CN115197908A - 一种自然杀伤细胞来源外泌体的提取、修饰方法及其应用 - Google Patents

一种自然杀伤细胞来源外泌体的提取、修饰方法及其应用 Download PDF

Info

Publication number
CN115197908A
CN115197908A CN202210740612.9A CN202210740612A CN115197908A CN 115197908 A CN115197908 A CN 115197908A CN 202210740612 A CN202210740612 A CN 202210740612A CN 115197908 A CN115197908 A CN 115197908A
Authority
CN
China
Prior art keywords
cell
supernatant
cells
exosomes
exosome
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
CN202210740612.9A
Other languages
English (en)
Inventor
崔大祥
刘彬
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Shanghai Jiaotong University
Original Assignee
Shanghai Jiaotong University
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Shanghai Jiaotong University filed Critical Shanghai Jiaotong University
Priority to CN202210740612.9A priority Critical patent/CN115197908A/zh
Publication of CN115197908A publication Critical patent/CN115197908A/zh
Pending legal-status Critical Current

Links

Images

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602Vertebrate cells
    • C12N5/0634Cells from the blood or the immune system
    • C12N5/0646Natural killers cells [NK], NKT cells
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K35/00Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
    • A61K35/12Materials from mammals; Compositions comprising non-specified tissues or cells; Compositions comprising non-embryonic stem cells; Genetically modified cells
    • A61K35/14Blood; Artificial blood
    • A61K35/17Lymphocytes; B-cells; T-cells; Natural killer cells; Interferon-activated or cytokine-activated lymphocytes
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P35/00Antineoplastic agents
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/11DNA or RNA fragments; Modified forms thereof; Non-coding nucleic acids having a biological activity
    • C12N15/115Aptamers, i.e. nucleic acids binding a target molecule specifically and with high affinity without hybridising therewith ; Nucleic acids binding to non-nucleic acids, e.g. aptamers
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2310/00Structure or type of the nucleic acid
    • C12N2310/10Type of nucleic acid
    • C12N2310/16Aptamers
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/20Cytokines; Chemokines
    • C12N2501/23Interleukins [IL]
    • C12N2501/2302Interleukin-2 (IL-2)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/20Cytokines; Chemokines
    • C12N2501/23Interleukins [IL]
    • C12N2501/2321Interleukin-21 (IL-21)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/50Cell markers; Cell surface determinants
    • C12N2501/599Cell markers; Cell surface determinants with CD designations not provided for elsewhere
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2502/00Coculture with; Conditioned medium produced by
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2510/00Genetically modified cells

Abstract

本发明涉及一种自然杀伤细胞来源外泌体的提取、修饰方法及其应用,用含有自体血浆和IL‑2的MedGroTM免疫细胞培养基重悬PBMC,调整细胞密度为1‑2×106mL‑1,并加入相同数量的滋养层细胞,于CO2湿润培养箱中进行NK细胞的诱导培养,从培养后的上清液中提取外泌体。使用靶向CXCR4的RNA配体/吲哚菁绿对提取的NK外泌体进行工程化修饰。与现有技术相比,本发明克服了现有细胞来源外泌体制备技术存在的纯度低,产量低等不足,所提取的外泌体经工程化修饰后,解决了当前细胞来源外泌体靶向效率低、治疗效果差等问题。

Description

一种自然杀伤细胞来源外泌体的提取、修饰方法及其应用
技术领域
本发明涉及生物技术领域,具体涉及一种自然杀伤细胞来源外泌体的提取、修饰方法及其应用。
背景技术
外泌体(exosome)是由很多类型细胞分泌的30-150nm的“杯托状”磷脂双分子层囊泡,密度为1.13-1.19g/mL,携带多种蛋白质、脂质和核酸,功能复杂,参与免疫调节、调控细胞外基质重构、激活细胞的信号通路等。
在癌症研究中,以前的研究多数是探索癌细胞释放的外泌体,但很少了解免疫细胞释放的外泌体的功能。自然杀伤(NK)细胞对转移性及血液恶性肿瘤具有天然快速免疫作用,NK细胞的抗肿瘤特性已经在临床实验阶段。然而活细胞治疗会带来固有的风险:如微血管阻塞导致肺栓塞和死亡、移植细胞转化为不良的细胞类型或癌症、免疫排斥反应、心律失常、骨化和/或钙化等。用exosome替换细胞治疗可以避免这些问题,例如由于exosome的小尺寸可以避免血管闭塞和不良细胞类型的产生,目前有研究表明NK细胞外泌体对肿瘤细胞具有细胞毒性,但是对正常细胞无影响,值得进一步研究将其发展为癌症的治疗手段。
若要将NK细胞外泌体开发应用,NK细胞外泌体的高纯度大规模生产是不可回避的一环。虽然目前有报道大规模NK细胞外泌体的提纯方法(如:Jong A Y,et al.[J].Journalof Extracellular Vesicles,2017,6(1):1294368)。目前NK细胞外泌体的纯度、产量、治疗效果等问题并没有得到很好的解决,缺少一种能提取高纯度NK细胞外泌体并提高其靶向能力与治疗能力的稳定方法。
发明内容
本发明的目的是提供一种自然杀伤细胞来源外泌体的提取、修饰方法及其应用。
本发明的目的可以通过以下技术方案来实现:一种自然杀伤细胞来源外泌体的提取方法,用含有自体血浆和IL-2的MedGroTM免疫细胞培养基重悬PBMC,调整细胞密度为1-2×106mL-1,并加入相同数量的滋养层细胞,于CO2湿润培养箱中进行NK细胞的诱导培养,从培养后的上清液中提取外泌体。
优选地,所述的提取外泌体的过程包括:收集培养后的上清液,去除细胞沉淀后离心,留取上清液,弃沉淀;继续用超滤管离心,去除小分子杂质的同时浓缩细胞上清液;将浓缩上清液离心,弃上清液,留住沉淀,用磷酸盐缓冲液重悬后透析即可得到所述的外泌体。
进一步优选地,收集培养后的上清液,去除细胞沉淀后在4℃条件下以9000-12000rpm的转速离心15-100min,留取上清液,弃沉淀;继续用100kDa-150kDa超滤管以3000-4000rpm的速度离心5-30min,去除小分子杂质的同时浓缩细胞上清液,减少接下来的超速离心的工作量及成本;将浓缩上清液在4℃条件下以8000g-100,000g的转速离心60-90min,离心结束后,弃上清液,留住沉淀。
更进一步优选地,去除细胞沉淀后在4℃条件下以10000-12000rpm的转速离心90min。
进一步优选地,用磷酸盐缓冲液重悬沉淀后转移至透析袋中,透析6-8h即可得到大量高纯度的外泌体,损失率极低。
优选地,所述的NK细胞经过12天连续培养后,从培养后的上清液中提取外泌体。
优选地,在第0天,将30-35ml志愿者外周血抗凝稀释,用淋巴细胞分离液通过密度梯度离心分离外周血单个核细胞,获得2-3×107个PBMC,用含有5%自体血浆和IL-2(400UmL-1)的MedGroTM免疫细胞培养基重悬PBMC。
优选地,加入相同数量的滋养层细胞后,将细胞培养瓶放置于CO2湿润培养箱中进行NK细胞的诱导培养,滋养层细胞可分泌活化NK细胞所必须的IL-21和4-1BB因子,每隔1天,添加一定体积的新鲜完全培养基(含自体血浆和IL-2)以确保细胞密度在1-2×106mL-1之间,在第7天,再次加入相同数量的滋养层细胞以进行第二轮的NK细胞活化。在培养的第12天取适量细胞并通过流式细胞仪分析细胞表面标志物情况。
优选地,基于靶向CXCR4的RNA配体,对所述的外泌体进行工程化修饰。
进一步优选地,基于靶向CXCR4的RNA配体,将传统pRNA-3WJ结构扩展为箭头形结构,一侧为CXCR4 aptamer,另一侧为吲哚菁绿(ICG)与胆固醇,得到RNA配体结构,使用该RNA配体结构对提取的外泌体进行工程化修饰。其中,CXCR4 aptamer起到增强靶向的作用,吲哚菁绿起到成像示踪与光动力治疗的作用。CXCR4 aptamer可以用类似的趋化因子受体替换,如CXCR3、CCR2等。吲哚菁绿也可用类似的光动力药物替换,如二氢卟吩(Ce6)等光敏剂。经工程化修饰后的外泌体,可用0.22μm无菌过滤器滤菌后进行后续临床研究使用。
一种采用上述提取、修饰方法得到的自然杀伤细胞来源外泌体的应用,将所述的外泌体用于制备癌症的治疗药物。
与现有技术相比,本发明具有以下优点:
1.本发明先获得高纯度的自然杀伤细胞,随后从上清液中提取外泌体,通过这种改进的方法获得的自然杀伤细胞外泌体性质均一;
2.本发明经12天连续培养后,获得高纯度的自然杀伤细胞,减少了由于细胞纯度不够导致的外泌体性质不均一的问题,得到高纯度自然杀伤细胞来源外泌体;
3.本发明得到自然杀伤细胞外泌体后,进一步进行工程化修饰,一方面提高了外泌体的靶向效率,一方面可以协同光动力治疗,更好的发挥NK细胞外泌体的治疗效能;
4.本发明通过对提取的高纯度自然杀伤细胞来源外泌体的膜表面进行工程化修饰,解决了当前细胞来源外泌体靶向效率低、治疗效果差等问题;
5.本发明方法克服了现有细胞来源外泌体制备技术存在的纯度低,产量低,表征蛋白表达量低等不足,所提取的外泌体经工程化修饰后,解决了当前细胞来源外泌体靶向效率低、治疗效果差等问题。
附图说明
图1为NK细胞表面标志物的流式检测结果图;
图2为NK细胞外泌体的TEM图;
图3为NK细胞外泌体的WB结果图;
图4为K细胞外泌体的NTA检测结果图;
图5为使用RNA配体工程化修饰NK细胞外泌体示意图;
图6为NK细胞外泌体改造前与改造后,CXCR4表达量流式检测结果(MFI平均图)。
具体实施方式
下面结合附图和具体实施例对本发明进行详细说明。以下实施例在以本发明技术方案为前提下进行实施,给出了详细的实施方式和具体的操作过程,但本发明的保护范围不限于下述的实施例。
实施例1
第0天,抽取志愿者外周血35ml,经密度梯度离心后,得到2.5×107个PBMC。用含有5%自体血浆和IL-2(400U mL-1)的MedGroTM免疫细胞培养基重悬PBMC,调整细胞密度为2×106mL-1,并加入相同数量的滋养层细胞,然后将细胞培养瓶放置于CO2湿润培养箱中进行NK细胞的诱导培养。滋养层细胞可分泌活化NK细胞所必须的IL-21和4-1BB因子。每隔1天,添加一定体积的新鲜完全培养基(含自体血浆和IL-2)以确保细胞密度在1-2×106mL-1之间。在第7天,再次加入相同数量的滋养层细胞以进行第二轮的NK细胞活化。在培养的第12天取适量细胞并通过流式细胞仪分析细胞表面标志物情况。
从图1流式结果可以看出,经优化后的培养方法,可以得到纯度高达96.39%的NK细胞(CD3-CD56+细胞群体)。
收取12天的NK细胞培养上清液,采用4℃条件下使用磷酸盐缓冲液对收集的NK细胞培养上清液进行稀释,离心3000rpm,8min,沉淀为细胞,去除沉淀,留取上清。该上清液在4℃条件下以9000rpm的转速15min离心,留取上清液,弃沉淀;经磷酸盐缓冲液稀释后的上清液继续用110kDa超滤管以3500rpm的速度离心5min,去除小分子杂质的同时浓缩细胞上清液。将浓缩得到的上清液以4℃条件下100,000g的转速离心60min,离心结束后,弃上清,留住沉淀。将该沉淀用磷酸盐缓冲液重悬转移至透析袋中,透析8h即可得到目标高纯度大量的外泌体。使用透射电子显微镜(TEM)、蛋白质印迹法(Western Blot)、纳米颗粒跟踪分析(Nanoparticle Tracking Analysis)对获得的外泌体进行表征。
如图2所示,在其视野范围内,NK细胞外泌体清晰完整,这说明通过本发明方法获得NK细胞外泌体纯度高,且外泌体结构完整。
从图3中可以得知,NK细胞外泌体高表达外泌体标志蛋白CD9、CD81、CD63。
从图4中可以看出,NK细胞外泌体平均粒径为113nm±20nm,外泌体数量高达6*107
如图5所示,基于靶向CXCR4的RNA配体,通过RNA序列合成,将传统pRNA-3WJ结构扩展为箭头形结构,一侧为CXCR4 aptamer,另一侧为吲哚菁绿(ICG)与胆固醇。使用该RNA配体结构对前述提取的自然杀伤细胞外泌体进行工程化修饰。将提取的高质量NK细胞外泌体进一步的进行工程化修饰。操作步骤为:将300ug NK细胞外泌体与1.68nM 3WJ纳米粒子在37℃条件下避光孵育45分钟进行膜融合,随后冰上1小时进行膜修复。
为去除多余的3WJ纳米粒子,先在12000g条件下离心70分钟,弃上清,用PBS重悬沉淀,使用0.025um规格的滤膜进行透析。所得的产物即为工程化修饰后的NK细胞外泌体。
从图6中可以看出,改造后的NK细胞外泌体高表达CXCR4,说明对提取的NK外泌体顺利进行了工程化修饰。
本发明通过优化的自然杀伤细胞培养方法获得大量高纯度的自然杀伤细胞,再通过优化的提取方法获得特征稳定的NK细胞来源外泌体,平均尺寸为30-150nm,粒径分布均匀,且表面携带标志性蛋白CD9、CD81、CD63。
上述的对实施例的描述是为便于该技术领域的普通技术人员能理解和使用发明。熟悉本领域技术的人员显然可以容易地对这些实施例做出各种修改,并把在此说明的一般原理应用到其他实施例中而不必经过创造性的劳动。因此,本发明不限于上述实施例,本领域技术人员根据本发明的揭示,不脱离本发明范畴所做出的改进和修改都应该在本发明的保护范围之内。

Claims (10)

1.一种自然杀伤细胞来源外泌体的提取方法,其特征在于,用含有自体血浆和IL-2的MedGroTM免疫细胞培养基重悬PBMC,调整细胞密度为1-2×106mL-1,并加入相同数量的滋养层细胞,于CO2湿润培养箱中进行NK细胞的诱导培养,从培养后的上清液中提取外泌体。
2.根据权利要求1所述的自然杀伤细胞来源外泌体的提取方法,其特征在于,所述的提取外泌体的过程包括:收集培养后的上清液,去除细胞沉淀后离心,留取上清液,弃沉淀;继续用超滤管离心,去除小分子杂质的同时浓缩细胞上清液;将浓缩细胞上清液离心,弃上清液,留住沉淀,用磷酸盐缓冲液重悬后透析即可得到所述的外泌体。
3.根据权利要求2所述的自然杀伤细胞来源外泌体的提取方法,其特征在于,收集培养后的上清液,去除细胞沉淀后在4℃条件下以9000-12000rpm的转速离心15-100min,留取上清液,弃沉淀;继续用100kDa-150kDa超滤管以3000-4000rpm的速度离心5-30min,去除小分子杂质的同时浓缩细胞上清液;将浓缩细胞上清液在4℃条件下以8000g-100,000g的转速离心60-90min,离心结束后,弃上清液,留住沉淀。
4.根据权利要求2所述的自然杀伤细胞来源外泌体的提取方法,其特征在于,用磷酸盐缓冲液重悬沉淀后转移至透析袋中,透析6-8h,得到所述的外泌体。
5.根据权利要求1所述的自然杀伤细胞来源外泌体的提取方法,其特征在于,所述的NK细胞经过12天连续培养后,从培养后的上清液中提取外泌体。
6.根据权利要求1所述的自然杀伤细胞来源外泌体的提取方法,其特征在于,在第0天,通过密度梯度离心获得2-3×107个PBMC,用含有5%自体血浆和400U mL-1的IL-2的MedGroTM免疫细胞培养基重悬PBMC。
7.根据权利要求1所述的自然杀伤细胞来源外泌体的提取方法,其特征在于,加入相同数量的滋养层细胞后,将细胞培养瓶放置于CO2湿润培养箱中进行NK细胞的诱导培养,滋养层细胞分泌活化NK细胞所必须的IL-21和4-1BB因子,每隔1天,添加一定体积的新鲜完全培养基以确保细胞密度在1-2×106mL-1之间,在第7天,再次加入相同数量的滋养层细胞以进行第二轮的NK细胞活化;所述的完全培养基含自体血浆和IL-2。
8.一种自然杀伤细胞来源外泌体的修饰方法,其特征在于,基于靶向CXCR4的RNA配体,对采用如权利要求1~7任一项所述的提取方法得到的外泌体进行工程化修饰。
9.根据权利要求8所述的自然杀伤细胞来源外泌体的修饰方法,其特征在于,基于靶向CXCR4的RNA配体,将传统pRNA-3WJ结构扩展为箭头形结构,一侧为CXCR4 aptamer,另一侧为吲哚菁绿ICG与胆固醇,得到RNA配体结构,使用该RNA配体结构对提取的外泌体进行工程化修饰。
10.一种采用如权利要求8所述的修饰方法得到的外泌体的应用,其特征在于,将所述的外泌体用于制备癌症的治疗药物。
CN202210740612.9A 2022-06-27 2022-06-27 一种自然杀伤细胞来源外泌体的提取、修饰方法及其应用 Pending CN115197908A (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202210740612.9A CN115197908A (zh) 2022-06-27 2022-06-27 一种自然杀伤细胞来源外泌体的提取、修饰方法及其应用

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202210740612.9A CN115197908A (zh) 2022-06-27 2022-06-27 一种自然杀伤细胞来源外泌体的提取、修饰方法及其应用

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CN115197908A true CN115197908A (zh) 2022-10-18

Family

ID=83578592

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN202210740612.9A Pending CN115197908A (zh) 2022-06-27 2022-06-27 一种自然杀伤细胞来源外泌体的提取、修饰方法及其应用

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN115197908A (zh)

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN115521914A (zh) * 2022-10-12 2022-12-27 西北工业大学 一种人原代自然杀伤细胞体外扩增体系及方法
CN116445404A (zh) * 2022-12-29 2023-07-18 贵州医科大学 一种nk细胞来源的外泌体的制备及药物装载方法与应用
CN116875547A (zh) * 2023-09-04 2023-10-13 山东德升细胞治疗工程技术有限公司 一种利用细胞外泌体激活nk细胞的体外扩增培养方法
CN117431210A (zh) * 2023-12-20 2024-01-23 东莞再立健生物科技有限公司 一种促进nk细胞分泌外泌体的提取方法与应用

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN108602849A (zh) * 2016-04-06 2018-09-28 俄亥俄州国家创新基金会 用于通过rna纳米技术将治疗剂特异性递送至细胞的rna配体展示外来体
CN109439625A (zh) * 2018-10-31 2019-03-08 上海交通大学 一种NK细胞exosomes可控规模化的制备方法
CN114540294A (zh) * 2022-03-14 2022-05-27 上海交通大学 靶向肿瘤部位递送基因药物的干细胞外泌体的制备与应用

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN108602849A (zh) * 2016-04-06 2018-09-28 俄亥俄州国家创新基金会 用于通过rna纳米技术将治疗剂特异性递送至细胞的rna配体展示外来体
CN109439625A (zh) * 2018-10-31 2019-03-08 上海交通大学 一种NK细胞exosomes可控规模化的制备方法
CN114540294A (zh) * 2022-03-14 2022-05-27 上海交通大学 靶向肿瘤部位递送基因药物的干细胞外泌体的制备与应用

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
BIN LIU: "Human natural killer cells for targeting delivery of gold nanostars and bimodal imaging directed photothermal/photodynamic therapy and immunotherapy", CANCER BIOL MED, vol. 16, no. 4, pages 758 *

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN115521914A (zh) * 2022-10-12 2022-12-27 西北工业大学 一种人原代自然杀伤细胞体外扩增体系及方法
CN115521914B (zh) * 2022-10-12 2024-04-19 西北工业大学 一种人原代自然杀伤细胞体外扩增体系及方法
CN116445404A (zh) * 2022-12-29 2023-07-18 贵州医科大学 一种nk细胞来源的外泌体的制备及药物装载方法与应用
CN116875547A (zh) * 2023-09-04 2023-10-13 山东德升细胞治疗工程技术有限公司 一种利用细胞外泌体激活nk细胞的体外扩增培养方法
CN117431210A (zh) * 2023-12-20 2024-01-23 东莞再立健生物科技有限公司 一种促进nk细胞分泌外泌体的提取方法与应用

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN115197908A (zh) 一种自然杀伤细胞来源外泌体的提取、修饰方法及其应用
JP7417301B2 (ja) 細胞培養上清および生体液からの微小胞の単離および精製のための方法
JP7315243B2 (ja) エクソソームの製造方法
CN114591905B (zh) 一种人红细胞制备凋亡囊泡的方法与应用
CN113717944A (zh) 一种miRNA13896过表达的工程化人脐带间质干细胞源外泌体及制备方法和应用
CN107648667B (zh) 一种磁控蛋白复合细胞膜片的制备方法
CN114349845B (zh) 一种促进t淋巴细胞的肿瘤浸润性的外泌体及其制备方法
CN109468275B (zh) 一种树突状细胞诱导剂及其制备方法与应用
JP7360704B2 (ja) 細胞外小胞を用いた全身移植片対宿主病を治療する方法
CN117089518A (zh) 一种外泌体制备方法及其产品和应用
WO2023142219A1 (en) A method for large-scale preparation of high-purity exosomes
CN115814108A (zh) 一种用于个性化肿瘤治疗的工程化巨噬细胞载药微颗粒制剂及其制备方法
CN113416693A (zh) 一种间充质干细胞外泌体的制备方法
CN104894067B (zh) 一种高质量外排体及其制备方法
CN113832103B (zh) 弓形虫感染dc的外泌体制备及其应用
CN111494639A (zh) 仿细胞结构纳米材料及其制备方法和应用
CN114480280B (zh) 烟草花叶病毒在刺激巨噬细胞极化为m1型巨噬细胞中应用
Pi et al. Method of Large-Scale Exosome Purification and Its Use for Pharmaceutical Applications
KR20230091815A (ko) αPD-1를 포함하는 수지상 세포 모방 기능성 나노구조체 및 이의 제조방법
KR20240016375A (ko) αPD-1를 포함하는 수지상 세포 모방 기능성 나노구조체 및 이의 제조방법
CN113041358A (zh) 一种超顺磁修饰中性粒细胞外泌体仿生囊泡药物递送生物制剂及其制备方法
KR20230091816A (ko) αCTLA-4를 포함하는 수지상 세포 모방 기능성 나노구조체 및 이의 제조방법
CN116004724A (zh) 过表达cd63基因的间充质干细胞及其制备方法、应用
CN116396923A (zh) 一种小鼠睾丸组织外泌体的提取方法
CN115404241A (zh) 一种基因工程化调节性t细胞来源的细胞外囊泡的制备方法及其应用

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination