CN1936005A - 从土壤中提取微生物基因组dna的试剂盒及方法 - Google Patents
从土壤中提取微生物基因组dna的试剂盒及方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN1936005A CN1936005A CN 200610037350 CN200610037350A CN1936005A CN 1936005 A CN1936005 A CN 1936005A CN 200610037350 CN200610037350 CN 200610037350 CN 200610037350 A CN200610037350 A CN 200610037350A CN 1936005 A CN1936005 A CN 1936005A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- reagent
- dna
- centrifugal
- rev
- centrifuge tube
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
本发明涉及一种从土壤中提取微生物基因组DNA的试剂盒和提取方法,试剂盒包括:试剂A(浸洗液)、试剂B(预处理液)、试剂C(裂解液)、试剂D:为RNA酶A、试剂E Al2 (SO4) 3、试剂F十六烷基三甲胺、试剂G(DNA联接液)、试剂H(DNA洗涤液)、试剂K(DNA洗脱液);提取方法包括:样品浸洗、样品预处理:微生物裂解:腐殖质去除:DNA联接:蛋白杂质去除:DNA吸附:DNA洗涤:DNA洗脱;优点是提取方法迅速,可以在3小时内完成、DNA损失少、提取过程不使用酚、氯仿,减少了对实验人员的身体健康伤害、所获DNA完整,分子片段大于10kb,产量高,包含的微生物物种信息全面、操作简单,不要求特殊仪器,成本低。
Description
技术领域
本发明涉及一种从各种土壤样品中提取微生物基因组DNA的试剂盒,进一步涉及使用该试剂盒提取微生物基因组DNA的方法。
背景技术
现代土壤微生态学研究要求对土壤中微生物基因组DNA进行提取,并用于下游的分子操作,比如:PCR、SSCP、DGGE、AFLP等。但是相对于单纯培养的微生物而言,土壤微生物DNA提取存在一些困难,常规方法获得的DNA难以满足下游分子操作要求。这主要是由以下两种原因造成。
(1)土壤成分复杂,包含多种PCR的抑制物,例如:重金属、多糖类、多酚类、腐殖质等。其中腐殖质由于具有与DNA类似的性质,因此可以在DNA常规抽提中与DNA共沉淀,腐殖质极少量的存在就可以强烈地抑制PCR反应。土壤腐殖质包括三部分:腐殖酸、富里酸和胡敏素。前两者可以溶于碱性溶液,而后者即不溶于酸也不溶于碱。采用常规方法提取土壤微生物DNA溶液呈现的黄褐色是腐殖酸、富里酸存在的表现。
(2)土壤等环境微生物相对于单纯培养的微生物更难以裂解。将常规纯培养微生物的DNA提取方法用于土壤等环境微生物DNA提取所获得的微生物细胞裂解率低,因此所获DNA不能反映原始样品的物种丰度。此外,也造成DNA产量偏低。
因此需要研制适用于土壤微生物DNA提取的方便、快捷、实用的方法,解决使用常规方法所获得的DNA样品存在腐殖质等PCR抑制物以及细胞裂解率低、DNA产量低的问题。
发明的内容
本发明目的是提供一种从土壤样品中快速、高效提取微生物基因组DNA的试剂盒及方法,从而解决用分子手段研究土壤微生物群落时常规提取方法获取的DNA样品杂质多、细胞裂解程度低、含PCR抑制物(主要是腐殖质)等问题。
本发明从土壤中提取微生物基因组DNA的试剂盒,其试剂包括:
(1)试剂A(浸洗液):成分:50-300mM三羟基甲基氨基甲烷(Tris),15-100mM乙二胺四乙酸(EDTA),100-300mM NaCl,2-10mM柠檬酸钠,10-50mM CaCl2,0.5%吐温-80(Tween-80),0.2-0.5% pH8.5的甘油;
(2)试剂B(预处理液):含60-80%乙醇;
(3)试剂C(裂解液):含50-200mM三羟基甲基氨基甲烷(Tris),50-200mM乙二胺四乙酸(EDTA),4-8%pH 8.0-8.5的十二烷基苯磺酸钠(SDS);
