DE10256415B3 - Verfahren und Vorrichtung zum Transport bzw. zur bindungspezifischen Trennung elektrisch geladener Moleküle - Google Patents

Verfahren und Vorrichtung zum Transport bzw. zur bindungspezifischen Trennung elektrisch geladener Moleküle Download PDF

Info

Publication number
DE10256415B3
DE10256415B3 DE10256415A DE10256415A DE10256415B3 DE 10256415 B3 DE10256415 B3 DE 10256415B3 DE 10256415 A DE10256415 A DE 10256415A DE 10256415 A DE10256415 A DE 10256415A DE 10256415 B3 DE10256415 B3 DE 10256415B3
Authority
DE
Germany
Prior art keywords
molecules
measuring electrodes
aqueous solution
electrodes
electrode
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Fee Related
Application number
DE10256415A
Other languages
English (en)
Inventor
Heike Dr. Barlag
Walter Dr. Gumbrecht
Manfred Dr. Stanzel
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Siemens AG
Original Assignee
Siemens AG
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Priority to DE10256415A priority Critical patent/DE10256415B3/de
Application filed by Siemens AG filed Critical Siemens AG
Priority to CNB2003801048421A priority patent/CN100476436C/zh
Priority to PCT/DE2003/003938 priority patent/WO2004051275A1/de
Priority to CA002507937A priority patent/CA2507937A1/en
Priority to JP2004556022A priority patent/JP4139388B2/ja
Priority to US10/537,248 priority patent/US7591938B2/en
Priority to EP03785540A priority patent/EP1567867A1/de
Priority to AU2003294638A priority patent/AU2003294638A1/en
Application granted granted Critical
Publication of DE10256415B3 publication Critical patent/DE10256415B3/de
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Fee Related legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/543Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals
    • G01N33/54366Apparatus specially adapted for solid-phase testing
    • G01N33/54373Apparatus specially adapted for solid-phase testing involving physiochemical end-point determination, e.g. wave-guides, FETS, gratings
    • G01N33/5438Electrodes
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N27/00Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means
    • G01N27/26Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means by investigating electrochemical variables; by using electrolysis or electrophoresis
    • G01N27/28Electrolytic cell components
    • G01N27/30Electrodes, e.g. test electrodes; Half-cells
    • G01N27/327Biochemical electrodes, e.g. electrical or mechanical details for in vitro measurements
    • G01N27/3275Sensing specific biomolecules, e.g. nucleic acid strands, based on an electrode surface reaction
    • G01N27/3277Sensing specific biomolecules, e.g. nucleic acid strands, based on an electrode surface reaction being a redox reaction, e.g. detection by cyclic voltammetry

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Spectroscopy & Molecular Physics (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Electrochemistry (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)

Abstract

Zur Schaffung eines DNA-Sensors müssen elektrisch geladene Moleküle transportiert werden. Gemäß der Erfindung erfolgen folgende Maßnahmen: Es werden unedle Metalle als positives Ion in Lösung gebracht, wodurch negativ geladene Moleküle in die entgegengesetzte Richtung transportiert und in der Nähe der Messelektroden angereichert werden. Durch Ausbildung von Metallschichten auf den Messelektroden durch Anlagern der Metallionen aus der Lösung lässt sich bei Vorgabe eines geeigneten Potenzials eine bindungsspezifische Trennung der geladenen Moleküle erreichen. Insbesondere können somit Ziel-DNA in die Nähe von Fänger-Molekülen an den Messelektroden gebracht und auch unspezifisch gebundene DNA entfernt werden. Bei der zugehörigen Vorrichtung ist der Elektrodenanordnung (20, 30) eine Opferanode (40) aus unedlerem Metall als das Material der Messelektroden (20, 30) zugeordnet. Die Messelektroden (20, 30) bestehen insbesondere aus Edelmetall, vorzugsweise Gold, und die Opferanode (40) aus Kupfer.

