DE2244689C3 - Dekapeptid mit der Aminosäuresequenz des Gonadotropin freigebenden Hormons GnRH - Google Patents
Dekapeptid mit der Aminosäuresequenz des Gonadotropin freigebenden Hormons GnRHInfo
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Description
Beispielsweise bewirken geringe Dosen dieses Gn-RH, ester, der 2,4-Dinitrophenylester, das N-Hydroxy-
das weiblichen Schafen im Anöstruszyklus intravenös succinimid, die 2-, 3- oder 4-Fluorphenylester oder
injiziert wird, Ovulation. 30 ähnliche bekannte Ester von Pyroglutaminsäure
Die Formel von Gn-RH wurde mit der Amino- ebensogut geeignet.
Säuresequenz pyro-Glu-His-Trop-Ser-Tyr-Gly-Leu- Das geschützte Decapeptid der Formel (I) kann
Arg-Pro-Gly-NHj identifiziert. Um jedoch ein so durch Behandlung mit Fluorwasserstoffsäure in das
großes Molekül aus einfachen einzelnen Aminosäuren freie Decapeptid (oder Gn-RH) umgewandelt werden,
herzustellen, ist eine erhebliche Anzahl von Stufen 35 Während dieser Reaktion werden die Schutzgruppen
einschließlich mehrerer Kondensationsreaktionen er- R, R' und R" sämtlich durch Wasserstoff ersetzt,
forderlich. Um zu gewährleisten, daß diese Konden- Es ist auch möglich, die Schutzgruppen duich Hy-
sationen an den gewünschten Stellen stattfinden, drierung unter Verwendung eines Palladiumkataly-
müssen andere funktionell Gruppen am Molekül, sators zu entfernen.
die nicht an dieser Reaktion teilnehmen, vorüber- 40 Bei einer spezielleren Ausführungsform wird das
gehend durch Gruppen geschützt werden, die nach vorstehend genannte geschützte Nonapeptid, in dem
Belieben entfernt werden können. R und R' Benzylreste sind und R" eine NOa-Gruppe
Aufgabe der Erfindung ist ein mit Schutzgruppen ist, in Dimethylformamid in hoher Konzentration,
versehenes Decapeptid, aus dem nach einfachem Ver- vorzugsweise bei einer Molarität zwischen 0,1 und 1,0,
fahren die Schutzgruppen zur Darstellung des ge- 45 gelöst und der Pyroglutaminsäurepentachlorphenyl-
wünschten Gn-RH entfernt werden können. ester in einem Überschuß von 50 bis 200% über die
Gegenstand der Erfindung ist das Decapeptid pyro- äquimolare Menge bei einer Temperatur zwischen
GIu-(NIm-X)-His-Trp-(O-R)-Ser-(O-R')Tyr-Gly-Leu- 0 und 30°C zugesetzt. Nach einigen Stunden wird die
(N^-R'^Arg-Pro-Gly-NHj, worin X, R, R' und R" Reaktionslösung durch Chromatographie aufgear-Schutzgruppen
sind, die durch eine oder mehrere ehe- 50 beitet, wobei Chloroform, das zunehmende Mengen
mische Behandlungen, die die Decapeptidkette pyro- Methanol enthält, für die Elution verwendet wird.
GIu-His-Trp-Ser-Tyr-Gly-Leu-Arg-Pro-Gly-NH» nicht Die gewünschten Fraktionen des Eluats werden vernachteilig
beeinflussen, entfernt werden können, oder einigt und kristallisiert, wobei das reine Decapeptid,
X ein Wasserstoffatom ist. EUne bevorzugte Ausfüh- das die drei obengenannten Schutzgruppen oder äquirungsform
stellt das Decapeptid dar, in dem R und R' 55 valente Schutzgruppen enthält, erhalten wird.