(4)试剂D:为RNA酶A(RNAase A),含量为5-30mg/ml;
(5)试剂E:为50-150mM Al2(SO4)3;
(6)试剂F:为150-400g/L十六烷基三甲胺(CTAB);
(7)试剂G(DNA联接液):含6-10M异硫腈酸胍(GuSCN),100-300mM三羟基甲基氨基甲烷(Tris),调整pH至5-6;
(8)试剂H(DNA洗涤液):10-100mM pH8.0的三羟基甲基氨基甲烷(Tris),与无水乙醇1∶2-1∶4V/V混合;
(9)试剂K(DNA洗脱液):5-15mM pH8.0三羟基甲基氨基甲烷(Tris)或ddH2O。上述试剂盒的优选配方为:
试剂A,200mM三羟基甲基氨基甲烷(Tris),100mM乙二胺四乙酸(EDTA),100mM NaCl,2mM柠檬酸钠,10mM CaCl2,0.5%吐温-80(Tween-80),0.5%pH8.5的甘油;
试剂B,为70%乙醇;
试剂C,100mM Tris,50mM 乙二胺四乙酸(EDTA),8%pH8.0的十二烷基苯磺酸钠(SDS);
试剂D,30mg/ml RNA酶A(RNAase A);
试剂E,100mM Al2(SO4)3;
试剂F,200g/L十六烷基三甲胺(CTAB);
试剂G,7M异硫腈酸胍(GuSCN),300mM pH5.8的三羟基甲基氨基甲烷(Tris);
试剂H,50mM pH 8.0的三羟基甲基氨基甲烷(Tris)与无水乙醇3∶7混合。
本发明的主要原理为:土壤腐殖质可溶于碱性溶液的部分(腐殖酸和富里酸)在经试剂A(碱性)浸洗后,可以除去部分,同时试剂A中的甘油有吸附腐殖质的作用。在60-70℃裂解处理时,在较高温度及SDS作用下,土壤中的可溶性腐殖质绝大部分释放到裂解液中。在pH4-9范围内,Al3+对腐殖质具有较强的亲和力,Al3+-腐殖质复合体可以离心去除。CTAB具有吸附腐殖质的能力,但单独使用时其吸附作用不明显。当Al3+剂与CTAB联用时,可以达到最好的去除腐殖质效果。EDTA可以螯合重金属离子,并抑制DNA酶(DNAase)。
试剂A含有分散土壤颗粒、减少微生物细胞粘附土壤颗粒的Tween-80,在其作用下,微生物细胞更大程度地释放并暴露在裂解液环境中,增加了裂解率;试剂A同时含有CaCl2,在其作用下,微生物细胞膜的通透性增加,从而增强了裂解液的渗透能力。试剂B是70%乙醇,低温预处理样品后,微生物的细胞膜及细胞壁受到一定程度的破坏,对于试剂C中的细胞裂解成分更加敏感,同时一些溶于乙醇的有机杂质也得以除去。延长SDS裂解处理的时间到30-40min及提高SDS浓度,可以保证绝大部分的细胞都能得到裂解,DNA逸出。试剂D则用于降解RNA。试剂G中SCN-能强烈变性蛋白质,在高浓度的SCN-作用下,在SDS裂解液中溶解、离心尚未除去的蛋白,得以沉淀,而DNA继续保留。同时试剂G提供一种高盐、低pH环境,在这种环境下DNA可以与硅胶膜发生特异吸附。在低浓度的缓冲液或水中DNA又从硅胶膜释放,从而达到分离纯化目的。
试剂A用于分散土壤颗粒、减少微生物细胞粘附土壤颗粒,增加微生物细胞的通透性并洗离部分腐殖质。试剂B可以部分程度的破坏微生物细胞膜和细胞壁,并增加其对裂解液的敏感性。试剂C则提供一个细胞裂解的pH环境,并含裂解的主要成分及抑制DNA酶(DNAase)的成分。试剂D则用于降解RNA,防止RNA对下游操作造成干扰。试剂E及F用于吸附腐殖质。试剂G为DNA联接液,在高浓度GuSCN、低pH下,蛋白质沉淀,DNA可与硅胶结合。试剂H用于冲洗掉DNA以外的成分,在一定浓度的乙醇存在下,冲洗过程中,DNA不会溶失。试剂K提供低盐稳定pH环境,用于洗脱DNA。
使用上述从土壤中提取微生物基因组DNA的试剂盒提取微生物基因组DNA的方法,依次包括以下步骤:
(1)样品浸洗:取土壤0.8-1.5g,加入1-1.5ml试剂A,采用牙签充分捣碎,悬浮并振荡3min(手动振荡),8000-10000转/分,离心5-10min;
(2)样品预处理:取沉淀,加入1-3ml试剂B,采用牙签充分捣碎,悬浮,冰上放置10-30min,8000-12000转/分,离心5-10min;
(3)微生物裂解:弃上清,沉淀中加入试剂C 1-1.5ml,4-8μl试剂D,采用牙签充分捣碎,悬浮,65℃水浴20-30min,期间振摇数次;10000-12000转/分,离心5-10min;