Description

  • Die Erfindung bezieht sich auf ein Verfahren zum Transport bzw. zur bindungspezifischen Trennung elektrisch geladener Moleküle in einer wässrigen Lösung, insbesondere beim Betrieb eines DNA-Sensors mit einem Redox-Cycling-Prozess zwischen zwei Messelektroden. Daneben bezieht sich die Erfindung auf die zugehörigen Vorrichtungen.
  • Bei zahlreichen Verfahren der Molekularbiologie spielt der Transport von geladenen Teilchen im elektrischen Feld (Migration) eine wichtige Rolle. Die Wanderungsgeschwindigkeit v der geladenen Teilchen im flüssigen Medium ist dabei proportional der Feldstärke E und der Ionenladung Q und umgekehrt proportional dem Teilchenradius r und der Viskosität η der Suspension. Es ergibt sich für die Geschwindigkeit v: v = QE/6πrη (1)
  • Bei der Elektrophorese z.B. werden Biomoleküle, d.h. vor allem Proteine und DNA, die sich bezüglich ihrer Größe und/oder Ladung unterscheiden, voneinander getrennt. Die Anwesenheit von anderen beweglichen, geladenen Teilchen ist bei bestimmten Formen der elektrophoretischen Trennung (z.B. isoelektrische Fokussierung) zu vermeiden, da sonst der Ladungstransport teilweise oder ganz von diesen und nicht von den zu trennenden Molekülen übernommen wird. Als Puffer werden daher oft Aminosäuren verwendet, die ihren isoelektrischen Punkt beim gewünschten pH-Wert haben. Das heißt, beim eingestellten pH-Wert haben die Puffermoleküle selbst keine Nettoladung und unterliegen daher nicht der Migration.
  • Auch beim Transport von geladenen Molekülen, z.B. um die Konzentration an einem bestimmten Ort zu erhöhen oder zu ernied niedrigen, werden elektrische Felder eingesetzt. Insbesondere bei Mikrosensoren, z.B. zur DNA-Analyse, kann die Empfindlichkeit gesteigert werden, wenn die zu detektierenden DNA-Fragmente (Zielmoleküle) am Ort der Fängermoleküle (Sensoroberfläche) konzentriert werden. Gemäß dem Massenwirkungsgesetz steigt damit die Zahl der Fänger-/Zielmolekülbindungen. In jedem Fall werden bei einer solchen Reaktion aber nicht nur Fänger-/Zielmolekülpaare gebildet, die exakt zueinander passen, sondern auch solche, deren Sequenz an einigen Stellen nicht exakt miteinander korrespondieren (Mismatches).
  • Da die Größe der Bindungsenergie mit der Zahl der nicht korrespondierenden Basen abnimmt, können durch die Anwendung entsprechender Kräfte selektiv solche Bindungen wieder getrennt werden, die eine bestimmt Zahl von Mismatches besitzen (Stringenzbehandlung). Als Kraft kann hier ein elektrisches Feld wirksam werden, das im Gegensatz zum ersten Prozess, dem Konzentrieren der Moleküle, eine entgegengesetzte Polarität aufweist.
  • Vorraussetzung für den Transport von geladenen Teilchen im elektrischen Feld ist ein Feldgradient, der innerhalb des Elektrolyten bzw. der Transportstrecke, streng monoton verläuft. Das heißt, der Feldgradient darf sein Vorzeichen nicht ändern und nicht zu Null werden. Das Anlegen einer beliebigen Spannung ist dazu für wässrige Systeme nicht zwangläufig ausreichend. In Abwesenheit einer chemischen Reaktion vor den Elektroden fällt die Spannung über die elektrochemische Doppelschicht ab und der Feldgradient zwischen den Elektroden wird zu Null. Wenn allerdings eine Reduktions- bzw. Oxidationsreaktion an den Elektroden stattfindet, wird die Doppelschicht vor den Elektroden depolarisiert und das elektrische Feld verläuft streng monoton innerhalb des Elektrolyten. Ein Ionentransport im wässrigen Elektrolyten ist die Folge.
  • Ein häufig angewendetes Verfahren zur Erzeugung solcher elektrischer Felder in wässrigen Systemen ist das Anlegen der Zersetzungsspannung von Wasser. Dabei wird an der Anode Sauerstoff und an der Kathode Wasserstoff entwickelt. Bei der experimentelle Durchführung muss darauf geachtet werden, dass die Gase und insbesondere ihre radikalischen Vorstufen nicht mit den zu untersuchenden Molekülen in Kontakt kommen, da diese sonst chemisch verändert würden. In makroskopischen Systemen geschieht dies durch Trennung der Elektrolyträume direkt vor den Elektroden vom Elektrolytraum zwischen den Elektroden, z.B. durch Diaphragmen. Für Mikrosensoren ist diese Lösung problematisch, da Diaphragmen nicht praktikabel sind.
  • Eine Möglichkeit zur Elektrophorese in Mikrosystemen besteht darin, dass sogenannte Permeationslayer aus hydrophilem Polymer vor den Elektroden eingeführt werden, wozu auf die US 5 605 662 A verwiesen wird. Die Beweglichkeit von Reaktionsprodukten der Wasserelektrolyse und der zu transportierenden DNA ist in dieser Schicht stark gehemmt, so dass eine Durchmischung quasi nicht stattfindet. Der Ladungstransport im Permeationslayer wird von kleineren Ionen übernommen.