Benzylreste, R" die Nitrogruppe und X ein Wasser- Zur Herstellung von Gn-RH wird das vorstehend gestoffatom bedeuten. nannte Material in ein gegen Fluorwasserstoff beständi-
Benzylreste, R" die Nitrogruppe und X ein Wasser- Zur Herstellung von Gn-RH wird das vorstehend gestoffatom bedeuten. nannte Material in ein gegen Fluorwasserstoff beständi-
Aus dem erfindungsgemäßen, mit Schutzgruppen ges Reaktionsgefäß gegeben und Anisol zugesetzt, um
versehenen Decapeptid lassen sich die Schutzgruppen die durch die einsetzende Reaktion gebildeten NO+ 2-nach
einem einfachen, einstufigen Verfahren ent- 60 und Benzylcarboniumionen aufzunehmen. Das Gefernen,
wodurch in hoher Ausbeute das gewünschte misch wird dann bei einer Temperatur zwischen 0 und
Gn-RH erhalten wird. Die genannten Schutzgruppen 30°C mit überschüssigem Fluorwasserstoff behandelt,
sind solche, die durch Hydrierung oder Behandlung Der etwa vorhandene überschüssige Fluorwasserstoff
mit Fluorwasserstoffsäure entfernbar sind. Jedoch wird nach ungefähr einer Stunde entfernt. Das Prokönnen
auch andere in ähnlicher Weise entfernbare 65 dukt wird getrocknet und gereinigt. Das auf diese
Schutzgruppen vorhanden sein, z. B. ein Substituent Weise hergestellte Gn-RH ist in biologischen Tests
am Iminostickstoff von Histidin. Gewöhnlich steht R äußerst aktiv und zeigt Aktivität in bezug auf Freifür
Tetrahydropyranyl, tert.-Butyl-, Acetyl, Benzyl- setzung des luteinisierenden Hormons und des die
FoUikelreifung und den Follikelsprung auslösenden mittels wie Dimethylacetamid oder Dimethylformamid
Hormons bei Warmblütern. oder anderer organischer Flüssigkeiten durchgeführt, Zur Herstellung des als Ausgangsmaterial für die die weder mit den Ausgangsmaterialien noch Produk-Zwecke
der Erfindung verwendeten Nonapeptids ten, die in jeder Stufe vorhanden sind, reagieren,
wird nach der folgenden Reaktionsfolge vorgegangen: 5 Natürlich kann die vorstehend beschriebene Reaktions-Der
N-Beiizyloxycarbonylprolin-p-nitrophenylester iolge durchgeführt werden, ohne die speziell genannten
wird mit Glycinamid, das vorzugsweise im Oberschuß Schutzgruppen in jeder beschriebenen Stufe zu verüber
die äquimolare Menge verwendet wird, umgesetzt. wenden. Beispielsweise können die zum Schutz der
Das erhaltene N-Benzyloxycarbonyl-prolylglycinamid freien Hydroxylgruppen in Serin oder Tyrosin verwird
durch Hydrierung oder Säurebehandlung in 10 wendeten Benzylreste durch Tetrahydropyranyl, tert.-das
ungeschützte Dipeptid umgewandelt. Das Prolyl- Butyl, Acetyl, Benzyloxycarbonyl, p-Methoxy-,
glycinamid wird dann mit N"-Benzy}oxycarbonyl- p-Nitro- oder p-Halogen-benzyloxycarbonyl und
N^-nitro-arginin zum doppelt geschützten Tripeplid im Falle von Tyrosin auch durch Triphenylmethyl
umgesetzt, aus dem die Benzyloxycarbonylgruppe oder Tosyl ersetzt werden. Die Nitrogruppe, die
durch Säurebehandlung entfernt wird, wobei Nm-Nitro- 15 die Aminogruppe in der Guanidinkomponente
arginyl-prolylglycinamid, nachstehend als (Νω-ΝΟ2)- von Arginin schützt, kann durch Umwandlung
Arg-Pro-Gly-NHj bezeichnet, erhalten wird. Das der Aminogruppe in eine Aminogruppe mit einer
letztere wird mit N-tert-Butyloxycarbonyl-Ieucin- Sulfon- oder Carbonsäure, z. B. Tosyl, Benzyloxyp-nitrophenylester
zum zweifach geschützten Tetra- carbonyl, p-Nitrobenzyloxycarbonyl oder Tetrachlorpeptid
umgesetzt, aus dem die tert.-Butyloxycarbonyl- ao isopropyloxyphthaloyl, ersetzt werden. Γη allen Fällen
gruppe durch Behandlung mit einer Säure entfernt müssen die Schutzgruppen natürlich so gewählt
