DD294420A5 - Verfahren zur herstellung von lebendimpfstoffen gegen listeriose - Google Patents
Verfahren zur herstellung von lebendimpfstoffen gegen listeriose Download PDFInfo
- Publication number
- DD294420A5 DD294420A5 DD34079890A DD34079890A DD294420A5 DD 294420 A5 DD294420 A5 DD 294420A5 DD 34079890 A DD34079890 A DD 34079890A DD 34079890 A DD34079890 A DD 34079890A DD 294420 A5 DD294420 A5 DD 294420A5
- Authority
- DD
- German Democratic Republic
- Prior art keywords
- vaccine
- resistance
- marker
- strains
- attenuation
- Prior art date
Links
Landscapes
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Herstellung von Lebendimpfstoffen gegen Listeriose aus stabilen Listeria * monocytogenes Impfstaemmen mit abgestufter Attenuierungshoehe und deren Anwendung bei Nutztieren. Die Stabilitaet (Zwei- und Dreimarker Attenuierung) und schrittweise Virulenzreduktion der L. monocytogenes Serotyp 1/2 a und 4 b Zwei- und Dreimarker Impfstammkandidaten wurde realisiert im ersten Schritt durch die Isolierung von gering bis maeszig attenuierten Streptomycin * (Ribosomenprotein)-Mutanten mit Klon-abhaengiger Anhebung der i.p. LD50 Maus von 105.0cfu bis zu 107.4cfu und im zweiten Schritt durch die Isolierung von zusaetzlich attenuierten Rifampicin (Rif)-Resistenz (RNA-Polymerase) Mutanten aus ausgewaehlten Sm-Klonen (Anhebung der i.p. LD50 Maus von 106.1cfu auf 106.6-107.4cfu). Diese Zweimarker-Impfstammkandidaten schuetzen nach einmaliger Impfung (tolerierte Dosis 1% LD50) ueber 95% der Maeuse gegen die letale (100 LD50) Belastung mit dem homologen Wildstamm. Bei weiterer Anhebung der i.p. LD50 fuer Maeuse auf 108.0cfu mittels einer dritten Fosfomycin-Resistenz (Transportdefekt)-Mutation ueberschreitet die Virulenzreduktion zunehmend den Bereich der UEberattenuierung.{Listeria monocytogenes; Serotyp 1/2 a und 4 b; Stoffwechseldrift; Mutante; abgestufte Attenuierung; Lebendimpfstoff; Vermehrung, intrazellulaer; Immunitaet; Maus; Nutztier}
Description
Sero typ | Listeria monocytogenes Ein- Zwei- Drei- Marker-Stämme | Sm 30 | i.p. LD60 Maus cfu±0·4 | Hinterlegungsstelle Labor- IMET Nummer Nummer | IMET 11443 |
Sm 74 | Sm 30 Rif97 | 1Oe.2 | 4180 | IMET 11444 | |
1/2a | Sm 74 Rif53 | Sm 30 Rif97 Fos02 | 107'2 | 4185 | IMET 11445 |
Sm74 Rif53 Fos21 | Wildstamm 3192 | 108·3 | 4192 | - | |
Wildstamm D 218/77 | 104·3 | 4179 | IMET 11440 | ||
loe.i | 4195 | IMET 11441 | |||
4b | 107·1 | 4203 | IMET 11442 | ||
108,6 | 4204 | - | |||
106.0 | 4193 |
Hierzu 1 Seite Zeichnung
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Herstellung von Lebendimpfstoffen gegen Listeriose aus stabilen Listeria monocytogenes Impfstämmen mit (für das Mäusemodell) abgestufter Attenuierung,
- deren Stabilität (keine Rückmutation zum Wildstamm unter nichtselektiven Feldbedingungen) durch zwei oder drei unabhängig voneinander virulenzreduzierendne Markern garantiert wird,
- deren abgestufte Gesamt-Attenuierungshöhen (als Set von Impfstamm-Kanditaten mit schrittweise abnehmender Virulenz) aus der gezielten Auswahl von gering bis mäßig virulenzreduzierten Klonen der jeweils verwendeten Marker resultieren,
- deren Attenuierungshöhe (durch Auswahl eines - entsprechend der Empfänglichkeit des Wirtes für den Erreger - geeigneten Zwei- oder Dreimarker-Stammes aus obigem Set) einer für das jeweilige Nutztier optimal eingestellten Virulenzreduktion entspricht, so dab bei einmaliger Impfung eine inapparente Impfstamm-Infektion garantiert wird als Voraussetzung zur Stimulierung einer belastbaren und längerfristigen zellulären Immunität,
die als immunogene Impfstoffe aus lebenden Erregern zur aktiven Immunisierung von Nutztieren geeignet sind.
