CZ305098A3 - Cytochrom P450 transdukující retrovirové vektory - Google Patents

Cytochrom P450 transdukující retrovirové vektory Download PDF

Info

Publication number
CZ305098A3
CZ305098A3 CZ983050A CZ305098A CZ305098A3 CZ 305098 A3 CZ305098 A3 CZ 305098A3 CZ 983050 A CZ983050 A CZ 983050A CZ 305098 A CZ305098 A CZ 305098A CZ 305098 A3 CZ305098 A3 CZ 305098A3
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
cytochrome
cells
vector
cell
retroviral vector
Prior art date
Application number
CZ983050A
Other languages
English (en)
Other versions
CZ288074B6 (cs
Inventor
Walter Günzburg
Peter Karle
Robert Michael Saller
Original Assignee
Bavarian Nordic Research Institute A/S
Gsf- Forschungaszentrum Für Umwelt Und Gesundheit Gmbh
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Family has litigation
First worldwide family litigation filed litigation Critical https://patents.darts-ip.com/?family=8092560&utm_source=google_patent&utm_medium=platform_link&utm_campaign=public_patent_search&patent=CZ305098(A3) "Global patent litigation dataset” by Darts-ip is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Application filed by Bavarian Nordic Research Institute A/S, Gsf- Forschungaszentrum Für Umwelt Und Gesundheit Gmbh filed Critical Bavarian Nordic Research Institute A/S
Publication of CZ305098A3 publication Critical patent/CZ305098A3/cs
Publication of CZ288074B6 publication Critical patent/CZ288074B6/cs

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/79Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
    • C12N15/85Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for animal cells
    • C12N15/86Viral vectors
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P35/00Antineoplastic agents
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P43/00Drugs for specific purposes, not provided for in groups A61P1/00-A61P41/00
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/0004Oxidoreductases (1.)
    • C12N9/0071Oxidoreductases (1.) acting on paired donors with incorporation of molecular oxygen (1.14)
    • C12N9/0077Oxidoreductases (1.) acting on paired donors with incorporation of molecular oxygen (1.14) with a reduced iron-sulfur protein as one donor (1.14.15)
    • C12N9/0079Steroid 11 beta monooxygenase (P-450 protein)(1.14.15.4)
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K35/00Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
    • A61K35/12Materials from mammals; Compositions comprising non-specified tissues or cells; Compositions comprising non-embryonic stem cells; Genetically modified cells
    • A61K2035/126Immunoprotecting barriers, e.g. jackets, diffusion chambers
    • A61K2035/128Immunoprotecting barriers, e.g. jackets, diffusion chambers capsules, e.g. microcapsules
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K48/00Medicinal preparations containing genetic material which is inserted into cells of the living body to treat genetic diseases; Gene therapy
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2740/00Reverse transcribing RNA viruses
    • C12N2740/00011Details
    • C12N2740/10011Retroviridae
    • C12N2740/10041Use of virus, viral particle or viral elements as a vector
    • C12N2740/10043Use of virus, viral particle or viral elements as a vector viral genome or elements thereof as genetic vector
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2740/00Reverse transcribing RNA viruses
    • C12N2740/00011Details
    • C12N2740/10011Retroviridae
    • C12N2740/16011Human Immunodeficiency Virus, HIV
    • C12N2740/16041Use of virus, viral particle or viral elements as a vector
    • C12N2740/16043Use of virus, viral particle or viral elements as a vector viral genome or elements thereof as genetic vector

