DE2047317B2 - Verfahren zur Herstellung einer Protease mit der Bezeichnung AM-Protease aus dem Pilz Armillaria mellea, diese Protease selbst und sie enthaltende pharmazeutische Stoffzusammensetzungen - Google Patents
Verfahren zur Herstellung einer Protease mit der Bezeichnung AM-Protease aus dem Pilz Armillaria mellea, diese Protease selbst und sie enthaltende pharmazeutische StoffzusammensetzungenInfo
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Description
Es wurde gefunden, daß der reife Fruchtkörper oder der Hut des Pilze* Armillaria mellea eine Quelle
für ein Enzym darstellen kann, das eine fibrinogenolytische und fibrinolytische Aktivität besitzt und Antikoagulationseffekte
aufweist. Der Pilz Armillaria mellea wächst parasitär oder saprophytisch auf Bäumen
und kommt überall in Großbritannien und anderen Ländern der Welt vor.
Eine kurze Beschreibung des Pilzes ist wie folgt: Hut 5 bis 15 cm Durchmesser, zunächst rund, dann
abgeflacht und unter Umständen in der Mitte eingesenkt. Die Farbe variiert zwischen gelblich bis tiefbraun. Stengel 7,5 bis 15 cm lang und bis zu 13 mm
dick. Ring weißlich. Lamellen weißlich bis fleischfarben, angewachsen oder leicht am Stengel herablaufend
. Sporen unter dem Mikroskop farblos, 8 bis 9 X 5 bis 6 μπι. Um die enzymatische Substanz zu isolieren,
werden die Fruchtkörper am besten von ungefähr Augsut bis zu den ersten Frösten geerntet. Nach der
Ernte sollen die Fruchtkörper bei ungefähr —25° C oder noch tiefer gelagert werden, bis das weiter unten
beschriebene Isolationsverfahren ausgeführt wird.
Es wurde gefunden., daß die genannte enzymatische Substanz nicht von allen Species von Armillaria mellea
erhältlich ist. Die genannte enzymatische Substanz wurde aus etwas mehr als einem Drittel (etwa 50 aus
einer Gesamtzahl von annähernd 140) der Pilzproben erhalten, die 1969 in Großbritannien gesammelt wurden.
Der Grund, warum ein Teil der Proben nicht die enzymatische Substanz lieferte, ist unbekannt. Species
von Armillaria mellea, die für die Öffentlichkeit zugängig sind und die die genannte enzymatische Substanz
liefern, sind: (1) die Species, die von Ministry of Technology, Forest Products Research Laboratories,
Princes Risborough, Aylesbury, Buckinghamshire, England als FPRL 6H identifiziert worden ist
und von dort auch allgemein erhältlich ist (Numerierung durch die Anmelderin: ACC 3659); und (2) die
Species, die durch das Centraalbüro voor Schimmelcultures, Baarn, Niederlande, einfach als »Armillaria
mellea« identifiziert wurde und von dort allgemein erhältlich ist (Numerierung durch die Anmelderin:
ACC 3253).
Bei dieser enzymatischen Substanz handelt es sich um eine Peptidyl-Peptid-Hydrolase, die in dieser BeSchreibung
als »AM-Protease« bezeichnet wird. AM-Protease besitzt die folgenden charakteristischen
Eigenschaften:
(1) Sie katalysiert den hydrolytischen Abbau von Fibrinogen und Fibrin (das heißt, daß sie fibrinogenolytische
und fibrinolytische Aktivität zeigt). Die Aktivität der AM-Protease wurde in vitro durch die folgenden bekannten Tests bestimmt:
(a) Inkubation von AM-Protease mit gereinigtem Fibrinogen und Zusatz von Thrombin zu entnommenen
Proben in bestimmten Zeitabständen. Die Zeit, die für den Verlust der Gerinnungsfunktion
erforderlich ist, ist ein Maß für die fibrinogenolytische Aktivität.
(b) Inkubation von vorher hergestelltem Fibringerinnsel mit AM-Protease und Messung der Geschwindigkeit
des Verschwindens des Gerinnsels. Diese Messung kann dadurch erleichtert werden, daß man Gerinnsel aus mit J125 markiertem
Fibrinogen herstellt und das Nachlassen der Radioaktivität mißt. Dies gibt ein Maß für die
fibrinolytische Aktivität.
(c) Zusammenmischen von AM-Protease, Thrombin und Fibrinogen und Beobachtung der Lebensdauer
des so gebildeten Gerinnsels. Dies gibt ein Maß für die fibrinogenolytische und fibrinolytische
Aktivität von AM-Protease.
In vivo wird die Aktivität von AM-Protease an Versuchstieren (Kaninchen) dadurch bestimmt, daß
ihr Effekt auf den Fibrinogenspiegel in Tieren und auf den Proteasespiegel im Plasma gemessen wird.
Der erstere Effekt kann dadurch bestimmt werden, daß man die Verlängerung der Gerinnungszeit des gesamten
Bluts oder des Plasmas gegenüber der Vergleiche- oder Vorbehandlungsgerinnzeit nach Zugabe
einer Standardmenge Thrombin mißt. Der letztere Effekt kann durch ein ähnliches Verfahren gemessen
werden, wie es in l(b) angegeben ist.