(4)腐殖质去除:取上清逐滴加入试剂E 75-150μl,试剂F 25-60μl,加入颠倒混合2min;12000转/分,6min.,小心吸取上清;
(5)DNA联接:上清中加入3-4.5ml试剂G,室温下放置10-30min;
(6)蛋白杂质去除:12000-14000转/分,离心10min,取上清;
(7)DNA吸附:将DNA吸附柱放置在离心管中,上清移入吸附柱,每次600-800μl,3000-6000转/分,离心0.5min;弃离心管中液体,再次加入上清液离心,直至所有上清液离心完毕;倒掉离心管中液体,将DNA吸附柱放置在一支新的离心管中;
(8)DNA洗涤:DNA吸附柱中加入试剂H 500-800μl,3000-6000转/分,离心0.5min;弃离心管中液体;重复本步骤中DNA洗涤操作1-2次;将DNA吸附柱重新放入离心管中,空管8000-9000转/分,离心1min;
(9)DNA洗脱:将DNA吸附柱移入一支新的离心管中,DNA吸附柱底部中央加入30-100μl预热至65℃的试剂K,65℃水浴2min,6000-9000转/分,离心1min;重新将离心收集的液体加入到DNA吸附柱底部中央,65℃水浴1min,6000-9000转/分,离心1min;离心管中收集液体即为土壤微生物DNA溶液,-20℃保存。
本发明的优点和积极效果:①提取方法迅速,可以在3小时内完成。②可以去除绝大部分的腐殖质,而基因组DNA损失少。③提取过程不使用酚、氯仿,减少了对实验人员的身体健康伤害。④所获DNA完整,分子片段大于10kb,OD260/OD280在1.7以上,产量高,包含的微生物物种信息全面。⑤操作简单,不要求特殊仪器,成本低。⑥本发明除可用于土壤微生物DNA提取外,也可用于各种沉积物微生物DNA提取。
具体实施方式
下列实例是进一步对本发明的说明,不应该当作对本发明的限制。
实施例1:
按以下配方制作土壤微生物基因组DNA提取试剂盒:
试剂A:为浸洗液,成分:200mM Tris,100mM EDTA,100mM NaCl,2mM柠檬酸钠,10mMCaCl2,0.5%Tween-80,0.5%甘油,pH8.5。
试剂B:为预处理液,含70%乙醇。
试剂C:为裂解液,含100mM Tris(pH 8.0),50mM EDTA,8%SDS(pH 8.0)。
试剂D:为RNAase A,含量为30mg/ml。
试剂E:为100mM Al2(SO4)3
试剂F:为200g/L CTAB。
试剂G:为DNA联接液,含10M GuSCN(异硫腈酸胍),300mM Tris,调整pH至5.8。
试剂H:为DNA洗涤液,50mM Tris(pH 7.5),与无水乙醇3∶7(V/V)混合。
试剂K:为DNA洗脱液,10mM Tris(pH 8.0)。
DNA吸附柱:硅胶柱
按以下程序提取微生物基因组DNA:
1.取1g红树林土壤加入1ml试剂A,采用牙签充分捣碎,悬浮,并振荡2min(手动振荡)。
2.9000转/分离心6min,取沉淀,加入1ml试剂B,采用牙签充分捣碎,悬浮后,-20℃放置10min,期间振荡3次。
3.9000转/分离心6min,取沉淀。加入1ml试剂C,5μl试剂D,65℃水浴30min,期间振荡数次(保证足够分散)。
4.12000转/分6min,取上清,逐滴加入试剂E 100μl,加入试剂F 50μl,振荡2min。
5.12000转/分,6min,小心吸取上清,上清移入新的离心管。
6.加入3倍体积的试剂G(约3ml),室温放置10min,期间振荡数次。13000转/分离心10min,小心吸取上清于一支新的离心管。
7.吸取700μl上清移入DNA吸附柱,3000转/分,离心0.5min,弃离心管中液体,重新将DNA吸附柱放置在离心管中。
8.重复7中步骤,直至所有上清均离心吸附完毕。
9.在DNA吸附柱中加入试剂H 800μl,6000转/分,离心0.5min。弃滤液,重新将吸附柱放置在离心管中。
10.重复步骤(9)2次。
11.将吸附柱放置在一支新的离心管中,空管8000转/分,离心1min。
12.将吸附柱放置在一支新的离心管中,在吸附柱中加入60μl预热至60℃的试剂K,60℃水浴2min。8000转/分,1min。