Description

Název Cytochrom P450 transdukující retrovirové vektory
Oblast techniky
Vynález se týká replikačně-defektivních retrovirových vektorů se zakódovaným genem s cytochromem P450, které jsou schopny změnit neškodné rakovinové prodrogy na cytotoxické metabolity. Dále se vynález týká používání takových retrovirových vektorů na přípravu léčiv na léčbu různých druhů rakoviny nebo ablaci nádorů.
Dosavadní stav techniky
Protirakovínová léčiva, která se používají pro léčbu nádorů, se ve většině případů aplikují systémově a šíří se celým tělem pacienta. Vysoká systémová dávka takového léčiva, která je nutná pro léčbu rakoviny, je spojena s vedlejšími účinky nepříjemnými pro pacienta.
Ve snaze obejít tento problém, používaly se rakovinové prodrogy, které musejí být metabolízovány nebo aktivovány v těle předtím než se stanou cytotoxickými. Žel, lidské nádory, které obsahují příslušné vysoké hladiny aktivujících enzymů, jsou vzácné. Hlavním místem pro aktivací prodrog jsou játra a, aby se zajistilo, že nádor, který je na vzdáleném místě, dostane dostatečnou dávku aktivovaného léku, množství aktivované prodrogy, která je produkována v játrech, musí být dosti velké, a to zase vede k toxickým vedlejším účinkům pro pacienta.
Jednou strategií, kterou by bylo možno tyto problémy vysoké systémové koncentrace aktivovaných léků obejít, by bylo poskytnout prostředky pro aktivaci prodrogy přímo v místě nádoru nebo blízko místa nádoru. Tato strategie by vyžadovala, aby buňky nádoru, nebo buňky v místě nádoru byly geneticky změněné tak, aby produkovaly velká množství enzymů, které jsou třeba pro metabolizaci rakovinových prodrog. Retrovirální vektory se ideálně hodí pro stabilní dodávku genů do buněk, protože retro virus je schopen integrovat DNA formu svého genomu do genomu hostitelské buňky, a tak všechny dceřinné buňky infikované buňky ponesou retro virový vektor nesoucí terapeutický gen. Další výhodou je, a ·
• · ««flfl α· • · · · · · · • · ···< • ··<· ··« • · · ♦ · · ······ ·· ·· že většina retro virů infikuje pouze dělící se buňky, a proto jsou ideálním nosičem dodávky genu pro buňky nádoru.
Bylo již testováno mnoho cytotoxických genů nesených retro virovými vektory. Tyto geny kódují enzymy, které mohou měnit substance, které jsou farmakodynamicky a toxikologicky inertní i na úrovni vysokých dávek, ale které je možno změnit in vivo na vysoce aktivní metabolity (Connors, T.A. (1995), Gene Therapy 2: 702-709).
V chemoterapii rakoviny se zjistilo, že vhodně navržené prodrogy jsou účinné při léčbě zvířecích nádorů s vysokými hladinami aktivujícího enzymu (Connors, T. a Whisson, M. (1966) Nátuře 210: 866 867 a Cobb, L. a kol. (1969), Biochemical Pharmacology 18: 15191527). Klinické výsledky však zklamaly, protože bylo zjištěno, že lidská rakovina, která obsahuje příslušné vysoké hladiny aktivujícího enzymu, je vzácná (Connors, T. (1986), Xenobiotica 16: 975-988). Virově řízená enzymatická terapie prodrogou (VDEPT) a obecnější genově řízená enzymatická terapie prodrogou (GDEPT) spolu souvisejí v tom, že jejich cílem je také zničit buňky nádoru pomocí pro nádor specifickou aktivací prodrogy. V tomto případě je však -genetické zakódování enzymu buď specificky zaměřeno na maligní buňky neboje řízeno specifickým promotorem.
Až dosud se většina úsilí zaměřeného na terapii prodrogou soustředila na používání lidského viru herpes simplex virus thymidinkinázy (HSV-tk) jako suicidálního genu. I když enzym HSV-tk v kombinaci s prodrogou ganciclovir (GCV) byl doporučován jako dobrý systém pro GDEPT (Culver, K. a kol., (1992), Science 256: 1550-1552, Ram, Z. a kol., (1993), Cancer Research 53: 83-88 a Chen, S., Shine, H. a kol., (1994), Proc.Natl.Acad.Sci.91: 30543057), existuje mnoho teoretických úvah, které by naznačovaly, že to v žádném případě není ta nejlepší kombinace. Zaprvé, je to specifická látka S-fáze bez účinku na klidové buňky. Je tomu tak proto, že GCV monofosfát je krátkodobý a musí být přítomen, když buňky vstupují do S-fáze, aby měl toxický efekt. HSV-tk fosforyluje GCV na monofosfátovou formu (reakce, kterou nemohou uskutečnit savčí enzymy), která je poté fosforylovaná buněčnými enzymy na trifosfátovou formu a začleněna do DNA. Zadruhé, aktivní léčivo je trifosfát a neočekávalo by se, že bude volně difundovat tak, aby způsobil pomocný efekt. Pomocný efekt však byl pozorován jak in vitro, tak in vivo, i když se zdá, že je zapojena metabolická spolupráce a ve druhém případě ·· ·· ♦ · ·· · · · · · · ···· • · «>·· ···« · ···♦·······>·
9 9 9 9 9 9 9 9 9
9999 94 49 99 99 99 může být některý efekt nepřímý a zahrnovat imunitní komponent (Bi, W., Parysek, L. a kol., (1993), Human Gene Therapy 4: 725-731, Vile, R. a Hart, I. (1993), Cancer Research 53: 3860-3864 a Freeman, S., Abboud, C. a kol., (1993), Cancer Research 53: 5274-5283).
Jednou nevýhodou je, že pomocný efekt závisí na kontaktu buňka-buňka. Může to být způsobeno přítomností mezerového spojení tvořeného intimním kontaktem mezi transdukovanou a okolními buňkami, což umožňuje přenos fosforylováného gancicloviru.
Nedávno byly uvedeny zajímavé výsledky s buňkami, které byly transfikovány genem se zakódovaným krysím cytochromem P450 formy 2B1, a pak léčeny cyklofosfamidem (Chen,S., Shine, H. a kol., (1994), Proc.Natl.Acad.Sci.91: 3054-3057).
Cílem tohoto vynálezu je poskytnout nové replikačně-defektivní retrovirové vektory přenášející gen se zakódovaným cytochromem P450 pod transkripcionální kontrolou specifického regulačního elementu nebo promotoru cílové buňky nebo promotorů indukovatelných rentgenovým zářením, které mohou být transfikovány do obalových buněčných linií s cílem produkovat rekombinantní retrovirové částice užitečné pro genovou terapii různých druhů rakoviny.
Tento vynález kromě jiného obsahuje toto, samostatně nebo v kombinaci:
Podstata vynálezu
Replikačně-defektivní retro virový vektor přenášející gen se zakódovaným cytochromem P450 pod transkripcionální kontrolou specifického regulačního elementu nebo promotoru cílové buňky nebo promotoru indukovatelného rentgenovým zářením.
Replikačně-defektivní retrovirový vektor, jak je uveden výše, kdy vektor zahrnuje oblast 5'LTR struktury U3-R-U5; jednu nebo více sekvencí zvolených ze kódujících nebo nekódujících sekvencí; a oblasti 3'LTR zahrnující zcela nebo částečně deletovanou oblast U3, kde zmíněná deletovaná oblast U3 je nahrazena polyvazební sekvencí obsahující specifický regulační element nebo promotor cílové buňky nebo promotor indukovatelný rentgenovým zářením, následovaný oblastí R a U5, která je charakterizována tím, že alespoň v jedné ze sekvencí kódování má zakódovaný cytochrom P450.
·· ·· • C ·· ···· ·· ·· • · · · · · · * · · · · · • · · · · ··· · • · · · · · ·*·· ·· ·· ·<
·· • · · • · ··· · Β·
Replikačně-defektivní retro virový vektor, jak je uveden výše, ve kterém je specifický regulační element nebo promotor cílové buňky zvolen z jednoho nebo více elementů skupiny, kterou tvoří WAP, MMTV, specifické regulační elementy a promotory blaktoglobulinu a kaseinu, specifické regulační elementy a promotory pankreatu včetně regulačních elementů a promotorů karbonatdehydratázy Π a b-glukokinázy, specifické regulační elementy a promotory lymfocytů včetně imunoglobulinu a MMTV lymfocytické specifické regulační elementy a promotory a MMTV specifické regulační elementy a promotory propůjčující responsivitu glukokortikoidním hormonům nebo směřující expresi do prsní žlázy.
Replikačně-defektivní retrovirový vektor, jak je uveden výše, ve kterém jsou uvedené oblasti LTR zvoleny z alespoň jednoho elementu skupiny, kterou tvoří LTR z MLV, MMTV, MSV, SIV, HIV, HTLV, FIV, FeLV, BLV a MPMV.
Replikačně-defektivní retrovirový vektor, jak je uveden výše, ve kterém je uvedený retrovirový vektor založen na vektoru BAG nebo vektoru pLXSN.
Replikačně-defektivní retrovirový vektor, jak je uveden výše, ve kterém je uvedený retrovirový vektor připraven pLX2B 1, jak je popsáno v příkladu 1.
Replikačně-defektivní retrovirový vektor, jak je uveden výše, ve kterém je uvedený retrovirový vektor připraven pc3/2Bl, jak je popsáno v příkladu 2.
Replikačně-defektivní retrovirový vektor, jak je uveden výše, ve kterém jsou retrovirové sekvence zapojené do integrace retro viru pozměněny nebo alespoň částečně deletovány.
Replikačně-defektivní retrovirový vektor, jak je uveden výše, ve kterém jsou uvedené regulační elementy nebo promotory regulovatelné jednáním molekul.
Linie obalových buněk transfikovaná replikačně-defektivním retrovirovým vektorem, jak je uveden výše; uvedená linie obalové buňky obsahuje alespoň jedno retrovirové nebo • · • · · · • · ·· · ···· ···· • · ···· ····
C · ············· ······ ··· ······ ·· ·· ·* ·· rekombinantní retro virové vytvořené zakódování pro proteiny, které je třeba pro obalení uvedeného retrovirového vektoru.
Linie obalové buňky, jak je uvedena výše, kdy tato linie obalové buňky je původem z hlodavce, psa, kočky nebo lidská a je histokompatibilní s lidskou tkání.
Linie obalové buňky, jak je uvedena výše, kdy tato linie obalové buňky je zvolena ze skupiny, kterou tvoří psi-2, psi-Crypt, psi-AM, GP+E-86, PA317 a GP+envAM-12.
Rekombinantní retro virová částice vyprodukovaná kultivací linie obalové buňky, jak je uvedena výše, ve vhodných podmínkách s nepovinně následující izolací produkované rekombinantní retrovirové částice.
Farmaceutická kompozice obsahující rekombinantní retro víro vou částici, jak je uvedena výše, nebo linii obalové buňky, jak je uvedena výše.
Linie obalové buňky, jak je uvedena výše, zapouzdřená v porézní membráně, která je propustná pro rekombinantní retrovirové částice produkované uvedenou linií obalové buňky.
Linie obalové buňky, jak je uvedena výše, zapouzdřená v komplexu, který tvoří sulfát celulózy a polydimethyldiallylamonium.
Způsob ablace buněk nádoru, který spočívá v podávání subjektu, který to potřebuje, terapeuticky účinného množství rekombinantní retrovirové částice, jak je uvedeno výše, linie obalové buňky, jak je uvedena výše, nebo zapouzdřenou linii obalové buňky, jak je uvedeno výše a buď současně nebo s časovým odstupem, rakovinovou prodrogu, kterou je možno aktivovat cytochromem P450.
