CN117965555A - 基因编辑家蚕BmRPA2在制备丝胶茧品系中的应用 - Google Patents

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蒋亮
鞠聂旺
夏庆友
郭慧珍
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Southwest University
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Abstract

本发明公开了基因编辑家蚕BmRPA2在制备丝胶茧品系中的应用,通过利用CRISPR/Cas9技术,在家蚕后部丝腺对BmRPA2进行基因编辑,制备只生产丝胶的家蚕品系,可以简化生产工序、降低成本、显著提高生产效率,而且能确保产品质量的稳定性。后续在该品系中增量表达高附加值外源蛋白,也可极大简化纯化过程,这一突破将有助于推动丝胶蛋白在化妆品、生物、医学等多个领域的应用。

Description

基因编辑家蚕BmRPA2在制备丝胶茧品系中的应用
技术领域
本发明涉及生物技术领域,具体涉及基因编辑家蚕BmRPA2在制备丝胶茧品系中的应用。
背景技术
蚕茧主要由丝素和丝胶构成,丝胶占比约20%-30%,丝素占比约70%-80%。丝胶作为一种天然材料,具有优良的性能,如生物相容性、可降解性和独特的生物学特性。通过在家蚕丝胶中特异性表达高附加值的外援蛋白,应用于组织修复、再生医学、手术粘合等多个生物医学领域。
蚕丝蛋白主要是由内层丝素蛋白和外层丝胶蛋白构成。为了去除丝素获取丝胶蛋白,缫丝行业的传统做法是,先通过碱法对蚕丝进行脱胶处理,然后通过酸析法回收丝胶。该过程不但程序复杂、对设备的要求高,而且存在回收效率低、回收产物质量差等问题。创制生产丝胶同时不生产丝素(即丝胶茧)的新型家蚕素材,可以有效解决以上问题,将为丝胶蛋白及丝胶中表达外源蛋白的提取和纯化带来革命性变化。复制蛋白A2(RPA2)是RPA的一个重要组成部分,在维持基因组稳定性和细胞正常生理功能中发挥重要作用,我们通过基因编辑技术,靶向RPA2制备生产丝胶茧的家蚕品系,可为开发新型生物医学材料提供理论基础和技术支持。
发明内容
有鉴于此,本发明的目的在于提供一种敲除BmRPA2基因在制备丝胶茧品系中的应用;本发明的目的之二在于提供一种制备丝胶茧品系的方法。
为达到上述目的,本发明提供如下技术方案:
1、敲除BmRPA2基因在制备丝胶茧品系中的应用,所述BmRPA2基因的核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示。
本发明优选的,所述敲除BmRPA2基因的方法是使用CRISPR/Cas9技术。
本发明优选的,所述敲除BmRPA2基因的方法是构建BmRPA2的sgRNA转基因载体,得到的sgRNA品系分别与中部丝腺特异性表达Cas9的家蚕品系MSG-Cas9或后部丝腺特异性表达Cas9品系PSG-Cas9杂交,筛选双光敲除个体。
本发明优选的,所述BmRPA2的sgRNA转基因载体由以下方法制得将SEQ ID NO.2和SEQ ID NO.3所示序列退火后连入sgRNA表达载体。
2、一种制备丝胶茧品系的方法,在家蚕后部丝腺特异编辑BmRPA2基因,获得的家蚕品系为丝胶茧品系。
本发明的有益效果在于:本发明公开了敲除BmRPA2基因在制备丝胶茧品系中的应用,针对传统丝胶生产中的低效、高成本、品质不稳等老大难问题。通过基因编辑BmRPA2,创制只产生丝胶蚕茧的家蚕品系,该蚕茧不需要用繁琐的方法去除丝素蛋白,可以直接用于丝胶蛋白的提取纯化。通过本发明的实施,我们可为丝胶蛋白的提取纯化带来革命性变化,不但可以简化生产工序、降低成本、显著提高生产效率,而且能确保产品质量的稳定性。后续在该品系中增量表达高附加值外源蛋白,也可极大简化纯化过程。这一突破将有助于推动丝胶蛋白在化妆品、生物、医学等多个领域的应用。
附图说明
为了使本发明的目的、技术方案和有益效果更加清楚,本发明提供如下附图进行说明:
图1为sgRNA转基因载体结构示意图(3 ×P3为眼部特异性启动子;EGFP为绿色荧光蛋白;SV40为终止密码子;U6为启动子;RPA2gRNA为设计引物;TTTTT为终止子);
图2为阳性BmRPA2-sgRNA筛选,阳性个体的复眼在荧光显微镜下发出绿光;
图3为BmRPA2M-KO及BmRPA2P-KO品系筛选。
图4为WT与BmRPA2M-KO观察及检测(A:BmRPA2M-KO丝腺敲除形式检测;B:取L5D3的WT与BmRPA2M-KO丝腺进行表型观察;C:WT与BmRPA2M-KO丝腺重量统计;D:WT与BmRPA2M-KO茧形观察及茧层溶解尿素观察;A中蓝色字体序列(GGAGGATGAGGGCTGTACTC)为设计的sg序列,红色字体序列(TGG)为PAM(Protospacer adjacent motif);D中能看见的白色絮状物是蚕茧中未溶解的丝素蛋白,WT的值被设置为100%,BmRPA2M-KO的值以其为标准进行换算。误差棒表示标准偏差,T检验的显著性差异为:ns(P>0.5);***(P<0.001))。
图5为WT与BmRPA2P-KO观察及检测(A:BmRPA2P-KO丝腺敲除形式检测;B:取L5D3的WT与BmRPA2P-KO丝腺进行表型观察;C:WT与BmRPA2P-KO丝腺重量统计;D:WT与BmRPA2P-KO丝蛋白相关基因检测;E:WT与BmRPA2P-KO茧形观察及茧层溶解尿素观察;A中蓝色字体序列(GGAGGATGAGGGCTGTACTC)为设计的sg序列,红色字体序列(TGG)为PAM(Protospaceradjacent motif);E 中能看见的白色絮状物是蚕茧中未溶解的丝素蛋白,WT的值被设置为100%,BmRPA2P-KO的值以其为标准进行换算。误差棒表示标准偏差,T检验的显著性差异为:ns(P>0.5);***(P<0.001))。
具体实施方式
下面结合附图和具体实施例对本发明作进一步说明,以使本领域的技术人员可以更好的理解本发明并能予以实施,但所举实施例不作为对本发明的限定。
实施例1、构建BmRPA2的sgRNA转基因载体
从家蚕基因数据库Silk DB3.0获取BmRPA2的基因序列(SEQ ID NO.1),随后通过CCTOP在线分析网站设计gRNA序列,设计引物:
KO-RPA2-sgF:5’-AAGTGGAGGATGAGGGCTGTACTC-3’(SEQ ID NO.2);
KO-RPA2-sgR:5’-AAACGAGTACAGCCCTCATCCTCC-3’(SEQ ID NO.3)。
将以上两条引物退火后形成双链连入gRNA表达载体(参见SanyuanMa. CRISPR/Cas9 mediated multiplex genome editing and heritablemutagenesis of BmKu70 inBombyx mori.2014),然后将U6-gRNA-TTTTT 替换pBac[U6-gRNA-gLMN, 3xp3-EGFP]载体(参见Yuanyuan Liu.Tissue-specific genome editing of laminA/C in the posteriorsilk glands of Bombyx mori.2017))上的PU6-gLMN-gRNA scaffold-T6获得BmRPA2基因的sgRNA表达载体,命名为
piggyBac[3×p3-EGFP-SV40-hr3-U6-BmRPA2gRNA-TTTTTT]载体(图1)。然后转化Trans1-T1感受态细胞,获得阳性克隆送往上海生工生物技术有限公司测序,测序结果显示成功将gRNA引物连接到酶切载体,得到piggyBac[3×p3-EGFP-SV40-hr3-U6-BmRPA2gRNA-TTTTTT]菌液,提取超纯质粒。
实施例2、sgRNA品系制备
将重组质粒piggyBac[3×p3-EGFP-SV40-hr3-U6-BmRPA2gRNA-TTTTTT]与辅助质粒A3H按照1:1混合,胚胎显微注射D9L蚕卵,无毒胶水封口,放置在25℃培养箱中孵育;
将G0代蚁蚕饲养至成虫,自交得到G1代蚕卵,25℃催青,六天后,在荧光显微镜下筛选眼部发绿光的阳性个体,命名为BmRPA2-sgRNA(图2)。
提取BmRPA2-sgRNA基因组,使用引物:U6-R:5’-AGCTGTCCAAGGAATGCG-3’(SEQ IDNO.4);gRNA-F:5’-CGACTCGGTGCCACTTT-3’(SEQ ID NO.5)进行扩增,PCR反应条件为:98℃预变性5分钟,然后98℃变性5秒、53℃退火10秒、延伸30秒,共30个循环,最后延伸10分钟;PCR产物经琼脂糖凝胶电泳鉴定并回收,然后与pMD19-T载体连接,然后转化Trans1-T1感受态细胞,获得阳性克隆后送往上海生工生物技术有限公司测序,测序结果表明转基因家蚕中成功插入sgRNA表达片段。
实施例3、BmRPA2M-KO及BmRPA2P-KO品系制备
中部丝腺特异性表达Cas9的家蚕品系MSG-Cas9(参考王伟博士毕业论文《let-7microRNA调控家蚕丝腺发育的分子机制》,2019)和后部丝腺特异性表达Cas9品系PSG-Cas9(参考王伟博士毕业论文《let-7 microRNA调控家蚕丝腺发育的分子机制》,2019)都带有红色荧光报告基因,将BmRPA2-sgRNA蛾子分别与它们杂交,获得2种F1代蚕卵,25℃避光催青。
在荧光显微镜下筛选能够同时发出绿光和红色的双个体。BmRPA2-sgRNA与MSG-Cas9杂交F1双光个体命名为BmRPA2M-KO;BmRPA2-sgRNA与PSG-Cas9杂交F1双光个体命名为BmRPA2P-KO(图3)。
实施例4、BmRPA2M-KO及BmRPA2P-KO敲除形式检测
将BmRPA2M-KO和BmRPA2P-KO幼虫用桑叶饲养,五龄时解剖观察,收集丝腺材料;
提取BmRPA2M-KO和BmRPA2P-KO丝腺基因组,使用引物KO-JC-F:TAGTGGCTTACTCGCTTGA(SEQ ID NO.6),KO-JC-R:TGTCCCTTTATTCGTTTTC(SEQ ID NO.7)进行扩增,PCR反应条件为:98℃预变性5分钟,然后98℃变性10秒、51℃退火15秒、延伸30秒,共30个循环,最后延伸10分钟;PCR产物经琼脂糖凝胶电泳鉴定并回收,然后与pMD19-T载体连接,然后转化Trans1-T1感受态细胞,获得阳性克隆后送往上海生工生物技术有限公司测序,测序结果与家蚕数据库中序列比对,结果如图4中A和图5中A所示。结果显示,BmRPA2M-KO和BmRPA2P-KO中RPA2基因均发生碱基缺失。
实施例5、BmRPA2M-KO及BmRPA2P-KO丝腺和蚕茧观察检测
(1)将BmRPA2M-KO和BmRPA2P-KO幼虫用桑叶饲养,五龄时解剖观察,相机拍照记录;结果如图4中B和图5中B所示。结果显示,BmRPA2M-KO组和BmRPA2P-KO的丝腺变小。
解剖称量家蚕丝腺重量,结果显示如图4中C和图5中C所示,结果显示BmRPA2M-KO和BmRPA2P-KO的家蚕丝腺重量显著减轻。
饲养幼虫至吐丝结茧,茧形观察,结果如图4中D所示和图5中E所示。结果显示,BmRPA2M-KO和BmRPA2P-KO的茧量变小。
取BmRPA2P-KO检测后部丝腺特异表达基因FibH、FibL、P25的含量,结果如图5中D所示。结果显示,FibH、FibL、P25的表达量均极其显著降低,含量不到对照的1%,表明敲除BmRPA2可以阻断丝素相关基因的表达。
实施例6、BmRPA2M-KO及BmRPA2P-KO蚕茧丝胶丝素含量检测
将BmRPA2M-KO、BmRPA2P-KO及WT的蚕茧烘干剪碎,分别称取相同重量的蚕茧,使用8M尿素加热溶解,充分溶解后,反复清洗残留物质,放65℃干燥箱烘干;称量剩余物质重量,计算丝胶丝素占比。结果如图4中D和图5中所示,结果显示BmRPA2M-KO用尿素溶解后只有少部分剩余物质,其丝胶比例降低;而BmRPA2P-KO用尿素溶解后变得透明,未见剩余物质,统计结果显示丝素比例极限著下降,仅为对照的2%左右,因此可以获得只产丝胶的家蚕品系。
以上所述实施例仅是为充分说明本发明而所举的较佳的实施例,本发明的保护范围不限于此。本技术领域的技术人员在本发明基础上所作的等同替代或变换,均在本发明的保护范围之内。本发明的保护范围以权利要求书为准。

Claims (5)

1.基因编辑家蚕BmRPA2在制备丝胶茧品系中的应用,其特征在于:所述BmRPA2基因的核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示。
2.根据权利要求1所述的应用,其特征在于:所述对BmRPA2基因编辑的方法是使用CRISPR/Cas9技术。
3.根据权利要求1所述的应用,其特征在于:所述对BmRPA2基因编辑的方法是构建BmRPA2的sgRNA转基因载体,得到的sgRNA品系与后部丝腺特异性表达Cas9品系PSG-Cas9杂交,筛选双光敲除个体。
4.根据权利要求1所述的应用,其特征在于:所述BmRPA2的sgRNA转基因载体由以下方法制得将SEQ ID NO.2和SEQ ID NO.3所示序列退火后连入sgRNA表达载体。
5.一种制备丝胶茧品系的方法,其特征在于:在家蚕后部丝腺特异编辑BmRPA2基因,获得的家蚕品系为丝胶茧品系。
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