CN1955240B - 牦犀胶及其制备工艺 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种牦犀胶及制备工艺,材料为牦牛皮,工艺为:取前预处理的牦牛皮折干品,置于多功能提取罐,加重量1-2倍的水,再加重量1/300-1/1000NaOH脱脂,密闭提取罐,开夹层蒸汽及直气进行加热,煮沸30-60min,压力升至0.11-0.12MPa,反复加水冲洗至pH值近中性,放净,加水1-2倍,直气夹层再加热、压力控制在0.1-0.15MPa,进行提取,时间为8-20h,提取物过滤,滤液留置,滤渣加入重量1-2倍水置入提取罐中,二次提取,时间为1-8h,提取物过滤,合并滤液,提取中每小时打缩环排气一次,时间为5min,浓缩料液至60℃时的密度为1.074-1.091g/cm3,喷雾干燥得胶粉。
Description
所属技术领域:本发明涉及一种补血胶剂及其制备工艺。
背景技术:根据世界卫生组织的调查,贫血是人类四大营养性疾病之一,因贫血而导致其它疾病给人们生活带来极大的痛苦,甚至导致死亡。有统计显示,全球约有30亿人患有有不同程序的贫血,而在我国又有近2.7亿的在校青少年普遍存在贫血。对于他们而言,即使是轻度贫血,也会造成其生长迟滞,身体机能下降和身体素质低下,对体质产生不良影响。特别是再生障碍性贫血,它是危害青、少、壮年身心健康的导致其五脏六腑造成血功能衰竭一种综合性顽症,素有“软癌”之称。而对付上述疾症人们常用阿胶来进行治疗,以阿胶作为补血药品,而众所周知,阿胶是以驴皮为原料进行熬制而成,而我国驴皮产地又主要集中在山东、河南、新疆,驴皮产量十分有限,资源的匮乏,导致由驴皮制成的胶远远不能满足临床的需要,人们特需解决这一问题。
发明内容:本发明的目的就是为了解决驴皮资源不足,阿胶不能满足临床需要的问题,提供一种新的生产胶剂的材料及其制备工艺。
为了实现上述发明目的,本发明采取的技术方案为:一种胶剂即牦犀胶,其特征在于生产胶剂即牦犀胶的材料为牦牛皮。
本发明的特征还在于生产牦犀胶牦牛皮是青藏高原地牦牛皮。本发明中牦犀胶的制备工艺为:称取经前预处理过的牦牛皮,即牦牛皮折干品,置于多功能提取罐中,加入其重量1-2倍的水,再加入牦牛皮重量1/300-1/1000的NaOH进行脱脂,密闭多功能提取罐,开启夹层蒸汽及直气进行共同加热,煮沸30-60min,当压力升至0.11-0.12MPa,反复加水冲洗至pH值近中性,放净,按其重量加水1-2倍,再直气夹层共同加热、使压力控制在0.1-0.15MPa,进行第一次提取,提取时间为8-20h,将第一次的提取物进行过滤,滤液留置,滤渣再加入其重量1-2倍的水置入多功能提取罐中,进行第二次提取,第二次提取的时间为1-8h,将第二次提取物进行过滤,合并二次滤液,在进行提取的过程中,每小时打缩环排气一次,每次循环时间为5min,提取结束后,进行浓缩至料液在60℃时的密度为1.074-1.091g/cm3即可,然后将浓缩后的胶液进行喷雾干燥,喷雾干燥而成的胶粉可根据临床的需要而制成不同的剂型,如胶粉、口服液、片剂、丸剂等等。
本发明由于采取上述技术方案,故其有益效果为:本发明采用平均海拔4000米以上的青藏高原的牦牛皮作为生产胶剂的原料,高寒高海拔,无污染的自然环境,使得在此产出的牦牛皮制成的牦犀胶它含有人体必须的多种营养素、蛋白质、二十多种有益于人体必须的多种维生素,二十多种有益于人体的矿物质。
牦犀胶与阿胶氨基酸含量分析比较见表1