Způsob, jak je uveden výše, kdy buňky nádoru jsou buňkami nádoru prsu nebo pankreatického nádoru.
·· ·· • · · ·
Způsob, jak je uveden výše, kde rekombinantní retrovirová částice, linie obalové buňky nebo zapouzdřená linie obalové buňky je podávána injekcí nebo implantací do nádoru nebo místa nádoru.
Použití rekombinantní retro virové částice, jak je uvedeno výše, linie obalové buňky, jak je uvedeno výše, nebo zapouzdřené linie obalové buňky, jak je uvedeno výše, pro přípravu farmaceutické kompozice užitečné pro ablaci buněk nádoru.
Retro virový pro virus integrovaný v lidském genomu, nesoucím gen s cytochromem P450 pod transkripcionální kontrolou specifického regulačního elementu nebo promotoru cílové buňky nebo promotoru indukovatelného rentgenovým zářením;
a lidská buňka obsahující gen s cytochromem P450 pod transkripcionální kontrolou specifického regulačního elementu nebo promotoru cílové buňky nebo promotoru indukovatelného rentgenovým zářením.
Cytochromy P450 tvoří širokou skupinu monooxygenáz, které katalyzují oxidaci širokého množství substrátů. Produkují je některé bakterie, kvasinky a vyšší organizmy tam, kde hrají úlohu při detoxikaci xenobiotik, v bioaktivačních reakcích a metabolismu různých endogenních sloučenin.
Cytochrom P450 katalyzuje hydroxylaci běžně užívaných rakovinových prodrog cyklofosfamidu (CPA) a ifosfamidu na jejich aktivní toxické formy. Normálně je exprese endogenního genu pacienta s cytochromem P450 omezena na játra, a protitumorové účinky systemicky aplikovaných CPA závisejí na následné systemické distribuci toxických metabolitů drog z jater. To vedlo k problémům s toxicitou, protože aktivovaná droga ovlivňuje nejen tumor, ale rovněž ovlivňuje jiné normální tkáně pacienta, jako kostní dřeň a ledviny.
Terapeutický přístup, kde se gen s cytochromem P450 selektivně zavádí přímo do buněk nádoru a je v těchto buňkách příliš exprimovaný, by tento problém obešel. Toxické metabolity produkované z transdukovaných buněk nádoru ovlivňují okolní netransdukované buňky nádoru způsobem závisejícím na gradientu koncentrace. Další • · ······ ···· ·· ·· ·· výhodou systému cytochrom P-450/CPA je nedostatek závislosti na replikaci buňky pro cytotoxické účinky na okolní buňky. Je tomu tak proto, že jeden z generovaných aktivních metabolitů působí mezi-řetězcové křížové vazby bez ohledu na fázi buněčného cyklu. Později, během syntézy DNA, je důsledkem těchto mezi-řetězcových křížových vazeb odumření buňky.
Retro virální vektory jsou nej častěji používané nosiče transferu genů pro klinické pokusy, které byly dosud provedeny. Většina z těchto pokusů však použila přístup ex vivo, kde byly buňky pacienta izolovány, modifikovány v kultuře, a pak pacientovi znovu zavedeny.
Pro léčbu rakoviny by bylo proveditelné izolovat buňky pacienta (buď tumorové buňky nebo normální buňky), infikovat je in vitro rekombinantní retrovirovou částicí nesoucí gen se zakódovaným cytochromem P450, a pak je vrátit do pacienta v blízkosti tumoru. Tento přístup je však neobyčejně náročný na intenzivní práci, protože každá z pacientových buněk se musí izolovat, kultivovat, transdukovat genovou konstrukcí a úspěšně vrátit bez infekce náhodnými činidly. Náklady a čas, které jsou třeba při takovém přístupu, omezují jeho praktickou užitečnost.
Alternativně by bylo možno použít alogenický přístup, kde jeden druh buněk je infikován rekombinantní retrovirovou částicí nesoucí geneticky zakódovaný P450 a pak jej použít pro léčbu mnoha různých pacientů. Takový přístup je mnohem proveditelnější, za předpokladu, že bude možno překonat problémy imunitního odmítnutí. Většina nádorů však není vhodná pro genovou terapii ex vivo.
Ideálně by geneticky zakódovaný cytochrom P450 měl být zaveden in vivo do buněk nádoru nebo do buněk v blízkosti nádoru.
Dodání genů in vivo přináší množství nových problémů. Zaprvé a především je třeba se zabývat úvahami o bezpečnosti.
Hlavní otázkou při eventuální genové terapii in vivo z hlediska bezpečnosti i z čistě praktického hlediska je zacílení exprese. Je jasné, že terapeutické geny nesené vektory by neměly být exprimovány bez rozlišení do všech tkání a buněk, ale spíše jen do potřebné • · · ·· · · · ·· · · · · • · · · · · · · · · · • · ···· ···· n « ········ ··· · · «····· · · · ···· ·· ·· ·· ·· ·· cílové buňky. Toto je zvláště důležité, když geny, které mají být přeneseny, jsou takové geny aktivující prodrogu, které jsou určeny pro ablaci specifických buněk nádoru. Ať při ablaci či jinak, necílové buňky by byly zřejmě velice nežádoucí.
Základní náhodná integrace provirové formy retrovirového genomu do genomu infikovaných buněk představuje závažný etický problém, protože taková náhodná integrace může vést k aktivaci protoonkogenů, a tak vést k vývoji nové rakoviny. Většina výzkumných pracovníků by s mizivě malou pravděpodobností souhlasila, že replikačně defektivní retrovirus, jako jsou všechny, které se běžně používají, bude integrován do nebo blízko buněčného genu zapojeného v kontrole buněčné proliferace. Obecně se však také předpokládá, že explozivní expanze populace replikace schopných retro virů z jediného infekčního případu nakonec zajistí dost integračních případů, aby se taková fenotypická integrace stala velice reálnou možností.
Systémy retrovirových vektorů jsou optimalizovány tak, aby minimalizovaly možnost přítomnosti replikace schopného viru. Je však dobře zdokumentováno, že rekombinační případy mezi komponenty systému retrovirových vektorů může vést k tvorbě potenciálně patogenní replikace schopného viru a bylo vytvořeno mnoho generací vektorových systémů, aby se minimalizovalo toto riziko rekombinace (Salmons, B. a Gunzburg, W.H.
(1993), Human Gene Therapy 4(2): 129-41.
Systémy retrovirových vektorů tvoří dva komponenty:
1) Retro virový vektor samotný je modifikovaný retrovirus (vektor plasmid), ve kterém je genové zakódování pro virové proteiny nahrazeno terapeutickými geny. Protože náhrada genového zakódování pro virové proteiny účinně mrzáci virus, musí být zachráněn druhým komponentem v systému, který zajišťuje chybějící virové proteiny pro modifikovaný retrovirus.
Druhým komponentem j e:
2) Linie buňky, která produkuje velká množství virových proteinů, avšak chybí jí schopnost produkovat replikace schopný virus. Tato linie buňky je známá jako linie • · obalové buňky a tvoři ji linie buňky transfikovaná jedním nebo více plazmidy nesoucími geny, které umožňují zapouzdření modifikovaného retro virového vektoru.
Pro generování rekombinantní retro virové částice je retro virový vektor transfikován do linie obalové buňky. Za těchto podmínek je modifikovaný retro virový genom včetně vsunutého terapeutického genu transkribován z retrovirového vektoru a zapouzdřen do modifikovaných retrovirových částic. Tyto rekombinantní retrovirové částice se pak použijí na infikování nádorových buněk, během čehož vektorový genom a jakýkoliv cytotoxický gen jsou integrovány do DNA cílové buňky. Buňka infikovaná takovou rekombinantní virovou částicí nemůže vyprodukovat nový vektorový virus, protože v těchto buňkách nejsou přítomny žádné virové proteiny ale DNA vektoru nesoucího terapeutikum je integrována do DNA buňky a nyní může být exprimována v infikované buňce.
Již dříve bylo popsáno mnoho systémů retrovirového vektoru, které by měly umožnit cílení přenášených cytotoxických genů (Salmons,B. a Gunzburg, W.H. (1993), Human Gene Therapy 4(2): 129-41). Většina z těchto přístupů zahrnuje buď omezení infekčního případu na předem definované typy buněk nebo použití heterologních promotorů pro nasměrování exprese spojených heterologních terapeutických genů do specifických typů nádorových buněk. Používají se takové heterologní promotory, které by měly řídit expresi spojených genů pouze do těch typů buněk, ve kterých je tento promotor normálně aktivní anebo dodatečně kontrolovatelný. Tyto promotory byly dříve vsunuty spolu s terapeutickým genem do těla retrovirových vektorů, na místo genů gag, pol nebo env.
Retro virová dlouhá koncová perioda (LTR), která lemuje tyto geny, nese retro virový promotor, který je obecně nespecifický v tom smyslu, že může pohánět expresi v mnoha různých typech buněk (Majors, J. (1990). v Retroviruses - Strategies of replication (Swanstrom, R. a Vogt, P.K., Eds.): Springer-Verlag, Berlin: 49-92). Byla popsána interference promotorů mezi LTR promotorem a heterologními interními promotory, jako jsou specifické promotory tkáně popsané výše. Kromě toho je známo, že retrovirové LTR obsahují silné posilovače, které mohou nezávisle nebo ve spojení s retrovirovým promotorem ovlivnit expresi buněčných genů blízko místa integrace retroviru. Ukázalo se, že tento mechanismus přispívá k tumorigenicitě u zvířat (van Lohuizen, M. a Bems, A. (1990), Biochim.Biophys.Acta 1032: 213-235). Tato dvě pozorování podpořila vývoj ·· ·· ·· • · · · · *
autoinaktivujících vektorů (SIN), ve kterých jsou retrovirové promotory funkčně inaktivovány v cílové buňce (WO 94/29437). Mezi další modifikace těchto vektorů patří vsunutí kazet s promotorovým genem do oblasti LTR pro vytvoření dvojitých kopií vektorů (WO 89/11539). V obou těchto vektorech však jsou heterologní promotory vsunuté do těla vektoru nebo do oblasti LTR přímo spojeny s terapeutickým genem.
Výše popsaný SIN vektor, který nese deletovaný 3'LTR (WO 94/29437), využívá kromě toho heterologní promotor jako promotoru Cytomegalo virus (CMV), místo retro virového promotoru 5'LTR (U3-volný 5'LTR) pro pohon exprese konstrukce vektoru v linii obalové buňky. Ve 3'LTR je také zahrnut heterologní polyadenylační signál (WO 94/29437).