wird, wobei Leu-tN^NO^Arg-Pro-Gly-N^ erhalten werden, daß sie durch eine oder mehrere einfache
wird. Dieses NO2-geschützte Tetrapeptid wird mit Behandlungen, die so mild sind, daß sie die Amino-N-tert.-Butyloxycarbonylglycin-p-nitrophenylester
zu säurekettenbindungen nicht beeinträchtigen, leicht einem zweifach geschützten Pentapeptid umgesetzt, 25 entfernt werden können. Gegebenenfalls können die
aus dem die Butyloxycarbonylgruppe wie im Falle des Schutzgruppen stufenweise entferni werden. Wenn
Tetrapeptids entfernt wird, wobei GIy-Leu-(Nffl-NO2)- beispielsweise R und R' die üblichen Benzyläther oder
Arg-Pro-Gly-NHj gebildet wird. Dieses Pentapeptid substituierten Benzyläther sind, können diese Gruppen
wird wiederum mit N-tert.-Butyloxycarbonyl-O-benzyl- durch Hydrierung entfernt werden, und anschließend
lyrosin-p-nitrophenylester zu einem Hexapeptid mit 30 kann die Schutzgruppe am Arginylfragment durch
drei Schutzgruppen umgesetzt. Die tert.-Butyloxy- eine geeignete Reaktionsstufe, die die Aminosäuregliecarbonylgruppe
wird durch Behandlung dieses Ma- der von Gn-RH nicht nachteilig beeinflußt, entfernt
terials mit Trinuoressigsäure/Methylenchlorid (1:1) werden. Natürlich kann, falls gewünscht, eine solche
entfernt, wobei das zweifach geschützte Hexapeptid Reaktionsfclge auch umgekehrt werden.
(O-Bzl)Tyr-Gly-Leu-(N'°-NOi)Arg-Pro-Gly-NH2 er- 35 Die Herstellung des neuen Decapeptids wird durch halten wird. die folgenden Beispiele veranschaulicht.
(O-Bzl)Tyr-Gly-Leu-(N'°-NOi)Arg-Pro-Gly-NH2 er- 35 Die Herstellung des neuen Decapeptids wird durch halten wird. die folgenden Beispiele veranschaulicht.
Das vorstehend genannte zweifach geschützte Hexa- R . .
peptid wird mit N-tert.-Butyloxycarbonyl-O-benzyl- Beispiel 1
serin-p-nitrophenylester zu einem Hepaapeptid umge- Zu einer Lösung von 836 mg His-Trp-(O-Bzl)Sersetzt, das vier Schutzgruppen trägt. Die tert.-Butyl- 40 (O-Bzl)-Tyr-Gly-Leu-(N™-NO2)Arg-Pro-Gly-NH2 oxycarbonylgruppe wird wie im Falle des Hexapeptids (0,64^ mMol) in 2 ml Dimethylformamid wurden entfernt, wobei das dreifach geschützte Heptapeptid 755 mg Pyroglutaminsäurepentachlorphenylester (O-BzO-Ser-fO-BziyTyr-Gly-Leu-iN^-NOjOArg-Pro- (2 Mol) gegeben. Das Gemisch wurde 16 Stunden bei GIy-NH2 gebildet wird. Das letztere wird mit N-tert.- Raumtemperatur stehengelassen. Das Lösungsmittel Butyloxycarbonyl-tryptophan-p-nitrophenylester um- 45 wurde dann abgedampft und das Produkt in etwa 4 ml gesetzt. Die anschließende Entfernung der tert.-Butyl- eines 30% Methanol enthaltenden Gemisches von oxycarbonylgruppe mit Trifluoressigsäure/Methylen- Methanol und Chloroform gelöst. Diese Lösung wurde chlorid (1:1), das eine geringe Menge Mercapto- auf eine Chromatographiesäule (30 cm hoch, 2,4 cm äthanol enthält, ergibt das dreifach geschützte Octa- Durchmesser) aufgegeben, die 45 g Kieselgel enthielt, peptid Trp-(O-Bzl)Ser-(O-Bzl)Tyr-Gly-LeU-(N^-NO2)- 5° Die Säule wurde zunächst mit 100 ml eines 5°„ Me-Arg-Pro-GIy-NH,. Abschließend wird dieses Material thanol enthaltenden Gemisches von Methanol und mit N-tert.-Butyloxycarbonylhistidin (das wahlweise Chloroform, anschließend mit 15% Methanol in eine zusätzliche Schutzgruppe am Imidazolstickstoff Chloroform eluiert, und anschließend wurde das geenthält und nachstehend als (NIm-X)His bezeichnet wünschte Produkt mit 300 ml Methanol-Chloroform wird) und einem Aktivierungsmittel zum entsprechen- 55 (1: 2) eluiert. Kleine Fraktionen dieses Eluats wurden den Nonapeptid umgesetzt, aus dem die tert.-Butyl- durch Dünnschichtchromatographie auf ihre Reinheit oxycarbonylgruppe wi; in der vorhergehenden Stufe untersucht. Die das gewünschte Material enthaltenden entfernt wird. Das drei (oder vier) Schutzgruppen Fraktionen wurden vereinigt. Nach dem Abdampfen enthaltende Nonapeptid hat die folgende Amino- des Lösungsmittels aus diesem Gemisch wurde der säuresequenz:(NIm-X)His»Trp-(O-Bzl)Ser-(O-Bzl)Tyr- 60 Rückstand in heißem Methanol gelöst und auf Raum-Gly-Leu-tN^NO^Arg-Pro-Gly-NHj. temperatur gekühlt, wobei 412 mg pGlu-His-Trp-