表1、牦犀胶与阿胶氨基酸含量分析比较
名称 | 含量% | 含量% | 含量% | 名称 | 含量% | 含量% | 含量% |
牦 | 阿 | 比较 | 牦 | 阿 | 比较 |
名称 | 含量% | 含量% | 含量% | 名称 | 含量% | 含量% | 含量% |
天冬氨酸 | 5.14 | +5.14 | 亮氨酸 | 2.98 | 1.92 | +1.06 | |
苏氨酸 | 1.17 | 3.21 | -1.50 | 酪氨酸 | 0.76 | 0.29 | +0.47 |
丝氨酸 | 3.11 | 1.86 | +1.25 | 苯丙氨酸 | 2.01 | 1.59 | +0.42 |
谷氨酸 | 10.68 | 0.59 | +10.09 | 赖氨酸 | 3.34 | 2.63 | +0.71 |
甘氨酸 | 21.58 | 13.36 | +8.22 | 组氨酸 | 0.65 | 0.58 | +0.07 |
丙氨酸 | 8.85 | 0.12 | +8.73 | 精氨酸 | 7.49 | 0.42 | +3.07 |
缬氨酸 | 2.61 | 0.84 | +1.77 | 脯氨酸 | 12.17 | 6.52 | +5.65 |
蛋氨酸 | 0.46 | 0.46 | +0.26 | 胱氨酸 | 0.07 | +0.07 | |
异亮氨酸 | 1.67 | 1.67 | +0.76 | 色氨酸 | 0.07 | +0.07 |
1、实验材料:
牦犀胶,青海信成医药集团出品,批号:040110;阿胶,山东东阿胶厂,批号:230520;黄明胶,河南辅仁药业批号:031012;环磷酰胺,批号:035270,德国AllemagenAlemania公司出品;苯,分析纯,批号:901112湖南衡阳有机试剂厂生产。
1.2动物和仪器:清洁级昆明种和BALB/C小鼠,体重20-22,♀♂兼用,豚鼠,体重250-350g,由青海省地方病研究所动物房提供,实验动物合格证号;青医实动准字(2003)第0-014号;F-800全血细胞分析仪,日本东亚,3210紫外分光光度计,日本岛津。
1.3实验方法:实验一般分为6组,第1组为对照组:第2组为模型组,均给等体积蒸馏水,第3组为阿胶药物组4.0g,第4为黄明胶8.0g药物组,5、6组分别为牦犀胶1.0、2.0g生药/kg组,各组均按0.5ml/20g ig给药,一般灌胃给药每天1次,连续10天末次给药后1h供实验,实验室温度20-25℃。
2实验结果:
2.1、对失血型血虚小鼠的影响昆明种小鼠60只,♀♂各半,均分成6组(n=10),首先取血测小鼠RBC、Hb、HCT和PLT的正常对照外,其它组每只小鼠从眼眶静脉丛放血0.5ml,24h后一同再取血测上述指标,然后按1.3法给药,连续1周,末次给药1h后,从眼眶静脉丛取血用F-800全血细胞分析仪测上述指标,结果见表2。
结果表明,放血小鼠经服用牦犀胶、黄明胶、阿胶治疗7天后,4个给药组分别与模型组比较,其RBC、Hb和这PLT值均显著高于模型组,且已基本恢复正常对照组小鼠的水平,提示本品具有明显的补血作用。
2.2、对小鼠骨髓造血功能损伤的防治作用昆明小鼠60只♀♂兼用,均分成6组(n=10),按13法ig给药,每天1次,第7、8、9日除正常对照外,其它各组小鼠分别ip环磷酰胺100mg/kg然后继续给药3天,于末次给药后1h从眼眶静脉丛取血,测WBC、Hb、RBC、Rt,取股骨骨髓计数有核细胞数,结果见表3.
