CN116121124A - 一株耐高碱、高絮凝活性的坚强芽孢杆菌及其应用 - Google Patents

一株耐高碱、高絮凝活性的坚强芽孢杆菌及其应用 Download PDF

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赵志刚
张瑞
徐伟
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Abstract

一株耐高碱、高絮凝活性的坚强芽孢杆菌及其应用,涉及微生物领域,尤其涉及一株坚强芽孢杆菌及其应用。本发明提供一株耐高碱、高絮凝活性的坚强芽孢杆菌及其应用,为利用生物絮团技术降低盐碱水碱度提供重要的使用价值。该菌株为坚强芽孢杆菌CT‑SL8‑3,保藏在中国典型培养物保藏中心,保藏地址为武汉市武汉大学,保藏日期为2021年11月9日,保藏号为CCTCC NO:M 20211318。该菌株能够调节养殖池塘水质、促进生物絮团形成,降低水体碳酸盐碱度、提高碳酸盐型盐碱水池塘养殖产量。本发明用于盐碱水体养殖领域。

Description

一株耐高碱、高絮凝活性的坚强芽孢杆菌及其应用
技术领域
本发明涉及微生物领域,尤其涉及一株坚强芽孢杆菌及其应用。
背景技术
我国盐碱水土资源较多,由于其中含盐量高、pH高等特点,大部分处于闲置状态。根据分布区域和盐离子种类的不同,主要分为东北地区的碳酸盐型、西北地区的硫酸盐性和华东地区的氯化物型。盐碱水土的改良方法很多,可以通过物理、化学等方法去除过高的无机盐,但相对成本较高。
利用生物方法进行改良相对成本较低。近年来,通过“以渔降碱”等方式降低盐碱水土碱度,使不能利用的盐碱水土资源重新开发利用,取得了较好的示范效果。“以渔降碱”模式下,主要是通过养殖耐盐碱鱼类,利用生物絮团技术降低水体中的碱度,同时将低碱度的水体继续冲洗土壤,循环反复,逐渐使不能利用的盐碱地可以种植农作物。生物絮团技术的核心是微生物在发挥作用,能够找到适用于盐碱水土、高效絮凝活性的菌株,对于利用生物絮团技术降低盐碱水碱度,具有重要意义。
发明内容
本发明的目的是提供一株耐高碱、高絮凝活性的坚强芽孢杆菌及其应用,为利用生物絮团技术降低盐碱水碱度提供重要的使用价值。
本发明提供一株坚强芽孢杆菌,它为坚强芽孢杆菌(Bacillus firmus)CT-SL8-3,保藏在中国典型培养物保藏中心,保藏地址为武汉市武汉大学,保藏日期为2021年10月25日,保藏号为CCTCC NO:M 20211318。
本发明坚强芽孢杆菌CT-SL8-3为革兰氏阳性菌,杆状,菌体大小为(0.1~0.4)μm×(1.1~1.6)μm;菌落形态呈圆形,白色,直径为1.5~2.8mm,表面光滑,有凸起,边缘整齐,菌落不黏稠;液体培养时培养液呈棕色,浑浊。
将本发明的坚强芽孢杆菌CT-SL8-3的16S rDNA测序结果提交至NCBI数据库,利用BLAST分析并进行比对,与坚强芽孢杆菌KMP1(Bacillus firmus KMP1)进化地位最接近,同源性达到100%。综合形态学观察结果,确定菌株CT-SL8-3是芽孢杆菌属(Bacillus)中的坚强芽孢杆菌(Bacillus firmus)。
本发明提供坚强芽孢杆菌CT-SL8-3在调节养殖池塘水质中的应用。
进一步的,所述调节养殖池塘水质具体为促进生物絮团形成。
进一步的,所述调节养殖池塘水质具体为降低水体碳酸盐碱度。
本发明还提供坚强芽孢杆菌CT-SL8-3在提高碳酸盐型盐碱水池塘养殖产量中的应用。
本发明的有益效果:
本发明在碳酸盐型水中分离得到一株坚强芽孢杆菌CT-SL8-3,该菌株能够耐高盐碱,具有较高的絮凝活性,通过细菌絮凝率测定方法,确定该菌株的絮凝率为75.1%。
利用该菌株适宜东北地区碳酸盐型环境生长及絮凝特性,将坚强芽孢杆菌CT-SL8-3应用到东北地区碳酸盐型盐碱水池塘养殖中,起到调节养殖池塘水质、促进生物絮团形成,降低水体碳酸盐碱度、提高养殖产量的效果。
附图说明
图1为坚强芽孢杆菌CT-SL8-3的菌落形态图;
图2为坚强芽孢杆菌CT-SL8-3的系统发育树。
具体实施方式
下面对本发明的实施例做详细说明,以下实施例在以本发明技术方案为前提下进行实施,给出了详细的实施方案和具体的操作过程,但本发明的保护范围不限于下述的实施例。
实施例1:
本实施例的坚强芽孢杆菌为坚强芽孢杆菌(Bacillus firmus)CT-SL8-3,保藏在中国典型培养物保藏中心,保藏地址为武汉市武汉大学,保藏日期为2021年10月25日,保藏号为CCTCC NO:M 20211318。
本实施例坚强芽孢杆菌CT-SL8-3的获取方法为:
以东北地区(黑龙江省大庆市)典型碳酸盐型水为菌种来源,通过活化培养基在28℃的生化培养箱中富集培养3天获得富集培养液;活化培养基配方:胰蛋白胨10g,酵母粉5g,NaCl 10g,琼脂15g,加水定容至1 000mL,用NaOH调pH至8.5,灭菌备用。
将富集培养液接种到耐盐碱筛选培养基中,通过调节pH值(7.5、8.0、8.5、9.0、9.5),让富集培养液在不同pH的筛选培养基中生长;筛选培养基采用Sehgal-Gibbons筛选培养基(g/L):酪氨酸7.5,酵母提取物10.0,柠檬酸三钠3.0,氯化钾2.0,氯化钠3.0,MgSO4·7H2O 20.0,FeSO4·7H2O 0.05,固体培养基另加琼脂15-20,pH为8.5(灭菌之前pH先用1%NaOH调到7.0-7.2,灭菌后再用5%Na2CO3调pH到8.5,实验用水为大庆连环湖水源)。
将筛选培养基中的发酵液,利用平板法进行逐级稀释,取0.1毫升稀释液于28℃的生化培养箱中培养1周,获得单菌落;
挑取具有明显生长优势的单菌落(10种不同形态)作为候选菌株,此时的菌株具有耐高碱特性;
将候选菌落继续利用活化培养基进行发酵,选取发酵液,对其絮凝率进行测定,选取絮凝率最高的CT-SL8-3菌株作为候选菌株,该候选菌株同时具有高絮凝活性。
通过细菌絮凝率测定方法,确定该菌株同时具有较高的絮凝活性,絮凝率为75.1%。
实施例2:菌株CT-SL8-3的鉴定
菌株CT-SL8-3为革兰氏阳性菌,杆状,菌体大小为(0.1~0.4)μm×(1.1~1.6)μm;菌落形态呈圆形,白色,直径为1.5~2.8mm,表面光滑,有凸起,边缘整齐,菌落不黏稠;液体培养时培养液呈棕色,浑浊。菌株CT-SL8-3的菌落形态如图1所示。
利用Biolog GEN III MicroStation System(表1)和16S rDNA分子生物学方法(菌株CT-SL8-3的16S rDNA如序列表中SEQ ID NO:1所示),对菌株CT-SL8-3进行了菌种鉴定。通过系统进化树分析发现菌株CT-SL8-3与坚强芽孢杆菌KMP1(Bacillus firmus KMP1)进化地位最接近,同源性达到100%。菌株CT-SL8-3的系统发育树如图2所示。同时结合Biolog GEN III MicroStation System对菌株的碳源代谢特征分析,得出菌株CT-SL8-3是芽孢杆菌属(Bacillus)中的坚强芽孢杆菌(Bacillus firmus)。
表1坚强芽孢杆菌CT-SL8-3菌株基于GN III微平板的碳源代谢特征
 
