DE10104008A1 - Verfahren und Vorrichtung zum Züchten und/oder Behandeln von Zellen - Google Patents
Verfahren und Vorrichtung zum Züchten und/oder Behandeln von ZellenInfo
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Abstract
Bei einem Verfahren zum Züchten und/oder Behandeln von Zellen auf einer modellierbaren Trägerstruktur werden die Zellen zur Bildung einer Zellschicht in einen Zellkulturraum zwischen der Trägerstruktur oder einer auf der Trägerstruktur aufgebrachten Folie und einer zweiten Folie, insbesondere einer mikroporösen Folie, eingebracht. Sauerstoff und/oder Nährmedium werden in den Zellkulturraum eingeleitet. Der Zellkulturraum wird durch eine Gasmedium wechselnde Druckbelastung ausgesetzt.
Description
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zum Züchten
und/oder Behandeln von Zellen nach der im Oberbegriff
von Anspruch 1 näher definierten Art. Die Erfindung
betrifft auch eine Vorrichtung zum Züchten und/oder
Behandeln von Zellen.
In der älteren Anmeldung des Erfinders DE 199 35 643.2
ist ein Verfahren und eine Vorrichtung der eingangs
genannten Art beschrieben.
Es hat sich nun herausgestellt, daß die Bildung einer
Zellschicht und das Zellwachstum deutlich verbessert
wird, wenn man die Zellen einer Druckbelastung aus
setzt. Hierzu ist es aus der Praxis bereits bekannt,
einen Zellkulturraum durch mechanische Einrichtungen,
wie z. B. einen Stempel, z. B. wie in der US 6,060,306,
zu belasten. Neben dem hierfür erforderlichen kon
struktiven Aufwand entspricht eine derartige Belastung
aufgrund der dadurch erzielten Heterogenitäten nicht
in-vivo-Verhältnissen. In der US 5,928,945 wird haupt
sächlich über Scherstress mittels Kulturmedium eine
mechanische Belastung von z. B. Knorpelzellen versucht.
Dies ist jedoch unphysiologisch, da z. B. in Gelenkbe
reichen keine derartigen Perfusionen auftreten. Zu
sätzlich ist der Sauerstoffgehalt aufgrund der limi
tierten Transportkapazität für Sauerstoff nicht bei
allen Gewebearten in physiologische Bereiche einstell
bar (McLimmans et al. 1968).
In der US 6,060,306 ist auch ein Apparat beschrieben,
in dem ein Knorpelkonstrukt innerhalb einer Kultivie
rungskammer durch Bewegungen der Außenwände wie in ei
nem Blasebalg bewegt wird. Diese Bewegungsprozesse ha
ben den Nachteil, daß die Bewegungsmuster einen hohe
mechanische Belastung der Membranstrukturen bedingen,
insbesondere dann, wenn diese aus Permeabilitätszwän
gen für Sauerstoff besonders dünn sind, d. h. eine Dic
ke im Mikrometerbereich haben. Dies führt dazu, daß
die Membrane nach wenigen Tage reißen und die Produkte
unsteril werden und dadurch für Implantationen nicht
mehr geeignet sind. Weiterhin können die Membrane auf
grund der Bewegungsmuster, die ständig konvex-konkave
Verformungen hervorrufen, auch nur entsprechend punk
tuell Druckverformungen erzeugen. Dadurch kommt es zu
Oszillationen im Kulturmediumbereich und Druck-Hetero
genitäten in den biologischen Geweben im Bioreaktor.
Der vorliegenden Aufgabe liegt daher die Aufgabe zu
grunde, ein Verfahren und eine Vorrichtung zum Züchten
und/oder Behandeln von Zellen zu schaffen, wobei so
weit wie möglich in-vivo-Verhältnisse simuliert werden
können.