结果表明,与正常对照组比较,环磷酰胺能使小鼠骨髓损伤,造成外周血细胞下降,牦犀胶、黄明胶、阿胶分别与模型组比较,均可明显对抗环磷酰胺所致小鼠WBC、RBC、Hb、Pt和骨髓有核细胞下降,提示本品具有补血作用。
2.3、对再生障碍性贫血小鼠的影响50只,♀♂兼用,均分成5组(n=10),除正常对组外,其它组小鼠皮下注射苯0.5ml/kg连续12天,造模的当日,同时按1.3法给药,每天1次,共15天,末次给药后1h,眼眶静脉丛取血,测WBC、RBC、Hb、Pt,并取股骨骨髓计数有核细胞数,结果见表4。
结果表明,4个给药组分别与模型组比较,均可明显对抗所致再生障碍性贫血小鼠WBC、RBC、Hb、Pt和骨髓有核细胞的下降,但牦犀胶低剂量对抗RBC、Hb下降无显著性差异。
上述实验结果表明,牦犀胶对失血性血虚小鼠,对环磷酰胺所致骨髓造血功能损伤小鼠和对苯引起的再障贫血小鼠均可升高外周血液的WBC、RBC、Hb和PLT的值,对抗骨髓造血功能损伤小鼠骨髓有核细胞数下降。提示本品确有补养气血之功效,为临床应用治疗贫血,产后血虚体弱提供了科学依据。
表2牦犀胶对失血型血虚小鼠的影响(x±s n=10)
组别 | 剂量 | RBC(1012个/L) | HCT(%) | ||||
(g/kg) | 失血前 | 失血后 | 治疗后 | 失血前 | 失血后 | 治疗后 | |
正常对照组 | 等体积水 | 8.64±0.54 | 8.54±0.44 | 8.55±0.58*** | 0.42±0.02 | 0.40±0.02 | 0.42±0.02* |
模型组 | 等体积水 | 8.67±0.49 | 5.44±0.60△ | 6.68±0.67 | 0.42±0.02 | 0.36±0.03 | 0.40±0.04 |
黄明胶 | 8.0 | 8.79±0.49 | 5.26±0.69△ | 8.43±0.64*** | 0.40±0.02 | 0.36±0.03 | 0.44±0.05* |
牦犀胶 | 1.0 | 8.79±0.29 | 5.44±0.54△ | 8.35±0.66*** | 0.04±0.03 | 0.36±0.01 | 0.44±0.06* |
组别 | 剂量 | RBC(1012个/L) | HCT(%) | ||||
牦犀胶 | 2.0 | 8.68±0.49 | 5.22±0.78△ | 8.19±0.89*** | 0.41±0.02 | 0.37±0.02 | 0.42±0.03 |
阿胶 | 4.0 | 8.780.47 | 5.26±0.72△ | 8.35±0.68*** | 0.41±0.02 | 0.36±0.03 | 0.41±0.05* |
续表3牦犀胶对失血型血虚小鼠的影响(x±S n=10)、
组别 | 剂量 | Hb(g/ll) | PLT(×109个/L) | ||||
(g/kg) | 失血前 | 失血后 | 治疗后 | 失血前 | 失血后 | 治疗后 | |
正常对照组 | 等体积水 | 152.4±30.0 | 156.0±36.1 | 163.4±8.7*** | 861.7±82.7 | 844.7±58.9 | 829.8±93.5 |
模型组 | 等体积水 | 160.8±17.8 | 90.3±8.8△ | 133.4±7.9 | 827.9±113.7 | 517.9±53.8 | 747.3±74.3 |
黄明胶 | 8.0 | 160.4±18.9 | 585.5±8.2△ | 147.6±7.0*** | 834.6±81.3 | 526.0±70.6△ | 870.3±120.7** |
牦犀胶 | 1.0 | 162.8±17.6 | 75.1±9.3△ | 152.3±9.9*** | 840.5±66.4 | 553.2±78.2△ | 867.6±118.2** |
牦犀胶 | 2.0 | 165.6±14.8 | 79.3±7.8△ | 153.6±10.9*** | 837.4±104.6 | 507.4±64.5△ | 808.4±83.1 |
组别 | 剂量 | Hb(g/ll) | PLT(×109个/L) | ||||
阿胶 | 4.0 | 160.8±10.3 | 84.6±6.2△ | 151.6±8.6*** | 833.9±90.6 | 524.7±64.5△ | 870.6±136.4* |
表4牦犀胶对环磷酰胺所致小鼠骨髓造血功能损伤的影响
组别 | 剂量 | WBC | RBC | Hb | Rt | 骨髓有核细胞数 |
(g/kg) | (109个/L) | (1012个/L) | (g/L) | (109个/L) | (104个/股骨) | |