  • Obwohl das bekannte Verfahren praktikabel ist, wird durch die Einführung neuer Polymer-Schichten die Herstellung des Mikrosensorchips deutlich aufwändiger und damit teurer.
  • Aufgabe der Erfindung ist es daher, ein geeignetes Verfahren zum Transport der geladenen Moleküle mittels eines elektrischen Feldes anzugeben, bei denen an der Elektrode keine Wasserstoff- bzw. Sauerstoffentwicklung eintritt. Insbesondere sollen mit unter Ausnutzung des Elektrophoreseverfahrens entsprechende Mikrosysteme geschaffen werden, welche mit Standard-Materialien und Schichten der Chipherstellung auskommen.
  • Die Aufgabe ist bezüglich des Verfahrens durch die Merkmale alternativ des Patentanspruches 1 oder des Patentanspruches 12 gelöst. Eine zugehörige Vorrichtung ist im Patentanspruch 15 angegeben. Weiterbildungen des Verfahrens bzw. der Vorrichtung sind Gegenstand der jeweils abhängigen Ansprüche.
  • Bei der Erfindung können mit prinzipiell einem Aufbau fakultativ die erfindungsgemäßen Verfahren gemäß Patentanspruch 1 oder Patentanspruch 11 ausgeführt werden. Vorteilhaft ist es, beide Verfahren miteinander zu kombinieren, beispielsweise auch zyklisch.
  • Die Erfindung macht sich bei der Anwendung des Elektrophoreseverfahrens zunutze, dass zur Erzeugung des elektrischen Feldes in der Analytlösung außer der Elektrolyse von Wasser auch andere Reaktionen eingesetzt werden können. Gemäß der Erfindung wird ein Metall/Metallionkomplex, z.B. Kupfer/Kupferhistidinkomplex, als Depolarisator vor den Elektroden vorgeschlagen. Bei positiver Polarisierung einer mit Kupfer beschichteten Elektrode zwecks Aufkonzentrierung negativ geladener Ionen wird dann nicht Sauerstoff entwickelt, statt dessen geht das Kupfer als Ion in Lösung. Ist dort ein Komplexbildner für das Metall, z.B. Histidin für Kupfer, vorhanden, so bleibt das Metallion stabil in Lösung. Da z.B. der Kufer-Histidin-Komplex sehr stabil ist, bleibt die Konzentration der freien Kupferionen sehr klein und nahezu konstant. Ein Einfluss der Kupferionen auf die DNA-Hybridisierung wird dadurch vermieden.
  • Soll die Elektrode negativ polarisiert werden, um z.B. die Selektivität der Fänger-/Zielmolekülbindung zu erhöhen (Stringenzbehandlung), d.h. unspezifisch gebundene, nicht-komplementäre Proben-DNA von der Fänger-DNA zu entfernen, werden bei Anwesenheit eines Metallionenkomplexes eines hinreichend edlen Metalls, z.B. Kupfer, die Metallionen reduziert und dabei auf den Elektroden (in diesem Fall den Mess-Elektroden) abgeschieden. Eine Wasserstoffentwicklung wird dadurch vermieden. Der Komplexbildner für das Metallion kann u.U. auch gleichzeitig als Puffer dienen. Histidin wird beispielsweise als Puffer bei pH = 7 eingesetzt. Das auf den Mess-Elektroden abgeschiedene Kupfer kann in einem Wasch-Schritt durch erneutes Anlegen von negativem Potenzial entfernt werden. Ein Abstoßen der Zielmoleküle wird dadurch verhindert, dass eine Waschlösung mit hoher Ionenstärke eingesetzt wird, so dass nur z.B. Kupfer in Form von Cu2+-Ionen entfernt wird, die Ziel-DNA jedoch nicht bewegt wird.
  • Der Vorteil eines auf Metall/Metallionkomplex basierenden Elektrophoreseverfahrens liegt in der geringeren Spannung, die zur Erzeugung des elektrischen Feldes notwendig ist. Sie ist niedriger als die Elektrolysespannung von Wasser, so dass die aggressiven Produkte der Wasserelektrolyse nicht entstehen können. Damit wird eine Trennung von Elektrolyse- und Elektrophoreseraum unnötig. Trotzdem reicht das erzeugte Feld aus, um die gewünschten Moleküle im Analyten zu transportieren.
  • Kupfer wird bereits heute für Leiterbahnen verwendet und kann künftig als Elektrodenmaterial für Sensoranwendungen bzw. mikrosystemtechnische Anwendungen wie Mikro-Elektrophorese eingesetzt werden. Bei der Herstellung eines solchen Mikrosystems kann daher auf kostengünstige Standardverfahren der Halbleitertechnik zurückgegriffen werden.
  • Weitere Einzelheiten und Vorteile der Erfindung ergeben sich aus der nachfolgenden Figurenbeschreibung von Ausführungsbeispielen anhand der Zeichnung in Verbindung mit den Patentansprüchen. Es zeigen
  • 1 einen prinzipiellen Aufbau zur Durchführung des erfindungsgemäßen Verfahrens,
  • 2 bis 4 Querschnitte unterschiedlich ausgebildeter Anordnungen,
  • 5a und 5b bei Anordnungen gemäß 3 verfahrensmäßig das Anreichern von Zielmolekülen von geringer zu hoher Konzentration,
  • 6a und 6b verfahrensmäßig eine Situation gemäß 5b, bei der jedoch auch unspezifische, d.h. nicht-komplementäre Proben-DNR vorliegen, die einer sogenannten Stringenz-Behandlung unterliegen,
  • 7 den Elektroden-Prozess bei der erfindungsgemäßen Verwendung einer Opferelektrode, sowie eines Komplexbildners,
  • 8 bis 10 Draufsichten auf unterschiedliche Messelektroden-Konfigurationen
  • 11 eine Messanordnung mit nebeneinander angeordneten Messpositionen im Querschnitt und
  • 12 eine aus Einzelpositionen entsprechend der 8 gebildete Arrayanordnung in der Draufsicht.
  • Die Figuren werden teilweise gemeinsam beschrieben.
  • Aus 1 ist der prinzipielle Aufbau einer allgemeinen Anordnung zur Durchführung von biochemischen Messungen ersichtlich. Mit 1 ist ein planares Substrat, z.B. aus Silicium, bezeichnet, auf dem eine dünne Isolatorschicht 2, z.B. aus Siliciumoxid (SiO2) aufgebracht ist. Auf dieser Anordnung befinden sich zwei Messelektroden 20 und 30, die vorzugsweise aus Edelmetall, insbesondere Gold, bestehen. Die gesamte Messanordnung befindet sich in Kontakt mit einer wässrigen Lösung 15.
  • In der wässrigen Lösung 15 befinden sich negativ geladene Makro-Moleküle, was in 1 durch die Knäuel-Struktur verdeutlicht wird, und die weiter unten in 5 im Einzelnen mit 200, 200' beziffert sind. Die negativ geladenen Moleküle sollen zu den Messelektroden 20, 30 transportiert werden und werden nachfolgend auch als Zielmoleküle bezeichnet. Im Falle einer DNA-Analyse sind die Zielmoleküle die zu untersuchende DNA. Über Fängermoleküle, die z.B. in einer Hydrogelschicht 35 immobilisierbar sind, kann die Ziel-DNA zwecks Messung in der Nähe der Elektroden 20, 30 angelagert werden.
  • In der wässrigen Lösung 15 ist weiterhin ein Material vorhanden, das in der wässrigen Lösung beständig und unedler als das Metall der Messelektroden ist. Im allgemeinsten Fall ist das Material eine Metall/Metallion(Me/Me+)-Kombination, beispielsweise Cu/Cu2+. Dies bedeutet, dass entsprechend den vorgegebenen Potenzialverhältnissen entweder metallisches Kupfer Cu° unter Abgabe von zwei Elektronen aufgelöst wird oder Kupfer(II)-Ionen Cu2+ unter Aufnahme von zwei Elektronen abgeschieden werden können, wobei gilt: Cu° ⇔ Cu++ + 2e (2)
  • Bei der Anordnung gemäß 5 kann bei einer Kupferelektrode als Opfer-Anode 40 durch Anlegen eines positiven Potenzials Cu2+ in Lösung gehen. Dadurch werden dort die negativen Zielmoleküle 200 zur Kupferelektrode 40 bewegt und reichern sich in deren Nähe und damit auch im Bereich der Messelektroden 20, 30 an.
  • Sofern bei Anwesenheit von Cu2+-Ionen in der wässrigen Lösung an die Messelektroden 20,30 gemäß 6 ein geeignetes negatives Potenzial angelegt wird, lösen sich diejenigen Fängermolekül/Ziel-DNA-Bindungen, die aufgrund nicht vollständiger Komplementarität eine verminderte Bindungsstärke aufweisen. Dabei werden gleichzeitig Kupfer(II)-Ionen (Cu2+) an den Messelektroden zu metallischem Kupfer (Cu°) reduziert.
  • Anhand der 5a, 5b einerseits und 6a, 6b andererseits sowie 7 werden die methodischen Prozesse gemäß den in 1 nur prinzipiell aufgezeigten Alternativen verdeutlicht. Speziell in den 5a bis 6b ist über den Messelektroden 20 und 30, welche Sensoroberflächen 21 und 31 haben, jeweils eine Hydrogelschicht 35 aufgebracht, in welcher Fängermoleküle 100 für Zielmoleküle 200, die sich außerhalb der Hydrogelschicht 35 befinden, eingeschlossen sind. Wesentlich ist dabei, dass die Fängermoleküle 100 die Zielmoleküle 200 einfangen bzw. binden und damit der Analyse an der Sensorfläche 21 bzw. 31 zuführen. Zu dieser Methodik wird beispielsweise auf die ältere Anmeldung PCT/DE 02/01982 der Anmelderin verwiesen.
  • Die Fänger-Moleküle 100 können beispielsweise spezielle thiolmodifizierte Oligonukleotide sein. Ziel-Moleküle 200, die von den Fänger-Molekülen 100 gebunden werden sollen, sind die zu analysierenden DNA's.
  • Im Allgemeinen liegt bei einer bekannten Messanordnung ein Zustand gemäß 5a vor, bei dem die Ziel-DNA nur in geringer Konzentration über der Fänger-DNA vorliegt. Hier ist es schwierig, zu sicheren Messergebnissen zu kommen. Bei einer Anordnung gemäß 5b liegt dagegen die Ziel-DNA in hoher Konzentration über der Fänger-DNA vor, was durch eine DNA-Anreicherung erreicht wird. In diesem Zustand können gute Messergebnisse erzielt werden.
