CN1879959A - 一种核壳结构的手性配体交换色谱固定相及其制备方法 - Google Patents

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CN1879959A CN 200610020837 CN200610020837A CN1879959A CN 1879959 A CN1879959 A CN 1879959A CN 200610020837 CN200610020837 CN 200610020837 CN 200610020837 A CN200610020837 A CN 200610020837A CN 1879959 A CN1879959 A CN 1879959A
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马言顺
龙远德
黄天宝
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Abstract

本发明是涉及一种具有无机-有机核壳结构的手性配体交换色谱固定相及其制备方法,用于拆分手性化合物,特别是拆分DL-氨基酸和DL-羟基酸对映体,属于分析化学领域。在改性无机微粒表面上,通过表面接枝聚合功能高分子单体,合成具有核壳结构的微粒,再采用手性选择子化学修饰的方法,制备手性配体交换色谱固定相。本发明的制备方法简单,用于拆分DL-氨基酸或DL-羟基酸对映体,具有对映体选择性高、拆分速度快、柱容量大、使用寿命长等特点。摘要附图为DL-His(组氨酸)在固定相CS-LEP I上的拆分色谱图。

Description

一种核壳结构的手性配体交换色谱固定相及其制备方法
技术领域
本发明涉及一种具有无机-有机核壳结构的手性配体交换色谱固定相及其制备方法,该固定相用于高效液相色谱拆分手性化合物,特别是拆分DL-氨基酸和DL-羟基酸对映体,属于分析化学领域。
背景技术
DL-氨基酸和DL-羟基酸对映体在手性固定相上的色谱拆分,可采用气相色谱和液相色谱方法,但通常需要柱前样品衍生化,衍生程序费时而麻烦,不仅需要衍生试剂,而且有可能发生消旋,影响分析结果。上世纪七十年代发展起来的手性配体交换色谱法,是拆分手性化合物,特别是氨基酸和羟基酸对映体的一种有效方法,其选择性高,不需要进行柱前衍生化程序。
将光活性氨基酸或其衍生物手性选择子,或者作为流动相添加剂,或者用于制备涂渍或键合固定相,是实现手性配体交换色谱拆分对映体的常用途径。Hare等(Science,1979,204:1226)将光活性的脯氨酸与铜离子加至色谱洗脱剂中,在十八烷基键合相上拆分了α-甲基鸟氨酸等对映体。但由于需要添加手性拆分剂,费用高,而且可拆分的范围窄,应用受限。Davankov等(Chromatographia,1980,13:677)分别采用长链烷基取代的光活性脯氨酸和羟脯氨酸作为手性选择子,涂载于十八烷基键合相上,拆分了DL-氨基酸等对映体。王群标等(中国专利ZL 99117305.8)合成了2-(2-羟基-3-烷氧基)丙基-(S)-1,2,3,4-四氢异喹啉-3-羧酸手性选择子,再将其涂渍于反相色谱键合固定相上,制备了两种涂渍手性配体交换色谱固定相,实现了对DL-氨基酸的拆分。Oi等(J.chromatogr.,1992,592:291)用D-青霉胺衍生物为手性选择子,制备了涂渍手性配体交换固定相,拆分了氨基酸、羟基酸,氨基醇对映体。由于涂渍型固定相上的手性配体的流失,稳定性较差,而且难于用作制备性的分离。将手性选择子L-脯氨酸(吴帮贵等,分析化学,1991,19:291)、L-异亮氨酸(黄晓佳等,色谱,2003,21:230)与环氧化的硅胶反应,制备手性配体交换键合固定相,完成了DL-氨基酸的色谱拆分。但由于色谱过程中传质缓慢,这类键合固定相柱效较低,而且柱容量也不高,难以用作制备性的拆分。如何克服这些缺点是配体交换色谱研究的一个重要内容。何炳林等(科学通报,1989,34:1391)将硅胶表面上吸附的功能单体聚合后,再进一步手性功能化制备了具有核壳结构的手性配体交换固定相,拆分了多种外消旋氨基酸。
发明内容
本发明是涉及一种具有无机-有机核壳结构的手性配体交换色谱固定相及其制备方法,可用于直接拆分DL-氨基酸和DL-羟基酸对映体,而不需要柱前衍生化程序。本发明所述的手性固定相以经活化的无机微粒为核,以手性选择子化学修饰的高分子长链为壳,兼顾了硅胶固定相的优良色谱性能和有机聚合物固定相柱容量大和pH范围宽的特点,其制备方法简单,拆分DL-氨基酸和DL-羟基酸对映体的选择性高、拆分速度快、柱容量大、使用寿命长。
本发明采用表面聚合方法,在改性无机微粒上,接枝聚合,再进行手性化学修饰,制备具有核壳结构的手性配体交换色谱固定相
本发明固定相的制备方法如下:首先采用硅烷试剂改性处理无机微粒,再应用接枝聚合方法,在微粒表面聚合功能单体,制备具有核壳结构的微粒,最后用D-或L-氨基酸手性选择子进行化学修饰,得到本发明所述的手性配体交换色谱固定相。
本发明所述的固定相的制备路线如下:
式中AIBN为偶氮二异丁腈,GMA为丙烯酸缩水甘油酯,L-AA为L-氨基酸手性选择子。
实施步骤:
1、在甲苯中,加入硅胶和乙烯基硅烷试剂,在50~110℃反应2~48h,然后抽滤除去溶剂及未反应的硅烷试剂,所得固体依次以甲苯、甲醇、乙醚洗涤,干燥后得改性硅胶。
2、将改性硅胶加入甲苯溶剂中,再加入引发剂和功能单体,在40~110℃反应2~48h,然后抽滤,所得固体依次用甲苯、甲醇洗涤,干燥后得具有核壳结构的硅胶。
3、在甲醇溶剂中,加入L-氨基酸(或D-氨基酸)手性选择子和核壳硅胶,在20~60℃反应2~20h,然后抽滤,所得固体依次以甲醇、甲醇-水(v/v,50/50)、水洗涤,干燥后得本发明所述的具有核壳结构的手性配体交换色谱固定相CS-LEP。将色谱填料填充于色谱柱后,用50~100倍柱体积的2mmol/L Cu(Ac)2溶液平衡色谱柱后,用于氨基酸和羟基酸对映体的拆分。
附图说明
图1、图2和图3分别为DL-Pro(脯氨酸)、DL-Ser(丝氨酸)、DL-Thr(苏氨酸)在核壳型固定相CS-LEP I上的色谱拆分图。色谱条件:流动相为0.5mmol/L Cu(Ac)2水溶液,流速1.0ml/min,柱温50℃,检测波长为254nm。
图4、图5和图6分别为DL-Mal(苹果酸)、DL-Mda(扁桃酸)、DL-His(组氨酸)在CS-LEP I上的色谱拆分图。色谱条件:流动相为0.4mmol/L Cu(Ac)2-0.1mol/L(NaAc-HoAc)(pH 4.6)水溶液,流速1.0ml/min,柱温50℃,检测波长为254nm。
图7为DL-Pro在CS-LEP II上的色谱拆分图。色谱条件:流动相为0.4mmol/L Cu(Ac)2水溶液,流速1.0ml/min,柱温50℃,检测波长为254nm。
图8为DL-His在CS-LEP II上的色谱拆分图。色谱条件:流动相为0.4mmol/LCu(Ac)2-0.1mol/L(NaAc-HoAc)(pH 4.6)水溶液,流速1.0ml/min,柱温50℃,检测波长为254nm。
具体实施方式
实施例1
(1)在150mL无水甲苯中,加入5mL乙烯基三甲氧基硅烷和5g硅胶(5μm,无定形),在回流温度下反应12h后,抽滤除去甲苯及未反应的乙烯基三甲氧基硅烷,所得固体依次以甲苯、甲醇洗涤,干燥后得改性硅胶。
(2)在100mL无水甲苯中,加入3g改性硅胶、3mL丙烯酸缩水甘油酯和60mg偶氮二异丁腈,于80℃反应24h后,抽滤,干燥后所得固体以甲苯、甲醇洗涤得核-壳结构硅胶1。
(3)在100mL无水甲醇中,加入2g核壳结构硅胶1、5mmol L-脯氨酸钠,于40℃反应24h后,抽滤所得固体依次以甲醇、甲醇-水(v/v,5/5)、水洗涤,干燥后得CS-LEP I色谱固定相。元素分析:C 14.88%,H 2.32%,N 0.44%。
(4)采用匀浆法,在300MPa压力下,将2g CS-LEP1固定相填充于不锈钢色谱柱(150×3.9mm I.D.)中,再用60倍柱体积的2mmol/L Cu(Ac)2溶液平衡色谱柱后,用于对映体的色谱拆分。
实施例2
(1)按实施例1的步骤(1)制备改性硅胶。
(2)在100mL无水甲苯中,加入3g改性硅胶、1mL丙烯酸缩水甘油酯和20mg(AIBN),于80℃反应2h后,再加入3mL丙烯酸缩水甘油酯和60mg偶氮二异丁腈,于80℃继续反应24h后抽滤,所得固体以甲苯、甲醇洗涤,得核壳结构硅胶2。
(3)用核壳结构硅胶2代替核-壳结构硅胶1,按实施例1的步骤(3)进行,得本发明所述的CS-LEP II手性固定相。元素分析:C 15.28%,H 2.30%,N 0.44%。
(4)用CS-LEP II固定相代替CS-LEP I相,按实施例1的步骤(4),制得色谱柱和平衡色谱柱,然后用于对映体的拆分。

Claims (5)

1、一种具有无机-有机核壳结构的手性配体交换色谱固定相,用于拆分手性化合物,特别是拆分DL-氨基酸和DL-羟基酸对映体,其特征在于:在改性无机微粒表面上,通过表面接枝聚合功能高分子单体,合成具有核壳结构的微粒,再采用手性选择子化学修饰的方法,制备手性配体交换色谱固定相。
2、权利要求1所述的手性选择子是D-或L-氨基酸。
3、权利要求1所述的功能性高分子单体是丙烯酸缩水甘油酯、甲基丙烯酸缩水甘油酯。
4、权利要求1所述的改性无机微粒是硅烷试剂改性处理的硅胶、氧化锆、氧化钛或氧化铝,微粒粒径为3~30微米。
5、权利要求4所述的硅烷试剂可用下式表示:
式中R1为甲氧基或乙氧基,R2为甲氧基、乙氧基、甲基、乙基,R3为乙烯基、3-丙烯酰氧丙基,3-甲基丙烯酰氧丙基。
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