Cílem tohoto vynálezu je stavba bezpečného retrovirového vektoru, který obsahuje gen s cytochromem P450 jako terapeutický princip. Tento nový vektor nese heterologní konstitutivní, indukovatelný nebo pro tkáň specifický promotor anebo regulační element ve 3'LTR, který se po infekci zdvojí a je translokován do 5'LTR v cílové buňce. V infikované buňce tak zavedený promotor kontroluje expresi genu s cytochromem P450, který je vsunut do těla vektoru. Tento vektor neprochází autoinaktivací - ale místo toho je změna promotoru, kdy vzniká název ProCon vektor pro konverzní vektory promotoru. Principy a výhody systému ProCon jsou podrobněji popsány ve WO 9607748.
Protože výsledkem konverze promotoru není autoinaktivace, retrovirový vektor bude transkripcionálně aktivní v cílové buňce. Kromě toho oba LTR se budou z větší části skládat ze sekvencí heterologní promotor/posilovač v cílové buňce. To sníží pravděpodobnost toho, aby integrovaný vektor v cílové buňce byl vystaven stejné inaktivaci po dlouhá období, jak bylo popsáno u konvenčních vektorů (Xu, L., Yee, J.K. a kol., (1989), Virology 171: 331-341) a rovněž sníží možnost rekombinace s endogenními retrovirovými sekvencemi a vznik potenciálně patogenního replikace schopného viru, a tak zvýší bezpečnost systému.
Podle vynálezu není 5'LTR konstrukce retrovirového vektoru modifikována a exprese virového vektoru v obalových buňkách je poháněna normálním retro virovým promotorem U3. Normální retrovirová polyadenylace je povolena a ve 3'LTR nejsou obsaženy žádné heterologní polyadenylační signály. To je důležité pro rozvoj strategií genové terapie in ·· ···· • · ·
99
9 9 9
9 9 vivo, protože normální fyziologická regulace viru prostřednictvím normálního virového promotoru, a zahrnující eventuálně také normální virovou kontrolu polyadenyíace, bude po dlouhá období převažovat in vivo, zatímco obalové buňky budou produkovat rekombinantní virus.
Pro dosažení předcházejícího a dalších cílů vynález poskytuje retrovirový vektor, který prochází konverzí promotoru zahrnující region 5'LTR struktury U3-R-U5; jednu nebo více kódovacích sekvencí zvolených ze skupiny genů známých jako geny s cytochromem P450; a oblast 3'LTR obsahující zcela nebo částečně deletovanou oblast U3, kde uvedená deletovaná oblast U3 je nahrazena heterologním promotorem, následovaným R a U5 oblastí.
Uvedený promotor může být konstitutivní jako Cytomegalovirus (CMV), přímý prvotní promotor/posilovač, indukovatelný jako glukokortikoidní hormony (např. promotor MMTV) nebo specifické pro cílovou buňku.
Specifické regulační elementy a promotory pro cílovou buňku jsou voleny z jednoho nebo více elementů jakéhokoliv genu, ale v této konkrétní formě mohou být z promotorů, které zahrnují regulační elementy a promotory karbonátdehydratázy Π a beta-glukokinázy, regulační elementy a promotory specifické pro lymfocyty včetně regulačních elementů a promotorů karbonátdehydratázy II a β-glukokinázy, regulační elementy a promotory specifické pro lymfocyty z acidických proteinů syrovátky (WAP), myší virus nádoru prsu (MMTV), regulační elementy a promotory specifické pro β-laktoglobulin a kasein, regulační elementy a promotory specifické pro pankreas včetně lymfocytických regulačních elementů a promotorů specifických pro imunoglobulin a MMTV a promotory a regulační elementy specifické pro MMTV a promotory přenášející responsivitu na glukokortikoidní hormony či směrující expresi do prsní žlázy. Mezi jiné promotory patří například CD4, CD34 a promotory IL2. Uvedené regulační elementy a promotory regulují nejlépe expresi uvedeného retrovirového vektoru.
Zdá se, že oblast promotoru WAP, který je nutný pro zprostředkování specifičnosti prsní žlázy, je restrikční fragment 320 bp Xhol/Xbal (-413 až -93) (Kolb, A.F., Gůnzburg, W.H., Albang, R., Brém, G., Erfle, V., a Salmons, B. (1995), Biochem. Biophys. Res. Commun.
•· ftft·· • ft ftft ·· ·· • ft · ···· ···· ftft · · · · ftft ftft • ftftft ····· ftftft· * ·····♦ · · · 1 ······ ···· · · · ·
217, 1045-1052). Určité experimenty kromě toho naznačují, že fragment promotoru 0.6 Kb Pstl MMTV (Salmons,B., Groner, B., Calberg Bača, C.M., a Ponta, H. (1985), Virology 144: 101-114) může hrát úlohu při regulaci specifičnosti exprese prsní žlázy vykazovanou MMTV (Kolb, A.F., Giinzburg, W.H., Albang, R., Brém, G., Erfle, V., a Salmons, B.
(1995), Biochem. Biophys. Res. Commun. 217, 1045-1052).
Oblasti LTR se volí alespoň z jednoho elementu skupiny, kterou tvoří LTR viru myší leukémie (MLV), myší virus nádoru prsu (MMTV), myší virus sarkomu (MSV), opičí virus imunodeficience (SIV), lidský virus imunodeficience (HTV), lidský virus leukémie Tbuňky (HTLV), kočičí virus imunodeficience (FIV), kočičí virus leukémie (FELV), hovězí virus leukémie (BLV) a virus opice Mason-Pfizer (MPMV).
Retrovirový vektor je s výhodou založen na vektoru LXSN (Miller, A.D. a Rosman, G. J.
(1989), Biotechniques 7:980-990), pBAG (Price, J., Turner, D. a kol, (1987), Proc.Natl. Acad.Sci. USA 84: 156-160) nebo hybridu obou.
Kódovaná sekvence terapeutického genu může být gen s cytochromem P450, ale s výhodou je to krysí cytochrom P450 forma 2B1, kterou definovali Fuji-Kuriyama, Y., Mizukami, Y., a kol., (1982) Proč. Nati. Acad. Sci. USA 79: 2793-2797.
V další konkrétní formě vynálezu je zajištěn systém retrovirového vektoru, který tvoří retrovirový vektor, jak byl popsán výše, jako první komponent a linie obalové buňky obsahující alespoň jednu retro virovou nebo rekombinantně retro virovou zakódovanou konstrukci pro proteiny, která je nutná pro zapouzdření uvedeného retrovirového vektoru.
Linie obalové buňky je s výhodou zvolena z elementu skupiny, kterou tvoří Ψ-2, Ψ-Crypt,
Ψ-ΑΜ, GP+E-86, PA317 a GP+envAM-12, nebo kterákoliv z těchto konstrukcí supertransfikovaná rekombinantem, což umožňuje expresi povrchových proteinů z jiných zapouzdřených virů.
Vynález rovněž zahrnuje mRNA vyplývající z retrovirového vektoru podle vynálezu.
• •toto ·· • toto · • · • · ··· · ·· · ·· ·· ·· ·· • ·· · • · · · ·· · · · • · · ·· ··
V linií obalové buňky je exprese retrovirového vektoru regulována normálním neselektivním retrovirovým promotorem obsaženým v oblasti U3. Jakmile však vektor vstoupí do cílové buňky, dojde ke konverzi promotoru a gen P450 je exprimován z výběrového promotoru specifického pro tkáň nebo indukovatelného, vsunutého do vektoru ProCon. Nejen že jakýkoliv promotor specifický pro tkáň je možno do systému zahrnout, čímž umožňuje selektivní zacílení širokého množství různých typů buněk, ale kromě toho po konverzi již struktura a vlastnosti retrovirového vektoru nepřipomínají strukturu a vlastnosti viru. To má samozřejmě neobyčejně významné důsledky z hlediska bezpečnosti.
Tyto vektorové systémy budou použity pro generování rekombinanntního viru, který je možno použít pro infikování nádorových nebo normálních buněk in vitro nebo in vivo.
Rekombinantní retro viry, které byly purifikovány nebo koncentrovány, je možno uchovat přidáním nejdříve dostatečného množství formulačního pufru do média obsahujícího rekombinantní retrovirus, aby se vytvořila vodná suspenze. Formulační pufr je vodný roztok, který obsahuje sacharid, strukturální aditivum s vysokou molekulovou hmotností a pufrovací komponentu ve vodě. Vodný roztok může také obsahovat jednu nebo více aminokyselin.
Rekombinantní retrovirus je také možno uchovat v purifikované formě. Konkrétněji, před přidáním formulačního pufru může být výše popsaný surový rekombinantní retrovirus vyčištěn přes filtr, a poté se zkoncentruje, jako systémem koncentrace s příčným tokem (Filtron Technology Corp., Nortborough, ΜΑ). V rámci jedné konkrétní formy se přidá DNáza do koncentrátu, aby byla digerována exogenní DNA. Výluh se pak diafiltruje, aby se odstranily nadbytečné komponenty média a vytvořil se rekombinantní retrovirus ve vhodnějším pufrováném roztoku. Diafiltrát se pak vede přes gelovou kolonu Sephadex S500 a vymývá se purifikovaný rekombinantní retrovirus. K tomuto eluátu se přidá dostatečné množství formulačního pufru, aby bylo dosaženo požadované finální koncentrace konstituentů a aby se rekombinantní retrovirus minimálně zředil a vodná suspenze se pak skladuje, nejlépe při -70°C nebo okamžitě vysušená. Jak bylo uvedeno výše, formulační pufi je vodný roztok, který obsahuje sacharid, strukturální aditivum s vysokou molekulární hmotností a pufrovací komponentu ve vodě. Tento vodný roztok může také obsahovat jednu nebo více aminokyselin.
« · ···· • · · · • · * « · · · • · · · ··»· ·· ·· ·· ·· • · · • · · ··· · · • · · • · ··
Surový rekombinantní retrovirus je také možno purifikovat chromatografií v ionexové koloně. Obecně se surový rekombinantní retrovirus ěistí přes filtr a filtrát se založí do kolony, která obsahuje vysoce sulfonovanou celulózovou matrici. Rekombinantní retrovirus se vymývá z kolony v purifikované formě při použití vysoce solného pufru. Vysoce solný pufr se pak nahradí vhodnějším pufrem tak, že eluát se vede přes kolonu molekulárního vylučování. Poté se přidá dostatečné množství formulačního pufru, jak je uvedeno výše, do purifikovaného rekombinantního retroviru, a pak se vodná suspenze buď okamžitě vysuší nebo skladuje, nejlépe při -70°C.
Vodnou suspenzi v surové nebo purifikované formě je možno vysušit lyofilizací nebo odpařováním při teplotě místnosti. Konkrétně, lyofilizace zahrnuje kroky ochlazení vodné suspenze pod teplotu skelného přechodu nebo pod teplotu eutektického bodu vodné suspenze a odstranění vody z ochlazené suspenze sublimací, takže se vytvoří lyofilizovaný retrovirus. Když je rekombinantní retrovirus lyofilizován, je stabilní a může být skladován při teplotě 20°C až 25°C, jak je podrobněji uvedeno dále.
Při metodě odpařování se voda odstraní z vodné suspenze při teplotě místnosti odpařováním. Vodu je také možno odstranit rozprašovacím sušením.
Vodné roztoky, které se používají pro formulaci, jak bylo popsáno výše, se skládají ze sacharidu, strukturálního aditiva s vysokou molekulovou hmotností, pufiovacího komponentu a vody. Roztok může také obsahovat jednu nebo více aminokyselin. Kombinace těchto komponentů funguje tak, aby zachovala aktivitu rekombinantního retroviru při zmrazení a lyofilizaci nebo sušení pomocí odpařování.