(2) AM-Protease verhält sich beim Durchgang durch eine Kolonne aus vernetzten) Dextran-Gel
(»Sephadex« GlSO; »Sephadex« ist ein Warenzeichen), welches für Proteine mit einem Molekulargewicht
bis zu 400000 durchlässig ist, als einzige Komponente. Das Volumen des Puffers (Eluationsmüttel),
in welchem AM-Protease aus der Kolonne austritt, entspricht demjenigen, das erforderlich ist, ein Protein
mit einem Molekulargewicht von ungefähr 30000 zu eluieren. Das genannte Eluationsmittel ist ein 0,3m
NaCl 0,05m pH 7,4 Tris/HCl-Puffer, welcher die folgende
Zusammensetzung aufweist (und mit dem die Eluation bei ungefähr 2° C ausgeführt wird):
Natriumchlorid 17,5 g/l in Wasser
Tris-(hydroxymethyl)-aminomethan
6,05 g/I in Wasser ausreichend m Salzsäure, so daß
ein pH von 7,4 erzielt wird.
ein pH von 7,4 erzielt wird.
(3) AM-Protease verhält sich in der Zelle einer analytischen Ultrazentrifuge bei 26 X 104 g als einzige
Komponente. Der Sedimentationskoeffizient: von AM-Protease im 0,3 m NaCl 0,05 m pH 7,4 Tris/
HCI-Puffer [siehe oben (2)] beträgt bei 20° C, das ist der S?0W-Wert, ungefähr 2,35 x 10"13 see.
(4) Bei Elektrophorese von AM-Protease in PoIyacrylamid-Gel
ist offensichtlich nur eine Komponente vorhanden, und diese Komponente besitzt eine Wanderung
entsprechend einem y-Globulin. Das PoIyacrylamid-Gel
hatte ein Acrylamid/Bisacrylamid-Verhältnis von 150:1. Die Elektrophorese wurde ungefähr 1 st bei 2 mA/cm2 ausgeführt. Der verwendete
Puffer (pH 4,3, /3-Alanin/Essigsäure [0,3 m])
bestand aus 0-Alanin (26,73 g/1 in Wasser) und war durch Zusatz von Eisessig auf pH 4,3 eingestellt.
(5) Die N-endständige Aminosäure von AM-Protease ist Isoleucin.
(6) AM-Protease baut bei pH 7 leicht Casein ab und bildet Bruchstücke, die in Trichloressigsäure löslich
sind. Der Digestionsgrad ist viel keiner als derjenige, der durch Trypsin, Chymotrypsin oder Plasmin
erzeugt wird. Sie verursacht einen geringen Abbau des Serum-Albumin oder y-Globulin, auch bei längerer
Inkubation. Sie verursacht einen starken Abbau von Fibrinogen. Sie hat keine Wirkung auf niedriger molekulare
Substrate (beispielsweise a-N-Acetylglycyl-L-lysin-methylester,
a-N-Acetyl-L-lysinmethylester,
a-N-p-Toluolsulfonyl-L-arginin-methylester, ot-N-Acetyl-L-tyrosin-äthylester
oder L-Tryptophanäthylester), welche gewöhnlich dazu verwendet werden,
trypsinartige oder chymotrypsinartige Enzyme zu charakterisieren. Sie wirkt auf die /3-Kette von oxidiertem
Insulin, wobei die folgenden Aminoendgruppen in Erscheinung treten: Tyrosin, Lysin und in beschränktem
Ausmaß Leucin. In dieser Hinsicht unterscheidet sie sich auch (siehe oben) von Trypsin und
Chymotrypsin.
Gemäß der Erfindung kann AM-Protease dadurch hergestellt werden, daß A entweder folgende Arbeitsschritte angewendet werdet.:
1. Mahlen oder anderweitige Zerkleinerung, von reifen Fruchtkörpern von diese Protease bildenden
Vertretern von Armillaria mellea und Extraktion dieses Materials mit Wasser, um einen
wäßrigen Extrakt herzustellen;
2. Ausfällung unerwünschter verunreinigender Proteine aus dem wäßrigen Extrakt mittels mindestens
eines mit Wasser mischbaren organischen Lösungsmittels bei einer geeigneten Temperatur,
bei einem geeigneten pH und bei einer geeigneten Ionenkonzentration, und Abtrennung
der ausgefallenen Proteine durch herkömmliche Maßnahmen;
-i 3. Ausfällung der rohen AM-Protease aus der Lösung
durch Zusatz mindestens eines mit Wasser mischbaren organischen Lösungsmittels zur Lösung;
4. teilweise Reinigung der rohen AM-Protease to durch Chromatographie; und
5. Reinigung der erhaltenen unreinen AM-Protease mittels einer Molekularsiebtechnik -
oder das B ein die AM-Protease bildender Vertreter von Armillaria mellea auf einem Nährmedium bei un-
Ii gefähr 25° C gezüchtet und hierauf die AM-Protease
aus dem erhaltenen Myzelium durch die unter A 1 bis 5 angegebenen Arbeitsschritte gewonnen wird, mit
dem Unterschied, daß die reifen Fruchtkörper durch das Myzelium ersetzt werden.