peptid wird mit N-tert.-Butyloxycarbonyl-O-benzyl- Beispiel 1
serin-p-nitrophenylester zu einem Hepaapeptid umge- Zu einer Lösung von 836 mg His-Trp-(O-Bzl)Sersetzt, das vier Schutzgruppen trägt. Die tert.-Butyl- 40 (O-Bzl)-Tyr-Gly-Leu-(N™-NO2)Arg-Pro-Gly-NH2 oxycarbonylgruppe wird wie im Falle des Hexapeptids (0,64^ mMol) in 2 ml Dimethylformamid wurden entfernt, wobei das dreifach geschützte Heptapeptid 755 mg Pyroglutaminsäurepentachlorphenylester (O-BzO-Ser-fO-BziyTyr-Gly-Leu-iN^-NOjOArg-Pro- (2 Mol) gegeben. Das Gemisch wurde 16 Stunden bei GIy-NH2 gebildet wird. Das letztere wird mit N-tert.- Raumtemperatur stehengelassen. Das Lösungsmittel Butyloxycarbonyl-tryptophan-p-nitrophenylester um- 45 wurde dann abgedampft und das Produkt in etwa 4 ml gesetzt. Die anschließende Entfernung der tert.-Butyl- eines 30% Methanol enthaltenden Gemisches von oxycarbonylgruppe mit Trifluoressigsäure/Methylen- Methanol und Chloroform gelöst. Diese Lösung wurde chlorid (1:1), das eine geringe Menge Mercapto- auf eine Chromatographiesäule (30 cm hoch, 2,4 cm äthanol enthält, ergibt das dreifach geschützte Octa- Durchmesser) aufgegeben, die 45 g Kieselgel enthielt, peptid Trp-(O-Bzl)Ser-(O-Bzl)Tyr-Gly-LeU-(N^-NO2)- 5° Die Säule wurde zunächst mit 100 ml eines 5°„ Me-Arg-Pro-GIy-NH,. Abschließend wird dieses Material thanol enthaltenden Gemisches von Methanol und mit N-tert.-Butyloxycarbonylhistidin (das wahlweise Chloroform, anschließend mit 15% Methanol in eine zusätzliche Schutzgruppe am Imidazolstickstoff Chloroform eluiert, und anschließend wurde das geenthält und nachstehend als (NIm-X)His bezeichnet wünschte Produkt mit 300 ml Methanol-Chloroform wird) und einem Aktivierungsmittel zum entsprechen- 55 (1: 2) eluiert. Kleine Fraktionen dieses Eluats wurden den Nonapeptid umgesetzt, aus dem die tert.-Butyl- durch Dünnschichtchromatographie auf ihre Reinheit oxycarbonylgruppe wi; in der vorhergehenden Stufe untersucht. Die das gewünschte Material enthaltenden entfernt wird. Das drei (oder vier) Schutzgruppen Fraktionen wurden vereinigt. Nach dem Abdampfen enthaltende Nonapeptid hat die folgende Amino- des Lösungsmittels aus diesem Gemisch wurde der säuresequenz:(NIm-X)His»Trp-(O-Bzl)Ser-(O-Bzl)Tyr- 60 Rückstand in heißem Methanol gelöst und auf Raum-Gly-Leu-tN^NO^Arg-Pro-Gly-NHj. temperatur gekühlt, wobei 412 mg pGlu-His-Trp-
Durch Elementaranalysen und das NMR-Spektrum (O-Bzl)Ser-(O-Bzl)Tyr-Gly-Leu- (Nm-N02) Arg-Pro-
wurde nachgewiesen, daß diese Peptidzwischenver- GIy-NH2 erhalten wurden, das hohe Reinheit, einen
bindung die zugeordnete Struktur hatte und, wie die Rf-Wert in 33%igem CH3OHZCHCl8 von 0,3, einen
Dünnschichtchromatographie ergab, sich als Einzel- 65 f,%] 5·-Wert von —25,2° (el; AsOH) und einen
verbindung verhielt. Schmelzpunkt von 166 bis 1690C hatte. Sowohl die
Alle vorstehend beschriebenen Kondensationsreak- Elementaranalyse auf Stickstoff als auch das NMR-
tionen werden in Gegenwart eines inerten Lösungs- Spektrum bestätigten die erwartete Struktur.