Strukturální aditivum s vysokou molekulovou hmotností pomáhá zabránit agregaci viru během zmrazování a zajišťuje strukturální podporu v lyofilizováném nebo sušeném stavu. V kontextu tohoto vynálezu se pokládají strukturální aditiva za strukturální aditiva s vysokou molekulovou hmotností, jestliže jsou větší, než 5000 m.h. Nejlepším strukturálním aditivem s vysokou molekulární hmotností je lidský sérový albumin. Aminokyseliny, jestliže jsou přítomny, fungují tak, aby dále zachovaly infektivitu viru při ochlazení a rozmrazování vodné suspenze. Kromě toho fungují aminokyseliny tak, aby se
I fl flflfl • · · · flfl flfl flfl • flfl · • · flfl flflfl · fl • · · • fl flfl dále zachovala infektivita viru během sublimace ochlazené vodné suspenze a když je v lyofilizovaném stavu.
Pufrovací komponent funguje tak, aby pufroval roztok tím, že zachová relativně konstatní pH. Je možno použít různé pufry v závislosti na požadovaném rozsahu pH, nejlépe mezi 7.0 a 7.8.
Vodné roztoky pro vytvoření rekombinantních retrovirů jsou podrobně popsány ve WOA2-96121014.
Kromě toho, je lepší, aby vodný roztok obsahoval neutrální sůl, která se používá na úpravu finálně vytvořeného rekombinantního retrovirů na příslušnou izoosmotickou koncentraci soli.
Lyofilizované nebo dehydrované retro viry je možno rekonstituovat za použití různých substancí, ale nejlépe se rekonstituují při použití vody. V určitých případech je možno také použít zředěné slané roztoky, které dovedou finální formulaci k izotonicitě. Kromě toho, může být výhodné použít vodné roztoky obsahující komponenty, o kterých je známo, že podporují aktivity rekonstituovaného retrovirů. Mezi takové komponenty patří cytokinázy, jako IL-2, polykationty, jako protaminsulfát nebo jiné komponenty, které podporují transdukční účinnost rekonstituovaného retrovirů. Lyofilizovaný nebo dehydrovaný rekombinantní retro virus může být rekonstituován jakýmkoliv vhodným množstvím vody nebo rekonstitučních činidel, která umožňují podstatnou a raději úplnou solubilizaci lyofilizovaného nebo dehydrovaného vzorku.
Rekombinantní retrovirové částice mohou být podávány do širokého množství míst, včetně například takových míst, jako je orgán nebo místo nádoru. V jiných konkrétních formách může být rekombinantní retrovirus podáván orálně, intravenózně, bukálně/sublingválně, intraperitoneálně nebo podkožně. Denní dávkování závisí na přesném způsobu podávání, formě, v níž se podává, indikaci, proti které je podávání zaměřeno, daném subjektu a tělesné váze daného subjektu, a dále na preferenci a zkušenostech pověřeného lékaře.
φφ φ««· • φ • φ φφφφ φ φφφφ • φφ φ · φ·· φ φ φφφ φ φφφ * <
φ φ φ ·φ· φ· φφ φφ *·
Způsoby podávání zde popsané je možno uskutečnit prostě přímým podáním za použití jehly, katetru nebo souvisejícího zařízení. Konkrétně, u určitých konkrétních forem vynálezu, je možno přímo podat jednu nebo více dávek.
V jedné konkrétní formě vynálezu budou obalové buňky uzavřeny v pouzdrech. Pro účinnou léčbu musejí buňky produkující virus přežít dlouhá období v cílovém orgánu po implantaci a virus musí být během těchto období produkován a uvolňován z obalových buněk. Tím by svým účinkem obalové buňky, které produkují virus, představovaly malou továrnu na výrobu viru, umístěnou na místě aplikace. To umožní účinnou dodávku rekombinantního viru in vivo. Jinak infikované normální buňky, lidského původu nebo buňky původem z jiných druhů, budou zapouzdřeny a implantovány, a tak vytvoří malou továrnu na konverzi prodrogy, kterou je možno umístnit blízko nebo do hmoty nádoru.
Dlouhodobá účinnost tohoto přístupu závisí na (1) ochraně buněk z hostitelského imunitního systému, který by normálně eliminoval buňky produkující virus nebo infikované buňky, zvláště jestliže tyto buňky jsou z různých druhů, jak tomu obvykle je v případě buněk produkujících retro virový vektor a na (2) přežití buněk in sítu po dlouhá období, což může vyžadovat vaskularizaci.
Bylo zjištěno, že neustálé produkce vektorového viru z implantovaných obalových buněk je možno dosáhnout příslušným zapouzdřením obalových buněk produkujících virus před implantací, v mikrokapslích s polopropustnými membránami. Kromě toho bylo zjištěno, že taková pouzdra se v hostiteli dobře naroubují, dojde u nich k vaskularizaci a nevyvolávají imunitní nebo zánětlivou reakci hostitele. Tato zjištění, spolu s polopropustností membrány pouzder, umožňuje dlouhodobou dodávku retrovirálního vektoru in vivo.
Byla vyvinuta technologie zapouzdření zajišťující zapouzdření obalových buněk produkujících virus a buněk infikovaných virem nebo normálních buněk v materiálu na základě celulózy. Při použití této techniky se zapouzdří až 1O10, ale spíše 105-107 buněk v komplexu elektrolytu (např. z alginátu a polylyzinu nebo raději sulfátu celulózy a polydimethyl-diallylamonium chloridu) nebo v jiných porézních strukturách (jako polyamidy, polysulfony). Výsledná pouzdra mohou mít různý průměr mezi 0,01 a 5 mm, ale s výhodou 0,1 a 1 mm. Je tedy možno vyrobit pouzdra, která budou obsahovat různé • fe fefe • · · fefefefe • · · · · · fe fefe·· ··· • · · · · · • •fefe ·· fe* ·« * fe fefe·· fe· • · « • · ··· · fe · fefe fefe fe • fe fe· množství buněk. Pouzdro je polopropustné s póry, které jsou dostatečně velké, aby umožňovaly virům nebo molekulám prodrog prostupovat, ale dostatečně malé, aby chránily buňky imunitního systému před přistupováním buněk, čímž významně snižuje imunitní reakci na tyto buňky. Pouzdra a zapouzdřené buňky se kultivují v kulturním médiu normální buňky (jeho povaha závisí na linii zapouzdřené buňky) při standardních podmínkách vlhkosti, teploty a koncentrace CO2.
Po vhodné době v kultuře (normálně ne méně než 1 hodinu a ne více než 30 dní), může být buňka obsahující pouzdra chirurgicky implantovaná do různých oblastí buď přímo nebo injekcí za použití injekční stříkačky.
V různé době po implantaci zapouzdřených buněk může být hostitel léčen cyklofosfamidem nebo ifosfamidem lokálně nebo systemicky. Buňky infikované virem exprimujícím cytochrom P450 změní tyto prodrogy na aktivní metabolity, které působí alkylací a příčnou vazbu DNA. Rovněž buňky nesoucí a exprimující gen s cytochromem P450 (jako zapouzdřené infikované buňky nebo zapouzdřené obalové buňky) budou také katalyzátorem této konverze. V jedné konkrétní formě tohoto vynálezu tyto zapouzdřené infikované nebo obalové buňky budou buď pomalu se dělící buňky nebo buňky, které byly ošetřeny mitomycinem C, nízkými dávkami záření nebo jinými prostředky, které zabrání replikaci buněk, a tak zabrání tomu, aby buňky samy byly ovlivněny cytotoxickými účinky prodrog.
Následující příklady budou tento vynález dále ilustrovat. Tyto příklady však v žádném případě nejsou míněny tak, aby omezovaly rozsah tohoto vynálezu, protože zřejmé modifikace budou patrné pro kohokoliv, kdo je zběhlý v této technice.
Příklad 1
Tento příklad popisuje stavbu retro virového vektoru exprese pro intratumorální infekci, který obsahuje gen pro krysí cytochrom P450 2B1.
Vektor exprese pLX2Bl, znázorněný na obrázku 1, byl konstruován podvázáním fragmentů získaných z plazmidů pLX125 a pSWl (Kedzie, K.M., Escobar, G.Y., Grimm,
S.W., He, Y.A., Pepperl, D.J., Regan, J.W., Stevens, J.C., a Halpert, J.R. (1991), J. Biol. Chem. 266(33): 2215-2). pLX125 byl připraven, jak je popsáno v PCT/EP96/ 04447).
Plazmid pLX125 byl linearizován s Hpal a výsledné tupé konce defosforylovány při použití telecí střevní fosfatázy. DNA byla purifíkována separací na 1% gelové agarose, excize a příprava používala protokol Qiaquick (Qiagen). Po precipitaci ethanolem byla DNA znovu suspendována ve vodě.
Klonovací vektor pSWl byl štěpen pomocí Smál a HincII, aby vznikly dva fragmenty s tupými konci. Směs výluhu byla separována na 1% gelové agarose. Nejkratší fragment (l,5kb), který obsahoval krysí cytochrom P450 2B1 cDNA (Fuji-Kuriyama, Y., Mizukami, Y. a kol. (1982), Proč. Nati. Acad. Sci. USA 79: 2793-2797) byl excidován a elutován za použití protokolu Qiaquick extrakce DNA, ethanolem precipitován a znovu suspendován ve vodě.
7,6 fMol pLX125 a 24 fMol fragmentu Smal/HindlI z pSWl byly smíchány a podvázány 3 dny při 12°C za použití T4-ligázy (Boehringer). Ligáza byla inaktivována při 65°C po dobu 10 min. a DNA precipitována 10 násobným objemem butanolu. Precipitovaná DNA byla znovu suspendována ve vodě a elektroforována do bakterie DH10B (Gibco). Byly vybrány kolonie resistantní na ampicilin, připravena DNA a zkušebně štěpena se SspBI/SaK, BamHI/SspBI, Pvul a BamHL Konečný správný plasmid byl označen pLX2Bl (viz Obr.l).
Lipofekce
Jeden den před lipofekcí bylo nasazeno 3x106 retrovirových obalových buněk PA317 (Miller, A.D. a Buttimore, C. (1986), Mol. Cell. Biol. 6: 2895-2902) do 10 cm petriho nebo kultivačních misek. V den infekce byly 4 pg pLX2Bl smíchány se 300μ1 média bez séra. Souběžně bylo 45μ1 Lipofectaminu (Gibco BRL) smícháno se 300μ1 média bez séra. Roztok obsahující plasmid byl přidán ke směsi Lipofectaminu a inkubován po dobu 45 min. Po 35 min. byly buňky jednou promyty 6 ml média bez séra. 2,4 média bez séra bylo přidáno ke směsi lipofekce a výsledný 1 ml byl vložen na připravené buňky. Po 5 hodinách byly přidány 3,5 ml Dulbeccova modifikovaného Eagles média s obsahem 20% FCS. Příštího dne byly buňky vystaveny trypsinu a rozředěny v poměru 1:20 a nasazeny na • ·
100 mm misku. Po 24 hodinách byla média nahrazena médiem obsahujícím analog neomycinu G418. Populace buněk byly izolovány a analyzovány pro expresi cytochromu P450.
Supernatant z těchto populací buněk byl použit pro infikování cílových buněk CK. 1 ml supernatantu obsahujícího virus z 5x106 buněk byl přefiltrován přes filtr 0,45 pm a přidán do lxlO6 cílových CK buněk za přítomnosti 8pg/ml polybrenu. Po 4 hodinách byl přidán ml Dulbecco modifikovaného Eagles média s 10% fetálního telecího séra. Příští den byly buňky vystaveny trypsinu, zředěny a o 24 hodin později vloženy do selekčního média obsahujícího dalších 400pg/ml G418. Po 2 týdnech byly izolovány kolonie resistentní na G418 a testovány na aktivitu cytochromu P450. 2xl04 buněk bylo rozprostřeno na 3 cm misku a vystaveno koncentraci ifosfamidu měnícího se mezi 0 a 5 mM. Byla pozorována vyšší senzitivita buněk infikovaných retrovirem s cytochromem P450 2B1 ve srovnání s kontrolními, neinfikovanými buňkami.