13.将洗脱液重新加入到吸附柱中,60℃水浴1min。8000转/分,1min。离心管中收集液体即为土壤微生物DNA溶液,-20℃保存。
实施例2:
按以下配方配制各种试剂:
试剂A:为浸洗液,成分:100mM Tris,80mM EDTA,100mM NaCl,2mM柠檬酸钠,10mM CaCl2,0.4%Tween-80,0.5%甘油(pH8.5)。
试剂B:为预处理液,含70%乙醇。
试剂C:为裂解液,含100mM Tris,100mM EDTA,5%SDS(pH 8.0)。
试剂D:为RNAase A,含量为20mg/ml。
试剂E:为100mM Al2(SO4)3
试剂F:为200g/L CTAB。
试剂G:为DNA联接液,含7M GuSCN,200mM Tris,调整pH至5.8。
试剂H:为DNA洗涤液,50mM Tris(pH 7.5),与无水乙醇3∶7(V/V)混合。
试剂K:为DNA洗脱液,ddH2O。
DNA吸附柱:硅胶柱
按以下程序提取微生物基因组DNA:
1.取1g菜地土壤加入1.5ml试剂A,采用牙签充分捣碎,悬浮,并振荡2min(手动振荡)。
2.9000转/分离心6min,取沉淀,加入1.5ml试剂B,采用牙签充分捣碎,悬浮后,-20℃放置10min,期间振荡3次。
3.9000转/分离心6min,取沉淀。加入1ml试剂C,5μl试剂D,65℃水浴30min,期间振荡数次(保证足够分散)。
4.12000转/分6min,取上清,逐滴加入试剂E 100μl,加入试剂F 50μl,振荡2min
5.12000转/分,6min,小心吸取上清,上清移入新的离心管。
6.加入3倍体积的试剂G(约3ml),室温放置10min,期间振荡数次。13000转/分离心10min,小心吸取上清于一支新的离心管。
7.吸取800μl上清移入DNA吸附柱,4000转/分,离心0.5min,弃离心管中液体,重新将DNA吸附柱放置在离心管中。
8.重复7中步骤,直至所有上清均离心吸附完毕。
9.在DNA吸附柱中加入试剂H 800μl,5000转/分,离心0.5min。弃滤液,重新将吸附柱放置在离心管中。
10.重复步骤(9)2次。
11.将吸附柱放置在一支新的离心管中,空管8000转/分,离心1min。
12.将吸附柱放置在一支新的离心管中,在吸附柱中加入50μl预热至60℃的试剂K,60℃水浴2min。8000转/分,1min。
13.将洗脱液重新加入到吸附柱中,60℃水浴1min。8000转/分,1min。离心管中收集液体即为土壤微生物DNA溶液,-20℃保存。
Claims (3)
1.一种从土壤中提取微生物基因组DNA的试剂盒,其试剂包括:
(1)试剂A:成分50-300mM三羟基甲基氨基甲烷、15-100mM乙二胺四乙酸,100-300mMNaCl,2-10mM柠檬酸钠,10-50mM CaCl2,0.5%吐温-80,0.2-0.5% pH8.5甘油;
(2)试剂B:含60-80%乙醇;
(3)试剂C:含50-200mM三羟基甲基氨基甲烷,50-200mM乙二胺四乙酸,4-8%pH8.0-8.5十二烷基苯磺酸钠;
(4)试剂D:为RNA酶A,含量为5-30mg/ml;
(5)试剂E:为50-150mM Al2(SO4)3;
(6)试剂F:为150-400g/L十六烷基三甲胺;
(7)试剂G:含6-10M GuSCN,100-300mM三羟基甲基氨基甲烷,调整pH至5-6;
(8)试剂H:10-100mM pH 8.0三羟基甲基氨基甲烷,与无水乙醇1∶2-1∶4 V/V混合;
(9)试剂K:5-15mM pH8.0三羟基甲基氨基甲烷或ddH2O。
2.根据权利要求1中所述的试剂盒,其特征是试剂包括:
试剂A,200mM三羟基甲基氨基甲烷,100mM乙二胺四乙酸,100mM NaCl,2mM柠檬酸钠,10mM CaCl2,0.5%吐温-80,0.5%pH8.5的甘油;
试剂B,为70%乙醇;
试剂C,100mM三羟基甲基氨基甲烷,50mM乙二胺四乙酸,8%pH8.0的十二烷基苯磺酸钠;
试剂D,30mg/ml RNA酶A;
试剂E,100mM Al2(SO4)3;
试剂F,200g/L十六烷基三甲胺;
试剂G,7M GuSCN,300mM pH5.8的三羟基甲基氨基甲烷;
试剂H,50mM pH8.0的三羟基甲基氨基甲烷与无水乙醇3∶7混合。
3.一种使用权利要求1或2中所述的试剂盒提取微生物基因组DNA的方法,依次包括以下步骤:
(1)样品浸洗:取土壤0.8-1.5g,加入1-1.5ml试剂A,采用牙签充分捣碎,悬浮并振荡3min(手动振荡),8000-10000转/分,离心5-10min;
(2)样品预处理:取沉淀,加入1-3ml试剂B,采用牙签充分捣碎,悬浮,冰上放置10-30min,8000-12000转/分,离心5-10min;
(3)微生物裂解:弃上清,沉淀中加入试剂C 1-1.5ml,4-8μl试剂D,采用牙签充分捣碎,悬浮,65℃水浴20-30min,期间振摇数次;10000-12000转/分,离心5-10min;
(4)腐殖质去除:取上清逐滴加入试剂E 75-150μl,试剂F25-60μl,加入颠倒混合2min;12000转/分,6min.,小心吸取上清;
(5)DNA联接:上清中加入3-4.5ml试剂G,室温下放置10-30min;
(6)蛋白杂质去除:12000-14000转/分,离心10min,取上清;
(7)DNA吸附:将DNA吸附柱放置在离心管中,上清移入吸附柱,每次600-800μl,3000-6000转/分,离心0.5min;弃离心管中液体,再次加入上清液离心,直至所有上清液离心完毕;倒掉离心管中液体,将DNA吸附柱放置在一支新的离心管中;
(8)DNA洗涤:DNA吸附柱中加入试剂H500-800μl,3000-6000转/分,离心0.5min;弃离心管中液体;重复本步骤中DNA洗涤操作1-2次;将DNA吸附柱重新放入离心管中,空管8000-9000转/分,离心1min;
(9)DNA洗脱:将DNA吸附柱移入一支新的离心管中,DNA吸附柱底部中央加入30-100μl预热至65℃的试剂K,65℃水浴2min,6000-9000转/分,离心1min;重新将离心收集的液体加入到DNA吸附柱底部中央,65℃水浴1min,6000-9000转/分,离心1min;离心管中收集液体即为土壤微生物DNA溶液,-20℃保存。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CNB2006100373500A CN100410377C (zh) | 2006-08-29 | 2006-08-29 | 从土壤中提取微生物基因组dna的试剂盒及方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CNB2006100373500A CN100410377C (zh) | 2006-08-29 | 2006-08-29 | 从土壤中提取微生物基因组dna的试剂盒及方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN1936005A true CN1936005A (zh) | 2007-03-28 |
CN100410377C CN100410377C (zh) | 2008-08-13 |
Family
ID=37953748
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CNB2006100373500A Expired - Fee Related CN100410377C (zh) | 2006-08-29 | 2006-08-29 | 从土壤中提取微生物基因组dna的试剂盒及方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN100410377C (zh) |
Cited By (9)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101532011B (zh) * | 2008-03-10 | 2010-12-08 | 首都师范大学 | 一种快速从同一样品中同时抽提纯化dna/rna的试剂盒以及方法 |
CN101935647A (zh) * | 2010-09-13 | 2011-01-05 | 原平皓(天津)生物技术有限公司 | 一种提取微生物dna的试剂盒及其方法 |
CN101974513A (zh) * | 2010-11-18 | 2011-02-16 | 福建农林大学 | 一种土壤微生物基因组dna和总rna的提取方法 |