注:﹢阳性;﹣阴性;/中性;//弱阳性;///弱阴性。
实施例3:坚强芽孢杆菌CT-SL8-3的絮凝效果验证
通过一个养殖周期,试验结果表明,与对照组相比,添加坚强芽孢杆菌CT-SL8-3能够调节养殖池塘水质、促进生物絮团形成,降低水体碳酸盐碱度,提高养殖产量。
1.试验技术方案
试验选取1亩盐碱水养殖池塘6口,饲养大鳞鲃鱼种进行成鱼养殖。试验分2组,每组3个平行,坚强芽孢杆菌组为添加本发明的坚强芽孢杆菌CT-SL8-3菌株发酵液,对照组不添加。
将坚强芽孢杆菌CT-SL8-3培养成浓度为109CFU/ml的发酵液,按照每亩池塘该发酵液350ml,碳源10kg(糖蜜:玉米淀粉:葡萄糖=8:1:1)的比例,将以上物质混合,用养殖池塘水溶解均匀泼洒到盐碱水养殖池塘水体中,养殖种类为耐盐碱鱼类-大鳞鲃;泼洒时间为养殖开始前10天和开始后10天,各泼洒一次。养殖正式开始后,每隔15天泼洒(菌株发酵液+碳源)一次。
本试验从2021年5月中旬开始,9月中旬结束。具体的试验分组及收获情况、水质指标情况见下表1-3。
表1各处理组大鳞鲃的放养及收获情况
注:每个值代表平均值±S.E.(n=3),同一行不同上标字母的值有显著差异(P<0.05)。
表2各处理组的产量及饲料系数
表3各处理组的水体碱度变化情况
2.试验结论
通过一个大鳞鲃养殖周期,结果表明与对照组相比,大鳞鲃的体重、特定生长率、增重率、成活率都显著提高,总产量提高,总饲料系数降低,水体碳酸盐碱度降低。
通过添加坚强芽孢杆菌菌株CT-SL8-3能够调节养殖池塘水质、促进生物絮团形成,降低水体碳酸盐碱度19.57%,提高养殖产量55.22%。

Claims (5)

1.一株耐高碱、高絮凝活性的坚强芽孢杆菌,其特征在于该菌株为坚强芽孢杆菌(Bacillus firmus)CT-SL8-3,保藏在中国典型培养物保藏中心,保藏地址为武汉市武汉大学,保藏日期为2021年11月9日,保藏号为CCTCCNO:M 20211318。
2.如权利要求1所述的坚强芽孢杆菌CT-SL8-3在调节养殖池塘水质中的应用。
3.根据权利要求2所述的应用,其特征在于所述调节养殖池塘水质具体为促进生物絮团形成。
4.根据权利要求2所述的应用,其特征在于所述调节养殖池塘水质具体为降低水体碳酸盐碱度。
5.如权利要求1所述的坚强芽孢杆菌CT-SL8-3在提高碳酸盐型盐碱水池塘养殖产量中的应用。
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Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
ZHANG, RUI等: "Screening and characteristics of ammonia nitrogen removal bacteria under alkaline environments", FRONTIERS IN MICROBIOLOGY, vol. 13, pages 1 - 11 *

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