Durch Ersatz des verwendeten His-Trp-(O-Bzl)Ser-(O-BzOTyr-Gly-Leu-fN^-NO^Arg-Pro-Gly-N
H2 durch andere Nonapeptide der gleichen Sequenz, jedoch mit
anderen Schutzgruppen, können die folgenden Decapeptide in der gleichen Weise hergestellt werden:
pGlu-His-Trp-(O-TB)Ser-(O-Bz!)Tyr-GIy-Leu-(N^-NOJArg-Pro-Gly-NIij
pGlu-Gis-Trp-(O-Z)Ser-(O-Bzl)Tyr-Gly-Leu-(N«°-NO2)Arg-Pro-Gly-NH2
p-Glu - His-Trp-(O-THP)Ser-(O-BzI)Tyr-Gly-Leu-(IsVNO2)Arg-Pro-Gly-NH2
pGlu-His-Trp-(O-MeOBzl)Ser-(O-Bz!)Tyr-Gly-
Leu-(N»-NO2)Arg-Pro-Gly-NH2
pGlu-His-Trp-iO-AcJSer-CO-BzlJTyr-Gly-Leu-
(N»-NO2)Arg-Pro-Gly-NH2
pGlu-His-Trp-(O-Bzl)Ser-(O-Z)Tyr-Gly-Leu-
(N°>-NO2)Arg-Pro-Gly-NH2
pGlu-His-Trp-(O-Bzl)Ser-(O-T1I)Tyr-Gly-Leu-
(N«-NO2)Arg-Pro-GIy-NH2
pGlu-His-Trp-CO-BzIJSer-CO-AcJTyr-Gly-Leu-(N»-NO2)Arg-Pro-Gly-NH2
pGlu-His-Trp-(O-BzI)Ser-(O-Tos)Tyr-Gly-Leu-(N»-NO2)Arg-Pro-Gly-NH2
pGlu-His-Trp-(O-Bzl)Ser-(O-THP)Tyr-Gly-Leu-(N<°-NO2)Arg-Pro-Giy-NH2
pGlu-His-Trp(O-Bzl)Ser-(O-BTu)Tyr-Gly-Leu-(N«>-NO2)Arg-Pro-Gry-NH2
pGlu-His-TrpiO-BzDSer-iO-MeOBzOTr-Gly-Leu-(
NKNO2) Arg-Pro-Gly-N H2
Hierin stehen Z für Benzyloxycarbonyl, THP für Tetrahydropyranol, TBu für tert.-Butyl, MeOBzI für
p-Methoxybenzyl, Tos fürTosyl (= p-Toluolsulfonyl),
Ac für Acetyl und TRI für Triphenylmethyl.
Als weitere blockierende Gruppen eignen sich beispielsweise die Trifluoracetylgruppe und andere substituierte
Alkylcarbonylgruppen für Tyr und Ser und verschiedene Gruppen für das Imidazol-N in His, die
abgespalten werden können, ohne die Peptidkette nachteilig zu beeinflussen. In allen Fällen kann das N"
von Arg die Tosylgruppe oder eine andere Benzyloxycarbonylgruppe oder Tetrachlorisopropyloxyphthaloylgruppe
an Stelle der oben verwendeten Nitrogruppe tragen. In jedem Fall verläuft die vorstehend
beschriebene Reaktion in der gleichen Weise, und alle aufgeführten Verbindungen können nach dem
im Beispiel 2 beschriebenen Verfahren oder einem ähnlich einfachen Verfahren in Gn-RH umgewandelt
werden, so daß diese Verbindungen ebenso brauchbare und wertvolle Vorstufen für Gn-RH sind. Natürlich
kann es notwendig sein, die Synthese zur Herstellung des beschriebenen geschützten Nonapeptids leicht zu
modifizieren, wenn das Nonapeptid hergestellt wird, das andere Schutzgruppen an den Arginyl-N-, den
Seryl- oder Tyrosylkomponenten trägt, ohne jedoch die beschriebene Synthese wesentlich zu verändern.
Die einzelnen Aminosäuren, die die vorstehend genannten Schutzgruppen enthalten, sind bekannt,
und alle werden häufig in Peptidsynthesen verwendet. Sie werden in der englischen Ausgabe des Handbuchs
von Schröder und Mitarbeitern, »The Peptides I« (Academic Press 1965) auf den Seiten 167 bis 174 für
Arginin, auf den Seiten 210 bis 212 für Serin und auf den Seiten 222 bis 225 für Tyrosin sowie in »Proceedings
of the 8th European Peptide Symposium«, herausgegeben vor» Beyerman (North Holland
Publishing Co., Amsterdam 1967), S. 50 ff., beschrieben.
Wenn der beim vorstehend beschriebenen Versuch verwendete Pyroglutaminsäureester durch eine äquivalente
Menge des Esters ersetzt wird, der eine Schutzgruppe,
z. B. eine N-Benzyloxycarbonyl-, N-tert.-Butyloxycarbonyl-,
N-o-Nitrophenylsulfenyl- oder
ίο N-2-(Diphenyl)isopropyloxycaibonylgruppe oder andere
bekannte blockierende Gruppen trägt, findet die gleiche Kondensation statt, aber das gebildete Decapeptid
enthält eine zusätzliche Schutzgruppe, die getrennt nach bekannten Verfahren entfernt werden kann
oder nach dem im folgenden Beispiel beschriebenen Verfahren entfernt wird.
Das gleiche geschützte Decapeptid wie im Beispiel 1
ao (500 mg) wurde in ein aus einem Chlortrifluoräthylenpolymerisat
der Handelsbezeichnung »Kel-F« (Hersteller Kellogg Co.) bestehendes Reaktionsgefäß des Typs
gegeben, der von Sakakibara in Bull. Chem. Soc. Japan 40, 2164 (1967) beschrieben wird. Darauf wurde
1,0 ml Anisol zugesetzt. Diesem Gemisch wurden 10 ml Fluorwasserstoff, der über Kobalttrifluorid getrocknet
worden war und als Flüssigkeit aus einem HF-Behälter bei — 200C entnommen wurde, zugegeben.
Das Gemisch wurde 1 Std. bei Raumtemperatur
stehengelassen. Überschüssiger Fluorwasserstoff wurde mit Stickstoffgas aus dem Reaktionsgefäß gespült.
Das Reaktionsprodukt wurde fünfmal mit Äther extrahiert, um das Anisol zu entfernen. Die Ätherlösung
wurde über Phosphorpentoxyd und Kaliumhydroxyd 16 Stunden getrocknet. Das Produkt wurde
dann in Wasser und Essigsäure gelöst und einmal mit Äther extrahiert und filtriert. Das wäßrige Filtrat
wurde eingedampft und das Produkt in Eisessig gelöst und gefriergetrocknet.
Das rohe synthetische Material wurde in 0,1 N-Essigsäure gelöst. Die Lösung wurde der Gelfiltration durch
»Sephadex G-15« unterworfen. Die der Hauptkomponente entsprechenden eluierten Fraktionen wurden
vereinigt und gefriergetrocknet. Eine Probe des gereinigten synthetischen Materials zeigte identische
Diagramme bzw. Chromatogramme, wenn sie der zweidimensionalen Dünnschichtelektrophorese-Chromatographie
auf Cellulose-Dünnschichtplatten mit dem Dünnschicht-Elektrophoresesystem Pyridin-Essigsäure
pH 6,5 und dem Dünnschichtchromatographie-Lösungsmittel n-Butanol/Essigsäure/Wasser 4:1:1
unterworfen wurde. Eine Probe dieses synthetischen Präparats zeigte biologische Aktivität, die derjenigen
der besten Proben des natürlichen Hormons, über die bisher berichtet wurde, entsprach, ermittelt durch den
Test auf Ascorbinsäureverarmung der Ovarien (»ovarian ascorbic acid depletion assay) (P a r 1 ο w,
»Human Pituitary Gonadotropins«, S. 300, 1961, Springfield, Illinois) für LH und durch den äußerst
spezifischen Biotest (St eel man und P oh ley, Andocrinology, Bd. 53, S. 604, 1953) für FSH. Die
vorstehend beschriebene Aufarbeitung kann nach beliebigen verschiedenen bekannten Methoden geändert
werden. Beispielsweise können andere Typen von Gelfiltrationssystemen, die Gegenstromverteilungsmethode,
die Verteilungschromatographie, Ionenaustauschchromatographie, Elektrophorese und Adsorptionschromatographie
angewendet werden.
Claims (2)
1. Das Decapeptid pyro-GIu-(N 1^-X)-His- phenylmethyl oder Tosyl und R" für Nitro, Tosyl,
Trp-(O-R)-Ser-(O-R')Tyr-Gly-Leu-(N»-R")Arg- BenzyLoxycarbonyl, p-Nitrobenzyloxycarbonyl oder
PrO-GIy-NH2, worin X, R, R' und R" Schutz- 5 TetracbJorisopropyloxyphthaloyl, die eines der Wassergruppen
sind, die durch eine oder mehrere ehe- Stoffatome in den Aminogruppen der Guanidinmische
Behandlungen, die die Decapeptidkette komponente in Arg substituieren. Gegebenenfalls
Pyro-Glu-His-Trp-Ser-Tyr-Gly-Leu-Arg-Pro- kann der Iminostickstoff m der Histidylkomponente
GIy-NH2 nicht nachteilig beeinflussen, entfernt einen Benzylrest, Tosylrest, 2,4-Dinitrophenylrest oder
werden können, oder X ein Wasserstoffatom ist io andere Schutzgruppen, die auf dem Gebiet der
2. Peptid nach Anspruch 1, dadurch gekenn- Peptide bekannt sind, tragen.
zeichnet, daß R und R' Benzylreste, R" die Das geschützte Decapeptid der Formel I wird her-
Nitrogruppe und X ein Wasserstoffatom sind. gestellt durch Umsetzung der geschützten Nona-
peptids His-Trp-(O-R)Ser-(O-R')Tyr-Gly-Leu-
is (N"-R")Arg-Pro-Gly-NHg mit einem aktiven Ester
Die Erfindung betrifft ein Decapeptid mit der oder einem gemischten Anhydrid von Pyroglutamin-Aminosäuresequenz
des Gonadotropin freigebenden säure oder anderen bekannten Derivaten der letzteren
Hormons GnRH, das ein Zwischenprodukt zur ein- in Gegenwart eines inerten Lösungsmittels. Der Ausfachen
Herstellung des genannten Hormons darstellt. druck »aktiver Ester« wird hier gebraucht, um auszu-
Nachdem kürzlich die Aminosäuresequenz des 20 drücken, daß die Carbonsäuregruppe der Pyroglutamin-
Gonadotropin (Gn) freigebenden Hormons (RH) auf- säure mit einer Gruppe verestert ist, die sich durch
geklärt worden ist, ist es äußerst erwünscht, diese Umsetzung des Esters mit einem Amin leicht ersetzen
Substanz in einem praktischen Maßstab in einer läßt und, wenn sie ersetzt wird, in das gewünschte
solchen Reinheit herzustellen, daß sie therapeutisch Amid und ein inertes Nebenprodukt übergeht. Ein
in Fällen von Hormonmangel und möglicherweise als as geeigneter »aktiver Ester« für die vorstehend genannten
Regulierungsmittel für den Ovulationszyklus bei Reaktionen ist der Pentachlorphenylester, jedoch sind
weiblichen Warmblütern verwendet werden kann. auch der p-Nitrophenylester, der 2,4,5-Trichlorphenyl-
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US00180160A US3826794A (en) | 1971-09-13 | 1971-09-13 | Protected decapeptide derivatives of gonadotropin releasing hormone |
US18016071 | 1971-09-13 |
Publications (3)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE2244689A1 DE2244689A1 (de) | 1973-03-22 |
DE2244689B2 DE2244689B2 (de) | 1976-05-13 |
DE2244689C3 true DE2244689C3 (de) | 1977-01-13 |
Family
ID=
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