CN102418151A (zh) * | 2011-09-19 | 2012-04-18 | 福建农林大学 | 一种土壤微生物cDNA文库的构建方法 |
CN101709298B (zh) * | 2009-12-14 | 2012-05-02 | 上海市农业科学院 | 一种用于评价植物根系微生物群落多样性的土壤dna提取方法 |
CN101372689B (zh) * | 2007-08-22 | 2012-07-04 | 中国科学院沈阳应用生态研究所 | 一种土壤微生物基因组dna提取方法 |
CN104498478A (zh) * | 2014-12-31 | 2015-04-08 | 陕西科技大学 | 一种通过预处理提高粘细菌dna质量的基因组提取方法 |
CN107058296A (zh) * | 2017-05-27 | 2017-08-18 | 山东森芃生物科技有限公司 | 土壤尿液dna提取试剂盒及方法 |
CN112646806A (zh) * | 2021-02-23 | 2021-04-13 | 苏州易迈吉生物医药科技有限公司 | 一种土壤dna快速提取方法及试剂盒 |
Family Cites Families (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP3450367B2 (ja) * | 1993-02-15 | 2003-09-22 | キヤノン株式会社 | Dnaの抽出方法 |
JP3491938B2 (ja) * | 1993-12-13 | 2004-02-03 | キヤノン株式会社 | Dnaの回収方法 |
JP2005073643A (ja) * | 2003-09-02 | 2005-03-24 | Kubota Corp | 微生物由来dnaの抽出方法 |
CN100439509C (zh) * | 2005-06-28 | 2008-12-03 | 国家海洋局第三海洋研究所 | 一种从海洋沉积物中同时提取微生物宏基因组dna和总rna的方法 |
-
2006
- 2006-08-29 CN CNB2006100373500A patent/CN100410377C/zh not_active Expired - Fee Related
Cited By (12)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101372689B (zh) * | 2007-08-22 | 2012-07-04 | 中国科学院沈阳应用生态研究所 | 一种土壤微生物基因组dna提取方法 |
CN101532011B (zh) * | 2008-03-10 | 2010-12-08 | 首都师范大学 | 一种快速从同一样品中同时抽提纯化dna/rna的试剂盒以及方法 |
CN101709298B (zh) * | 2009-12-14 | 2012-05-02 | 上海市农业科学院 | 一种用于评价植物根系微生物群落多样性的土壤dna提取方法 |
CN101935647A (zh) * | 2010-09-13 | 2011-01-05 | 原平皓(天津)生物技术有限公司 | 一种提取微生物dna的试剂盒及其方法 |
CN101935647B (zh) * | 2010-09-13 | 2012-07-25 | 原平皓(天津)生物技术有限公司 | 一种提取微生物dna的试剂盒及其方法 |
CN101974513A (zh) * | 2010-11-18 | 2011-02-16 | 福建农林大学 | 一种土壤微生物基因组dna和总rna的提取方法 |
CN101974513B (zh) * | 2010-11-18 | 2012-05-23 | 福建农林大学 | 一种土壤微生物基因组dna和总rna的提取方法 |
CN102418151A (zh) * | 2011-09-19 | 2012-04-18 | 福建农林大学 | 一种土壤微生物cDNA文库的构建方法 |
CN102418151B (zh) * | 2011-09-19 | 2013-04-17 | 福建农林大学 | 一种土壤微生物cDNA文库的构建方法 |