Insbesondere sollen in dem bioartifziellen Gewebe in
nerhalb des Bioeaktors in allen Bereichen vollständig
homogene Druckverhältnisse erzeugt werden können, ohne
jegliche konvex-konkave Membranverformungen der Außen
wände des Systems. Wenn diese Membrane zusätzlich Oxygenationsaufgaben
übernehmen sollen, um unerwünschte
Heterogenitäten der Transportdistanzen für die O2 Dif
fusion und damit Mangelzustände zu vermeiden, so müs
sen sich diese in einer stabilen und möglichst kurzen
Distanz zu den biologischen Konstrukten befinden, und
idealerweise diesen immer direkt anliegen, d. h. sie
müssen allen Bewegungen des biologischen Konstrukts in
identischer Weise folgen, statt dies blasebalgartig zu
induzieren.
Erfindungsgemäß wird diese Aufgabe durch das im kenn
zeichnenden Teil von Anspruch 1 genannte Merkmal ge
löst.
Eine Vorrichtung zur Lösung der gestellten Aufgabe ist
aus Anspruch 3 ersichtlich.
Durch ein Gasmedium bzw. durch die Bildung eines Gas
raumes lassen sich in-vivo-Verhältnisse sehr gut simu
lieren. So ist es z. B. möglich, die Zellschicht in dem
Zellkulturraum sehr gezielt wechselnden und homogenen
Druckbelastungen auszusetzen, welche beliebig häufig
und beliebig schnell ohne großen Aufwand sehr gezielt
gesteuert werden können. Sobald es über die externe
Gasphase zu einer Druckeinwirkung auf die äußere Foli
enschicht kommt, legt sich diese vollständig um das
Implantat an. Dadurch können auch sehr komplexe 3-D
Strukturen vollständig ummantelt werden. Die Diffusi
onswege für O2 werden dadurch gleichzeitig auf fast 0
reduziert. Bei 3-D Strukturen können die Folien/Mem
branschichten idealerweise schon dem Implantat ent
sprechende Formen besitzen, so daß im Druckbelastungs
fall eine einfache Anmodellierung möglich ist.
Die Bildung eines Gasraumes kann auf verschiedene Wei
se erfolgen. Hierzu kann z. B. ein druckfestes Gehäuse
vorgesehen sein, das in vorteilhafter Weise gleichzei
tig als Bioreaktor ausgebildet ist. In einem derarti
gen Bioreaktor kann dann die Zellschicht in dem Zell
kulturraum als selbständige Einheit behandelt werden.
Hierzu kann die Einheit aus der mikroporösen Folie,
dem Zellkulturraum und einer Schutzfolie gebildet
sein, die auch die Trägerstruktur umgibt. In diesem
Falle läßt sich dann die Einheit bei Bedarf aus dem
Bioreaktor entnehmen - gegebenenfalls nach Entfernung
von Anschlüssen für Sauerstoff und/oder Nährmedium -
und z. B. einfrieren oder als Implantat transportieren.
Vorteilhafte Weiterbildungen und Ausgestaltungen erge
ben sich aus den nachfolgend anhand der Zeichnung
prinzipmäßig beschriebenen Ausführungsbeispielen.
Es zeigt:
Fig. 1 eine Prinzipdarstellung einer ersten Ausfüh
rungsform mit Gelenk-Knorpeln, die auf einer
Trägerstrukturschicht, welches ein Kniegelenk
darstellen soll, gezüchtet werden; und
Fig. 2 eine Prinzipdarstellung einer Vorrichtung,
ähnlich der nach Fig. 1, mit einer Gegenstruk
tur.
Nachfolgend wird die Erfindung anhand einer Vorrich
tung zur Bildung von hyalinen Knorpeln als zu züchten
den Zellen für eine Kniegelenk beschrieben. Selbstver
ständlich ist diese Anwendungsart nur beispielsweise
zu sehen. Im Rahmen der Erfindung sind noch zahlreiche
andere Anwendungsfälle möglich.