-2- 294 Charakteristik des bekannten Standet der Technik
Bei der Listeriose handelt es sich um eine generalisierte Infektion, bei der sich die Erreger fakultativ intrazellulär vermehren (Gaillard, J.-L. et. al: Infect. Immun. 1987,55,2822-2877; Gaillard, J.-L. et. al.: Ann. Inst. Pasteur, Microbiol. 1987,138,259-264; Havell, E.A.: Infect. Immun. 1986,54,787-792; Ralovich, B.: Llsteriösis research. Budapest, Akaderhiai Kiado, 1984) und damit der humoralen Abwehr weitgohend entzogen sind. Für die aktive Immunprophylaxe sind daher Impfstoffe aus inaktivierten Listerien ungeeignet (Wirsing, V. et. al.: Nature, 1982,297,233-234; Hahn, H. and Kaufmann, S. H. E.: Rev. Infect. Dis. 1981,3, 1221-1250; Miki, K. and Mackaness, G.B.: J. Exp. Med. 1964,120,93-104), da durch sie vorwiegend nur eine humorale Immunantwort ausgelöst wird. Ein langanhaltender und belastbarer Schutz setzt eine aktivierte zelluläre Immunität voraus (Mackaness, G.B.: J. Exp. Med. 1962,116,381-406; Kongshavn, P.A.L: Current Topics in Microbiology and Immunology 1986, 124,67-65; Mackaness, G.B. and Hill, W.C: J. Exp. Med. 1969,129,993-1012). Dies wird nur durch solche Lebendimpfstoffe stimuliert, bei denen der auf die jeweilige Wirtsspezies bezogene optimale Attenuierungsgrad, - d. h. die noch verbleibende Rostvirulenz,- eine restliche aber ausreichende in vivo Vermehrung (Baldridge, J. R. et. al.: Infect. Immun. 1983,56,2109-2113; Berche, P. etal.: J. Immunol. 1987,138,2266-2271) im Sinne einer inapparenten Infektion garantiert. Bei avirulenten Listerien ohne meßbare in vivo Vermehrung liegt der i. p. LDM-Wert für Mäuse bei etwa 109cfu (Baldridge, J. R. et al.: Infect. Immun. 1988, 56,2109-2113; Hof, H.: Med. Microbiol. Immunol. 1984,173,207-219; Pine, L. etal.: J. Clin. Microbiol. 1987,25,2247-2251; Stelma, Jr., G. N. etal.: J. Clin. Microbiol. 1987,25,2085-2089). Solche Stämme sind als Vakzinen ungeeignet: Lediglich bei Immunisierungsdosen in der Größenordnung des LDM-Wertes zeigen die überlebenden Mäuse einen nur kurzzeitigen Schutz. Bei den bislang beschriebenen Listeria-Lebendimpfstoffen handelt es sich um 1.) Rauhform-Mutanten (Potel, J. and Schulze-Lammers, J.: ZbI. Bakt. Hyg. I.Abt. Orig. A 1985,259,331-340), weiche eine mäßige und gegenüber virulenten Stämmen zeitlich verkürzte Immunisierung vermitteln (Hof, H.: Med. Microbiol. Immunol. 1984,173,207-218); 2.) durch mehrfache Mutagenbehandlung attenuierte Erreger, welche erfolgreich bei Schaflisterioso eingesetzt wurden (Titov, V. V.: Arch, exper. Vet. Med. 1980,34,115-118; und 3.) durch über 800 Passagen gegen steigende Konzentrationen eines „bacteriostatlc agent" erhaltene attenuierte Mutanten, welche mit Saponin als Adjuvans erfolgreich zur Bekämpfung der Schaflisteriose eingesetzt wurden (Ivanov, I. etal.: Proceedings of Listeriosis. Ivanov, I. (ed.), Sofia, National Argo-Industrial Centre for Scientific Informations, 1979,324-329). Andere Autoren berichten jedoch nur über einen partiellen Schutz für Schafe (Gudding, R. etal.: Vet. Rec. 1989,125,111-114). Dieser als Listevac (Bulgarien) kommerziell eingeführte Lebendimpfstoff mit den prädominanten Serotypen 1/2a und 4b besitzt für Mäuse einen i. p. LDM-Wert von a 10Mcfu und schützt nach i. p. Immunisierung mit der tolerierten Dosis von 1 % der LD» etwa £60% der Mäuse gegen eine nach 14 Tagen erfolgende letale ~ 100 LDM-Belastung (siehe Beispiel 2, Tabelle 2).
In Anlehnung an unsere Erfahrungen zur Herstellung von Salmonella-, Shigella-, und Pasteurella-Impfstämmen (mit jeder gewünschten Attenuierungshöhe beim empfänglichen Versuchstier) unter Verwendung von Stoffwechseldrift-Mutationen·, streben wir in Analogie hierzu auch bei Listerien eine stabile abgestufte Attenuierung an mittels zwei oder drei unabhängig voneinander virulenzreduzierenden Mutationen. Der diesbezügliche Stand der Technik ist in den Patentschriften DD-WP155 294; DD-WP 235828; DD-WP 231491; DD-WP 253184; DD-WP 253182
Weitere Einzelheiten zu diesem Stand der Technik finden sich auch in den Publikationen
- Linde, K.: ZbI. Bakt. Hyg. I.Abt. A. 1981,249,350-361
- Linde, K.: Dev. Biol. Standard 1983,53,15-28
- Linde, K.: Arch, exper. Vet. Med. 1982,36,647-656
- Linde,K.: etal.: Arch.exper. Vet. Med. 1983,37,353-360
- Linde, K.: etal.: Vaccine 1990,8,25-29
- Linde, K.: etal.: Vaccine 1990,8,278-282
- Marakusha, B.I. etal.: Z.Microbiol. Epidemiol. Immunol. 1987/4,3-8.
Diese angegebene Literatur mit ihrer Secundärliteratur bezieht sich fast ausschließlich auf gramnegative Erreger. Bezüglich grampositiver Bakterien gibt es nur wenige Berichte über ein Zusammenfallen von Antibiotika-Resistenzmuiationen und Attenuierung (sowie Generationszeitverlängerung (Potuinlkovä, B. and Schindler, J.: Microbios. Lett. 1978,8,27-30; Moorman,D.R. and Mandell, G. L.: Antimicrob. Agents Chemother. 1981.20,709-713)], wobei jedoch in all diesen Publikationen keine gesetzmäßigen Zusammenhänge im Sinne der »Stoffswechseldrift" aufgezeigt wurden. Beschrieben wurde dieses Phänomen für Rifampicin bei Staphylokokken (Moorman, D.R. und Mandell, G.L.: Antimicrob. Agents Chemother. 1981,20, 709-713) und Mykobakterien (Manten, A. and van Wijngaarden, L. J.: Chemotherapy 1969,14,93-100; McDermott-Lancester, R. D. and
Hilson, G.R.F.: J. Med. Microbiol. 1987,24,13-15), Penicillin und Clindamycin bei Staphylokokken (Blair, J.E. etal.: J. Immunol. 1946,52,281-292; Marsik, FJ. and Parisi, J.T.: Appl. Microbiol. 1973,25,11-14), sowie Fosfomycin bei Listerien (Potuznikovä, B. and Schindler, J.: Microbios Lett. 1978,8,27-30).