Zapouzdření
Získané obalové buňky produkující retro virový vektor jsou zapouzdřeny, jak je popsáno v příkladu 2 ve WO 97/01357.
Implantace
Získaná pouzdra jsou zavedena chirurgickým zákrokem klíčovou dirkou blízko nebo do transplantovaných nebo spontánních nádorů BALB/c nebo GR myší. Asi šest pouzder o průměru 1 mm je vloženo na každém místě operace. Místo po chirurgickém zákroku je uzavřeno 1 suturou. Myši jsou pak léčeny cyklofosfamidem nebo ifosfamidem lokálně, přímou intratumorální injekcí 100μ1 20mg/ml nebo systemickými koncentracemi 130 mg CPA/kg tělesné váhy i.p. a 40-60 mg IFO/kg tělesné váhy i.p. po dobu maximálně 10 týdnů. Během této doby se denně monitoruje velikost nádoru a makroskopický vzhled. Myši jsou pak obětovány, tkáň obsahující vsunutá pouzdra a tumor vyjmuta, a připraveny histologické řezy pro světelnou a elektronovou mikroskopii. Tyto řezy jasně ukazují dobré naroubování pouzder, vaskularizaci a žádné důkazy přítomnosti lymfocytů, které by indikovaly buněčnou imunitní reakci. Tyto řezy také nevykazují žádné známky odumření
buněk nebo nekrózy v rámci pouzdra. Naopak tumor vykazoval nekrózu a makroskopicky bylo za testované období jasné zmenšení velikosti.
Příklad 2
Tento příklad popisuje stavbu stabilní buněčné linie, která exprimuje konstitutivně krysí cytochrom P450 2B1.
Vektor exprese pc3/2Bl byl vytvořen podvázáním fragmentů získaných z plasmidu pcDNA3 (Invitrogen) a pSWl (Kedzie, K.M., Escobar, G.Y., Grimm, S.W., He, Y.A., Pepperl, D.J., Regan, J.W., Stevens, J.C., a Halpert, J.R. (1991), J. Biol. Chem. 266(33): 2215-21).
Plasmid pcDNA3 byl štěpen pomocí Xhol/Xbal a výsledné fragmenty s lepivými konci byly defosforylovány za použití telecí střevní fosfatázy. DNA páteře vektoru byla purifikována separací na 1% gelové agarose, excize a příprava používala protokol Qiaquick (Qiagen). Po precipitaci ethanolem byla DNA znovu suspendována ve vodě.
Klonovací vektor pSWl byl štěpen pomocí Xhol a Xbal, aby vznikly dva fragmenty. Směs výluhu byla separována na 1% gelové agarose. Nejkratší fragment (l,5kb) obsahující cDNA krysího cytochromu P450 2B1 (Fuji-Kuriyama, Y., Mizukami, Y. a kol., (1982), Proč. Nati. Acad. Sci. USA 79: 2793-2797) byl excidován a elutován za použití Qiaquick protokolu extrakce DNA, precipitován ethanolem a znovu suspendován ve vodě.
8,3 fMol páteře pcDNA3 a 24,8 fMol fragmentu Xhol/Xbal z pSWl byly smíchány dohromady a podvázány na 1 den při 12°C při použití T4-ligázy (Boehringer). Ligáza byla inaktivovaná při 65°C po dobu 10 min. a DNA precipitovaná butanolem s 10 násobným objemem butanolu. Precipitovaná DNA byla znovu suspendována ve vodě a elektorforována do bakterie DH10B (Gibco). Byly vybrány kolonie resistentní na ampicilin, připravena DNA a zkušebně štěpena pomocí EcoRI, BamHI, EcoRV a Xhol. Finální správný plasmid byl označen pc3/2Bl.
• · • 9 9 · 9 9
999 • 9
Lipofekce
Před dnem transfekce bylo 3x106 buněk z kočičí ledviny nasazeno do 100 mm misek. V den transfekce byly 4 pg pc3/2Bl smíchány se ΙΟΟμΙ média bez séra. Zároveň bylo smícháno 15μ1 Lipofectaminu se 100 μΐ média bez séra. Roztok obsahující plasmid byl přidán ke směsi Lipofectaminu a inkubován po dobu 45 min. Po 35 min. byly buňky jednou promyty 2ml média bez séra. 800μ1 média bez séra bylo přidáno ke směsi lipofekce a výsledný 1 ml byl dán na připravené buňky. Po 6 hodinách byl přidán lml DMEM (Glutamax) s 10% FCS. Příští den se na buňky působilo trypsinem a byly zředěny faktorem deset a nasazeny na 100 mm misku. Po 24 hodinách bylo médium nahrazeno neomycinovým médiem. Po 14 dnech byly izolovány klony resistentní na neomycin a testovány na přítomnost a aktivitu vektoru.
Buňky kočičí ledviny exprimující cytochrom P450 vykazovaly desetinásobně vyšší citlivost na ifosfamid nebo cyklofosfamid ve srovnání s buňkami standardního typu.
Vedlejší účinek bylo možno demonstrovat na normálním typu buněk kočičí ledviny, ale také na buňkách Rin5 derivovaných na pankreatickém nádoru. To bylo ukázáno společnou kultivací klonů buněk kočičí ledviny P450 2B1 buď s neprodukujícími buňkami kočičí ledviny normálního typu nebo buňkami Rin5 derivovanými z krysího pankreatického nádoru a přidáním ifosfamidu. Neprodukující CK a Rin buňky jsou zahubeny toxickými metabolity ifosfamidu, které jsou produkovány a uvolňovány buňkami kočičí ledviny s cytochromem P450 2B1. Titrační studie za použití klonů jedné buňky kočičí ledviny s cytochromem P450 2B1 vykazovaly, že pouhých 0,25mM ifosfamidu má specifické toxické účinky na tyto buňky a výsledkem 1-2 mM je odumření všech buněk. Klony buňky kočičí ledviny s cytochromem P450 2B1 byly vykázány analýzou řetězové reakce polymerázy, která získala genovou konstrukci DNA P450 2B1. Další biochemická analýza klonů za použití enzymatické dealkylace 7-pentoxyresorufinu cytochromem P450 2B1 odhalila, že geneticky modifikované buňky produkují cytochrom P450 2B1.
Pouzdra obsahující tyto buňky byly vyrobeny jak je uvedeno v příkladu 1 a implantovány do myší blízko místa nádoru. Po léčbě cyklofosfamidem nebo ifosfamidem byla hodnocena účinnost léčby, jak je popsáno výše.
• ·
Retrovirový vektor exprese, který obsahuje genově zakódovaný krysí cytochrom P4502B1, může být také připraven, jak je dále popsáno v příkladě 4.
Příklad 3
Plasmid pLX125 byl nejdříve částečně štěpen restrikčním enzymem Xhol, aby vznikl vektor, který je linearizovaný na pozici 3547. Tento lineární plasmid byl dále štěpen restrikčním enzymem SspBI, aby se odstranil krátký fragment ve vícevazebném pLX125. V preparativním gelu se ukázalo, že správně odříznutý fragment vektoru je největším pásem. Při použití protokolu Quiaex (Qiagen) byla DNA v tomto pásu elutovaná a purifikovaná z gelu.
Pro získání krysího genu s cytochromem P450 2B1, byly buňky z linie buněk krysího hepatomu HTC podrobeny lýzi s roztokem D (4M guanidium thiokyanátu, 25mM citrátu sodného pH 7, 0,5% N-natrium-laurylsarkosinu, O,1M 2-merkaptoethanolu) a celková RNA byla extrahována přidáním 1/15 objemu 3M octanu sodného, přidány byly při stejném objemu vody saturovaný fenol a 1/5 objemu chloroform/izoamylalkoholu (49:1) a celá směs silně míchána. Po 15 min. na ledu byl extrakt odstřeďován 20 min, při 4°C při lO.OOOg. RNA ve vodné fázi byla precipitována s jedním objemem izopropanolu po dobu 30 min. při -20°C a odstřeďována při lO.OOOg při 4°C. Peleta byla promyta v 70% ethanolu a ponechána při teplotě místnosti po dobu 15 min. Po 5 min. odstřeďování při 4°C a lO.OOOg byla peleta sušena ve vakuové sušičce a znovu rozpuštěna v 0,5% roztoku SDS.
Extrahovaná RNA byla reverzně transkribována při použití protokolu pro syntézu cDNA (Pharmacia). Výsledná cDNA byla použita jako matrice pro PCR. Primery byly navrženy tak, aby obsahovaly SspBI restrikčni místo (podtržené) v levém primerů (5'AAGCCTGTACACTGGAGAGCATGCAC-3') a celé místo Xhol (podtržené) v pravém primerů (5'-CGATTACTCGAGACCTGGCTGCCTCA-3'). Oba primery mají dodatečné báze na 5'-konci pro vyšší účinnost štěpení odpovídajícím restrikčním enzymem. 1562 bpprodukt byl štěpen pomocí Xhol a SspBI, aby se získaly tři fragmenty.
• · · ·· ·
Tento nejdelší fragment (1545 bp), obsahující gen pro cytochrom P450, byl podvázán do Xhol/SspBI štěpeného plasmidupLX125.
Stabilní linie buněk, která exprimuje krysí cytochrom P450 formu 2B1 konstitutivně, může být také připravena jak je dále popsáno v příkladu 5.
Příklad 4
Pro získání mRNA z krysícho cytochromu P450 forma 2B1 byla obětována čtyři týdny stará samice krysy, játra byla vyjmuta a okamžitě zmražena v kapalném dusíku. Zmrazená játra byla vložena do sterilizovaného filtrovaného GTC-pufiu (6M guanidium izothiokyanát, 5mM citrát sodný, O,1M 2-merkaptoethanol, 0,5% N-natriumlaurylsarkosin) a homogenizovaná při teplotě místnosti. Pro separaci RNA byl extrakt z jater dán na polštář chloridu česného (5,7M chlorid česný, O,1M EDTA) a odstředěn ve sklopném rotoru při 20°C a 32.000 ot/min. přes noc. Po úplném odstranění supematantu byla peletovaná RNA znovu rozpuštěna v ledově studeném lOmM Tris pH 7,5 a precipitována přes noc při -20°C s 1/15 objemu 3M octanu sodného a 2,5 objemu ethanolu. RNA byla odstřeďována ke dnu 40 min. při 8000 ot/min. a 4°C a vysušená peleta znovu suspendována ve sterilní vodě.
Extrahovaná RNA byla reverzně transkribovaná za použití protokolu pro syntézu cDNA (Pharmacia). Výsledná cDNA byla použita jako matrice pro následující PCR. Primer byl navržen tak, aby obsahoval restrikční místo EcoRI v levém primeru (5-CGTGCGGAATTCGGCGGATTCAGCAT-3) a restrikční místo AcoRVI v pravém primeru (5'-ATAACGGATATCACCTGGCTGCCTCA-3'). Oba primery měly dodatečné báze na 5'konci pro vyšší účinnost štěpného enzymu. 1588 bp-amplifikator byl štěpen s EcoRI a AcoRV, aby se získali tři fragmenty.
Tento nejdelší fragment (1572 bp), obsahující gen pro cytochrom P450 2B1, byl podvázán do EcoRI/EcoRV štěpeného plasmidu pcDNA3 (Innvitrogen).
Příklad 5
Stavba ProCon vektoru obsahujícího gen krysího cytochromu P450 pod transkripční kontrolou WAP promotoru.
Extrahovaná RNA připravená podle příkladu 4 byla reverzně transkribovaná za použití protokolu pro syntézu cDNA (Pharmacia). Výsledná cDNA je použita jako matrice (templát) pro PCR. Primery byly navrženy tak, aby obsahovaly restrikční místo BamHI (podtrženo) v levém primeru např.
5'-AAGCCGGATCCCTGGAGAGCATGCAC-3') a BamHI místo (podtrženo) v pravém primeru (např. 5'-CGATTAGGATCCCTGCCTCA-3'). Oba primery mají dodatečné báze na 5'-konci pro vyšší účinnost štěpení odpovídajícím restrikčním enzymem. 1562 bp produkt je štěpen pomocí BamHI a získaný fragment obsahující gen pro cytochrom P450 je podvázán do BamHI štěpeného plasmidu pWAPó (viz přihláška PCT č. PCT/EP96/03922).

Claims (15)

  1. PATENTOVÉ NÁROKY
    1. Cytochrom P450 transdukující retrovirové vektory s pouzdrem, v němž je zapouzdřená buňka produkující cytochrom P450, přičemž uvedené pouzdro obsahuje porézní membránu, která je prostupná pro cytochrom P450 produkovaný uvedenou buňkou.
  2. 2. Pouzdro podle nároku 1, vyznačené tím, že se materiál pouzdra sestává z komplexu vytvořeného ze sulfátu celulózy a polydimethyldiallylamonia.
  3. 3. Pouzdro podle nároku 1 nebo 2, vyznačené tím, že uvedená buňka produkující cytochrom P450 obsahuje vektor připravený jak je popsáno v Příkladu 2.
  4. 4. Pouzdro podle nároku 1 nebo 2, kde buňka produkující cytochrom P450 je linií obalové buňky obsahující retrovirový vektor nesoucí gen s cytochromem P450, uvedená linie obalové buňky má v sobě alespoň jednu konstrukci retroviru nebo rekombinantního retroviru se zakódováním pro proteiny pro zmíněny retrovirový vektor, který má být zapouzdřen.
  5. 5. Pouzdro podle nároku 4, kde je retrovirový vektor replikačně-defektivní.
  6. 6. Pouzdro podle nároku 4 nebo 5, kde retrovirový vektor obsahuje 5'LTR oblast struktury U3-R-U5; jednu nebo více sekvencí zvolených z kódovacích nebo nekódovacích sekvenci, kde alespoň jedna z kódovacích sekvencí kóduje pro cytochrom P450; a 3'LTR oblast obsahující zcela nebo částečně deletovanou U3 oblast, kde uvedená deletovaná U3 oblast je nahrazena polyvazební sekvencí následovanou R a U5 oblastí.
  7. 7. Pouzdro podle kteréhokoliv z nároků 4 až 6, kde gen s cytochromem P450 je pod transkripcionální kontrolou specifického regulačního elementu nebo promotoru cílové buňky nebo promotoru indukovatelného rentgenovým zářením.
    • * φφφφ • φ • φ φ φφφφ φφφφ φ φ φφφφ φφφφ • φφφφ φφφ φ φφφ φ φ
    96 φφφφ· φ φφφ
    ΦΦΦΦ ΦΦ Φ« Φ· ·· 9 9
  8. 8. Pouzdro podle kteréhokoliv z nároků 4 až 7, kde retrovirový vektor je vektor připravený jak je popsáno v Příkladu 1 nebo 3.
  9. 9. Farmaceutický prostředek obsahující pouzdro podle kteréhokoliv z nároků 1 až 8.
  10. 10. Pouzdro podle kteréhokoliv z předcházejících nároků 1 až 8 pro přípravu farmaceutického prostředku k léčbě rakovinového onemocnění nebo jakéhokoliv jiného odpovídajícího onemocnění nebo poruchy.
  11. 11. Použití pouzdra podle kteréhokoliv z nároků 1 až 8 pro přípravu farmaceutického prostředku užitečného pro ablaci nádorových buněk
  12. 12. Použití pouzdra podle kteréhokoliv z nároků 1 až 8 pro přípravu farmaceutického prostředku k léčbě rakovinového onemocnění nebo jakéhokoliv jiného odpovídajícího onemocnění nebo poruchy zahrnující podávání subjektu, který to potřebuje, terapeuticky účinného množství pouzdra podle kteréhokoliv z nároků 1 až 8 a současně nebo s časovým odstupem, prodrogy, která je aktivována cytochromem P450.
  13. 13. Použití podle nároku 12, vyznačené tím, že pouzdro se podává injekcí a/nebo implantací do cílových buněk a/nebo v jejich místě, a prodroga se podává systemicky a/nebo místně.
  14. 14. Použití podle nároků 12 až 13, kde cílové buňky jsou buňky nádorů prsu a/nebo pankreatických nádorů.
  15. 15. Použití podle kteréhokoliv z nároků 12 až 14, , kde prodrogou je cyklofosfamid a/nebo ifosfamid.
CZ19983050A 1996-03-27 1997-03-27 Kapsule zapouzdřující buňky produkující cytochrom P450 CZ288074B6 (cs)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DK35296 1996-03-27

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CZ305098A3 true CZ305098A3 (cs) 1999-01-13
CZ288074B6 CZ288074B6 (cs) 2001-04-11

Family

ID=8092560

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ19983050A CZ288074B6 (cs) 1996-03-27 1997-03-27 Kapsule zapouzdřující buňky produkující cytochrom P450

Country Status (19)

Country Link
US (1) US6893634B1 (cs)
EP (1) EP0892852B1 (cs)
JP (1) JP4229982B2 (cs)
AT (1) ATE309383T1 (cs)
AU (1) AU713382B2 (cs)
CA (1) CA2250173A1 (cs)
CZ (1) CZ288074B6 (cs)
DE (1) DE69730595D1 (cs)
DK (1) DK0892852T3 (cs)
ES (1) ES2253775T3 (cs)
HU (1) HU221349B1 (cs)
IL (1) IL125795A0 (cs)
NO (1) NO325392B1 (cs)
NZ (1) NZ331765A (cs)
PL (1) PL188323B1 (cs)
RU (2) RU2223788C2 (cs)
SI (1) SI0892852T1 (cs)
SK (1) SK282744B6 (cs)
WO (1) WO1997035994A2 (cs)

Families Citing this family (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP4119952B2 (ja) 1995-06-27 2008-07-16 バヴァリアン・ノルディック・アクティーゼルスカブ ウイルス粒子産生カプセル化細胞
CZ288074B6 (cs) 1996-03-27 2001-04-11 Bavarian Nordic Research Institute A/S Kapsule zapouzdřující buňky produkující cytochrom P450
US6540995B1 (en) 1996-03-27 2003-04-01 Bavarian Nordic Research Institute Gmbh Encapsulated cells producing cytochrome P450
WO2000017366A2 (en) * 1998-09-21 2000-03-30 Transgene S.A. Pharmaceutical composition for the pre-treatment of a patient in need of drug or pro-drug
GB0400443D0 (en) 2004-01-09 2004-02-11 Oxford Biomedica Ltd Cascade
JP2002534397A (ja) * 1999-01-04 2002-10-15 エムエル ラボラトリーズ ピーエルシー 癌の処置のためのp450/アセトアミノフェンgdept
GB9900009D0 (en) * 1999-01-04 1999-02-24 Ml Lab Plc Gene therapy
GB0010105D0 (en) * 2000-04-26 2000-06-14 Ml Lab Plc Cell ablation
JP2005503162A (ja) * 2001-09-21 2005-02-03 オックスフォード バイオメディカ(ユーケイ)リミテッド ベクター
GB201408233D0 (en) 2014-05-09 2014-06-25 Austrianova Singapore Pte Ltd Use of polyanionic composition
MX2015006813A (es) * 2015-05-29 2016-11-28 Univ Nac Autónoma De México Nanoparticulas biocataliticas cyp-p22 con actividad citocromo p450 para la activacion de profarmacos.

Family Cites Families (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CA1335798C (en) 1988-05-17 1995-06-06 Sloan Kettering Institute For Cancer Research Retroviral vector
WO1994029437A1 (en) 1993-06-07 1994-12-22 University Of Medicine & Dentistry Of New Jersey Highly-efficient, self-inactivating, recombination-free, u3-free retroviral vectors
US5688773A (en) * 1994-08-17 1997-11-18 The General Hospital Corporation Method of selectively destroying neoplastic cells
EE03492B1 (et) 1994-09-02 2001-08-15 GSF-Forschungszentrum f�r Umwelt und Gesundheit GmbH Mitte-autoinaktiveeruvad ekspressiooni suunavad retroviiruslikud vektorid
JP4119952B2 (ja) 1995-06-27 2008-07-16 バヴァリアン・ノルディック・アクティーゼルスカブ ウイルス粒子産生カプセル化細胞
JPH11511979A (ja) * 1995-09-06 1999-10-19 ババリアン・ノルディック・リサーチ・インスティテュート・アクティーゼルスカブ ヒト乳癌細胞を含むヒト乳腺細胞を標的として、連結された異種性遺伝子を発現させるためのwapまたはmmtv制御配列の使用
CZ288074B6 (cs) 1996-03-27 2001-04-11 Bavarian Nordic Research Institute A/S Kapsule zapouzdřující buňky produkující cytochrom P450

Also Published As

Publication number Publication date
CZ288074B6 (cs) 2001-04-11
SK132398A3 (en) 1999-04-13
WO1997035994A2 (en) 1997-10-02
US6893634B1 (en) 2005-05-17
DK0892852T3 (da) 2006-03-06
AU2382797A (en) 1997-10-17
NO325392B1 (no) 2008-04-21
DE69730595D1 (de) 2004-10-14
HUP9904116A3 (en) 2001-01-29
AU713382B2 (en) 1999-12-02
SI0892852T1 (sl) 2006-04-30
ATE309383T1 (de) 2005-11-15
WO1997035994A3 (en) 1997-11-20
SK282744B6 (sk) 2002-12-03
NZ331765A (en) 2000-02-28
JP4229982B2 (ja) 2009-02-25
RU2223788C2 (ru) 2004-02-20
EP0892852A2 (en) 1999-01-27
NO984540D0 (no) 1998-09-28
PL188323B1 (pl) 2005-01-31
NO984540L (no) 1998-09-28
CA2250173A1 (en) 1997-10-02
IL125795A0 (en) 1999-04-11
JP2000509249A (ja) 2000-07-25
RU2185821C2 (ru) 2002-07-27
EP0892852B1 (en) 2005-11-09
HUP9904116A2 (hu) 2000-04-28
ES2253775T3 (es) 2006-06-01
PL329071A1 (en) 1999-03-15
HU221349B1 (en) 2002-09-28

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP4848348B2 (ja) ウイルス粒子産生カプセル化細胞
US20020051763A1 (en) Host-vector system which can be used in gene therapy
EP0334301A1 (en) Recombinant retroviruses
Havenga et al. Retroviral stem cell gene therapy
CZ305098A3 (cs) Cytochrom P450 transdukující retrovirové vektory
EP0848757B1 (en) The use of the wap of mmtv regulatory sequences for targeted expression of linked heterologous genes in human mammary cells, including human mammary carcinoma cells
US6540995B1 (en) Encapsulated cells producing cytochrome P450
Searle et al. Sensitisation of human ovarian cancer cells to killing by the prodrug CB1954 following retroviral or adenoviral transfer of the E. coli nitroreductase gene
JPH11503916A (ja) 高力価組換えレトロウイルス調製物による細胞の高効率エクスビボ形質導入
JP2002508976A (ja) 遺伝子療法において使用するための、免疫原性が低下したヌクレオチド発現システム
Burt et al. Herpes simplex thymidine kinase (HStk) transgenic donor lymphocytes
Rappa et al. Gamma‐glutamylcysteine synthetase‐based selection strategy for gene therapy of chronic granulomatous disease and graft‐vs.‐host disease
Bento et al. Over expression of the selectable marker blasticidin S deaminase gene is toxic to human keratinocytes and murine BALB/MK cells
Medin Molecular Therapeutics in Hematology: Gene Therapy
Takebe et al. MDR-1 8.3. 3 Cytidine Deaminase 8.3. 4 Aldehyde Dehydrogenase Class 1 Dihydrofolate Reductase
Habbabeh et al. Virus Directed Enzyme Prodrug Therapy (VDEPT)
Unger Enriching suicide gene bearing tumor cells in vivo for an increased bystander effect: a novel strategy for cancer gene therapy

Legal Events

Date Code Title Description
PD00 Pending as of 2000-06-30 in czech republic
MM4A Patent lapsed due to non-payment of fee

Effective date: 20110327