 30 1 eines flüssigen Nährmediums enthält, das 0,2% Maisquellwasser, 0,6% Calcium-cis-epoxysuccinat, 0,6% Ammoniumsulfat, 0,1% Dikalxumhydrogenphosphat und 0,03% Magnesiumsulfat enthält und einen pH-Wert von 7,0 hat. Der Inhalt des Tanks wird 40 Stunden bei 30°C unter Belüftung und Rühren kultiviert, wobei etwa 30 1 Kulturmedium erhalten werden. Eine Menge von 15 1 dieses Kulturmediums wird in einen 200 1-Tank überführt, der 100 1 eines flüssigen Kulturmediums enthält, das 0,05% Maisquellwasser, 1,0% Ammo-
60 3832/0331
niumsulfat, 0,1% Dikaliumhydrogenphosphat, 0,05% Magne- ! siumsulfat und 0,001% Eisen(II)-sulfat enthält und einen , pH-Wert von 7,0 hat. Gleichzeitig wird Calcium-cisepoxysuccinat in einer Menge, die 10 kg der freien Säure i entspricht, zugesetzt. Nach der Zugabe des Succinats
wird der Inhalt des Tanks unter Belüften und Rühren bei ' 300C bebrütet, während etwa 50 g des Schaumverhütungsmittels "Actocol 31-56" zugesetzt werden. Die Kultivierung unter Belüften und Rühren wird 5 Tage durchgeführt. ] Am I.Tag und am 3.Tag werden je 20 kg (gerechnet als ,
freie Säure) Calcium-cis-epoxysuccinat zugesetzt. Etwa
150 1 des hierbei erhaltenen Kulturmediums werden mit j der Filterpresse filtriert. Der feste Anteil wird gewaschen und in 150 1 Wasser suspendiert. Nach gutem j Rühren läßt man den festen Anteil absitzen. Etwa 70 1 ! des Überstandes über dem Sediment werden verworfen, worauf erneut 70 1 Wasser zugesetzt werden, worauf gut
gerührt und mit der Filterpresse filtriert wird. Die
Endausbeute an kristallinem Calcium-L(+)-tartrat beträgt
64,8 kg,(gerechnet als Anhydrid.; 'Reinheit 99%).
Beispiel 5
Ein Stamm von Acinetobacter tartarogenes KB-99 wird in
30 ml eines flüssigen Nährmediums geimpft, das in einem
200 ml-Erlenmeyerkolben enthalten ist und 0,5% Hefeex- < trakt, 0,5% Ammoniumnitrat, 0,1% Dikaliumhydrogenphosphat, 0,05% Magnesiumsulfat und 1,8% Calciumchlorid (Dihydrat) : enthält und einen pH-Wert von 7,2 hat. In jedem Fall wird; eine Impfnadelmenge des Stamms zugesetzt. Gleichzeitig : wird das Natriumsalz (A) bzw. das Kaliumsalz (B) von
eis—Epoxybernsteinsaure in einer Menge zugesetzt, die j jeweils 1,5 g der freien Säure entspricht. Das Gemisch
wird 2 Tage der rotierenden Schüttelkultur bei 30°C ! unterworfen. Mit einem Teil dieses Kulturmediums wird ,' eine andere Kultivierung unter den gleichen Bedingungen
durchgeführt, wobei jedoch 1) ein modifiziertes Nährme-
809832/0931
dium verwendet wird, das die gleiche Zusammensetzung wie das oben genannte Nährmedium hat, jedoch kein Calciumchlorid enthält, und 2) nach dem Impfen mit dem Stamm KB-99 in einer Impfnadelmenge das Calciumsalz (C) von cis-Epoxybernsteinsäure in einer Menge, die 1,5 g der freien Säure entspricht, zugesetzt wird. Das hierbei erhaltene Kulturmedium wird auf dem Glasfilter filtriert und dann mit Wasser gespült. Hierbei wird kristallines L(+)-Tartrat erhalten. Die aus den Kulturmedien A, B und C erhaltene, als Anhydrid gerechnete Menge von Calcium-L(+)-tartrat beträgt 1,7, 1,8g bzw. 1,9 g. Die Reinheit \ beträgt in allen Fällen 97-99%. Dieses Ergebnis zeigt j eindeutig, daß auch das Natriumsalz oder Kaliumsalz von | Epoxybernsteinsäure als Ausgangsmaterial verwendet wer- ! den kann, vorausgesetzt, daß im Kulturmedium das Calcium^ ion in einer der cis-Epoxybernsteinsäure äquivalenten Menge vorhanden ist, und daß dieses Ausgangsmaterial ι leicht mit dem Ion unter Bildung des Calciumsalzes von cis-Epoxybernsteinsäure reagiert. Hierbei wird somit fast das gleiche Ergebnis erzielt, als wenn das Calcium- ' salz von vornherein zugesetzt wird. ;