Die oben zitierten drei verschiedenen Listeria· Lebendimpfstoffe weisen zum Stand der Technik sowie ihrer Wirksamkeit folgende Nachteile auf:
1) Stabilität: Aus der Literatur ist nicht ersichtlich, ob die erzielte Attenuierung auf nur eine oder mehreren Mutationen beruht. . Obwohl in der Regel auch Einmarker-Mutanten unter den nicht-selektiven Feldbedingungen stabil sind, setzen die von der WHO empfohlenen Sicherheitsforderungen (Report of a WHO Scientific Group: WId. Hlth. Org. techn. Rep. Ser. 1972 No. 500) zwei unabhängig voneinander virulenzreduzierende Mutationen voraus.
* Der Begriff .Stoffwechseldrift* umfaßt alle durch Mutationen funktionell veränderten essentiellen Enzyme bzw. funktionell wichtigen Zellkompartlmente, wie z. B. RNA-Polymerase, Ribosomeo-Proteine, Permeasen, wobei als Folge dieser Mutation die Genauigkeit der Transkription, Translation oder PermeationsaktivltSt mehr oder weniger ausgeprägt gestört wird. Solche Stoffwecheeldrlft-Mutanten können im Labor als Chromosomale Antiblotlka-Reslstenzmutanten erhalten werden. Jeder dieser Reslstenz-PhSnotypen zerfällt In ein Spektrum von Klonen, von denen bis zu 80% eine verminderte Virulenz (Inclusive verlängerter Generationszeit) aufweisen, weiche In Abhängigkeit vom Genotyp sich zwischen geringer bis hoher Attenuierung bewegt. ,
2) Attenuierungsprinzip: Mehrfache Mutagenbehandlung (Titov, V. V.: Arch, exper. Vet. Mod. 1980,34,116-118) oder mehr als 800 Passagen über einen Nährboden mit steigenden Konzentrationen eines „bacteriostatic agent" (Ivanov, I. etal.: Proceedings of Listeriosis, Ivanov, I. (ed.) Sofia, National Agro-Industrial Centre for Scientific Informations 1979,324-329) führen zu keiner näher definiertei. Mutation als Ursache der Virulenzreduktion und überlassen den Grad der Attenuierung weitgehend dem Zufall.
3) Wirksamkeit: Rauhform-Mutanten und der „mit Adjuvans" gegebene offensichtlich überattenuierte, kommerzielle Impfstoff Listevac (Literatur siehe oben) vermitteln nur einen begrenzten Schutz. Über den Impfstoff aus durch mehrfache Mutagenbehandlung attenuierten Mutanten liegt nur die Publikation (Literatur siehe oben) des Erfinders vor, welcher über sehr gute Ergebnisse bei Schafen berichtet.
4) Methodische Hinweise oder Konzeptionen zur Isolierung von Listeria-Impfstämmen mit ahgsc'ufter Attenuierungshöhe am Mäusemodell, zwecks Auswahl von für die jeweilige Wirtsspezies optimal attenuierten, bei einmaliger Impfung sicher schützenden Impfstamm-Kanditaten, fehlen bislang.
- mit unbekannter (obz.B. aus Einmarksr, Mehrmarker oder Deletionsmutation resultierender) Stabilität;
- mit einem dem Zufall überlassener. Grad der Attenuierung;
- mit einer im Bereich der Üborattenuierung sich bewegenden Virulenzreduktion und damit wie bei Rauhform-Mutanten nur begrenzten Immunogenität;
eine neue Impfstamm-Generation mit garantierter Stabilität und (am Mäusemodell) abgestufter Virulenzreduktion einzuführen, so daß für die jeweilige Nutztierspezies der jeweilige optimal attenuierte, bei einmaliger Impfung über eine inapparente Infektion den belastbaren Schutz vermittelnde Impfstamm-Kandidat zur Verfügung steht.
Aufgabe der Erfindung ist es, ein Verfahren zur Herstellung von Listeria monocytogenes Lebendimpfstoffen aus stabilen (zwei oder evtl. drei unabhängig voneinander virulenzreduzierende Mutationen besitzenden) und immunoo3nen (eine dem jeweiligen Nutztier angepaßte optimale Attenuierung aufweisenden) Impfstämmen darzulegen, welches
- die Stabilität durch zwei und evtl. drei unabhängig voneinander virulenzreduzierende Marker garantiert (Gesamtstabilität = Produkt der Stabilitäten der einzelnen Marker),
- nicht auf vollständig unbekannte und den Grad der Virulenzreduktion dem Zufall überlassende Mutationen zurückgreift und daher mit einem Attenuierungsprinzip arbeitet, bei dem mit überzufälliger Häufigkeit schwach bis mäßig attenuierte Klone anfallen, und
- insbesondere gestattet, Impfstämme mit abgestufter Attenuierungshöhe (im hochempfänglichen Mäusemodell) bereitzustellen, um aus diesem Set die für die jeweilige Nutztierspezies optimal attenuierten und daher immunogenen Impfstamm-Kandidaten bereitstellen zu können, welche bei einmaliger Impfung - als Resultante aus relativ hoher Impfdosis und erhaltener Invasivität mit begrenzter aber ausreichender in vivo Vermehrung - über eine inapparente Infektion einen sicheren Schutz vermitteln.
- im ersten Schritt Stoffwechseldrift-Mutanten eines bestimmten Antibiotika-Resistenz-Phänotyps isoliert werden und Klone mit geringer bis mäßiger Virulenzredul Jon ausgelesen werden,
- im zweiten Schritt von solchen Einmarker-Stämmen mit geringer oder mäßiger Virulenzreduktion erneut Stoffwechseldrift-Mutanten eines anderen Antibiotika-Resistenz-Phänotyps isoliert und von diesen Klonen ausgelesen werden, welche dem jeweiligen Zweimarker-Stamm die gewünschte zusätzliche Virulenzreduktion vermittelt, so daß ein Set von Impfstamm-Kandidaten mit abgestufter Attenuierung zur Verfügung steht, und
- im evtl. dritten Schritt - bei Notwendigkeit zur weiteren Anhebung der Attenuierung - von einem Zweimarkerstamm erneut Stoffwechseldrift-Mutanten eines weiteren Antibiotika-Resistenz-Phänotyps isoliert und von diesen Klonen mit zusätzlicher Virulenzreduktion ausgelesen werden.
Die oben angegebene Reihenfolge kann in beliebiger Weise variiert und hierbei auch auf andere Stoffwechseldrift (chromosomaleAntibiotika-Resistenz)-Marker zurückgegriffen werden.
Offensichtlich ist den meisten Stoffwechseldrift-Mutationen gemeinsam, daß eine signifikante lineare Korrelation zwischen dem Logarithmus der i.p. LD60 und der Generationszeit besteht (Linde, K.: Dev. Biol. Standard 1983,53,15-18 sowie diese Patentschrift unter Beispiel 1, Abbildung 1), so daß über die Vorauswahl von Klonen mit verlängerter Generationszeit bereits eine überzufällige Auswahl von Mutanten mit geringer oder mäßiger bzw. zusätzlicher Virulenzreduktion möglich ist. Anstelle der in den nachfolgenden Beispielen verwendeten gering bis mäßig attenuierten chromosomalen Streptomycin-Resistenz (Ribosomenprotein)-, Refampicin-Resistenz (RNA-Polymerase)· und Fosfomycin-Resistenz (Transportdefekt)-Mutanten können ebenso vorteilhaft andere Antibiotika-Resistenz-Phänotypen (oder auch Noxen-Phänotypen: DD-WP 235828) zur Isolierung virulenzgeminderter Klone herangezogen werden.
Die in den Ansprüchen und nachfolgend aufgeführten und beim IMET hinterlegten (Einmarker), Zweimarker und Dreimarker Impfstamm-Kandidaten der prädominanten Listeria monocytogenes Serotypen 1 /2 a und 4 b-welche als Beispiel stehen für alle nach gleichem Prinzip hergestellten Impfstamm-Kandidaten mit abgestufter Attenuierungshöhe- sind zur Herstellung von immunogenen Impfstoffen nach an sich bekannten Verfahren geeignet.
Sero typ | * | 4b | Listeria monocytogenes Ein- Zwei- Marker-Stämme | Rif53 | Drei- | . i.p.LDM Maus . cfu±0·4 | Hinterlegungsstelle Labor- IMET Nummer Nummer | IMET 11443 |
Sm 74 | Rif53 | 10»·2 | 4180 | IMET 11444 | ||||
1/2a | Sm74 | Wildstamm D 218/77 | 107·2 | 4185 | IMET11445 | |||
Sm 74 | Fos21 | 108.3 | 4192 | - | ||||
Rif97 | 104·3 | 4179 | IMET 11440 | |||||
Sm 30 | Rif97 | 108·' | 4195 | IMET 11441 | ||||
Sm 30 | Wildstamm 3192 | 107·' | 4203 | IMET 11442 | ||||
Sm30 | Fos02 | 1Ο8.β | 4204 | - | ||||
106.0 | 4195 | |||||||
Material und Methoden Wildstimme:
- L. monocytogenes D 218/77, Serotyp 1/2a; Lp. LD60 Maus 10°cfu (Prof. Selbltz, Sektion Tierproduktion und Veterinärmedizin, Karl-Marx-Universität, Leipzig)
- L. monlocytogenes, 3192, Serotyp 4b; i.p. LD60 Maus 10wcfu (Prof. Sandow, Institut für Medizinische Mikrobiologie, Martin-Luther-Universität, Halle)
Impfstemme zum Immunogenltätsverglelch
Liste vac: Kommerzielle Mischvakzine der Serotypen 1/2a und 4b (Veterinary Institute of Immunology, Sofia, Bulgarien)
Nährmedien
- Nähragar (SIFIN, Berlin-Weißensee, DDR) mit 5% Schafblut
- Tryptose phosphate broth (Difco, USA)
- Streptomycin (Jenapharm), MHK der Wildstämme S8 Mg/ml;
- Rifampicin (UMB, Bukarest, MHK der Wildstämme <0,1 μς/πιΙ;
- Fosfomycin (Boehringer), MHK der Wildstämme s 5mg/ml.
10" (1010) cfu wurden auf Nähragar mit 5% Schafblut und 400pg Streptomycin (Smj/ml; 100pg Rifampicin (Rif)/ml oder 10mg Fosfomycin (Fos)/ml gespatelt und bis zu 3 Tragen bei 370C inkubiert. Die Rasistenzklone wurden über 2:10 Blutagarpassagen geführt und bei erhaltener Resistenz von 2:400 Mg SmVmI, alOOpg Rif/ml oder a 10mf Fos/ml weiter bearbeitet.
Die Wachstumskurven wurden bei 370C in Tryptose phosphate broth mit Hilfe des Bioscreen Analyser (Labsystoms Oy, Finnland) aufgenommen. Die Generationszeiten in der exponentiell Wachstumsphase wurden über lineare Regressionsanalysen berechnet und der Mittelwert aus drei getrennten Ansätzen gebildet.
Jeweils zehn 20-25g schwere ICR-Mäuse (Tierzuchtproduktion Berlin-Schönwalde, DDR) wurden L p. mit logarithmisch abgestuften Konzentrationen der Wildstämme oder Mutanten infiziert und die Absterberate Ober 14 Tage verfolgt.
- Erster Schritt: Isolierung von Sm-Resistenz (Stoffwechseldrift)-Klonen. Von diesen wurden insbesondere solche mit unterschiedlich stark verlängerter Generationszeit auf ihre I. p. LD60 getestet.
- Zweiter Schritt: Von einem Sm-Resistenzklon mit etwas über einer Zehnerpotenz erhöhter i. p. LD60 wurden Rif-Resistenz (Stoffwechseldrift)-Klone isoliert und die Sm/Rif-Klone mit verlängerter Generationszeit auf ihre L p. LDf0 getestet.
- Dritter Schritt: Von einem Sm/Rif-Zweimarker-Impfstammkandidaten mit einer etwa eine weitere Zehnerpotenz erhöhter I. p. LD60 wurden Fos-Resistenz (Stoffwechseldrift)-Klone isoliert und sinngemäß wie beschrieben weiter untersucht.
Bestimmung der Immunogenltät der Ein·, Zwei- und Drelmarker Impfstand-Kandldaten Im Vergleich zum kommerziellen Impfstoff Llstevac
Die ICR-Mäuse wurden I. p. mit der voll tolerierten Dosis von s 1 % der LDw immunisiert. Nach 14 Tagen erfolgte die letale i. p.-Belastune mit ~ 100 LD60 des homologen Wildstammes.
siehe Fußnote Seite 4.
Herstellung von potentiellen Impfstämmen über die schrittweise Isolierung von geeigneten Ein-, Zwei- und Drelmarker-Stoffwachseldrift-Mutanten:
- Erster Schritt: Isolierung von Streptomycin (Sm)-Reslstenz Phänotypen aus den L. monocytogenes Wildstämmen mit anschließender Auslese derjenigen Sm-Klone, welche eine mehr oder weniger ausgeprägte Virulenzreduktion zeigen. Dies erfolgt über die Vorauswahl von Klonen mit verlängerter Generationszeit und der nachfolgenden Bestimmung der Lp. LD6O-WeHe dieser Klone am Mäusemodell (Methoden siehe oben).
Jeweils ein Sm-Klon, welcher nach über 20 Blutagar-Passagen hinsichtlich Streptomycin-Resistenz* und Virulenzreduktion (im vorliegenden Fall: etwas über eine Zehnerpotenz erhöhte LD60) stabil war, diente als Einmarker (Impf- bzw.) Ausgangsstamm für die Herstellung von Zweimarker-Impfstamm-Kandidaten.
- Zweiter Schritt: Isolierung von Rifampicin (Rif)-Resistenz-Phänotypen aus stabil (mehr oder wenger) attenuierten Sm-Klonen, mit anschießender Auslese derjenigen Sm/Rif-Klone, welche gegenüber dem Sm-Einmarkerstamm eine mehr oder weniger ausgeprägte zusätzliche Virulenzreduktion zeigen. Dies erfolgt wiederum über die Vorauswahl von Klonen mit verlängerter Generationszeit (gegenüber dem jeweiligen Sm-Einmarkerstamm) und der nachfolgenden Bestimmung der L p. LD60-We(Ie dieser Sm/Rif-Klone am Mäusemodell (Methode: siehe oben).
Solche Srv/Rif-Klone, welche nach über 20 Blutagar-Passagen hinsichtlich Rifampicin-Resistenz und zusätzlicher Virulenzreduktion gegenüber dem Sm-Einmarker-Ausgangsstamm stabil waren, (im vorliegenden Fall bewegt sich die Gesamtettenuierung in Abhängigkeit vom jeweiligen Sm/Rif^-Klon zwischen Lp. LD60-MaUs von 10Mbis 107>4cfu), sind als Zweimarker-Impfstammkandidaten geeignet (bzw. stehen bei Notwendigkeit für den Einbau einer dritten virulenzreduzierenden Stoffwechseldrift-Mutation zur Verfügung
- Eventueller dritter Schritt: Die Isolierung von Fosfomycin (Fos+) Resistenz-Phänotypen aus stabil (mehr oder weniger) attenuierten Sm/Rif-Klonen erfolgt sinngemäß wie unter .Erster Schritt" und .Zweiter Schritt" beschrieben.
Aus Tabelle 1 ist ersichtlich, daß die angeführten Sm- und Sm/Rif-Resistenzphänotypen in Klone (Genotypen) mit unverändertem Virulenzverhalten sowie in solche mit den gewünscht unterschiedlichen Attenuierungsgraden zerfallen. Letztere Klone sind nach Kontrolle der Stabilität als Einmarker-Ausgangs (Lzw. lmpf)-stämme oderZweimarker-lmpfstamm-Kandidaten geelgn6.. Wie außerdem die Abbildung 1 für den jeweiligen Resistenz-Phänotyp des Serotyps 1 /2 a am I. p.-Mäusemodell ausweist, korreliert linear der ansteigende Logarithmus der LD60 mit der Generationszeit (g). Die Regressionsgeraden wurden für beide Resistenz-Phänotypen getrennt und berechnet und die Signifikanz der Korrelationskoeffizienten (r) mit Hilfe des t-Testes überprüft. Die Regressionsgeraden lauten für Sm-Klone: log LD60 = 0.04 + 2.6 (n = 35, r = 0,423, ρ <0,02) und für (die Sm/)Rif-Klone/ log LD60 = 0,01 g+5,6 (n = 27, r = 0,489, ρ < 0,01). Diese Daten etwa entsprechende Korrelationen wurden auch für den Serotyp 4 b gefunden.
Bestimmung der Immunogenität der Einmarker, Zweimarker und Dreimarker-Impfstammkandidaten im Vergleich zum mitgeführten kommerziellen Listevac (Bulgarien)-Impfstoff.
Von ausgewählten (entsprechend Beispiel 1 hergestellten) Sm-Einmarkerstämmen, Sm/Rif-Zweimarkerstämmen und Sm/Rif/ Fos-Dreimarkeretämmen erhielten Mäuse die einmalige voll tolerierte I. p.lmmunls.erungsdosis von ώ 1 % der LD60 und wurden nach 14 Tagen L p. mit der letalen -100 LDM-Dosis des jeweiligen homologen Wildstammes belastet.
Aus der zusammenfassenden Tabelle 2 ist ersichtlich, daß alle Einmarker- und Zweimarker-Impfstämme 295% der Mäuse
gegen die letale Belastung schützen. Ab Lp. LDM-Werten von 10"-0CfU beginnt jedoch der Bereich der Überattenuierung. Dies ist aus dem stufenweise abnehmenden Schutz ersichtlich, welcher aus der Immunisierung mit der Sm/Rif/Fos-Dreimarkerstämmen, Lp. LDmIO8-3 und 1086CfU, und dem Listevac-Impfstamm, Lp. LD60 a 10wcfu resultiert.
Abrennung der Impfstämme von Wildstämmen:
Die Abtrennung von den Wildstämmen erf jlgt bei den
- Sm-Einmarkerstämmen durch den Nachweis der Resistenz gegen 100μρ Streptomycin/ml
- Sm/Rif-Zweimarkerstämme durch den Nachweis der Resistenz gegen 100Mg Streptomycin/ml und 100μς Rifampicin/ml
- Sm/Rif/Fos-Dreimarkerstämmedurch den Nachweis der Resistenz gegen 100pg Streptomycin/ml, 100pg Rifampicin/ml und 10mg Fosfomycin/ml.
Massenkultur, Präparation und Anwendung der Impfstämme:
Zur Herstellung des Lebendimpfstoffes werden die (Einmarker-), Zweimarker- oder Dreimarker-Impfstämme In einem geeigneten Vollmedium als Flüssigkultur bis zum Ende der Logarithmischen Phase gezüchtet. Die Bakteriensuspensionen werden zu gleichen Teilen als Misch-Lyophilisat präpariert. Der so erhaltene Impfstoff wird in der Regel als einmalige Dosis an entsprechnede Nutztiere (z. B. Lämmer) vorzugsweise eubcutan, in einer Dosis von ~ 109 Lebendkeime verabreicht.
Einzelne Streptomycln-Reslstenz-Klone (Genotypen) zeigen nach mehreren Passagen Ober Blutagar eine gering verminderte und dann auf diesem Niveau stabil verbleibende Streptomycin-Resistenz ohne Änderung der Virulenzreduktion.
Einzelne von Stroptomycln-Resistenz-Klonen abgeleitete Rifampicin· und Fosfomycln-Reslstenz-Klone (Genotypen) zeigen - außer der zusätzlichen Virulenzreduktion -eine gering verminderte oder erhöhte Streptomyclnm-Reslstenz als zusätzlichen plelotropen Effekt.
Die mittels Stoffwechseldrlft-Mutatlonen hergestellten, hinterlegten sowie auszugsweise in Tabelle 2 ausgeführten Listeria monocytogenes-lmpfttf mme besitzen folgende Vorteile:
- Garantierte Stabilität (unter den Bedingungen des Impfstoff-Einsatzes), realisiert über zwei (oder drei} unabhängig voneinander virulenzreduzierende Mutationen
- Abgestufte Attenulerungsgrade (bezogen auf die LDM-Werte am hochempfänglichen Mäusemodell) bei den Zwei- und Dreimarker-Impfstämmen, reguliert durch die gezielte Auswahl von Klonen mit geringer oder mäßiger Virulenzreduktion. Das heißt, falls durch eine (von Mäusen) abweichende Empfänglichkeit des Nutztieres der orientierend getestete Impfstamm-Kandidat sich als zu hoch oder zu gering attenuiort erweisen sollte, kann - aus dem Set von Impfstämmen mit abgestufter Viru lenzreduktion - auf einen geeigneten Impfstamm mit geringerer oder höherer Gesamtattenuierung zurückgegriffen werden.
- Einmalige Impfung fuhrt zur Immunität, da solche für die jeweilige Wirtspezies optimal attenuierten Impfstämme (als Resultante aus relativ hoher Impfdosis sowie erhaltener Invasivität mit begrenzter, aber ausreichender in vivo Vermehrung) eine inapparente Infektion mit entsprechender Erregerresistenz im Gewebe auslösen, wodurch die belastbare und dauerhafte zelluläre Abwehr stimuliert wird.
L. monocytogenes Stoffwechseldrift-Mutanten:
Aufspaltung der Resistenzphänotypen in Klone mit unterschiedlichem Virulenzverhalten
Serotyp1/2a:vom | abgeleitete | 36Sm | Sm74+- | mit | WiId"- | Serotyp4b:vom | abgeleitete | 57Rif |
Wild·- | Klone | Stamm | i. p. LD60 | Stamm | Sm-30++- | Klone K! ..ie | ||
Stamm | 9 | Stamm | ||||||
4 | 27Rif | Maus | 6Sm | |||||
1 | Klone | 10"1014CfU | ||||||
5 | 4,3·-4,5 | |||||||
1 | 4,6-4,90 | 33 | ||||||
9 | 5,0"-5,3 | 13 | ||||||
3 | 5,4-5,7 | 4 | 6 | |||||
3 | 5,8-6,1++ | 2 | 5 | |||||
12 | 6,2+-6,5 | |||||||
10 | 6,6-6,9 | |||||||
5 | 7t0-7,4 | |||||||
* und ··: zum Jeweiligen Wildstamm gehörender LDM-Wert + und ++: zum Jeweiligen Sm-Stamm gehörender LD60-WeIi.
Potentielle L. monocytogenes Zwei- und Dreimarker-Impfstämme mit abgestufter Attenuierung und deren Schutzwirkung nach i. p. Immunisierung mit s 1 % der LDMcfu und homologer Belastung nach 14 Tagen (im Vergleich zu Listevac) am
i.p.-Mäusemodell
Minimale Hemmkonzentration dieser Stämme auf Nähragar mit 5% Schafblut gegen die verwendeten Antibiotika
Sero- | Stoffwechseldrift-Mutai iten | Zweiter | Dritter | LD«, | Belastung | Strepto | Rifam- | Fosfo- |
typ | Erster | Marker | Marker | cfu | -LD60 | mycin | picin | mycin |
Marker | -If/*«.« | Schutz % | Mg/ml | pg/ml | mg/ml | |||
Sm82 | 5,8 | 295 | >400 | <0,1 | 25 | |||
Sm 74 | 6,2 | 295 | >400 | <0,1 | 25 | |||
Sm 29 | Rif16 | 6,3 | 295 | >400 | <0,1 | 25 | ||
Sm 74 | Rif56 | 6,8 | 295 | >400 | >100 | 25 | ||
1/2a | Sm 74 | Rif53 | 7,0 | 295 | >400 | >100 | 25 | |
Sm 74 | Rif57 | 7,2 | 295 | >400 | >100 | 25 | ||
Sm 74 | 7,4 | 295 | 2400 | >100 | >5 |
Sm74 Sm74
Rif53 Rif53
Fos21 Fosf
-90 -90
300 400
>1C0 >100
Listevac (Bulgarian)
260
Wildstamm | 4,3 | 0 | 2 | 0,1 | 25 |
nichiimmunisierte Kontrolle | 295 295 295 | - | - | - | |
Sm 167 Sm 50 Sm30 | 5 7 5,8 6,1 | >400 >400 300 | <0,1 <0,1 <0,1 | cn οι cn | |
Sm 30 | Rif67 |
Sm 30 | Rif69 |
Sm 30 | Rif78 |
Sm 30 | Rif97 |
Sm 30 | Rif82 |
6,6 | 295 | >400 | >100 | 5 |
6,9 | ?J5 | 300 | >100 | 5 |
7,0 | i:r 95 | 300 | >10ϋ | 5 |
7,1 | 2t95 | 400 | >100 | 5 |
7,3 | 295 | 300 | >100 | 5 |
Potentielle L. monocytogenes Zwei- und Dreimarker-Impfstämme mit abgestufter Attenuierung und deren Schutzwirkung nach i. p. Immunisierung mit S1 % der LDucfu und homologer Belastung nach 14 Tagen (im Vergleich zu Listevac) am i.p.-Mäusemodell
Minimale Hemmkonzentration dieser Stämme auf Nahragar mit 5 % Schafblut gegen die verwendeten Antibiotika
Sero typ | Stoffwechseldrift-Mutanten Erster Zweiter Dritter Marker Marker Marker | LD60 cfu 10X±0.4 | Belastung -LD60 Schutz % | Strepto mycin Mg/ml | Rifam- picin Mg/ml | Fosfo- mycin mg/ml |
Sm 30 Rif97 Fos2 | 8,5 | -75 | 100 | >100 | 2:10 | |
Listevac (Bulgarien | 8,5 | £60 | - | - | - | |
Wildstamm | 5,0 | 8 | <0,1 | 5 | ||
nichtimmunisierte Kontrolle | 0 | - | - | - |
Claims (7)
1. Verfahren zur Herstellung von Lebendimpfstoffen gegen Listeriose, gekennzeichnet dadurch, daß aus Listeria monocytogenes Wildstämmen unter Verwendung des Prinzips der Stoffwechseldrift, insbesondere mittels chromosomaler Antibiotika-Resistenz-Mutationen, über die schrittweise Isolierung Ein-, Zwei- und ggf. Dreimarker-Impfstämme mit abgestufter Attenuierungshöhe hergestellt und diese zur Gewinnung des Impfstoffes in an sich bekannter Weise kultiviert werden.
2. Verfahren nach Anspruch !,gekennzeichnet dadurch, daß als einer der Marker ein gering bis mäßig attenuierter Ribosomenprotein (chromosomaler Streptomycin-Resistenz)-Kion verwendet wird.
3. Verfahren nach Anspruch !,gekennzeichnet dadurch, daß als einer der Marker ein gering bis mäßig attenuierter RNA-Polymerase (Rifampicin-Resistenz)-Klon verwendet wird.
4. Verfahren nach Anspruch 1, gekennzeichnet dadurch, daß als einer der Markerein gering bis mäßig attenuierter Transportdefekt (Fosfomycin-Resistenz)-Klon verwendet wird.
5. Verfahren nach Anspruch 1 bis 4, gekennzeichnet dadurch, daß die aus den Wildstämmen (i. p. LD6O Maus S 106cfu) unter Verwendung der Marker hergestellten Ein-, Zwei- und ggf. Dreimarker Impfstämme auf eine abgestufte Gesamtattenuierung von i.p. LD50 Maus 10.66cfu bis 108>3cfu eingestellt werden.
6. Verfahren nach Anspruch 1 bis 5, gekennzeichnet dadurch, daß als erster Marker ein gering bis mäßig attenuierier Ribosomenprotein (chromosomaler Streptomycin-Resistenz)-Klon verwendet und als zweiter Marker ein gering bis mäßig attenuierter RNA-Polymerase (Rifampicin-Resistenz)-Klon verwendet sowie erforderlichenfalls als dritter Marker ein gering bis mäßig attenuierter Transportdefekt (Fosfomycin-Restistenz)-Klon verwendet wird.
7. Verfahren nach Anspruch 1 bis 6, gekennzeichnet dadurch, daß die nachfolgend angegebenen Einmarkerstämme und Zwei- sowie Dreimarker-Impfstammkandidaten der Serotypen 1 /2 a und 4b als Beispiel stehen für alle nach gleichem Prinzip hergestellten potentiellen Listeria-Impfstämme mit gleicher, geringerer (oder evtl. höherer) Attenuierung und zur Impfstoffherstellung verwendet werden.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DD34079890A DD294420A5 (de) | 1990-05-18 | 1990-05-18 | Verfahren zur herstellung von lebendimpfstoffen gegen listeriose |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DD34079890A DD294420A5 (de) | 1990-05-18 | 1990-05-18 | Verfahren zur herstellung von lebendimpfstoffen gegen listeriose |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DD294420A5 true DD294420A5 (de) | 1991-10-02 |
Family
ID=5618584
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
DD34079890A DD294420A5 (de) | 1990-05-18 | 1990-05-18 | Verfahren zur herstellung von lebendimpfstoffen gegen listeriose |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
DD (1) | DD294420A5 (de) |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE102007012824A1 (de) | 2007-03-17 | 2008-09-18 | Universität Leipzig | Impfstämme mit abgestuften Koloniegrößen/Attenuierungen und Verfahren zu deren Isolierung |
WO2014037103A1 (en) * | 2012-09-05 | 2014-03-13 | Universität Leipzig | Live attenuated metabolic drift vaccine against fowl typhoid |
WO2014037445A1 (en) * | 2012-09-05 | 2014-03-13 | Lohmann Animal Health Gmbh | Preparation of live vaccines |
EA030355B1 (ru) * | 2012-12-07 | 2018-07-31 | Ломанн Энимал Хелс Гмбх | Получение живых вакцин |
-
1990
- 1990-05-18 DD DD34079890A patent/DD294420A5/de not_active IP Right Cessation
Cited By (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE102007012824A1 (de) | 2007-03-17 | 2008-09-18 | Universität Leipzig | Impfstämme mit abgestuften Koloniegrößen/Attenuierungen und Verfahren zu deren Isolierung |
WO2014037103A1 (en) * | 2012-09-05 | 2014-03-13 | Universität Leipzig | Live attenuated metabolic drift vaccine against fowl typhoid |
WO2014037445A1 (en) * | 2012-09-05 | 2014-03-13 | Lohmann Animal Health Gmbh | Preparation of live vaccines |
EP3415643A1 (de) * | 2012-09-05 | 2018-12-19 | Lohmann Animal Health GmbH | Zubereitung von lebendimpfstoffen |
EA030355B1 (ru) * | 2012-12-07 | 2018-07-31 | Ломанн Энимал Хелс Гмбх | Получение живых вакцин |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Hillman et al. | Construction and characterization of an effector strain of Streptococcus mutans for replacement therapy of dental caries | |
DE69127440T2 (de) | Lebende vakzine | |
DE69932425T2 (de) | Attenuierte salmonella mutanten, welche das vi-antigen konstant exprimieren | |
DE69132274T2 (de) | Methode der bakteriellen attenuierung und impfstoff | |
DE3886506T2 (de) | Avirulente mikroben und deren verwendungen. | |
DE69434680T2 (de) | Salmonella impfstoffe | |
DE60311252T3 (de) | Stellenspezifische listeria-integrationsvektoren und verfahren zu deren verwendung | |
DE69935927T2 (de) | Plasmidstabilisierungssystem für die verabreichung von antigenen | |
DE69126668T2 (de) | Mycobacterium als adjuvans für antigene | |
DE69026094T2 (de) | Behandlung von chronischen entzündlichen zuständen | |
DE60031974T2 (de) | Abgeschwächte Mikroorganismen zur Behandlung von Infektionen | |
DE69713408T2 (de) | Streptococcus equi Impstoff | |
Welsh et al. | Trehalose 6, 6′-dimycolate–A coat to regulate tuberculosis immunopathogenesis | |
DE69032408T2 (de) | Kreuzschützende salmonella impfstoffe | |
DE69925585T2 (de) | Bakterien abgeschwächt durch eine nicht revertierende mutation in jeden der aroc, ompf und ompc gene, verwendbar als impfstoff | |
DE60207278T2 (de) | Attenuierte bakterien verwendbar als impfstoff | |
Ankenbauer | Cloning of the outer membrane high-affinity Fe (III)-pyochelin receptor of Pseudomonas aeruginosa | |
DE60011560T2 (de) | Salmonella Impfstoff, der keinen Antikörper gegen Flagellin oder gegen Flagella induziert | |
Łaniewski et al. | Evaluation of protective efficacy of live attenuated Salmonella enterica serovar Gallinarum vaccine strains against fowl typhoid in chickens | |
DE69636040T2 (de) | Immunität gegen rtx toxine aus actinobacillus pleuropneumoniae | |
DE60107707T2 (de) | Mikroben mit einer transkriptionsabbrecher enthaltender dämpfender mutation | |
DD294420A5 (de) | Verfahren zur herstellung von lebendimpfstoffen gegen listeriose | |
DE2843295C2 (de) | ||
EP0642796B1 (de) | Salmonella-Lebendimpfstoff | |
EP0263528B1 (de) | Salmonella-Lebendimpfstoffe mit Wirtsspezies-angepassten Attenuierungshöhen und antiepidemischer Potenz |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
ENJ | Ceased due to non-payment of renewal fee |