  • An der Fänger-DNA binden entsprechend der 6a außer der komplementären Ziel-DNA 200 auch nicht vollständig komplementäre DNA-Fragmente 200'. Durch eine Stringenz-Behandlung lässt sich unspezifisch gebundene DNA durch Beaufschlagen der Elektroden mit jeweils geeigneten Potentialen selektiv entfernen. Die unspezifisch gebundene DNA wird dann aufgrund ihrer schwächeren Bindungskräfte abgestoßen.
  • Aus der 1 sowie den Teilfiguren 5a und 5b ist ersichtlich, dass durch Anlegen spezifischer Potenziale an die Hilfselektrode 40 eine gewünschte Anreicherung der Ziel-DNA erreicht wird. Im Einzelnen wird dazu eine Hilfselektrode 40 aus unedlem Metall, beispielsweise Kupfer, gewählt und an die Hilfselektrode 40 ein positives Potential angelegt. Sofern sich die gesamte Anordnung in einer wässrigen Lösung befindet, gehen Cu2+-Ionen in Lösung. Dadurch entsteht ein Feldgradient und die negativ geladenen DNA-Moleküle werden angezogen.
  • Letzterer Prozess wird im Wesentlichen durch 7 verdeutlicht. Insbesondere ist hier ersichtlich, dass das in Lösung gebrachte Kupfer-Ion komplexiert wird, wozu Histidin-Moleküle 70 verwendet werden.
  • Aus der 1 sowie den Teilfiguren 6a und 6b ist ersichtlich, dass durch Anlegen spezifischer Potenziale an die Messelektroden 20 30 und Hilfselektroden 40, 45 eine gewünschte Selektion der DNA erreicht wird. Im Einzelnen werden die Messelektroden negativ, die Hilfselektroden positiv polarisiert. Sofern sich die gesamte Anordnung in einer wässrigen Lösung befindet, die Kupfer(II)-Ionen (Cu2+) enthält, werden diese auf den Messelektroden 20,30 zu metallischem Kupfer (Cu°) reduziert. Dadurch entsteht ein Feldgradient und die negativ geladene, nicht vollständig komplementäre DNA wird abgestoßen.
  • Beide Alternativen können separat oder aber kombiniert ablaufen. Zunächst werden Zielmoleküle angereichert und dann selektiert. Es kann aber auch nur eine Selektion vorgenommen werden.
  • In den 2 bis 4 sind unterschiedliche Varianten von Sensoranordnungen dargestellt. In 2 haben die aus Gold gebildeteten Messelektroden 20, 30 freie Gold-Sensorflächen 21, 31, an die die Fänger-DNA 100 gebunden sind. Alternativ ist in 3 ein Hydrogel 35 vorhanden, welches Fänger-DNA 100 enthält. Speziell in 4 ist eine Anordnung dargestellt, bei der neben den eigentlichen Messelektroden 20 und 30 weiterhin eine freie Reaktionsfläche 50 aus Gold vorhanden ist, an welcher die Fänger-DNA 100 in einer dichten Anordnung gebunden sind. Dies hat den Vorteil einer großen Dichte von Fänger-DANN. Allerdings müssen bei der Herstellung der Reaktionsfläche 50 zunächst die Messelektroden 20, 30 durch Kupfer oder dergleichen abgedeckt werden, um dort eine Anlagerung der Fänger-DNA 100 zu verhindern. In 4 sind dafür Kupfer-Schichten 22 bzw. 32 vorhanden. Bei allen Anordnungen gemäß den 2 bis 4 ist jeweils die Opferelektrode 40 in der Nähe der Messelektroden 20 und 30 angeordnet, um durch das Inlösunggehen von Kupfer den Feldgradienten aufzubauen und damit die Anreicherung der Ziel-DNA 200 in der Nähe der Messelektroden 20 und 30 zu bewirken. Im Ergebnis kann somit die Messgenauigkeit erheblich verbessert werden.
  • In den 8 bis 10 sind die verschiedene Varianten von Messsensoren gemäß den 2 bis 4 in der Draufsicht dargestellt. Speziell in 8 ist ein Messsensor 80 vorhanden, der aus zwei Kammelektroden 82 und 83 mit ineinander greifenden Elektrodenfingern besteht, wobei eine einzige Opferelektrode 84 ringartig um die Kammelektroden angeordnet sind.
  • Entsprechendes ergibt sich aus 9, wobei hier der Bereich der Kammelektroden mit der Hydrogelschicht 85 abgedeckt ist. Eine derartige Hydrogelschicht kann sich über der gesamte Messanordnung befinden. Speziell in 10 sind zusätzlich noch Reaktionsflächen 86 zum Anlagern von Fängermolekülen vorhanden.
  • Aus den Einzelsensoren gemäß den 8 bis 10 können Arrays konzipiert werden, die n-Zeilen und m-Spalten haben. Aus den 11 und 12 ist eine Komplettanordnung mit einer Vielzahl von Messsensoren 80, 80',... die das n·m-Array darstellen. Dabei ist es prinzipiell möglich, das Array mit Einzelpositionen entsprechend einer der 8 bis 10 aufzubauen, bei der jede Einzelposition eine ringartige Kupfer-Opferanode 84 hat. Um die gesamte m·n-Anordnung mit den Einzelpositionen ist dabei als weiterer Ring die Hilfselektrode 185 angeordnet.
  • Gemäß 11 befindet sich die Komplettanordnung 180 in einem Behälter, z.B. einem Durchflusskanal 150, mit einem Deckel 120, einem Zufluss 121 und einem Abfluss 122.

Claims (24)

  1. Verfahren zum Transport elektrisch geladener Moleküle in einer wässrigen Lösung, insbesondere beim Betrieb eines DNA-Sensors mit einem Redox-Cycling-Prozess zwischen zwei Messelektroden, gekennzeichnet durch folgende Maßnahmen: – in der Nähe der Messelektroden wird ein metallisches Material, das im wässrigen Elektrolyten beständig und unedler als das der Messelektrode ist, als potenzialbeaufschlagbare Elektrode angeordnet, – durch Anlegen eines positiven Potenzials an die Elektrode wird das metallische Material als positive Ionen in Lösung gebracht, – wodurch negativ geladene Moleküle als Zielmoleküle in die entgegengesetzte Richtung transportiert und an den Messelektroden angereichert werden.
  2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, dass die in Lösung gehende Metallionen durch die Anwesenheit eines Komplexbildners komplexiert werden, wodurch ihre Konzentration gering und nahezu konstant gehalten wird.
  3. Verfahren nach Anspruch 1 oder 2, dadurch gekennzeichnet, dass als metallisches Material Kupfer verwendet wird, welches eine Kupfer-Opfer-Anode bildet.
  4. Verfahren nach Anspruch 2 und 3, dadurch gekennzeichnet, dass als Komplexbildner zur Komplexierung des Kupfer-Ions Histidin verwendet wird.
  5. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 4, dadurch kennzeichnet, dass zum Detektieren der Zielmoleküle Fängermoleküle an einer Elektrodenoberfläche verwendet werden.
  6. Verfahren nach Anspruch 5, dadurch gekennzeichnet, dass als Fängermoleküle thiolmodifizierte Fängermoleküle verwendet werden.
  7. Verfahren nach Anspruch 5, dadurch gekennzeichnet, dass als Fängermoleküle hydrogelgebundene Fängermoleküle verwendet werden.
  8. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, dass ein Elektrophoreseverfahren ausgeführt wird.
  9. Verfahren nach einem der vorhergehenden Anspruch, dadurch gekennzeichnet, dass eine DNA-Analyse von DNA-Fragmenten erfolgt.
  10. Verfahren nach Anspruch 9, dadurch gekennzeichnet, dass bei der DNA-Analyse die angereicherten Moleküle als Zielmoleküle detektiert werden.
  11. Verfahren nach Anspruch 8 oder 9, dadurch gekennzeichnet, dass durch Polarisation der für die Elektrophorese bzw. DNA-Analyse verwendeten Elektroden die Selektivität des Prozesses erhöht wird.
  12. Verfahren zur bindungsspezifischen Trennung elektrisch geladener Moleküle in einer wässrigen Lösung, insbesondere beim Betrieb eines DNA-Sensors mit einem Redox-Cycling-Prozess zwischen zwei Messelektroden, gekennzeichnet durch folgende Maßnahmen: – in der wässrigen Lösung befinden sich Metallionen – durch Anlegen eines negativen Potenzials an die Messelektroden wird das Metallion an den Messelektroden als Metall abgeschieden, – wodurch negativ geladene, in der Nähe der Messelektroden gebundene Moleküle als Zielmoleküle mit einer hinreichend niedrigen Bindungsenergie von den Messelektroden wegtransportiert werden.
  13. Verfahren nach Anspruch 12, dadurch gekennzeichnet, dass als Metallionen Kupfer und als Messelektroden Gold verwendet werden.
  14. Verfahren nach Anspruch 12, dadurch gekennzeichnet, dass die von den Messelektroden wegtransportierten Moleküle solche Zielmoleküle sind, die bei der DNA-Analyse nicht detektiert werden sollen.
  15. Vorrichtung zur Durchführung des Verfahrens nach Anspruch 1 oder einem der Ansprüche 2 bis 10 bzw. zur Durchführung des verfahrens nach Anspruch 12 oder einem der Ansprüche 13, 14, mit einer Anordnung aus Mess-Elektroden (20, 30) zur elektrochemischen Messung in einer wässrigen Lösung (15), wobei in der wässrigen Lösung Metallionen bzw. Häufungen (40) von Metall aus unedlerem Material als das der Messelektroden (20, 30), wobei das Material in wässriger Lösung (15) beständig ist, vorhanden sind.
  16. Vorrichtung nach Anspruch 15, dadurch gekennzeichnet, dass die Messelektroden (20, 30) aus Edelmetall, insbesondere Gold, bestehen.
  17. Vorrichtung nach Anspruch 15, dadurch gekennzeichnet, dass das Metall Kupfer ist und eine Opferelektrode (40) bildet.
  18. Vorrichtung nach Anspruch 16, dadurch gekennzeichnet, dass die Messelektroden aus Gold eine Sensoroberfläche (21, 31) aufweisen, an der Fängermoleküle für die Ziel-DNA (200) gebunden sind.
  19. Vorrichtung nach einem der Ansprüche 15, 16 oder 18 dadurch gekennzeichnet, dass die Mess elektroden (20, 30) eine Interdigitalstruktur aus Kammelektroden (82, 83) mit ineinander greifenden Elektrodenfingern bilden.
  20. Vorrichtung nach Anspruch 17, dadurch gekennzeichnet, dass die Opferelektrode (84) ringartig um die Kammelektroden (82, 83) angeordnet ist.
  21. Vorrichtung nach Anspruch 15, dadurch gekennzeichnet, dass auf den Messelektroden (20, 30) eine Hydrogelschicht (35) zum Binden der Fängermoleküle (100) angeordnet ist.
  22. Vorrichtung nach Anspruch 15, dadurch gekennzeichnet, dass den Messelektroden (20, 30) separate Reaktionsflächen (50) zum Anlagern der Fängermoleküle (100) zugeordnet ist.
  23. Vorrichtung nach Anspruch 19, dadurch gekennzeichnet, dass von einzelnen Interdigitalstrukturen (80, 80',...) mit Opferelektrode (84) ein Array (80) mit m Zeilen und n Spalten gebildet ist.
  24. Vorrichtung nach Anspruch 23, dadurch gekennzeichnet, dass eine Hilfselektrode (185) zu den einzelnen Operelektroden (84) ringartig um das m·n-Array (180) verläuft.
DE10256415A 2002-12-02 2002-12-02 Verfahren und Vorrichtung zum Transport bzw. zur bindungspezifischen Trennung elektrisch geladener Moleküle Expired - Fee Related DE10256415B3 (de)

Priority Applications (8)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE10256415A DE10256415B3 (de) 2002-12-02 2002-12-02 Verfahren und Vorrichtung zum Transport bzw. zur bindungspezifischen Trennung elektrisch geladener Moleküle
PCT/DE2003/003938 WO2004051275A1 (de) 2002-12-02 2003-11-28 Verfahren und vorrichtung zum transport bzw. zur bindungspezifischen trennung elektrisch geladener moleküle
CA002507937A CA2507937A1 (en) 2002-12-02 2003-11-28 Method and device for transporting or binding-specific separation of electrically charged molecules
JP2004556022A JP4139388B2 (ja) 2002-12-02 2003-11-28 荷電分子の輸送のための、ないし結合特異的分離のための方法及び装置
CNB2003801048421A CN100476436C (zh) 2002-12-02 2003-11-28 用于迁移或分离带电分子的方法和装置
US10/537,248 US7591938B2 (en) 2002-12-02 2003-11-28 Method and device for transporting or binding-specific separation of electrically charged molecules
EP03785540A EP1567867A1 (de) 2002-12-02 2003-11-28 Verfahren und vorrichtung zum transport bzw. zur bindungspezifischen trennung elektrisch geladener moleküle
AU2003294638A AU2003294638A1 (en) 2002-12-02 2003-11-28 Method and device for transporting or binding-specific separation of electrically charged molecules

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE10256415A DE10256415B3 (de) 2002-12-02 2002-12-02 Verfahren und Vorrichtung zum Transport bzw. zur bindungspezifischen Trennung elektrisch geladener Moleküle

Publications (1)

Publication Number Publication Date
DE10256415B3 true DE10256415B3 (de) 2004-05-13

Family

ID=32103458

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DE10256415A Expired - Fee Related DE10256415B3 (de) 2002-12-02 2002-12-02 Verfahren und Vorrichtung zum Transport bzw. zur bindungspezifischen Trennung elektrisch geladener Moleküle

Country Status (8)

Country Link
US (1) US7591938B2 (de)
EP (1) EP1567867A1 (de)
JP (1) JP4139388B2 (de)
CN (1) CN100476436C (de)
AU (1) AU2003294638A1 (de)
CA (1) CA2507937A1 (de)
DE (1) DE10256415B3 (de)
WO (1) WO2004051275A1 (de)

Families Citing this family (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP5157806B2 (ja) * 2008-10-08 2013-03-06 富士通株式会社 電解溶液中の作用電極電位印加方法および作用電極の電位制御装置
US9604765B2 (en) 2013-03-14 2017-03-28 Ahhmigo, Llc Locking cap device and methods
CN109084856B (zh) * 2018-07-19 2021-06-04 中国神华能源股份有限公司 开式循环水系统的流量测定方法

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5605662A (en) * 1993-11-01 1997-02-25 Nanogen, Inc. Active programmable electronic devices for molecular biological analysis and diagnostics

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4589958A (en) * 1983-04-13 1986-05-20 Unisearch Limited Method of potentiometric detection of copper-complexing agents
KR100423021B1 (ko) * 2001-02-06 2004-03-12 (주)미토콘 혼합 인터칼레이터, 이를 이용한 디엔에이의 전기화학적검출방법 및 이를 위한 검출 키트

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5605662A (en) * 1993-11-01 1997-02-25 Nanogen, Inc. Active programmable electronic devices for molecular biological analysis and diagnostics

Also Published As

Publication number Publication date
WO2004051275A1 (de) 2004-06-17
CA2507937A1 (en) 2004-06-17
CN100476436C (zh) 2009-04-08
CN1720454A (zh) 2006-01-11
US20060086625A1 (en) 2006-04-27
US7591938B2 (en) 2009-09-22
JP2006508353A (ja) 2006-03-09
AU2003294638A1 (en) 2004-06-23
EP1567867A1 (de) 2005-08-31
JP4139388B2 (ja) 2008-08-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EP2286227B1 (de) Verfahren zum detektieren von chemischen oder biologischen species sowie vorrichtung zum durchführen des verfahrens
EP1032836A1 (de) Vorrichtung und verfahren zum nachweis von analyten
DE19916921A1 (de) Elektrisches Sensorarray
DE10049901C2 (de) Vorrichtung und Verfahren zur elektrisch beschleunigten Immobilisierung und zur Detektion von Molekülen
EP1518109A2 (de) Vorrichtung zur detektion eines analyten
DE112007001257T5 (de) Vorrichtung und Verfahren zum Sensieren eines zeitvarianten Ionenstroms in einem elektrolytischen System
WO2005116244A1 (de) Sensor-anordnung mit electrode zur erfassung von diffundierenden geladenen teilchen
WO2005001479A1 (de) Kapazitives biosensor-element und verfahren zum detektieren von hybridisierungsereignissen
EP1761761A1 (de) Vorrichtung und verfahren zur emulation einer gegenelektrode in einem monolithisch integrierten elektrochemischen analysesystem
DE102005003910B4 (de) Elektrochemisches Transducer-Array und dessen Verwendung
DE10256415B3 (de) Verfahren und Vorrichtung zum Transport bzw. zur bindungspezifischen Trennung elektrisch geladener Moleküle
WO2005008234A1 (de) Sensor-transistor-element, sensor-einheit und sensor-array
WO2002031482A2 (de) Vorrichtung und verfahren zur elektrisch beschleunigten immobilisierung von molekülen
DE10211358B4 (de) Vertikal-Impedanz-Sensor-Anordnung und Verfahren zum Herstellen einer Vertikal-Impedanz-Sensor-Anordnung
DE19751706C2 (de) Vorrichtung und Verfahren zum Nachweis von Analyten
WO2003083134A1 (de) Sensor zur qualitativen und quantitativen bestimmung von (bio)organischen oligomeren und polymeren, analyseverfahren hierzu sowie verfahren zur herstellung des sensors
DE10319155B4 (de) Elektrisch auslesbare Bindungen von Analytmolekülen an immobilisierten Sondenmolekülen
DE19960398B4 (de) Verfahren und elektrochemischer Sensor mit geheizten Elektroden für die biochemische Analytik, insbesondere zur Untersuchung von Hybridisierungsvorgängen der Nucleinsäuren
DE102014219633A1 (de) Vorrichtung zur Detektion von Substanzen in einer Probe
DE10065278A1 (de) Vorrichtung und Verfahren zur elektrisch beschleunigten Immobilisierung von Molekülen
EP1200817B1 (de) Sensoranordnung mit elektrisch ansteuerbaren arrays
DE10049902A1 (de) Vorrichtung und Verfahren zur elektrisch beschleunigten Immobilisierung von Molekülen und ihre Detektion
DE102014207184A1 (de) Verfahren zum Herstellen einer Elektrodenanordnung für eine Sequenziervorrichtung
DE10330717A1 (de) Vorrichtung und Verfahren zum Nachweis von Analyt
DE102008004872A1 (de) Elektrodendesign für elektrochemische Sensoren

Legal Events

Date Code Title Description
8100 Publication of the examined application without publication of unexamined application
8364 No opposition during term of opposition
8339 Ceased/non-payment of the annual fee