DE19507166C1 - Antikörper gegen ein Histidin-Fusionspolypeptid, das einen Histidin-Anteil aufweist - Google Patents
Antikörper gegen ein Histidin-Fusionspolypeptid, das einen Histidin-Anteil aufweistInfo
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Description
Die vorliegende Erfindung betrifft Antikörper gegen ein Histidin-Fusionspolypeptid, das einen Histidin-Anteil aufweist,
Verfahren zu ihrer Herstellung und ihre Verwendung.
Es ist bekannt, ein Polypeptid in Form eines Histidin-Fusionspolypeptids zu ex
primieren. In einem solchen liegt ein Histidin-Anteil von z. B. 6-18 aufeinander
folgenden Histidinresten fusioniert am C- oder N-Terminus des Polypeptids vor.
Damit ist es möglich, das Histidin-Fusionspolypeptid mittels einer Nickel-Chelat-
Chromatographiesäule aus dem Überstand oder Zellysat der es exprimierenden
Zelle zu isolieren.
Vorstehende Säule ist aber teuer. Ferner bedeutet ihr Einsatz einen großen Zeitauf
wand. Daher eignet sie sich nicht zum schnellen Nachweis der Expression eines
Histidin-Fusionspolypeptids. Ein solcher Nachweis ist aber von Nöten, insbesonde
re, wenn er zum Screening vieler Zellen herangezogen werden soll.
Der vorliegenden Erfindung liegt somit die Aufgabe zugrunde, ein Mittel bereitzu
stellen, mit dem die Expression eines Histidin-Fusionspolypeptids schnell nach
gewiesen werden kann.
Erfindungsgemäß wird dies durch einen Antikörper erreicht, der gegen ein Histidin-Fusionspolypeptid, das
einen Histidin-Anteil aufweist, gerichtet ist.
Ein solcher Antikörper kann ein polyklonaler oder monoklonaler Antikörper sein,
wobei ein monoklonaler Antikörper bevorzugt ist. Der Antikörper kann aus jegli
chem Tier oder dem Menschen erhalten sein, wobei für einen polyklonalen Antikör
per Kaninchen und für einen monoklonalen Mäuse bevorzugt sind.
Ferner kann der Antikörper synthetisch sein, wobei ihm ggfs. Teile, die für vor
stehende Erkennung nicht notwendig sind, ganz oder teilweise fehlen bzw. diese
Teile durch andere ersetzt sind, die dem Antikörper weitere günstige Eigenschaften
verleihen.
Der Ausdruck "Histidin-Anteil aufweisendes Fusionspolypeptid" umfaßt ein Po
lypeptid (Peptid) jeglicher Art und Länge, das einen Histidin-Anteil aufweist. Ein
solches Polypeptid kann von jeglichen Zellen, z. B. Bakterien, Hefen, Insekten-,
Pflanzen- und tierischen Zellen, sowie Organismen, z. B. transgenen Tieren, ex
primiert sein. Ein vorstehender Histidin-Anteil kann z. B. 6-18, vorzugsweise 6
aufeinander folgende Histidinreste umfassen und fusioniert am N und/oder C-
Terminus des Polypeptids vorliegen.
Ein bevorzugter Antikörper der vorliegenden Erfindung, nämlich ein monoklonaler
Maus-Antikörper mit vorstehender Erkennung, wurde bei der DSM unter der Num
mer ACC 2207 am 15. Febr. 1995 hinterlegt.
Erfindungsgemäße Antikörper können nach üblichen Verfahren hergestellt werden.
Sollen polyklonale bzw. monoklonale Antikörper hergestellt werden, ist es günstig,
Tiere, insbesondere Kaninchen für erstere und Mäuse für letztere Antikörper, mit
einem vorstehenden Histidin-Fusionspolypeptid, z. B. His p53 (vgl. deutsche
Patentanmeldung P 42 32 823.3) oder His hdm2 (vgl. deutsche Patentanmeldung
P 43 39 553.3), vorzugsweise einem Gemisch aus solchen zu immunisieren.
Weiteres Boostern der Tiere kann mit dem oder den gleichen Histidin-Fu
sionspolypeptiden erfolgen. Auch können andere Histidin-Fusionspolypeptide oder
eine Kombination aus diesen und dem oder den vorhergehenden Histidin-Fusions
polypeptiden zum Boostern verwendet werden. Die polyklonalen Antikörper können
dann aus dem Serum der Tiere erhalten werden. Für die monoklonalen Antikörper
werden Milzzellen der Tiere mit Myelomzellen fusioniert.
Zur Herstellung von synthetischen Antikörpern kann z. B. von vorstehend erhalte
nen, monoklonalen Antikörpern ausgegangen werden. Hierzu bietet sich an, die
Antigen-Bindungsregionen der monoklonalen Antikörper zu analysieren und die für
vorstehende Erkennung notwendigen und nicht notwendigen Teile zu identifizieren.
Die notwendigen Teile können dann modifiziert und die nicht notwendigen ganz
oder teilweise eliminiert bzw. durch Teile ersetzt werden, die den Antikörpern
weitere günstige Eigenschaften verleihen. Auch können Teile außerhalb der Bin
dungsregionen der Antikörper modifiziert, eliminiert oder ersetzt werden. Der Fach
mann weiß, daß sich für vorstehende Maßnahmen insbesondere die DNA-Rekom
binationstechnologie eignet. Diese ist ihm bestens vertraut.
Erfindungsgemäße Antikörper zeichnen sich dadurch aus, daß sie beliebige Fu
sionspolypeptide erkennen, die einen Histidin-Anteil aufweisen. Die Antikörper
eignen sich daher zum schnellen Nachweis der Expression solcher Fusionspolypep
tide. Dies kann in beliebigen Nachweisverfahren, insbesondere in einem Western
Blot, einem ELISA, einer Immunpräzipitation oder einer Immunfluoreszenz, erfol
gen. Hierzu können die erfindungsgemäßen Antikörper, wenn es angebracht ist,
markiert sein oder in Kombination mit markierten gegen sie gerichteten Antikörpern
eingesetzt werden.
Die vorliegende Erfindung wird durch die nachstehenden Beispiele erläutert.
Zur Immunisierung wurden Mäuse verwendet. Als Antigene wurden His hdm2
(Aminosäure 1-284), His hdm2 (Aminosäure 58-491) und His p53 (Aminosäure
66-393) (vgl. vorstehend) verwendet. Diese waren in einem Puffer aus 8 M
Harnstoff, 100 mM NaH₂PO₄, 10 mM Tris-Hcl gelöst.
Immunisierungs- und Boosterschema:
Tag 1:
50 µl (= 10 µg) His hdm2 (Aminosäure 1-284)
50 µl (= 10 µg) His hdm2 (Aminosäure 58-491)
50 µl PBS (Phosphat-gepufferte Saline)
150 µl Freund′s Adjuvans komplett
300 µl Mix
200µl des Mix wurden in eine Maus injiziert
50 µl (= 10 µg) His hdm2 (Aminosäure 1-284)
50 µl (= 10 µg) His hdm2 (Aminosäure 58-491)
50 µl PBS (Phosphat-gepufferte Saline)
150 µl Freund′s Adjuvans komplett
300 µl Mix
200µl des Mix wurden in eine Maus injiziert
Tag 30:
50 µl (= 10 µg) His hdm2 (Aminosäure 1-284)
50 µl (= 10 µg) His hdm2 (Aminosäure 58-491)
20 µl PBS
120 µl Freund′s Adjuvans inkomplett
240 µl Mix
200 µl des Mix wurden in vorstehende Maus injiziert.
50 µl (= 10 µg) His hdm2 (Aminosäure 1-284)
50 µl (= 10 µg) His hdm2 (Aminosäure 58-491)
20 µl PBS
120 µl Freund′s Adjuvans inkomplett
240 µl Mix
200 µl des Mix wurden in vorstehende Maus injiziert.
Tag 60:
50 µl (= 10 µg) His hdm2 (Aminosäure 1-284)
50 µl (= 10 µg) His hdm2 (Aminosäure 58-491)
85 µl PBS
115 µl Freund′s Adjuvans inkomplett
300 µl Mix
200 µl des Mix wurden in vorstehende Maus injiziert.
50 µl (= 10 µg) His hdm2 (Aminosäure 1-284)
50 µl (= 10 µg) His hdm2 (Aminosäure 58-491)
85 µl PBS
115 µl Freund′s Adjuvans inkomplett
300 µl Mix
200 µl des Mix wurden in vorstehende Maus injiziert.
Tag 90:
50 µl (= 10 µg) His hdm2 (Aminosäure 1-284)
50 µl (= 10 µg) His hdm2 (Aminosäure 58-491)
200 µl PBS
300 µl Mix
200 µl des Mix wurden in vorstehende Maus injiziert.
50 µl (= 10 µg) His hdm2 (Aminosäure 1-284)
50 µl (= 10 µg) His hdm2 (Aminosäure 58-491)
200 µl PBS
300 µl Mix
200 µl des Mix wurden in vorstehende Maus injiziert.
Tag 180:
150 µl (= 20 µg) His p53 (Aminosäure 66-393)
150 µl Freund′s Adjuvans komplett
300 µl Mix
200 µl des Mix wurden in vorstehende Maus injiziert.
150 µl (= 20 µg) His p53 (Aminosäure 66-393)
150 µl Freund′s Adjuvans komplett
300 µl Mix
200 µl des Mix wurden in vorstehende Maus injiziert.
Tag 230:
75 µl (= 10 µg) His p53 (Aminosäure 66-393)
25 µl (= 5 µg) His hdm2 (Aminosäure 1-284)
25 µl (= 5 µg) His hdm2 (Aminosäure 58-491)
125 µl Freund′s Adjuvans inkomplett
250 µl Mix
200 µl des Mix wurden in vorstehende Maus injiziert.
75 µl (= 10 µg) His p53 (Aminosäure 66-393)
25 µl (= 5 µg) His hdm2 (Aminosäure 1-284)
25 µl (= 5 µg) His hdm2 (Aminosäure 58-491)
125 µl Freund′s Adjuvans inkomplett
250 µl Mix
200 µl des Mix wurden in vorstehende Maus injiziert.
Tag 260:
75 µl (= 10 µg) His ps3 (Aminosäure 66-393)
25 µl (= 5 µg) His hdm 2 (Aminosäure 1-284)
25 µl (= 5 µg) His hdm 2 (Aminosäure 58-491)
125 µl PBS
250 µl Mix
200 µl des Mix wurden in vorstehende Maus injiziert.
75 µl (= 10 µg) His ps3 (Aminosäure 66-393)
25 µl (= 5 µg) His hdm 2 (Aminosäure 1-284)
25 µl (= 5 µg) His hdm 2 (Aminosäure 58-491)
125 µl PBS
250 µl Mix
200 µl des Mix wurden in vorstehende Maus injiziert.
Am Tag 262 wurde die Maus getötet. Milzzellen wurden ihr entnommen und mit
Myelomzellen fusioniert. Es wurden monoklonale Antikörper erhalten. Einer dieser
wurde bei der DSM unter ACC 2207 am 15. Febr. 1995 hinterlegt.
Zur Immunisierung wurden Kaninchen verwendet. Es wurden die Antigene von
Beispiel 1 verwendet. Das Immunisierung- und Boosterschema war identisch mit
jenem von Beispiel 1 bis einschließlich Tag 90.
Tag 92:
Aus der Ohrvene des Kaninchens wurden 5 ml Blut entnommen und in einem ELISA bzw. Western-Blot auf Antikörper-Aktivität getestet.
Aus der Ohrvene des Kaninchens wurden 5 ml Blut entnommen und in einem ELISA bzw. Western-Blot auf Antikörper-Aktivität getestet.
Tag 93:
Nach positivem Test am Tag 92, wurden die Tiere getötet und die Antikörper aus dem Serum gewonnen.
Nach positivem Test am Tag 92, wurden die Tiere getötet und die Antikörper aus dem Serum gewonnen.
Histidin-Fusionspolypeptide, nämlich His hdm2 (Aminosäure 1-284), His hdm2
(Aminosäure 58-491) und His p53 (Aminosäure 66-393) von Beispiel 1, sowie die
Polypeptide hdm2 (Aminosäure 1-284), WAF 1 (=wildtyp aktivierender Faktor)
und t16 (= zell. regulierendes Protein) als Kontrolle wurden einer Polyacrylamid-
Gelelektrophorese unterzogen. Das Gel wurde über Nacht auf eine Nitrocellulosemembran
übertragen. Diese wurde dann mit vorstehendem, 1 : 10 bzw. 1 : 50
verdünnten Antikörper ACC 2207 1 Std. bei 37°C inkubiert. Nach mehreren
Waschschritten mit PBS (0,05% Tween 20) wurde ein käuflicher alkalischer
Phosphatase-gekoppelter Ziege-anti-Maus-Antikörper (Verdünnung nach Angabe
der Hersteller) zugegeben. Nach 30minütiger Inkubation bei 37°C folgten mehrere
Waschschritte mit PBS und anschließend die alkalische Phosphatase-Nachweisre
aktion mit alkalischer Phosphatase mit Entwicklerlösung (36µM 5′Bromo-4-chloro-
3-indolylphosphat, 400 µM Nitroblau-tetrazolium, 100 mM Tris-HCl, pH 9.5, 100
mM NaCl, 5 mM MgCl₂) bei Raumtemperatur bis Banden sichtbar waren.
Es zeigte sich, daß der erfindungsgemäße Antikörper ACC 2207 spezifisch Histi
din-Fusionspolypeptide, nicht aber Polypeptide ohne Histidin-Anteil erkennt.
In eine 96-Loch-Platte wurden pro Loch je 100 µl mit 20 ng bzw. 8 ng der Histidin-
Fusionspolypeptide bzw. der Kontrollen von (a) einpipettiert. Nach Inkubation über
Nacht bei 4°C schlossen sich 3 kurze Waschschritte mit PBS an. Anschließend
erfolgte die Blockierung freier Bindungsstellen des polymeren Trägers durch ein
stündige Inkubation mit 1% BSA in PBS bei 37°C. Der erfindungsgemäße, 1 : 10
bzw. 1 : 50 verdünnte Antikörper ACC 2207 wurde 1 Stunde bei 37°C auf der
Platte inkubiert. Nach 8 Waschschritten mit PBS wurde der Peroxidase-gekoppelte
Ziege-anti-Maus-Antikörper von (a) zugegeben. Nach 30minütiger Inkubation bei
37°C folgten 8 Waschschritte und anschließend die Peroxidase-Nachweisreaktion
mit Entwicklungslösung (50 mM Natriumacetat, 0,4 mM 3,3′, 5,5′-Tetramethyl
benzidin-dihydrochlorid, 4,4 mM H₂O₂) bei Raumtemperatur bis Banden sichtbar
waren.
Es zeigte sich, daß der erfindungsgemäße Antikörper ACC 2207 spezifisch Histi
din-Fusionspolypeptide, nicht aber ein Polypeptid ohne Histidin-Anteil erkennt.
Claims (8)
1. Antikörper gegen ein Histidin-Fusionspolypeptid, das einen Histidin-Anteil
aufweist.
2. Antikörper nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß er polyklonal ist.
3. Antikörper nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß er monoklonal
ist.
4. Antikörper nach Anspruch 3, dadurch gekennzeichnet, daß er bei der DSM
unter ACC 2207 hinterlegt ist.
5. Verfahren zur Herstellung eines Antikörpers nach einem der Ansprüche 1-4,
dadurch gekennzeichnet, daß ein Tier mit einem Histidin-Fusionspolypeptid
immunisiert wird, und
- (a) polyklonale Antikörper aus dem Serum des Tieres erhalten werden, oder
- (b) monoklonale Antikörper nach Fusion von Milzzellen des Tieres mit Myelomzellen erhalten werden.
6. Verfahren nach Anspruch 5, dadurch gekennzeichnet, daß ein Gemisch von
Histidin-Fusionspolypeptiden zur Immunisierung eingesetzt wird.
7. Verwendung eines Antikörpers nach einem der Ansprüche 1-4 in einem
Nachweisverfahren für ein, einen Histidin-Anteil aufweisendes Fusions
polypeptid.
8. Verwendung nach Anspruch 7, wobei das Nachweisverfahren ein Western-
Blot, ein ELISA, eine Immunfluoreszenz oder eine Immunpräzipitation ist.
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