CN104498478A (zh) * | 2014-12-31 | 2015-04-08 | 陕西科技大学 | 一种通过预处理提高粘细菌dna质量的基因组提取方法 |
CN107058296A (zh) * | 2017-05-27 | 2017-08-18 | 山东森芃生物科技有限公司 | 土壤尿液dna提取试剂盒及方法 |
CN112646806A (zh) * | 2021-02-23 | 2021-04-13 | 苏州易迈吉生物医药科技有限公司 | 一种土壤dna快速提取方法及试剂盒 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN100410377C (zh) | 2008-08-13 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN100410377C (zh) | 从土壤中提取微生物基因组dna的试剂盒及方法 | |
CN100439509C (zh) | 一种从海洋沉积物中同时提取微生物宏基因组dna和总rna的方法 | |
CN112195177B (zh) | 一种核酸提取方法及试剂盒 | |
CN100368566C (zh) | 水生动物粪样细菌dna提取试剂盒及方法 | |
CN101712953B (zh) | 用于评价动物肠道微生物群落多样性的dna提取方法 | |
US20170321209A1 (en) | Method for isolating dna | |
CN101709298B (zh) | 一种用于评价植物根系微生物群落多样性的土壤dna提取方法 | |
CN101514339B (zh) | 一种直接用于解析微生物群落结构的土壤dna提取方法 | |
CN101845436B (zh) | 一种同时提取堆肥中总dna和rna的方法 | |
CN102031252A (zh) | 一种快速提取土壤总dna的方法 | |
CN108949751A (zh) | 一种提取富含果胶类多糖植物dna的试剂盒及方法 | |
CN101935643B (zh) | 刺参肠道内容物及环境底泥中生物总dna的高效提取方法 | |
CN101717771B (zh) | 用于评价植物根系微生物群落多样性的土壤dna间接提取方法 | |
CN103789300B (zh) | 一种环氧丙烷皂化废水活性污泥宏基因组dna的提取方法 | |
CN101748118A (zh) | 一种对虾肠道微生物dna的提取方法 | |
CN103820434A (zh) | 一种真菌菌丝总dna的提取方法 | |
CN103215252B (zh) | 一种复合污染河流底泥微生物总dna提取的前处理方法 | |
CN106754895A (zh) | 提取原油总脱氧核糖核酸的方法及试剂盒 | |
CN105002165A (zh) | 通过预处理提高大曲高粱酒醅总dna提取质量的方法 | |
CN112646806A (zh) | 一种土壤dna快速提取方法及试剂盒 | |
CN102260666A (zh) | 一种池塘底泥样品高纯度总dna的提取方法 | |
CN113322303A (zh) | 一种石蜡切片样本核酸提取液及提取方法 | |
CN118109459B (zh) | 一种无需蛋白酶k处理的磁珠法提取RNA的试剂盒及提取方法 | |
CN116463334A (zh) | 一种提取粪便微生物rna的试剂盒及其应用 | |
CN103695414B (zh) | 一种高效提取厌氧颗粒污泥微生物总rna的方法 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C14 | Grant of patent or utility model | ||
GR01 | Patent grant | ||
CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee |
Granted publication date: 20080813 Termination date: 20180829 |
|
CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee |