CN114350650A - 无dna残留血液rna提取试剂盒及核酸提取方法 - Google Patents

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安淑英
张献新
吴迪
朱德新
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Abstract

本发明专利涉及RNA核酸提取技术领域,具体来说是一种无DNA残留血液RNA提取试剂盒及核酸提取方法,试剂盒包括裂解液、第一漂洗液、第二漂洗液、洗脱液、蛋白酶K缓冲液、无RNA酶的双蒸水,还包括红细胞裂解液:0.1M‑0.6M蔗糖溶液,1mM‑100mM Trizma Base缓冲液,1mM‑10mM氯化镁溶液,体积比为1%‑10%的聚乙二醇辛基苯基醚溶液;DNA酶缓冲液:1mM‑10mM的pH 6.0‑8.0的Tris‑HCl缓冲液,1mM‑10mM的氯化镁溶液,0.01mM‑1mM的氯化钙溶液;使用前,向DNA酶缓冲溶液内溶解DNA酶,浓度为10‑40mg/mL。通过先使用红细胞裂解液,去除红细胞的影响;再使用DNA酶缓冲液,去除DNA的干扰,使整个提取RNA的过程步骤简单,操作安全便捷,同时又能得到纯度较好的RNA。

Description

无DNA残留血液RNA提取试剂盒及核酸提取方法
技术领域
本发明专利涉及RNA核酸提取技术领域,具体来说是一种无DNA残留血液RNA提取试剂盒及核酸提取方法。
背景技术
核酸是生物遗传的重要物质基础,可以分为两大类:脱氧核糖核苷酸(DNA)和核糖核苷酸(RNA)。RNA本身为单链,很不稳定,在血液中主要分布在白细胞内,含量不多,且血液中又含有大量RNA酶,就使得提取纯度较高的RNA变的更加不易。
RNA的提取与纯化是各种临床检测的一个基础工作,在RNA纯化的过程中,去除DNA是一个非常重要的环节,DNA去除不彻底很可能会影响下游实验的进行。提取血液样品中的RNA需要对样品进行处理,先去除红细胞,为后续实验去除多余的干扰。不然会大量消耗药品和消化酶等,导致实验时间延长、药品浪费以及提取RNA的品质降低等。
公开号为CN103160496B的发明专利公开了一种血液RNA提取和纯化方法,具体地说是利用一种大型实验动物血液为样本,用改良的红细胞裂解液裂解红细胞,通过异硫氰酸胍法提取RNA并运用改进oligo(dT)-纤维素层析法对总RNA进行纯化,最终获得大型实验动物血液poly(A)+RNA。其中改良后的红细胞裂解液的组分浓度155mmol/L NH4Cl、0.1mmol/L EDTA和12mmol/L KHCO3。该方法能够得到纯度较高的RNA,但是在提取RNA的过程中使用了氯仿、甲醛等毒性较大的化学品,污染多,操作复杂。
发明内容
本发明专利的目的在于解决现有技术的不足,通过去除红细胞和DNA的干扰,便捷污染少地获得纯度较好的RNA。
为了实现上述目的,本发明设计了一种无DNA残留血液RNA提取试剂盒,包括裂解液、第一漂洗液、第二漂洗液、洗脱液、蛋白酶K缓冲液、无RNA酶的双蒸水,还包括红细胞裂解液:0.1M-0.6M蔗糖溶液,1mM-100mM Trizma Base缓冲液,1mM-10mM氯化镁溶液,体积比为1%-10%的聚乙二醇辛基苯基醚;DNA酶缓冲液:1mM-10mM的pH 6.0-8.0的Tris-HCl缓冲液,1mM-10mM的氯化镁溶液,0.01mM-1mM的氯化钙溶液;使用前,向DNA酶缓冲溶液内溶解DNA酶,浓度为10-40mg/mL。
优选地,所述裂解液包括:1M-6M异硫氰酸胍溶液,0.1mM-1mM柠檬酸钠,质量浓度为10%-30%的十二烷基肌氨酸钠,体积比0.05%-2%的β-巯基乙醇,1M-4M的醋酸钠溶液。
优选地,所述第一漂洗液包括:1M-6M异硫氰酸胍溶液,10mM-1M pH 6.0-7.2的Tris-HCl缓冲液,1mM-100mM乙二胺四乙酸缓冲液,体积比为10%-30%的异丙醇溶液。
优选地,所述第二漂洗液包括:1mM-100mM的Trizma Base缓冲液;使用前,向所述第二漂洗液中添加1-10倍体积的无水乙醇。
优选地,所述洗脱液包括:0.01mM-10mM乙二胺四乙酸缓冲液,1mM-100mM的TrizmaBase缓冲液。
优选地,所述蛋白酶K缓冲液包括:1mM-10mM的氯化钙溶液,体积比为30%-60%的甘油,1mM-100mM的海藻糖溶液,1mM-100mM的Trizma Base缓冲液,体积比为0.01%-1%的Proclin-300;使用前,向所述溶液溶解蛋白酶K,浓度在10-40mg/mL。
优选地,所述无RNA酶的双蒸水为0.01%-1%焦碳酸二乙酯溶液。
还设计了一种RNA核酸提取方法,方法具体如下:
(1)采血管采集后室温放置2小时以上,取采好血的血液RNA真空采血管离心,移除采血管中上清;
(2)向采血管中加入无RNA酶的双蒸水,震荡混匀,沉淀完全溶解后离心,移除采血管中上清;
(3)向离心管中加入无RNA酶的双蒸水,震荡悬浮沉淀,把上述悬浮液全部吸入离心管中,加入裂解液和蛋白酶K缓冲液,混匀,55-65℃裂解10-15min;
(4)裂解完成后将上述溶液吸入过滤柱中,离心,将收集管中的溶液吸取到新的离心管中,加入无水乙醇,彻底混匀;
(5)将上述溶液吸入吸附柱中,离心1min,弃上清,向吸附柱中加入第一漂洗液,离心30-60sec,倒掉收集管中的废液,将吸附柱放回收集管中;
(6)向吸附柱中央加DNA酶工作液,室温放置,然后加入第一漂洗液,离心,倒掉收集管中的废液,将吸附柱放回收集管中;
(7)向吸附柱中加入第二漂洗液,室温静置,离心,倒掉收集管中的废液,将吸附柱放回收集管中;
(8)重复(7),然后离心,倒掉废液,将吸附柱置于室温放置数分钟;
(9)将吸附柱转入一个新的无RNA酶离心管中,加入无RNA酶的双蒸水室温放置,离心,得到RNA溶液。
本发明与现有技术相比,具有如下优点:
1.使用了红细胞裂解液和DNA酶缓冲液,时间短,污染少,操作简单;
2.所提取核酸产量高,纯度好。
具体实施方式
下面结合具体实施例对本发明作进一步地解释说明。以下实施例将有助于本领域的技术人员进一步理解本发明,但不以任何形式限制本发明。应当指出的是,对本领域的普通技术人员来说,在不脱离本发明构思的前提下,还可以做出若干变形和改进,这些都属于本发明的保护范围。
实施例1的具体操作过程如下:
1.取出第二漂洗液,加入48mL无水乙醇。
2.取采好血的血液RNA真空采血管,8000rpm离心10-15min。
注:确保采血管采集后室温(15-25℃)放置2小时以上,红细胞充分裂解。
3.移除采血管中上清,加入4mL RNase-Free water,盖上管盖。
4.震荡混匀,使沉淀完全溶解,然后8000rpm离心10-15min,移除采血管中上清。
5.加入350μL RNase-Free water震荡悬浮沉淀。
6.把上述悬浮液全部吸入1.5mL离心管中,加入300μL裂解液和40μL蛋白酶K缓冲液,混匀5-10s,55-65℃裂解10-15min。
注:裂解液和蛋白酶K缓冲液请勿提前混匀。
7.裂解完成后将上述溶液吸入过滤柱中,12000rpm离心3-5min。
8.将收集管中的溶液吸取到新的1.5mL离心管中,加入300μL无水乙醇,彻底混匀。
9.将上述溶液吸入吸附柱中,12000rpm离心30-60s,弃上清。
注:吸附柱最大容量为700μL,如一次吸不完需重复步骤9。
10.向吸附柱中加入350μL第一漂洗液,12000rpm离心30-60sec,倒掉收集管中的废液,将吸附柱放回收集管中。
11.DNase I工作液的配制:取10μL DNase I储存液放入新的RNase-Free离心管中,加入70mL DNA酶缓冲液,轻柔混匀。
12.向吸附柱中央加入80μL的DNase I工作液,室温放10-15min。
13.向吸附柱中加入350μL第一漂洗液,12000rpm离心30-60sec,倒掉收集管中的废液,将吸附柱放回收集管中。
14.向吸附柱中加入500mL第二漂洗液(使用前请先检查是否已加入乙醇),室温静置1-2min,12,000rpm(~13,400×g)离心30-60sec,倒掉收集管中的废液,将吸附柱放回收集管中。
15.重复步骤14。
16.12000rpm离心2min,倒掉废液。将吸附柱置于室温放置数分钟,以彻底晾干吸附柱中残余的漂洗液。
注:此步骤目的是将吸附柱中残余的漂洗液去除,离心后将吸附柱在室温放置片刻,以充分晾干。如果有漂洗液残留,可能会影响后续的实验。
17.将吸附柱转入一个新的RNase-Free离心管中,加入30-50mL无RNA双蒸水室温放置2min,12000rpm离心2min,得到RNA溶液。
注:洗脱缓冲液体积不应少于30μL,体积过小影响回收效率。RNA溶液请于-70℃保存。
从实施例的操作可知,在整个提取过程中,操作安全简单,未使用毒性较大溶剂,依然能得到纯度较好的RNA。
以上所述仅为本发明的较佳实施例,并不用以限制本发明,凡在本发明的精神和原则之内,所作的任何修改、等同替换、改进等,均应包含在本发明的保护范围之内。

Claims (8)

1.一种无DNA残留血液RNA提取试剂盒,包括裂解液、第一漂洗液、第二漂洗液、洗脱液、蛋白酶K缓冲液、无RNA酶的双蒸水,其特征在于,还包括
红细胞裂解液:0.1M-0.6M蔗糖溶液,1mM-100mM Trizma Base缓冲液,1mM-10mM氯化镁溶液,体积比为1%-10%的聚乙二醇辛基苯基醚溶液;
DNA酶缓冲液:1mM-10mM的pH 6.0-8.0的Tris-HCl缓冲液,1mM-10mM的氯化镁溶液,0.01mM-1mM的氯化钙溶液;使用前,向DNA酶缓冲溶液内溶解DNA酶,浓度为10-40mg/mL。
2.根据权利要求1所述一种无DNA残留血液RNA提取试剂盒,其特征在于,所述裂解液包括:1M-6M异硫氰酸胍溶液,0.1mM-1mM柠檬酸钠,质量浓度为10%-30%的十二烷基肌氨酸钠,体积比0.05%-2%的β-巯基乙醇,1M-4M的醋酸钠溶液。
3. 根据权利要求1所述一种无DNA残留血液RNA提取试剂盒,其特征在于,所述第一漂洗液包括:1M-6M异硫氰酸胍溶液,10mM-1M pH 6.0-7.2的Tris-HCl缓冲液,1mM-100mM乙二胺四乙酸缓冲液,体积比为10%-30%的异丙醇溶液。
4. 根据权利要求1所述一种无DNA残留血液RNA提取试剂盒,其特征在于,所述第二漂洗液包括:1mM-100mM的Trizma Base缓冲液;使用前,向所述第二漂洗液中添加1-10倍体积的无水乙醇。
5. 根据权利要求1所述一种无DNA残留血液RNA提取试剂盒,其特征在于,所述洗脱液包括:0.01mM-10mM乙二胺四乙酸缓冲液,1mM-100mM的Trizma Base缓冲液。
6. 根据权利要求1所述一种无DNA残留血液RNA提取试剂盒,其特征在于,所述蛋白酶K缓冲液包括:1mM-10mM的氯化钙溶液,体积比为30%-60%的甘油,1mM-100mM的海藻糖溶液,1mM-100mM的Trizma Base缓冲液,体积比为0.01%-1%的Proclin-300;使用前,向所述溶液溶解蛋白酶K,浓度在10-40mg/mL。
7.根据权利要求1所述一种无DNA残留血液RNA提取试剂盒,其特征在于,所述无RNA酶的双蒸水为0.01%-1%焦碳酸二乙酯溶液。
8.一种采用如权利要求1所述试剂盒的核酸提取方法,其特征在于,方法具体如下:
S1,采血管采集后室温放置2小时以上,取采好血的血液RNA真空采血管离心,移除采血管中上清;
S2,向采血管中加入无RNA酶的双蒸水,震荡混匀,沉淀完全溶解后离心,移除采血管中上清;
S3,向离心管中加入无RNA酶的双蒸水,震荡悬浮沉淀,把上述悬浮液全部吸入离心管中,加入裂解液和蛋白酶K缓冲液,混匀,55-65℃裂解10-15min;
S4,裂解完成后将上述溶液吸入过滤柱中,离心,将收集管中的溶液吸取到新的离心管中,加入无水乙醇,彻底混匀;
S5,将上述溶液吸入吸附柱中,离心1min,弃上清,向吸附柱中加入第一漂洗液,离心30-60sec, 倒掉收集管中的废液,将吸附柱放回收集管中;
S6,向吸附柱中央加DNA酶工作液,室温放置,然后加入第一漂洗液,离心,倒掉收集管中的废液 将吸附柱放回收集管中;
S7,向吸附柱中加入第二漂洗液,室温静置,离心,倒掉收集管中的废液,将吸附柱放回收集管中;
S8,重复S7,然后离心,倒掉废液,将吸附柱置于室温放置数分钟;
S9,将吸附柱转入一个新的无RNA酶离心管中,加入无RNA酶的双蒸水室温放置,离心,得到RNA溶液。
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