Die Arbeitsschritte unter A1 bis 5 können bei einer
Temperatur von ungefähr 2° C ausgeführt werden.
' Die durch das vorstehend beschriebene Isolationsverfahren
erhaltene AM-Protease erscheint als im wesentlichen homogen, wenn die üblichen biophysi-
r> kaiischen Kriterien herangezogen werden, das heißt
Sedimentationseigenschaften, elektrophoretische Eigenschaften und Verhalten bei Gelfiltration und in Ionenaustauschkolonnen.
In allen Fällen zeigt sich die Homogenität durch das Auftreten einer schmalen
in Proteinzone, welche eine symmetrische, nahezu
Gaußsche Verteilung um eine Spitze hat. Trotzdem ist es möglich, daß AM-Protease eine Mischung aus
nahe verwandten isofunktionellen Enzymen ist.
Die beiden oben beschriebenen Möglichkeiten der
π Isolation werden nun genauer behandelt:
Verfahrensweise A
I. Wie bereits erwähnt, befinden sich die Fruchtkörper von Armillaria mellea während des Spätsom-
4(i mers und Herbsts im richtigen Reifestadium. In Großbritannien
reifen sie in der Zeit vom August bis zum November. In diesem Zustand sind die Fruchtkörper
gelb bis tiefbraun und ziemlich flach oder leicht eingesenkt. Wie bereits erwähnt, sind die Fruchtkörper, die
4-, von den öffentlich zugänglichen Species ACC 3659
(FPRL 6H) und ACC 3253 (»Armillaria mellea« von Centraalbureau voor Schimmelcultures, Baarn, Niederlande)
Quellen für AM-Protease.
Die reifen Fruchtkörper können mit Wasser in ei-
i(i nem mechanischen Mischer bei 2 bis 4° C homogenisiert
werden. Das resultierende Gemisch wird dann durch Filtration oder Zentrifugation getrennt, und
beide Phasen (d. h. die feste Phase und die wäßrige Phase) werden aufbewahrt. Der größte Teil der AM-
Vi Protease geht bei dieser Stufe in die wäßrige Phase.
Gegebenenfalls wird die feste Phase entweder (a) gefriergetrocknet, mit festem Kohlendioxid gemahlen
und dann mit Wasser von 2 bis 4° C extrahiert oder (b) gemeinsam mit einem geeigneten Schleifmittel,
bo wie z. B. Sand, und mit Wasser von 2 bis 4° C gemahlen
werden, worauf dann das resultierende Gemisch durch Filtration oder Zentrifugation getrennt wird. In
jedem Fall wird etwas AM-Protease im zweiten wäßrigen Extrakt erhalten. Der wäßrige Extrakt oder die
^r1 kombinierten wäßrigen Extrakte, je nachdem, wird
bzw. werden dann zur Lagerung gefriergetrocknet oder direkt in der Stufe (2.) verwendet. Der wäßrige
Extrakt kann in einem gewissen Ausmaß dunkel wer-
den. Dies hat seinen Grund vermutlich in der Wirkung einer Polyphenoloxidase. Dieses Dunkelwerden kann
dadurch verhindert werden, daß man immer, wenn möglich, unter Stickstoff arbeitet un.j dem Extraktionswasser
mindestens einen Tyrosinaseinhibitor zusetzt, wie z. B. Natriurabenzoat oder Natriumascorbat
in einer 10""1- bis lO^-molaren Konzentration.
II. Mit Wasser mischbare organische Lösungsmittel, die zum Ausfällen der unerwünschten Proteine
verwendet werden können, sind z. B. Alkanole mit bis zu 3 Kohlenstoffatomen oder Ajkanone mit bis
zu 4 Kohlenstoffatomen, wie z. B. Äthanoi, n-Propanol, Isopropanol oder Aceton, sowie Mischungen
derselben. Diese organischen Lösungsmittel können gegebenenfalls gemeinsam mit einem Dialkyläther mit
bis zu 5 Kohlenstoffatomen, wie z. B. Diäthyläther, verwendet werden. Die Ausfällung wird im allgemeinen
bei —10 bis 100C und insbesondere bei —2 bis
2° C und bei einem pH von 5 bis 7, je nach dem verwendeten Lösungsmittel, ausgeführt. Ein Überschuß
an Lösungsmittel sollte nicht verwendet werden, da hierdurch nicht nur die unerwünschten Proteine, sondern
auch AM-Protease selbst ausgefällt wird. Die unterwünschten Proteine werden durch ein herkömmliches
Verfahren, wie. z. B. durch Filtration oder Zentrifugieren, abgetrennt.
III. Geeignete organische Lösungsmittel für die Ausfällung der rohen AM-Protease sind diejenigen,
die unter (II.) erwähnt wurden. Es werden auch ähnliche Temperatur- und pH-Bedingungen wie unter (II.)
verwendet. Die rohe AM-Protease, die ausgefällt wird, wird durch irgendein herkömmliches Verfahren,
wie z. B. Filtration oder Zentrifugation, gesammelt, worauf sie vorzugsweise mit einem geeigneten Lösungsmittel,
wie z. B. eiskaltes 70%iges wäßriges Äthanol, gewaschen wird. Die rohe AM-Protease
wird dann gegebenenfalls (a) in eiskaltem destilliertem Wasser aufgelöst und gefriergetrocknet oder (b)
aufeinanderfolgend bei —2 bis 2° C mit trockenem Äthanol und Diäthyläther gewaschen und dann bei
-2 bis 2° C im Vakuum getrocknet.
IV. Die auf diese Weise erhaltene rohe AM-Protease enthä'v nach wie vor verhältnismäßig große
Mengen unerwünschter Proteine, von denen einige unter Ausnutzung der unterschiedlichen Affinitäten
von AM-Protease und der unerwünschten Proteine gegenüber chromatographischen Kationenaustauschmaterialien
abgetrennt werden können, wie z. B. Materialien, die Carboxymethylradikale enthalten, die an
eine Polysaccharidmatrix gebunden sind, wie z. B. Carboxymethylcellulose. Die Kolonne wird mit einem
wäßrigen Puffer von pH 5 bis 7, wie z. B. pH 6, und bei einer Temperatur von ungefähr 2 ° C eluiert. Allgemein
gesagt, die unreine AM-Protease, die auf diese Weise erhalten wird (welche noch etwas unerwünschte
Proteine enthält), wird nach der Hauptspitze der unerwünschten Proteine eluiert. Die eluierten Fraktionen,
die unreine AM-Protease enthalten, können beispielsweise durch Druckdialyse konzentriert werden.
V. Die verbleibenden unerwünschten proteinhaltigen Verunreinigungen werden aus der unreinen AM-Protease
mittels einer Molekularsiebtechnik bei ungefähr 2° C entfernt, wobei eine Kolonne oder eine
Membrane aus einem vernetzten hydrophilen Polymer verwendet wird, das in bezug auf ein Molekulargewicht
von ungefähr 30000 Molekularsiebeigenschaften besitzt. Geeignete polymere Materialien sind
z. B. die vernetzten Dextrane, wie z. B. »Sephadex« (Warenzeichen) G75, Polyacrylamid-Gel, wie z. B.
»Bio-Gel« (Warenzeichen), und Agarosen, wie z. B. »Sagarose« (Warenzeichen) oder »Sepharose« (Warenzeichen).
Die unreine AM-Protease aus der Stufe (IV) wird in einem kleinen Volumen eines Puffers mit
pH 6 bis 8, beispielsweise pH 7, wie z. B. einem pH 7 0,3 m Natriumchlorid/Phosphat-Puffer, bei ungefähr
2° C aufgelöst und die Losung wird auf die Kolonne oder Membrane bei ungefähr 2° C aufgebracht.
lu Die Kolonne wird dann mit dem gleichen oder mit
einem ähnlichen Puffer bei ungefähr 2° C eluiert, worauf die AM-Protease vor den verunreinigenden
Proteinen eluiert wird. Das Eluat, welches die AM-Protease
enthält, kann durch Druckdialyse konzen-■>
triert werden. Im Falle einer Membrane, die Proteine enthält, gehen Lösungsmittel und Elektrolyt durch die
Membrane hindurch, während die AM-Protease nicht hindurchgeht. Es wird bevorzugt zu verhindern, daß
die AM-Protease vollständig austrocknet, da es sonst
_'i> schwierig ist, sie von der Membrane zu entfernen. Die
Lösung der AM-Protease an der Aufbringseite der Membrane kann durch Druckdialyse konzentriert
werden.
,. Verfahrensweise B
Bei dieser Verfahrensweise wird das Myzelium von Armillaria mellea auf einem Nährmedium bei ungefähr
25° C gezüchtet, worauf die AM-Protease aus dem erhaltenen Myzelium wie bei der Verfahrens-
jij weise A isoliert wird, mit dem Unterschied, daß die
reifen Fruchtkörper durch das Myzelium ersetzt werden. Das Myzelium kann durch Oberflächenkultur bei
25° C auf einem Nährmedium gezüchtet werden, das Mais und Würze enthält. Als geeignete Species von
γ, Armillaria mellea sollen beispielsweise diejenigen erwähnt
werden, die von der Anmelderin mit ACC 3253 und 3659 bezeichnet wurden.
Die AM-Protease wird zweckmäßigerweise in wäßriger Lösung bei ungefähr — 25 ° C gelagert.
Die Erfindung betrifft weiterhin die durch eines der vorstehenden Verfahren erhältliche AM-Protease
selbst, sowie pharmazeutische Stoffzusammensetzungen mit fibrinogenolytischen, fibrinolytischen und antikoagulierenden
Eigenschaften, die diese AM-Pro-
4-, tease und ein inertes, nicht-giftiges, pharmazeutisch anwendbares Verdünnungs- oder Trägermittel aufweist.
In der DE-OS1442134 ist ein in vivo antikoagulierendes
Mittel beschrieben, das aus dem Gift der Viper
-,o Ancistrodon Rhodostoma gewonnen wird. Gemäß der
Erfindung kann von einem viel billigeren und überall verfügbaren Ausgangsmaterial ausgegangen werden,
was einen wesentlichen Fortschritt darstellt. Außerdem wird durch die vorliegende Erfindung das Arzneimittelspektrum
erweitert.
Die genannten pharmazeutischen Zusammensetzungen können eine Form aufweisen, die sich für systematische
intravenöse oder intra&rterielle Infusion
oder lokale intravenöse oder intraarterielle Injektion
b() eignet. Geeignete Zusammensetzungen sind sterile
injizierbare wäßrige Lösungen, die 0,05 bis 1,0 mg AM-Protease/ml, beispielsweise 0,25 mg AM-Prot°ase/ml,
enthalten. Die erfindungsgemäßen pharmazeutischen Zusammensetzungen enthalten übliche
h5 Verdünnungsmittel oder Träger und können durch
übliche Verfahren hergestellt werden. Sie enthalten gegebenenfalls ein Stabilisierungsmittel, wie z. B. das
menschliche Plasma Albumin, und sie können gege-
benenfalls auch bekannte analgetische Mittel enthalten.
Die pharmazeutischen Zusammensetzungen der Erfindung können für folgendes verwendet werden:
(1) Die Behandlung von arterieller Thrombose;
(2) die Behandlung von arterieller Embolie, wie z. B. Embolie in den Renalarterien oder mesenterischen
Arterien und insbesondere in den Beinarterien und in der Aorta an der Bifurkation;
(3) die Behandlung von Tiefvenenthrombose; und
(4) die Behandlung von Pulmonarembolie.
Es erscheint zweckmäßig, die Verwendungsweise der AM-Protease in bezug auf die (a) systematische
Therapie und die (b) lokale intravaskuiare Perfusion zu diskutieren.
(a) Systematische Therapie mit AM-Protease.
Die Resistenz des menschlichen Plasmas gegenüber
Die Resistenz des menschlichen Plasmas gegenüber
AM-Protease ändert sich von Individuum 711 Individuum
und zwischen Tieren verschiedener Species. Die Resistenz ändert sich auch bei den einzelnen menschlichen
Patienten während der systematischen Behandlung mit AM-Protease. Eine Beladungsdosis ist
erforderlich, um den größten Teil des im Kreislauf befindlichen Inhibitors auszuschalten. Diese Dosis
wird hauptsächlich durch vorherige Titration des Plasmas des Patienten in vitro und auch durch Titration
in vivo bestimmt, indem die Reaktion von steigenden Fraktionen der gewählten Dosis an AM-Protease
während der intravenösen Infusion beobachtet wird. Die Reaktion, die gemessen wird, ist die Verlängerung
der Gerinnungszeit, die durch die AM-Protease hervorgerufen wird, die einen Überschuß gegenüber der
von dem Inhibitor beeinflußten darstellt. In den meisten Fällen beträgt diese Beladungsdosis 0,05 bis
5 mg/kg/st AM-Protease.
Wenn eine optimale AM-Protease-Plasmaaktivität erzeugt ist, dann muß diese durch intermittierende intravenöse
Dosierung von AM-Protease aufrechterhalten werden. Die ist nötig, da anscheinend Inhibitor
in den Kreislauf zurückkehrt, der verursacht, daß Gerinnungszeiten
sich wieder auf die normalen Werte einstellen, was einen Verlust von enzymatischer Aktivität
anzeigt. Es wurde beobachtet, daß die thrombolytische Aktivität aufrechterhalten wird, wenn man
annähernd 10% der Anfangsdosis der AM-Protease stündlich während der nächsten 2 st verabreicht und
wenn man hierauf auf weniger als 1 % der Anfangsdosis an AM-Protease alle 2 bis 3 st zurückgeht. Die
Verringerung der Dosis, die erforderlich ist, die Aktivität aufrechtzuerhalten, hat ihren Grund vermutlich
in einem Abfall der Geschwindigkeit der Rückkehr des Inhibitors in den Kreislauf. Die Dauer der Behandlung
mit AM-Protease hängt vom Alter der Thrombose oder der Thrombosen und ihrer Größe
ab. Die systematische Behandlung wird solange fortgesetzt, bis es Anzeichen einer klinischen Verbesserunggibt,
d. h. Rückkehr der Pulsation und Verbesserung der Farbe des Glieds, in welchem der Kreislauf
durch eine Arterienthrombose beeinflußt war.
(b) Lokale intravaskuiare Perfusion von AM-Protease.
Eine lokale Perfusion von AM-Protease ist in den Fällen angezeigt, in denen eine thrombotische Occlusion
einer großen peripheren Vene besteht oder in thrombosierten Gefäßen, die bei der Scribner-Umleitung
für Nierendialyse verwendet werden, oder in einem geeigneten Segment einer Arterie, die durch eine
Thrombose blockiert worden ist. Ein solches Verfahren zur lokalen Perfusion besitzt den Vorteil, daß die
verwendete Dosis beträchtlich geringer ist als bei der systematischen Therapie, d. h. etwa '/,„ bis V100 der
ri systematischen Dosis. Auch besteht keine Notwendigkeit,
den Inhibitorspiegel im Blut des Patienten zu bestimmen. Es kann deshalb eine Standarddosis gegeben
werden, beispielsweise können 5 bis 10 ml (enthaltend V^ bis V11x, der systematischen Dosis) in einen
in Katheter injiziert werden, der sich in einem Teil der
Vene befindet, der distal zur Occlusion liegt. Dieser kann 10 min belassen werden, bevor der Inhalt des
Katheters angesaugt wird. Dieses Verfahren wird 2- oder 3mal wiederholt und in den meisten Fällen ist
ι ί dann die Thrombose aufgelöst. Das gleiche Verfahren kann für eine zugängige Arterie verwendet werden,
die durch eine Thrombose vollständig occludiert ist, wobei der Unterschied jedoch darin besteht, daß der
Katheter nahe beim occl udierten Abschnitt eingeführt
-'Ii wird.
Die von Armillaria mellea erhaltene AM-Protease enthält ein Metall. Es wurde gefunden, daß die Anwesenheit
eines Metalls, aber nicht unbedingt des Metalls, das in der von Armillaria mellea erhaltenen Sub-.»".
stanz vorliegt, für die enzymatische Aktivität wesentlich ist. Das Apoenzym kann erhalten werden durch
Behandlung des Haloenzyms, d. h. AM-Protease, mit 10"3 m Äthylendiamintetraessigsäure (pH 7) während
30 min bei 4° C. Die überschüssige Äthylendisn amintetraessigsäure wird durch Dialyse gegen einen
0,05 m pH 7,4 Tris/HCl-Puffer beseitigt, der die folgende Zusammensetzung besitzt:
Tris-(hydroxymethyi)-aminomethan 6,05 g/l in Wasser ausreichend m Salzsäure, so daß pH 7 entsteht.
γ. Die enzymatische Aktivität kann durch Behandlung
des Apoenzyms in einem wäßrigen Medium mit Co++ , Zn + + , Ni+ + , Fe1+ und (in diesem Fall wird
die enzymatische Aktivität wieder in geringerem Ausmaß zurückerhalten) Cu++ wieder hergestellt werden.
Beispiel 1
Stufe I
Stufe I
100 g reife Fruchtkörper von Armillaria mellea wurden in einem M. S. E.-»Atomix«-Mischer (»Ato-
4-, mix« ist ein Warenzeichen) bei 2° C mit 150 ml Wasser
homogenisiert. Das Homogenisat wurde mit weiteren 150 ml Wasser gemischt, das Gemisch wurde
bei 2 ° C 30 min gerührt und dann zentrifugiert. Das Zentrifugat (flüssige Phase) wurde bei 2 ° C gehalten,
-,11 bis die weitere Verarbeitung durchgeführt wurde
(siehe unten). Der feste Rückstand wurde gefriergetrocknet, das Produkt wurde mit festem Kohlendioxid
in ein feineres Pulver gemahlen, das Gemisch wurde mit 150 ml Wasser bei 2° C extrahiert, und der Extrakt
wurde zentrifugiert. Das Zentrifugat (flüssige Phase) wurde mit dem oben erwähnten Zentrifugat
vereinigt. (Kommentar zu dieser Stufe: Der wäßrige Extrakt kann direkt in der nächsten Stufe verwendet
oder zur Lagerung gefriergetrocknet werden. Der
M) größte Teil der AM-Protease, ungefähr 75%, werden
bei der Homogenisation mit Wasser extrahiert).
Stufe Π
Die wäßrige Lösung wurde mit m Essigsäure auf hs pH 6,0 eingestellt und die Lösung wurde in einem
Kühlbad auf 2° C abgekühlt. 450 ml Äthanol mit 2°C wurden langsam der wäßrigen Lösung zugesetzt.
Das Gemisch wurde während dieser Zugabe gut ge-
rührt, wobei jedoch darauf geachtet wurde, ein Schäumen zu vermeiden. Die Temperatur wurde auf 2° C
gehalten. Nach beendeter Zugabe wurde das Gemisch 1 st auf 2° C gehalten und die Ausfällung, die
sich gebildet hatte, wurde durch Zentrifugation (2000 g) während 30 min bei 2° C abgetrennt. Der
feste Rückstand wurde verworfen, und das Zentrifugat wurde in der Stufe III verwendet.
Stufe III
Das Zentrifugat aus der Stufe II wurde in ein Kühlbad
eingebracht und 450 ml Äthanol wurden langsam zugegeben. Die Temperatur wurde während dieser
Zugabe auf —5° C fallen gelassen. Wie in der Stufe II wurde das Gemisch gut gerührt, wobei jedoch ein
Schäumen vermieden wurde. Nach beendeter Zugabe wurde das Gemisch 1 st bei —5° C gerührt. Es wurde
dann zentrifugiert und das Zentrifugat wurde verworfen. Der feste Rückstand wurde in 75 ml einer Mischung
aus 70 Vol.-% Äthanol und 30 VoI.-% Wasser bei —5° C suspendiert und die Suspension wurde
zentrifugiert. Der feste Rückstand wurde bei 2 ° C in
30 ml Wasser aufgelöst, die Lösung wurde einer Hülsengefrierung bei —70° C zugeführt und dann gefriergetrocknet.
(Kommentar zu dieser Stufe: Ungefähr 90 bis 95% der Ausgangsaktivität werden in dieser Stufe zurückerhalten, und das gefriergetrocknete
Material stellt etwa 5 Gew.-% des festen Ausgangsmaterials in dieser Stufe dar, d. h. desjenigen,
das aus dein wäßrigen Extrakt erhalten worden war).
Stufe IV
100 g mikrogranulare »Whatmane-Carboxymethylccllulose
(CM 52; »Whatman« ist ein Warenzeichen) wurden mit einem pH 6,0 0,025 m Natriumcitrat-Puffer
gewaschen bis die Waschflüssigkeiten einen pH von 6,0 besaßen. Der Puffer war dadurch
hergestellt worden, daß eine Lösung von 7,35 g/l Trinatriumcitrat-dihydrat
in Wasser durch Zugabe von 2 m Salzsäure auf pH 6,0 eingestellt wurde. Die ins Gleichgewicht gebrachte Carboxymethylcellulose
wurde dann in eine 2,5 X 30 cm-Kolonne eingebracht. 2 ml einer Lösung von 200 mg des gefriergetrockneten
Produkts der Stufe III im oben erwähnten Citratpuffer wurden in die Kolonne bei 2° C eingebracht.
Die Kolonne wurde bei 2 ° C mit dem Citratpuffer, der in einer Menge von ungefähr 20 ml/st verwendet
wurde, eluiert, und 5 ml-Fraktionen wurden gesammelt. Das Eluat wurde auf Lichtabsorption bei 280 τημ
untersucht. Hierdurch wurden alle Proteinspitzen ermittelt (Proteine zeigen eine Spitzenabsorption bei
280 ηιμ). Die enzymatische Aktivität, d. h. die proteolytische
Aktivität, wurde durch das unter (Ic) angegebene Verfahren ermittelt. Eine große Spitze eines
UV-absorbierenden Materials, das keine proteolytische Aktivität zeigte, ging den proteolytisch aktiven
Fraktionen (d. h. diejenigen, die AM-Protease enthalten) vorher, und an den letzteren Fraktionen schloß
sich weiteres UV-absorbierendes, nicht-proteolytisches
Material an. Die zusammengefaßten Fraktionen wurden durch Druckdialyse bei 2° C unter Verwendung
von »Amicon« UMIO-Membranen (»Amicon«
ist ein Warenzeichen) konzentriert (Kommentar zu dieser Stufe: In Abhängigkeit von der Qualität der
Carboxymethylcellulose, die sich etwas ändert, kann das proteinhaltige Material einschließlich AM-Protease
als diskrete Spitze mit einer ungefähr 20fachen Reinigung oder, sofern ungünstigere Bedingungen
herrschen, mit einer 5- bis lOfachen Reinigung erhalten
werden. Bis zu 90% der auf die Kolonne aufgegebenen AM-Protease werden zurückerhalten. Es kann
nötig sein, die Salzkonzentration des Eluiermittels zu ι ändern, um die variablen Eigenschaften von verschiedenen
Lieferungen der Carboxymethylcellulose zu kompensieren).
Stufe V
in 10 g »Sephadex« G75 (»Sephadex« ist ein eingetragenes
Warenzeichen) in Perlenform wurden 24 st in einem Überschuß eines 0,15 m Natriumchlorid
0,05 m Natriumphosphat-Puffers mit einem pH von 7,0 quellen gelassen. Dieser Puffer besaß die folgende
r, Zusammensetzung:
Natriumchlorid 8,53 g/l in Wasser
Natrium-dihydrogen-
phosphat-dihydrat 7,8 g/l in Wasser
Lösung mit 2 m Natriumhydroxidlösung
_>ii auf pH 7,0 eingestellt.
_>ii auf pH 7,0 eingestellt.
Das gequollene Material wurde in eine 1,5 X 20 cm-Kolonne gepackt, und die Kolonne
wurde mit ungefähr 100 ml Phosphatpuffer mit 2° C 2 st lang gewaschen. 2 ml der konzentrierten Probe
_>-, des Eluats der Stufe IV wurden auf die Kolonne aufgegeben:
Die Kolonne wurde bei 2° C mit dem obigen Phosphatpuffer bei ungefähr 20 ml/st eluiert, und es
wurden 2 ml-Fraktion gesammelt. Die proteolytische Aktivität der Fraktionen wurde wie oben bei Stufe
tu IV ermittelt, und die Aktivität wurde in der ersten
Spitze des eluierten Proteins gefunden. Hieran schloß sich eine weitere Proteinspitze an, die nicht proteolytisch
war. Die aktiven Fraktionen wurden kombiniert, gegen Wasser mit 2° C dialysicrt und gefriergetrockj-,
net. Das auf diese Weise erhaltene gefriergetrocknete Produkt war AM-Protease. (Kommentar zu dieser
Stufe: Die erreichte Reinigung liegt zwischen dem 2- und 5fachen; im allgemeinen ist sie niedriger, wenn
die Stufe IV sehr wirksam ist).
,„ Die in allen fünf Stufen erreichte Reinigung war
300- bis 500fach; es wurden ungefähr 70% der ursprünglichen proteolytischen Aktivität zurückgewonnen.
Ein Mycelinoculum von Armillaria mellea ACC
3253 wurde wie folgt hergestellt:
45 ml eines 2%igen Malzagars in einer 200 ml fassenden flachen medizinischen Flasche wurde mittels
-,ο einer sterilen Schlinge aus einer Mutterkultur von Armillaria
mellea (gehalten auf einer Malzagar in einem Reagenzröhrchen) inokuliert. Die Flasche und ihr Inhalt
wurden 14 Tage lang bei 25° C inkubiert. 30 ml steriles destilliertes Wasser wurden der Flasche zuge-
^ geben, und das Luf tmycel wurde mit einer sterilen Nadel
abgerieben, um eine Mycelsuspension herzustellen.
200 g gekochte Maisflocken wurden in 2 1 fassende Glasbecher eingebracht Ungehopfte Brauerwürze
b0 (spezifisches Gewicht 1,182) wurde dann in einer ausreichenden
Menge zugesetzt, bis die Oberfläche des Maises erreicht war. Die öffnung eines jeden Bechers
wurde mit einer Aluminiumfolie verdeckt, und dann wurden die Becher mit ihrem Inhalt in einen Autokla-
b5 venmitl20° C und mit einem Druck von 1,05 kg/cm2
eingebracht. Nach dem Abkühlen wurde weitere Würze zugegeben, um den Würzenspiegel bis zur
Oberseite des Maises anzuheben. Die Becher und der
Inhalt wurden 20 min in einen Autoklaven mit 120° C eingebracht.
Nach dem Abkühlen auf Raumtemperatur wurde das Mais/Würze-Medium mit 5 ml der Mycel-Suspension
von Armillaria mellea inokuliert und dann im Dunkeln 12 Wochen und dann im Licht 4 Wochen
bei 25° C inkubiert. Die Oberflächenmycelschicht, die sich gebildet hatte, wurde abgekratzt, und mit festem
Kohlendioxid gemahlen, um ein Pulver herzustellen. Ein Phosphatpuffer mit einem pH vom 7,4
(2 ml) wurde zugegeben. Der Puffer bestand aus 0,1 m Natriumdihydrogenphosphatlösungund0,15 m
Natriumchloridlösung, die durch Zugabe von 2 m Natriumhydroxidlösung
auf pH 7,4 eingestellt waren. Das Gemisch wurde zentrifugiert und die überste-
hende Flüssigkeit wurde aufbewahrt. Auf diese Weise wurde eine wäßrige Lösung erhalten, die AM-Protease
enthielt.
100 μΐ der genannten wäßrigen Lösung, die die
'■ AM-Protease enthielt, wurden zu 0,5 ml einer Lösung
von menschlichem Fibrinogen (95% gerinnungsfähiges Protein; 3 mg/ml in Phosphat/Kochsalz-Puffer;
0,1 m Phosphat, pH 7,4) zugegeben, worauf sich der Zusatz von 10 ml einer Lösung von Rinderthrombin
in (500 N. I. H*-Einheiten/ml) im gleichen Puffer anschloß.
Das gebildete Gerinnsel war in ungefähr 90 sek aufgelöst. Dieses Resultat zeigt, daß die genannte
wäßrige Lösung ein fibrinolytisches Enzym enthielt.
Claims (5)
1. Verfahren zur Herstellung einer Protease mit der Bezeichnung AM-Protease, welche die in der
Beschreibung angegebenen Eigenschaften (1) bis (6) aufweist, dadurch gekennzeichnet,
daß A entweder folgende Arbeitsschritte angewendet werden:
1. Mahlen oder anderweitige Zerkleinerung ι ο von reifen Fruchtkörpern von diese Protease
bildenden Vertretern von Armillaria mellea und Extraktion dieses Materials mit Wasser,
um einen wäßrigen Extrakt, herzustellen,
2. Ausfällung unerwünschter verunreinigender ι r>
Proteine aus dem wäßrigen Extrakt mittels mindestens eines mit Wasser mischbaren organischen
Lösungsmittels bei einer geeigneten Temperatur, bei einem geeigneten pH und bei einer geeigneten Ionenkonzentra- >i>
tion, und Abtrennung der ausgefallenen Proteine durch herkömmliche Maßnahmen,
3. Ausfällung der rohen AM-Protease aus der Lösung durch Zusatz mindestens eines mit
Wasser mischbaren organischen Lösungs- r. mittels zur Lösung,
4. teilweise Reinigung der rohen AM-Protease durch Chromatographie, und
5. Reinigung der erhaltenen unreinen Protease mittels einer Molekularsiebtechnik m
oder daß B ein die AM-Protease bildender Vertreter von Armillaria mellea auf einem Nährmedium
bei ungefähr 25° C gezüchtet und hierauf die AM-Protease aus dem erhaltenen Myzelium
durch die unter A 1 bis 5 angegebenen Arbeite- ei schritte gewonnen wird, mit dem Unterschied, daß
die reifen Fruchtkörper durch das Myzelium ersetzt werden.
2. Eine nach Anspruch 1 herstellbare AM-Protease.
3. Pharmazeutische Stoffzusammensetzung mit fibrinogenolytischen, fibrinolytischen und antikoagulierenden
Eigenschaften, dadurch gekennzeichnet, daß sie die AM-Protease gemäß Anspruch 2 und ein inertes, nicht-giftiges, pharma- 4^
zeutisch anwendbares Verdünnungs- oder Trägermittel aufweist.
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