正常对照组 | 等体积水 | 8.7±1.0*** | 8.42±0.73* | 153.6±11.7*** | 806.4±143.1*** | 906.7±119.4** |
模型组 | 等体积水 | 3.2±1.1 | 6.68±0.60 | 130.4±5.1 | 400.3±132.9 | 429.9±132.3 |
黄明胶 | 8.0 | 4.5±1.0 | 8.25±0.85*** | 155.3±12.1*** | 429.3±124.2*** | 664.2±138.7*** |
牦犀胶 | 1.0 | 5.3±0.9 | 8.08±0.34*** | 151.6±8.5*** | 721.6±91.6*** | 692.1±109.4*** |
牦犀胶 | 2.0 | 5.2±1.2 | 7.90±0.66*** | 148.9±11.6*** | 807.0±148.1*** | 646.7±114.0** |
阿胶 | 4.0 | 6.8±1.3 | 7.34±0.66*** | 155.7±12.4*** | 910.6±76.6*** | 703.7±142.8*** |
与模型组比较**P<0.05***P<0.01
表5牦犀胶对再生障碍型贫血小鼠的影响(x±S n=10)
组别 | 剂量 | WBC | RBC | Hb | Rt | 骨髓有核细胞数 |
(g/kg) | (109个/L) | (1012个/L) | (g/L) | (109个/L) | (104个/股骨) | |
正常对照组 | 等体积水 | 8.5±1.2*** | 8.22±0.91*** | 155.6±10.2*** | 816.4±1112.5*** | 1025±114** |
模型组 | 等体积水 | 5.8±1.1 | 7.08±0.58 | 129.6±5.7 | 652.4±79.5 | 416±97 |
黄明胶 | 8.0 | 6.9±1.0 | 8.05±0.51** | 144.3±10.8** | 779.8±109.0** | 612±86** |
牦犀胶 | 2.0 | 7.3±1.1*** | 7.76±0.67** | 137.9±12.7* | 837.6±78.0** | 633±107** |
阿胶 | 4.0 | 7.2±0.5*** | 7.71±0.67** | 146.0±7.7** | 859.1±124.1** | 725±112** |
与模型组比较*P>0.05**P<0.05***P<0.01
3、牦犀胶对急性低压缺氧大鼠内皮素分泌的干预:
方法:36只健康雄性SD大鼠,随机分成盐水组、(5000m和8000m)低压缺氧组,三组又各分牦犀胶组和盐水组。盐水组、牦犀胶组每天灌胃生理盐水、牦犀胶浓缩液,共7天。检测盐水组和低压暴露5h后缺氧组血浆、脑组织ET含量。结果:急性5000m、8000m缺氧盐水组与地面盐水组比较血浆ET含量显著升高(P<0.05、P<0.01);地面药物组与其盐水组相比血浆ET含量无显著性差异;急性5000m、8000m缺氧药物组与其盐水组相比血浆ET含量显著下降(P<0.05、P<0.01);急性8000m缺氧药物组与其盐水组相比脑组织ET含量显著下降(P<0.01)。
急性低压缺氧在正常状态下牦犀胶对机体ET水平无影响;牦犀胶可以降低急性中、重度低压缺氧引起机体内皮素的异常升高。
1材料和方法
1.1实验对象:36只健康雄性SD大鼠,体重200±23g,购自青海地方病研究所动物动物房,实验动物合格证号;青医实动准字(2003)第0-015号;随机分成盐水组、5000m缺氧组、8000m缺氧组,三组又分牦犀胶组、盐水组,共六组(每组6只)。
1.2、实验方法:实验中盐水组、牦犀胶组每天分别灌胃25ml09%生理盐水、25ml牦犀胶浓缩液共7天;第7天缺氧组灌胃1h后置于低压氧舱,以20m/s速度上升,升到特定高度停留5h后以20m/s速度下降,地面组经过同样程序但不上升.实验大鼠于实验结束10min后经视动脉取血,放入抗凝管,含10%EDTA-2Na100μl和1000IU抑肽酶,以3000r/min4℃离心20min,分离血浆,-30℃冰冻保存待检.采血完毕后立即开颅,取大脑右侧皮质200mg,以PBS缓冲液2ml制成匀浆,以3000r/min4℃离心30min,取上清液,-70℃冰冻保存待检.标本测定ET放射免疫药盒购自解放军总医院科技开发中心放免所.SN-695型全自动γ计数器,上海原子核所生产.所有标本由专人严格按说明书测定步骤一次检验完成.数据处理:实验数据用均值±标准误表示(x±s),用T检验进行组间差异显著性分析.
2结果:
2.1急性低压缺氧及牦产干预对血浆ET含量的影响(见表6)急性5000m、8000m缺氧盐水组与地面盐水组比较血浆ET含量显著升高(P<0.05、P<0.01),与郝唯蔚等人的实验结果一致;地面药物组与其盐水组相比血浆ET含量无显著性差异;急性5000m、8000m缺氧药物组与其盐水组相比血浆ET含量显著升高(P<0.05、P<0.01)。
表6急性低压缺氧及牦犀胶干预对血浆ET含量的影响(x±s)
分组 | 样本数 | ET含量(pg/ml) |
地面盐水组地面药物组5000m盐水组5000m药物组8000m盐水组8000m药物组 | 666666 | 268.0±47.9234.4±49.6#300.7±57.0257.8±46.1##514.6±66.9363.4±58.3### |
与地面盐水组比较P<0.05,P<0.01;与其盐水组比较#P>0.05,##P<0.05,###P<0.01
2.2急性低压缺氧及药物干预对脑皮质ET含量的影响(见表7)
急性8000m缺氧药物组与其盐水组相比脑皮质ET含量显著升高(P<0.01)。由于脑皮质匀浆被PBS缓冲液稀释,地面组、急性5000m组脑皮质ET匀浆液含量小于试剂盒最小测试范围,但可推测急性8000m盐水组脑皮质ET含量高于地面盐水组。
表7急性低压缺氧及牦犀胶干预对脑皮质ET含量的影响(x±s)
分组 | 样本数 | ET含量(pg/mg蛋白) |
8000m盐水组8000m药物组 | 66 | 42.2±24.212.9±16.8 |
与其盐水组比较P<0.013
牦犀胶制剂显著降低缺氧引起的大鼠血浆、脑皮质ET含量升高,但对正常大鼠血浆、脑皮质ET含量无影响.显示,牦犀胶对机体ET异常分泌和释放有明显的调控作用,是牦犀胶抗缺氧功能的一个作用点.牦犀胶制剂可显著提高血液NO含量,NO也是缺氧病理过程中机体重要的调节因子,有很强的舒血管作用.综合本研究显示急性低压缺氧使机体NO/ET比值下降,而牦犀胶制剂可在一定程度上恢复缺氧造成的NO/ET比值下降,牦犀胶制剂对机体NO/ET比值的调控,有利于改善最初由缺氧引发的细胞损伤及细胞凋亡等机体缺氧损伤,有利于减轻ET过度增加引起的冠状动脉痉挛、心肌细胞毒性、心律失常和脑动脉异常收缩等病理现象,减少心肌缺血、心绞痛、心肌梗塞、心力衰竭、脑微循环紊乱等疾病的发生.
大量实验证明:牦犀胶蛋白质含量高于阿胶1.38个百分点,含氨基酸达22种之多,其中谷氨酸、甘氨酸、丙氨酸含量比阿胶含量高8个百分点以上。
牦犀胶的优势还在于有效积累高,成分含量多,生物活性强。抗寒、抗缺氧、抗免疫、无污染等诸多优点。尤其是牦牛皮含有丰富的抗缺氧、抗风湿因子,使每个红细胞中有多个富氧分子,对氧气的富化作用具有倍数效应。具有补血益气,滋补肝肾,养颜乌发,健美肌肤,明显提高红细胞和血红蛋白,迅速解除运动疲劳,恢复体力、补血、止血、养颜、调节免疫力的功效。
本发明不但指标好,而且稳定,传统工艺是原蒸球高压提取,为除去异味,不断间隔换气,致使蒸球内压力忽高忽低,使操作者难以掌握胶朊蛋白质的水解程度,造成指标波幅性大,从而指标不稳。而本工艺采取连续排气,压力稳定,从而指标波幅小,指标稳定。再则提取时间比传统工艺缩短了近40个小时。
传统工艺剂型单一,均为块状胶,其制备工艺大致相同,原料经过洁净预处理后,再进行煮提、过滤、浓缩、凝胶、切胶、凉胶等制备工序,特别是晾胶工序,为使含水量达到15%左右,占用大量面积的厂房和设备、耗费大量时间,时间长达数周,还难免造成污染、服用不便等弊端严重影响着中药胶剂的应用和发展通过反复实践,我们将喷雾干燥技术引用到制胶工艺中,将胶汁喷成微粉,使有效成份的细胞充分暴露,有利于人体吸收。其优点如下:
能够从胶液直接得到微细粉,所得粉末粒度很小,外形粉末粒度很小,外型圆整,流动性较好。喷雾干燥所需时间短,对热敏性成分影响小,成品中氨基酸含量基本不变,总氮含量略高于自然干燥法产品。喷雾干燥在密闭系统内进行,微生物污染机会很小。喷雾干燥的胶制成品中所含带有腐败气味的低健羟胺、芒香胺类以及服后导致恶心、呕吐等不反应的挥发性碱性物质含量较低,从而提高了胶剂的质量和疗效。块状胶含水量15%,速溶颗粒剂为5%。喷雾干燥法快速高效,省去了块状胶汁浓缩、凝胶、切胶、凉胶等漫长的工序,缩短了生产周期,生产不受季节限制,挥发性碱性物质含量降低,且具产品质量好,能保持原来的色香味,易溶解,含菌量低等优点。块胶状服用需“烊化兑服”,操作复杂、服用不便。喷雾干燥的胶剂用时只需开水冲服即可,即方便服用,又便于药房调剂。块状胶制备过程中需要加入豆油,时间长豆油易变质,影响块状胶质量:喷雾干燥的胶剂为纯胶粉而成,没加任何辅料。可以保证产品质量。
具体实施例:实施例1:称取经前预处理过的牦牛皮,即牦牛皮折干品1000kg,置于多功能提取罐中,加入其重量1倍的水,再加入牦牛皮重量1/800的NaOH进行脱脂,密闭多功能提取罐,开启夹层蒸汽及直气进行共同加热,煮沸30min,当压力升至0.11MPa,反复加水冲洗至pH值近中性,放净,按其重量加水2倍,再直气夹层共同加热、使压力控制在0.14MPa,进行第一次提取,提取时间为10h,将第一次的提取物进行过滤,滤液留置,滤渣再加入其重量1.5倍的水置入多功能提取罐中,进行第二次提取,第二次提取的时间为8h,将第二次提取物进行过滤,合并二次滤液,在进行提取的过程中,每小时打缩环排气一次,每次循环时间为5min,提取结束后,进行浓缩至料液在60℃时的密度为1.074g/cm3,将浓缩后的胶液进行喷雾干燥,喷雾干燥而得胶粉。