Beispiel 6
Ein Stamm vonAcinetobacter tartarogenes KB-112 wird in 30 ml eines Nährmediums geimpft, das in einem 200 ml- ; Erlenmeyerkolben enthalten ist. Diesem Grundnährmedium, das 0,05% Casaminosäure, 0,1% Ammoniumnitrat, 0,2% Dikaliumhydrogenphosphat, 0,05% Magnesiumsulfat und 0,001% \ Eisen(II)-sulfat enthält und einen pH-Wert von 7,0 hat, werden verschiedene nichtionogene oberflächenaktive Ver- ' binduhgen in einer Konzentration von 0,1% zugesetzt. ; Gleichzeitig wird kristallines Calcium-cis-epoxysuccinat so zugesetzt, daß seine als freie Säure gerechnete End- ! konzentration 40% beträgt. Das Gemisch wird 2 Tage der rotierenden Schüttelkultur bei 300C unterworfen und dann
609832/0931
der Reaktion überlassen. Nach Beendigung der Reaktion wird die Flüssigkeit filtriert. Die vom Filtrat erhaltenen Kristalle werden in Schwefelsäure gelöst. Die gelösten ! Kristalle werden dann zur Entfernung der festen Substanzen zentrifugiert. Anschließend wird die L (+■)-Weinsäure auf [ der Grundlage der optischen Drehung bei 436 mu und die ' restliche cis-Epoxybernsteinsäure nach der Methode von ;
ι Payne und Williams (Journal of Organic Chemistry
(1959) 54) quantitativ bestimmt. Die Ergebnisse der Bestimmungen sind nachstehend in Tabelle 1 genannt.
Tabelle 1
Oberflächenaktive Verbindung*
Ausbeute an
L(+)-Wein-
Restliche cis-f Epoxybern-
säure, Mol-% steinsäure, %.
Sorbitanmonooleat
"NIKKOL SR-IO" 45
Polyoxyäthylensorbitan-
monooleat "NIKKOL TO-IO" 72
Polyoxyäthylensorbithexastearat "NIKKOL GS-6"" 50
PoIyoxyäthylenstearat
"NIKKOL MYS 10" 47
Polyoxyäthylen-cetylalkohol-
äther "NIKKOL BC-7" 52
Polyoxyäthylen-nonylphenoläther "NIKKOL NP-18TX" 55
Glycerylmonostearat
"NIKKOL MGS-C" 48
Propylenalykolmonostearat
"NIKKOL PMS-SE" 46
Polyoxyäthylen-Lanolin-Derivat "NIKKOL TW-20" 75
Polyoxyäthylen-Lanolin-Alkoh'ol-Derivat " NIKKOL BWA-2o" 74
Derivat von Polyoxyäthylen und gehärtetem Rizinusöl "NIKKOL HCO-5O"73 PoIyoxyäthylen-wonylphenol-Formaldehydharz "NIKKOL R-1020" 73
Polyoxyäthy1en-tetrahydrofurfury1-alkohol "NIKKOL TF-4" 54
52
25
48
50
43
47
50
21
21
23
21
42
609832/0931
Tabelle 1 (Forts.)
Oberflächenaktive Verbindung Ausbeute an Restliche cis- * L(+)-Wein- Epoxybern-
säure, Mol-% steinsäure, %
Polyoxyäthylenoxypropylen-
stearat "NIKKOL TPMS-30" 70 26
Äthylendiamin-polyoxypropylen-
oxyäthylentetraol :
"TETRONIC T-702" 52 45
Kein Zusatz 34 64 ;
* Hersteller der Verbindungen "NIKKOL": Nikko Chemicals Co., Ltd.
Hersteller von TETRONIC T-702": Asahi Denka Kogyo Co.
*♦ Ein Wert von 100% stellt den Fall dar, in dem die cis-Epoxybernsteinsäure vollständig zu L(+)-Weinsäure umgesetzt worden ist.
*** Rest der zugesetzten cis-Epoxybernsteinsäure in den Kristallen. Hierbei stellt 100% den Wert in dem Fall dar, in dem 12 g als freie Säure zurückbleiben.
Beispiel 7
Stämme von Acinetobacter tartarogenes KB-82, Pseudomonas . species KB-86, Agrobacterium aureum KB-9i? Acinetobacter tartarogenes KB-99? Agrobacterium viscosum KB-105 und Rhizobium validum KB-IO6 werden jeweils in 50 ml eines flüssigen Nährmediums geimpft, das in 200 ml-Erlenmeyerkolben enthalten ist und 0,2% Maisquellwasser, 0,1% Glucose, 0,1% Ammoniumnitrat, 0,2% Dikaliumhydrogenphosphat, 0,05% Magnesiumsulfat und 0,001% Eisen(Il)-sulfat enthält und einen pH-Wert von 7,0 hat. Gleichzeitig wird Calcium-cis-epoxysuccinat so zugesetzt, daß seine Endkonzentration 30% als freie Säure beträgt. Auf diese Weise wird die Kultivierung eingeleitet. Die in Tabelle 2 genannten oberflächenaktiven Verbindungen werden zu geeigneten Zeitpunkten zugesetzt. Das Gemisch wird 42 Stunden der Schüttelkultur bei 30°C unterworfen. Die Ergebnisse der Kultivierung zeigen, daß bei allen Stämmen die Ausbeuten
609832/0931
an L(+)«Weinsäure höher sind als bei den Versuchen, bei
denen die Kultivierung ohne Zusatz einer oberflächenaktiven Verbindung durchgeführt wurde.
Tabelle 2
Mikroorganismus Tensid und Konzentration, % *
Zeit- Ausbeute ■
punkt an L(+)- ,
der Weinsäure,
Zugabe % *·
Acinetobacter
tartarogenes
KB-82
Polyoxyäthylensorbitan-
monolaurat
"NONION LT-221" (0,2)
ohne Zusatz
0 83
59
Pseudomonas
species
KB-86
PοIyoxyäthylenoley1-
äther
"NONION E-215" (0,05)
ohne Zusatz
0 47 '
31
Agrobacterium
aureum
KB-91
Polyäthylenglykolmono-
laurat
"NONION L-4" (0,1)
ohne Zusatz
12 I
65 ;
50
Acinetobacter
tartarogenes
KB-99
Polyoxyäthylen-Octyl-
phenolformaldehydharz
"NIKKOL R-2O3O" (0,1)
ohne Zusatz
18 89
77
Agrobacterium
viscosum
KB-105***
Polyoxyäthylen-Rizi-
nusöl-Derivat
"NIKKOL C0-60TX" (0,05)
ohne Zusatz
0 ι
I
59 ;
48 ί
Rhizobium
validum
KB-106
Polyoxyäthylenoxy-
propylenpolyol
"PLURONIC L-61" (0,15)
ohne Zusatz
0 92
85 :
#Hersteller der Tenside NONION Nippon Jushi Co. j
(Japan Fats & Oils Mfg.Co.,Ltd.), PLURONIC Asahi Denka!
Kggyo Co. !
**Die Ausbeute an L(+)-Weinsäure in Mol.-% wurde nach
der in Beispiel 1 beschriebenen Methode bestimmt. I
♦**Bei der Kultivierung dieses Stammes wurden 100 .ug/ml j Pyridoxalhydrochlorid dem Kulturmedium zugesetzt.
609832/0931
Beispiel 8 ί
Ein Stamm von Rhizobium validum KB-9 7 wird zusammen mit J
einem Stamm von Acinetobacter tartarogen^es ΚΒ-1Ί1 in · jeweils 500 ml eines Nährmediums geimpft, das aus dem
in Beispiel 1 genannten Grundnährmedium und einem züge- ! setzten Tensid besteht. Gleichzeitig wird Calcium—cisepoxysuccinat dem Kulturmedium so zugesetzt, daß seine
als freie Säure gerechnete Endkonzentration 50% beträgt. I
Anschließend wird das Gemisch in hin- und hergehender
bei 2 8°C j
Schüttelkultur/bebrütet. Die als Rückstand im Kultur- !
medium verbleibende Menge der cis-Epoxybernsteinsäure j
wird durch Dünnschichtchromatographie verfolgt (Dünn- ; schicht: feinkristalline Cellulosefolie (fine-crystal
cellulose spot film) (Hersteller Tokyo Kasei Co.); |
Lösungsmittel: Isopropyläther-Tetrahydrofuran-Ameisen- !
säure-Wasser (10:10:5:4); Farbentwicklung: Bromkresol— ]
grün). Anschließend wird die Kultivierung fortgesetzt, ι bis die cis-Epoxybernsteinsäure verschwunden ist. Die
während der Umwandlungsreaktion bis zum Endpunkt der ; verstrichene Zeit sowie die Ausbeute an L(+)-Weinsäure
(in Mol.-%, ermittelt nach der in Beispiel 1 beschrie- '.
'benen Methode) sind in Tabelle 3 genannt, aus der die ;
Verkürzung der Reaktionsdauer und die Steigerung der ί
Ausbeute ersichtlich sind. '
das in 2 1-Sakaquchikclben enthalten war
609832/0931
Tabelle
ο ca co
Mikroorganis
mus
NONlON
(0.
(Std.)
OT-221*
15 %)
Ausbeute
(S)
EIPONOX NCG*
(0.1 %) .
Zeit Ausoeute
(Std.) (%) ,
NIKKCL HCO-80*
(ü.? %)
zeit AUBöeute
(Std.) (%)
Kein Ei 85
Ehizobium 96 89 78 9?
validum 84- 89 108 85 ioa
KB-97 90 87 8J
Acinetobacter
tartarogen.es
KB-I11
84 90 1^0
00 I
*NONION OT-221: Polypxyäthylensorbitanmonooleat . (Hersteller Nippon Yushi Co. - Japan Fats & Oils Mfg.Co.)
RIPONOX NCG: Polyoxyäthylenalkylphenoläther
(Hersteller Lion Fats & Oils Mfg. Co.)
NIKKOL HCO-80: Derivat von Polyoxyathylen und gehärtetem
(Hersteller Nikko Chemicals Co,)
CD CD
cn co co
Beispiel 9 !
Ein Stamm von Rhizobium validum KB-97 wird in 500 ml j eines flüssigen Nährmediums geimpft, das in zwei 2 1- ; Sakaguchikolben enthalten ist und 0,5% Glucose und 1,0%
Maisquellwasser enthält und einen pH-Wert von 7,0 hat. ; Der Inhalt der beiden Kolben wird 24 Stunden bei 28°C , in hin- und hergehender Schüttelkultur bebrütet, wobei
etwa 1 1 Kulturmedium erhalten wird. Dieses Kulturmedium : wird in einen 50 1-Tank überführt, der 30 1 eines flüs- ι sigen Nährmediums enthält, das 0,2% Maisquellwasser,
0,1% Ammoniumnitrat, 0,2% Dikaliumhydrogenphosphat, ; 0,05% Magnesiumsulfat, 0,001% Eisen(II)-sulfat und 0,1% , Polyoxyäthylen-Lanolin-Derivat ("NIKKOL TW-20") enthält
und einen pH-Wert von 7,0 hat. Gleichzeitig wird Calciumcis-epoxysuccinat in einer als freie Säure gerechneten
Menge von 6 kg zugesetzt. Das Gemisch wird bei 300C bebrütet. Nach 19 Stunden vom Beginn der Kultivierung wer- ·" den weitere 6 kg Calcium-cis-epoxysuccinat (gerechnet als j freie Säure) zugesetzt und weiter bebrütet, bis insgesamt 48 Stunden vom Beginn der Kultivierung vergangen
sind. Das erhaltene Kulturmedium wird wie folgt aufge- ; arbeitet: 40 1 Kulturmedium werden mit der Filterpresse ; filtriert. Der feste Anteil wird mit Wasser gespült und : in 30 Uasser suspendiert. Die Suspension wird gut gerührt und dann zum Absitzen der festen.Bestandteile \ stehen gelassen. 20 1 Überstand werden verworfen. Nach
Zusatz von 20 1 Wasser wird die Suspension gut gerührt | und dann mit der Filterpresse filtriert, wobei 15,9 kg
kristallines Calcium-L(+)-tartrat (gerechnet als Anhydrid) mit einer Reinheit von 98% erhalten werden. !
In einem Vergleichsversuch wird der gleiche Stamm KB-97 : verwendet. Die Kultivierung und Reaktion werden unter j den gleichen, vorstehend beschriebenen Bedingungen durch-
809832/0931
geführt mit dem einzigen Unterschied, daß kein oberflächenaktives Mittel dem Nährmedium zugesetzt wird.
Etwa 40/des erhaltenen Kulturmediums werden in der oben i
beschriebenen Weise gereinigt. Die Prüfung durch Dünn- ' schichtchromatographie (durchgeführt auf die in Beispiele
beschriebene Weise) bestätigt, daß restliches Calcium- ;
cis-epoxysuccinat im Kulturmedium vorhanden ist. Die '
quantitative Bestimmung der L(+)-Weinsäure auf die in \
Beispiel 6 beschriebene Weise ergibt, daß die Ausbeute ι
an Calcium-L(+)-tartrat 12,3 kg (als Anhydrid) beträgt. :
609832/0931

Claims (5)

  1. Patentansprüche ;
    [ 1)/Verfahren zur Herstellung von Weinsäure durch mikro- j — biologische Hydrolyse von Epoxybernsteinsäure,, dadurch gekennzeichnet, daß man Calcium—eis—epoxysticci— '■ nat als Ausgangsmaterial dem Nährmedium zusetzt, einen
    Mikroorganismus, der cis-Epoxybernsteinsäure zu ' L(+)—Weinsäure zu hydrolysieren vermag, bebrötet und J hierdurch das Calcium_cis-epoxysuccinat in Calcium- , L(+)-tartrat umwandelt. . ·
  2. 2) Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß ; man das Calcium-cis-epoxysuccinat im Medium in einer ! Menge von nicht weniger als 5% (Gew./Vol.), Vorzugs- | weise von nicht weniger als 30% (Gew./Vol.) des Mediums verwendet. '
  3. 3) Verfahren nach Anspruch 1 und 2, dadurch gekennzeich- ; net, daß man dem Kulturmedium eine nichtionogene ober-; flächenaktive Verbindung zusetzt.
  4. 4) Verfahren nach Anspruch 1 bis 3, dadurch gekennzeich- , net, daß man als oberflächenaktive Verbindung einen · Sorbitanfettsäureester, einen Polyoxyäthylensorbitan- ! fettsäureester, einen Polyoxyäthylenfettsäureester, ; einen Polyoxyäthylen—(höher)-alkoholäther, einen Poly- ; oxyäthylenalkylaryläther, einen Glyeerinfettsäureester,1 einen Alkylenglykolfettsäureester,~7ein Kondensationsprodukt von Polyoxyäthylen, Alkylphenol und Formalde- ; hyd, ein Polyoxyäthylenalkylamin oder -amid, ein j Polyoxyäthylen—Lanolin-Derivat, ein Polyoxyäthylen-Lanolin-Alkoholderivat, ein Polyoxyäthylen-Sorbit-Bienenwachs-Derivat, ein Polyoxyäthylen-Rizinusöl- \ Derivat, ein Polyoxyäthylenpolyol, Polyoxypropylenpolyol, Polyoxyäthylenoxypropylenpolyol, Polyoxyäthylen-
    _tetrahydrofurfurylaikohol und/oder einen Polyoxypropy- ' ein Polyoxypropylenpolyoxyäthylenalkyläther, !
    609832/Q931
    lenfettsäureester verwendet.
  5. 5) Verfahren nach Anspruch 1 bis 4, dadurch gekennzeichnet, daß man die nichtionogene oberflächenaktive Verbindung in einer Menge von 0,05 bis 5,0% (Gew./ · Vol.) verwendet.
    609832/0931
DE2600589A 1975-01-31 1976-01-09 Verfahren zur Herstellung von L(+)-Weinsäure durch mikrobiologische Hydrolyse von Calcium-cis-epoxysuccinat Expired DE2600589C2 (de)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP1373775A JPS58878B2 (ja) 1975-01-31 1975-01-31 L ( + ) − シユセキサンノ セイゾウホウ
JP5495775A JPS51130590A (en) 1975-05-07 1975-05-07 Process for preparing l-(+)-tartaric acid

Publications (2)

Publication Number Publication Date
DE2600589A1 true DE2600589A1 (de) 1976-08-05
DE2600589C2 DE2600589C2 (de) 1987-04-23

Family

ID=26349565

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DE2600589A Expired DE2600589C2 (de) 1975-01-31 1976-01-09 Verfahren zur Herstellung von L(+)-Weinsäure durch mikrobiologische Hydrolyse von Calcium-cis-epoxysuccinat

Country Status (7)

Country Link
US (1) US4013509A (de)
DE (1) DE2600589C2 (de)
ES (1) ES444576A1 (de)
FR (1) FR2299305A1 (de)
GB (1) GB1532041A (de)
IT (1) IT1057067B (de)
NL (1) NL183831C (de)

Families Citing this family (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE4440191C1 (de) * 1994-11-10 1996-03-14 Forschungszentrum Juelich Gmbh Verfahren zur Herstellung von Weinsäure
ATE264288T1 (de) * 2000-07-10 2004-04-15 Puratos Nv Gipsverzögererzusammensetzung
AU2002253451B1 (en) * 2002-04-16 2003-10-27 African Oxygen Limited Chemical bed design
CN103614398B (zh) 2013-08-22 2016-01-27 杭州宝晶生物股份有限公司 顺式环氧琥珀酸水解酶的编码基因、其编码的多肽及其相关应用

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
NICHTS-ERMITTELT *

Also Published As

Publication number Publication date
US4013509A (en) 1977-03-22
GB1532041A (en) 1978-11-15
DE2600589C2 (de) 1987-04-23
NL183831B (nl) 1988-09-01
FR2299305A1 (fr) 1976-08-27
IT1057067B (it) 1982-03-10
FR2299305B1 (de) 1980-03-14
ES444576A1 (es) 1977-05-16
NL7600997A (nl) 1976-08-03
NL183831C (nl) 1989-02-01

Similar Documents

Publication Publication Date Title
DE69122687T2 (de) Cellulase, Verfahren zu deren Herstellung und deren Verwendung
DE3882242T2 (de) Fermentationsverfahren zur Herstellung von 2-Keto-L-Gulonsäuren.
DE2530861C3 (de) Verfahren zur Herstellung von 2-Keto-L-gulonsäure und deren Salzen
DE2343587A1 (de) Verfahren zur herstellung von 2-ketol-gulonsaeure
EP0152948B1 (de) Verfahren zur Herstellung von 6-Hydroxynikotinsäure
DE1442060A1 (de) Verfahren zur Herstellung und Verwendung von Amyloglucosidase
EP0069291A2 (de) Verfahren zur Herstellung optisch reiner D- oder L-Milchsäure
DE3027380C2 (de)
CH638470A5 (de) Verfahren zum abbau von cyanursaeure.
DE2619311A1 (de) Verfahren zur herstellung von l(+)weinsaeure
DE3049308A1 (de) Verfahren zur bildung des enzyms (alpha)-galactoxidase und zur hydrolyse von raffinose unter verwendung dieses enzyms
DE2600589A1 (de) Verfahren zur herstellung von weinsaeure
DE2402217C3 (de) Verfahren zur Herstellung von Proteinmaterial
DE1291744B (de) 3-(2-Nitro-3-chlorphenyl)-4-chlorpyrrol
DE3036413C2 (de) Aerobes mikrobiologisches Verfahren zur Herstellung von 2,5-Diketogluconsäure
DE2445581B2 (de) Verfahren zur herstellung von d-gluconsaeure-delta-lactam
DE2600682A1 (de) Verfahren zur herstellung von l(+)-weinsaeure
DE2138059C3 (de) Verfahren zur Herstellung von Glucose-Isomerase
DE3019450A1 (de) Verfahren zur gewinnung von glucosedehydrogenase und hierfuer geeigneter mikroorganismus
DE60010013T2 (de) Verfahren zur Herstellung von optisch aktivem 1,2,4-Butantriol und optisch aktivem 3-Hydroxy-gamma-butyrolacton mittels Mikroorganismen
DE3031334C2 (de) Mikrobiologisches Verfahren zur Herstellung von Cholansäurederivaten
DE2054310C3 (de) Verfahren zur Herstellung von (-)-(cis-1 ^-EpoxypropyO-phosphonsaure
DE1467883C3 (de) Verfahren zur Herstellung eines Antibiotikums
DE2202701C3 (de) Verfahren zur biotechnischen Herstellung von Zitronensäure
EP0114630A2 (de) Permeabilisiertes Schimmelpilzmycel mit intaktem immobilisiertem Glucoseoxidase-Katalasesystem sowie dessen Herstellung und Anwendung

Legal Events

Date Code Title Description
8110 Request for examination paragraph 44
D2 Grant after examination
8364 No opposition during term of opposition
8339 Ceased/non-payment of the annual fee