Auf eine aus Trikalziumphosphat gebildete Trägerstruk
tur 1 werden Knorpelzellen als Zellen 2 zur Bildung
einer Zellschicht aufgelegt. Wie ersichtlich, ent
spricht die Trägerstruktur 1 in ihrer Form einem Knie
gelenk. Über die Zellen 2 wird eine mikroporöse Folie
3 gelegt, welche genügend elastisch sein muß, um das
Zellwachstum nicht zu behindern. Als Material hierfür
ist z. B. PTFE möglich. Die mikroporöse Folie 3 muß
entweder die Trägerstruktur 1 dicht abschließen oder
diese komplett umschließen. Bei der dargestellten Aus
führungsform liegt sie seitlich an der Trägerstruktur
1 dicht an, während die Trägerstruktur 1 auf einer
Platte 4 ruht. Die mikroporöse Folie 3 ist mit einem
Zulaufanschluß 5 und einem Rücklaufanschluß 6 verse
hen, über die Nährmedium im Durchlaufverfahren ein
bringbar ist. Gleichzeitig kann hier auch Sauerstoff
zugeführt werden, sofern Sauerstoff nicht aus der Um
gebung der mikroporösen Folie 3 durch die Folie selbst
eingebracht wird.
Wie ersichtlich, bildet die mikroporöse Folie 3 zusam
men mit der Trägerstruktur 1 auf diese Weise einen
Zellkulturraum 7 für die darin angeordneten Zellen 2.
Die mikroporöse Folie 3 und die Trägerstruktur 1 bil
den - gegebenenfalls zusammen mit der Platte 4 - eine
Einheit, welche in ein druckdichtes Gehäuse 8 einge
setzt ist. Das druckdichte Gehäuse 8 bildet einen Bio
reaktor. In das druckdichte Gehäuse 8 wird über einen
Druckanschluß 9 eine Verbindung mit einem Druckmedium
10 geschaffen. In dem druckdichten Gehäuse 8 wird auf
diese Weise ein Gasraum 11 geschaffen, der durch das
Druckmedium 10 in gewünschter Weise unter wechselnde
Druckbelastungen gesetzt wird. Diese wechselnden
Druckbelastungen wirken sich über die mikroporöse Fo
lie 3 auf die sich in dem Zellkulturraum 7 befindenden
Zellen aus. Die mikroporöse Folie kann auch entfallen,
so daß die Zellen direkt von der Schutzfolie ummodel
liert werden. Wenn für eine separate Sauerstoff- oder
Luftzufuhr für die Zellen 2 gesorgt wird, kann als
Gasmedium auch jedes andere Gas verwendet werden.
Im Bedarfsfalle kann die aus der mikroporösen Folie 3
und der Trägerstruktur 1 gebildete Einheit auch noch
von einer weiteren Schutzfolie 12 umgeben sein (siehe
gestrichelte Darstellung). Die Schutzfolie 12 dient
für einen Transport der Einheit aus dem Bioreaktor 8
und schließt die Einheit damit steril ab. Als Schutz
folie 12 lassen sich verschieden Folien verwenden. Da
durch, daß in dem Inneren des Gehäuses 8 ein Gasraum
11 gebildet wird, sollte die Schutzfolie 12 entspre
chend modellierbar und gaspermeabel sein. Der Gasraum
11 kann dabei sowohl innerhalb der Schutzfolie 12 als
auch außerhalb davon gebildet werden. Im letzten Falle
ist deshalb in der Schutzfolie 12 ein Anschluß für ei
ne Verbindung mit der Druckquelle 10 vorzusehen.
Anstelle von Trikalziumphosphat für die Trägerstruktur
1 können im Knochenersatzbereich auch Kollagene ver
wendet werden, wobei z. B. auch ein Meniskus gezüchtet
werden kann. Ebenso sind Bindegewebestrukturen, Poly
mere, wie Polylaktide oder andere chemische Struktu
ren, verwendbar.
Wesentlich ist, daß man Formen modellieren kann, die
einem gewünschten Implantat entsprechen. Auf diese
Weise kann man z. B. bei einem Defekt ein Implantat ei
ner bestimmten Größe heraussuchen, wozu z. B. über com
putertomographische Bilder eine entsprechende Analyse
durchgeführt und dann in dem Bioreaktor 8 oder gegebe
nenfalls vorher entsprechend eine gewünschte Trägerstruktur
1 geformt wird, auf der dann die dazugehöri
gen Zellen gezüchtet werden.
Zusätzlich lassen sich im Bioreaktor 8 auch elektri
sche Anschlüsse vorsehen, durch die man über entspre
chende Verbindungsleitungen (nicht dargestellt) elek
trische Impulse den Zellen 2 auflegen kann, womit noch
bessere in-vivo-Simulationen erzielt werden können.
Die in der Fig. 2 dargestellte Ausführungsform ent
spricht im wesentlichen der in der Fig. 1 besprochenen
Form, weshalb für die gleichen Teile auch die gleichen
Bezugszeichen beibehalten worden sind.
Unterschiedlich ist lediglich, daß über der mikroporö
sen Folie 3 noch eine Meniskusstruktur 13 aufgebracht
worden ist, über der wiederum eine Trägerstruktur 14
liegt. Auf diese Weise werden noch bessere in-vivo-
Verhältnisse simuliert. Zur Bildung einer transporta
blen Einheit kann das ganze dann ebenfalls von einer
Schutzfolie 12 umgeben sein, durch welche Anschlüsse 5
und 6 zur Zu- und Abfuhr von Nährmedium und/oder Sau
erstoff geführt sind. Der Gasraum 11 kann wiederum außerhalb
der Schutzfolie 12 oder auch innerhalb über
einen entsprechenden Druckanschluß gebildet werden.
Wie erwähnt, werden die Zellen zur Bildung einer Zell
schicht in einem Zellkulturraum 7 zwischen zwei Folien
oder zwischen einer Folie und der modellierbaren Trä
gerstruktur 14 eingebracht. Ebenso kann die Träger
struktur bilateral wie in einer Form mit zwei oder
mehr Hälften angebracht sein. Die Form kann auch wäh
rend dem Besiedlungsprozess ummodelliert, d. h. unter
Annahme einer neuen Form angepasst werden.
Wesentlich ist, daß diese in sich mit Zellen/Matrix
befüllbare Struktur in eine Kammer eingebracht werden
kann, die mittels einer Gas- oder Flüssigkeitsphase
einer Druckbelastung, die auch zyklischer Natur sein
kann, ausgesetzt werden kann. Anstelle eines Gasmedi
ums kann selbstverständlich auch ein flüssiges Medium
verwendet werden.
Die Form der Folien ist reversiblen Druckbelastungs
prozessen vollständig anpassungsfähig, da sie weitest
gehend nicht einer eigenen Vorspannung unterliegt. Das
heißt, wesentlich ist nicht die Elastizität der Foli
en, sondern das positionskonforme Anliegen dieser Fo
lien, welches durch eine sehr hohe Compliance oder
Dehnbarkeit ermöglicht wird. Die Folien können somit
anmodelliert werden bzw. werden durch Druckaufwendung
maximal und homogen anmodelliert. Die Folien können
auch profilierend verformt werden. Auch Innenprofilie
rungen für den Zellkulturraum 7 sind möglich.
Diese Außenfolie 12 kann auf dem zu besiedelnden Trä
gersubstrat 1 somit bereits initial, d. h. vor Beginn
des Druckbelastungsprozesses, möglichst vollständig
aufliegen, und kann damit die ansonsten durch eine re
versible Druckbelastung ursächlich bedingten Ver
schleißerscheinungen verhindern und direkt auch pro
filgebend wirken. Diese Profilgebung kann auch noch
dadurch unterstützt werden, indem der von außen appli
zierte Druck über ein Druckprofil formend wirkt.
In den Behandlungsraum wird das zu besiedelnde Träger
substrat 1, z. B. in einer in vivoartigen Form im Sinne
eines Profils, Struktur auch als Hohlkörper (shell)
eingebracht. Diese Strukturen können dann innerhalb
und/oder außerhalb als auch transmural mit Substraten
und Zellen besiedelt werden. Sie können auch mit Kul
turmedium und Sauerstoff durchströmt werden.
Von Vorteil ist auch die Flexibilität der Vorrichtung
und des Verfahrens, da die inneren Bioreaktorenbautei
le entnehmbar sind und dadurch für Transport- und Kry
prozesse zugänglich sind.
Claims (10)
1. Vorrichtung Verfahren zum Züchten und/oder Behan
deln von Zellen auf einer modellierbaren Träger
struktur, wobei die Zellen zur Bildung einer Zell
schicht in einen Zellkulturraum zwischen der Trä
gerstruktur oder einer auf die Trägerstruktur auf
gebrachten Folie und einer zweiten Folie, insbe
sondere einer mikroporösen Folie eingebracht wer
den, wobei Sauerstoff und/oder Nährmedium in den
Zellkulturraum eingeleitet wird,
dadurch gekennzeichnet, daß
der Zellkulturraum (7) durch ein Gasmedium wech
selnden Druckbelastungen ausgesetzt wird.
2. Verfahren nach Anspruch 1,
dadurch gekennzeichnet, daß
um den Zellkulturraum (7) und wenigstens teilweise
um die Trägerstruktur (1) eine Schutzfolie (12)
gelegt wird, wobei als Trägerstruktur (1) eine
Form und Zusammensetzung verwendet wird, die einer
in-vivo-Struktur weitgehend nachgebildet oder
nachbildbar ist, und daß die beiden Folien (3, 12)
mit der Trägerstruktur (1) als selbständige Ein
heit in einen Bioreaktor eingebracht werden.
3. Vorrichtung zum Züchten und/oder Behandeln von
Zellen auf einer Trägerstruktur, wobei die Zellen
zur Bildung einer Zellschicht in einen Zellkultur
raum zwischen der Trägerstruktur oder eines auf
die Trägerstruktur aufgebrachten Folie und/oder
einer mikroporösen Folie eingebracht sind, wobei
Sauerstoff und/oder Nährmedium in den Zellkultur
raum einleitbar ist,
dadurch gekennzeichnet, daß
der Zellkulturraum (7) in einem Gasraum (11) ange
ordnet ist, der mit wenigstens einem Druckanschluß
zur Verbindung mit einer Druckquelle (10) versehen
ist oder der durch eine Druckquelle (10) unter
wechselnden Druck setzbar ist.
4. Vorrichtung nach Anspruch 3,
dadurch gekennzeichnet, daß
der Gasraum (11) durch ein den Zellkulturraum (7)
und die Trägerstruktur (1) umgebendes druckdichtes
Gehäuse (8) gebildet ist.
5. Vorrichtung nach Anspruch 4,
dadurch gekennzeichnet, daß
das druckdichte Gehäuse (8) einen Bioreaktor bil
det, in welchem der Zellkulturraum (7) vorzugswei
se zwischen der mikroporösen Folie (3) und einer
Schutzfolie (12), die auf und um die Trägerstruk
tur (1) gelegt ist, gebildet ist, wobei die beiden
Folien (3, 12) und die Trägerstruktur (1) als selb
ständige Einheit in dem Bioreaktor angeordnet
sind.
6. Vorrichtung nach einem der Ansprüche 3 bis 5,
dadurch gekennzeichnet, daß
die Trägerstruktur (1) in Form und Zusammensetzung
wenigstens weitgehend einer in-vivo-Struktur nach
gebildet ist oder modellierbar ist.
7. Vorrichtung nach einem der Ansprüche 3 bis 6,
dadurch gekennzeichnet, daß
die Trägerstruktur (1) aus Kalziummaterial, insbe
sondere Kalziumphosphat, gebildet ist.
8. Vorrichtung nach einem der Ansprüche 3 bis 6,
dadurch gekennzeichnet, daß
die Trägerstruktur (1) aus Kollagen/extrazellu
lärer Matrix gebildet ist.
9. Vorrichtung nach einem der Ansprüche 3 bis 6,
dadurch gekennzeichnet, daß
die Trägerstruktur (1) aus einem biodegradablen
Polymer, wie z. B. Polylaktid, gebildet ist.
10. Vorrichtung nach einem der Ansprüche 3 bis 9,
dadurch gekennzeichnet, daß
über der mikroporösen Folie (3) oder der Träger
struktur bzw. der ersten Außenfolie eine zweite
Struktur (14) angeordnet ist, die in Form und gegebenenfalls
in ihrer Zusammensetzung einer in
vivo-Gegenstruktur zu der Trägerstruktur (1) nach
gebildet ist.
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