实施例2:称取经前预处理过的青藏高原牦牛皮,即牦牛皮折干品500kg,置于多功能提取罐中,加入其重量2倍的水,再加入牦牛皮重量1/300的NaOH进行脱脂,密闭多功能提取罐,开启夹层蒸汽及直气进行共同加热,煮沸约45min左右,当压力升至0.12MPa,反复加水冲洗至pH值近中性,放净,按其重量加水1.5倍,再直气夹层共同加热、使压力控制在0.1Mpa,进行第一次提取,提取时间为8h,将第一次的提取物进行过滤,滤液留置,滤渣再加入其重量1倍的水置入多功能提取罐中,进行第二次提取,第二次提取的时间为3h,将第二次提取物进行过滤,合并二次滤液,在进行提取的过程中,每小时打缩环排气一次,每次循环时间为5min,提取结束后,进行浓缩至料液在60℃时的密度为1.091g/cm3。将浓缩后的胶液进行喷雾干燥,喷雾干燥而得胶粉,可进一步加工为片剂。
实施例3:称取经前预处理过的牦牛皮,即牦牛皮折干品100kg,置于多功能提取罐中,加入其重量1.5倍的水,再加入牦牛皮重量1/1000的NaOH进行脱脂,密闭多功能提取罐,开启夹层蒸汽及直气进行共同加热,煮沸60min,当压力升至0.115MPa,反复加水冲洗至pH值近中性,放净,按其重量加水1倍,再直气夹层共同加热、使压力控制在0.15MPa,进行第一次提取,提取时间为20h,将第一次的提取物进行过滤,滤液留置,滤渣再加入其重量2倍的水置入多功能提取罐中,进行第二次提取,第二次提取的时间为1h,将第二次提取物进行过滤,合并二次滤液,在进行提取的过程中,每小时打缩环排气一次,每次循环时间为5min,提取结束后,进行浓缩至料液在60℃时的密度为1.085g/cm3。将浓缩后的胶液进行喷雾干燥,喷雾干燥而得胶粉,可进一步加工为丸剂。
实施例4:称取经前预处理过的青藏高原牦牛皮,即牦牛皮折干品500kg,置于多功能提取罐中,加入其重量1.2倍的水,再加入牦牛皮重量1/800的NaOH进行脱脂,密闭多功能提取罐,开启夹层蒸汽及直气进行共同加热,煮沸40min,当压力升至0.11MPa,反复加水冲洗至pH值近中性,放净,按其重量加水1.2倍,再直气夹层共同加热、使压力控制在0.115MPa,进行第一次提取,提取时间为8h,将第一次的提取物进行过滤,滤液留置,滤渣再加入其重量1.5倍的水置入多功能提取罐中,进行第二次提取,第二次提取的时间为1h,将第二次提取物进行过滤,合并二次滤液,在进行提取的过程中,每小时打缩环排气一次,每次循环时间为5min,提取结束后,进行浓缩至料液在60℃时的密度为1.090g/cm3,将浓缩后的胶液进行喷雾干燥,喷雾干燥而得胶粉,可进一步加工为口服液。
Claims (2)
1.牦犀胶的制备工艺,其特征在于生产工艺为称取经前预处理过的牦牛皮,即牦牛皮折干品,置于多功能提取罐中,加入其重量1-2倍的水,再加入牦牛皮重量1/300-1/1000的NaOH进行脱脂,密闭多功能提取罐,开启夹层蒸汽及直气进行共同加热,煮沸30-60min,当压力升至0.11-0.12MPa,反复加水冲洗至pH值近中性,放净,按其重量加水1-2倍,再直气夹层共同加热、使压力控制在0.1-0.15MPa,进行第一次提取,提取时间为8-20h,将第一次的提取物进行过滤,滤液留置,滤渣再加入其重量1-2倍的水置入多功能提取罐中,进行第二次提取,第二次提取的时间为1-8h,将第二次提取物进行过滤,合并二次滤液,在进行提取的过程中,每小时打缩环排气一次,每次循环时间为5min,提取结束后,进行浓缩至料液在60℃时的密度为1.074-1.091g/cm3即可,然后将浓缩后的胶液进行喷雾干燥,喷雾干燥而成胶粉。
2.如权利要求1所述的牦犀胶的制备工艺,其特征在于所述的牦牛皮为青藏高原的牦牛皮。
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