CN110804609A - 一种全血rna快速裂解液及应用 - Google Patents
一种全血rna快速裂解液及应用 Download PDFInfo
- Publication number
- CN110804609A CN110804609A CN201910932018.8A CN201910932018A CN110804609A CN 110804609 A CN110804609 A CN 110804609A CN 201910932018 A CN201910932018 A CN 201910932018A CN 110804609 A CN110804609 A CN 110804609A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- rna
- purification column
- nucleic acid
- whole blood
- 000rpm
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Images
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/10—Processes for the isolation, preparation or purification of DNA or RNA
- C12N15/1003—Extracting or separating nucleic acids from biological samples, e.g. pure separation or isolation methods; Conditions, buffers or apparatuses therefor
- C12N15/1006—Extracting or separating nucleic acids from biological samples, e.g. pure separation or isolation methods; Conditions, buffers or apparatuses therefor by means of a solid support carrier, e.g. particles, polymers
- C12N15/101—Extracting or separating nucleic acids from biological samples, e.g. pure separation or isolation methods; Conditions, buffers or apparatuses therefor by means of a solid support carrier, e.g. particles, polymers by chromatography, e.g. electrophoresis, ion-exchange, reverse phase
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Zoology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Crystallography & Structural Chemistry (AREA)
- Plant Pathology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Saccharide Compounds (AREA)
Abstract
本发明提供一种不需要先裂解红细胞的全血RNA快速裂解液及RNA提取方法,该方法大限度的减少有毒试剂的使用,简化了RNA提取步骤,纯化获得的RNA完整性好,纯度高,可直接用于RT‑PCR、Northern blot、Dot blot等各种分子生物学实验;本发明公开了一种全血RNA快速裂解液,每1000ml体积由以下组分用量组成:硫氰酸胍,0.2M‑4M;硫氰酸铵,0.2M‑3M;无水乙酸钠,0.01M‑0.2M;冰乙酸,0.05‑0.3M;月桂酰基肌氨酸钠,0.1%‑2%(W/V);氯化钠,0.02M‑0.3M;甘油,1%‑15%(V/V);水饱和酚溶液,10%‑75%(V/V);其余为DEPC处理水。
Description
技术领域
本发明涉及血液RNA提取技术领域,尤其涉及一种全血RNA快速裂解液及应用。
背景技术
血液由于其易获得的特性,使其在临床辅助检查手段中使用占比最高。血液检查不仅是诊断各种血液病的主要依据,对其他系统疾病的诊断和鉴别也可以提供许多重要信息。RNA提取是分子生物学研究中一项基本内容,是进行基因表达分析的基础。全血RNA的快速提取节省了从事临床研究的科研工作者的时间,降低了RNA降解的概率,而且能加速对某些疾病的快速诊断。
根据提取RNA吸附介质的不同,血液RNA提取的主要方法有沉淀法、磁珠法及硅胶柱法。沉淀法是运用RNA不溶于乙醇和异丙醇的特性,将RNA进行离心沉淀的方法。该方法操作步骤繁琐,耗时长,且通量低,所获得RNA质量不稳定。磁珠法和硅胶柱法的基本原理相同,只是磁珠法是在分离液盐和外加磁场的作用下将RNA富集到磁珠上,从而实现分离。而硅胶柱法是在分离液盐的作用下将RNA富集到固相硅胶柱上,通过离心实现分离。
提取方法从细胞裂解的方式分,有Trizol法(苯酚法)、SDS法、CTAB法、硫氰酸胍法等多种,以及结合蛋白酶K运用的方法。
Trizol法由于通用性好,RNA提取质量高,常用于血液RNA提取;但其步骤中使用的氯仿为一种有毒试剂,对实验操作者的健康不利。本发明有效避开该种有毒试剂,提取效果却不亚于Trizol法提取效果。在其他各种细胞裂解方式方法中均需要先进行红细胞裂解,获得白细胞后再进行裂解,该类方法在操作上存在耗时的特点,不利于大量样本的RNA提取。本发明所述裂解液不需要先裂解红细胞,能有效缩短RNA提取时间。
当前柱法提取RNA的基本原理为:在样本前处理及裂解液裂解的作用下,RNA从细胞中释放;在高盐低pH的溶液下,将含RNA的上清转移到核酸纯化柱上,离心后RNA结合于核酸纯化柱;在洗液1的作用下,进一步将核酸纯化柱膜中的蛋白等杂质去除;在洗液2的条件下,进一步将核酸纯化柱膜中的盐离子进行去除;最后在低盐条件下将RNA从纯化柱中洗脱。
本发明提供一种不需先裂解红细胞的全血RNA快速裂解液及RNA提取方法,简化了实验步骤,缩短了整个RNA提取时间,同时大限度的减少有毒试剂的使用。
发明内容
为实现上述目的,本发明提供如下技术方案:一种全血RNA快速裂解液,每1000ml体积由以下组分质量/体积组成:
硫氰酸胍,0.2M-4M;
硫氰酸铵,0.2M-3M;
无水乙酸钠,0.01M-0.2M;
冰乙酸,0.05-0.3M;
月桂酰基肌氨酸钠,0.1%-2%(W/V);
氯化钠,0.02M-0.3M;
甘油,1%-15%(V/V);
水饱和酚溶液,10%-75%(V/V);
其余为DEPC处理水。
所述全血RNA快速裂解液在全血柱法提取RNA的应用;
包括以下步骤:
步骤一,全血裂解:在2ml离心管中加入1ml所述快速裂解液,再加入500μl新鲜全血或骨髓,盖上管盖,涡旋振荡30秒,13,000rpm离心10分钟;
步骤二,含RNA上清过纯化柱:在一个新的1.5ml离心管中加入400μl无水乙醇,吸取700μl步骤一的离心上清转移到该管中,用吸头吹吸混匀;吸取600μl混合物转移到核酸纯化柱中,盖紧管盖,13,000rpm离心1分钟;弃去滤液,将核酸纯化柱放回到2ml离心管中,将余下的混合物转移到核酸纯化柱中,盖紧管盖,13,000rpm离心1分钟;
步骤三,洗涤,去蛋白:弃去滤液,将核酸纯化柱放回到2ml离心管,加入500μl洗液1,盖紧管盖,13,000rpm离心1分钟;
步骤四,洗涤,去盐:弃去滤液,将核酸纯化柱放回到2ml离心管,加入700μl洗液2,盖紧管盖,13,000rpm离心1分钟;
步骤五,洗脱RNA:弃去滤液,将核酸纯化柱放回到2ml离心管中,14,000rpm离心1分钟;弃去滤液和离心管,将核酸纯化柱置于一个无RNA酶的1.5ml离心管中,在纯化柱的膜中央加入50μl RNase-Free Water,盖紧管盖,室温静置1分钟,12,000rpm离心30秒;弃纯化柱,洗脱的RNA可立即用于分子生物学实验或者储存于-80℃备用。
优选的,所述的核酸纯化柱是表面覆盖有SiO2材料的硅胶吸附柱。
优选的,所述洗液1配方为硫氰酸胍0.5M-4M、Tris-HCl(pH6.0-pH8.0)10mM-100mM、EDTA-2Na(pH8.0)10mM-50mM,无水乙醇占比40%-60%。
优选的,所述洗液2为Tris-HCl(pH6.0-pH8.0)10mM-100mM、氯化钠20mM-300mM,无水乙醇占比60%-80%。
优选的,所述RNase-Free Water为0.1%的DEPC处理水。
本发明的有益效果:使得本发明的快速裂解液无需事先分离白细胞,使全血RNA的提取时间大大缩短,具有快速、简洁、高效的特点;纯化获得的RNA完整性好,纯度高,可直接用于RT-PCR、Northern blot、Dot blot等各种分子生物学实验。
全血样本既可为新鲜全血,也可为-80℃冻存全血,可在裂解完全血后,暂停后续操作,将裂解后的全血直接冻存于-20℃或-80℃,后续再进行实验操作时不影响RNA的完整性及得率。
附图说明
图1中左1、右1分别是本发明使用实施例1及实施例2中裂解液对人抗凝全血进行裂解,并在13,000rpm离心10分钟后的分层情况图。
图2是采用本发明实施例1配方,对4份新鲜人抗凝全血进行RNA提取的电泳检测图;其中泳道M为DL 2,000DNAMarker。
图3是采用本发明实施例3,对-80℃存储一个月抗凝全血进行RNA提取的电泳检测图;其中泳道M为DL 2,000DNAMarker。
图4是采用本发明实施例4,对3份新鲜抗凝全血进行快速裂解后,取上清于-20℃存储一周,然后进行后续提取步骤所得RNA电泳检测图。
具体实施方式
实施例1
一种快速全血RNA裂解液配制方法,每1000ml体积由以下组分质量/体积组成:
硫氰酸胍,236.32g
硫氰酸铵,60.89g
无水乙酸钠,4.102g
冰乙酸,14.25ml
月桂酰基肌氨酸钠,2.5g
氯化钠,11.68g
甘油,75ml
水饱和酚溶液,500ml
其余为DEPC处理水。
对4份500μl人抗凝全血进行快速裂解液并提取RNA,包括以下步骤:
步骤一,全血裂解:在2ml离心管中加入1ml所述快速裂解液,再加入500μl新鲜人抗凝全血,盖上管盖,涡旋振荡30秒,13,000rpm离心10分钟;4份分层情况一致,取一份拍照,如图1左1所示;
步骤二,含RNA上清过纯化柱:在一个新的1.5ml离心管中加入400μl无水乙醇,吸取700μl步骤一的离心上清转移到该管中,用吸头吹吸混匀;吸取600μl混合物转移到核酸纯化柱中,盖紧管盖,13,000rpm离心1分钟;弃去滤液,将核酸纯化柱放回到2ml离心管中,将余下的混合物转移到核酸纯化柱中,盖紧管盖,13,000rpm离心1分钟;
步骤三,洗涤,去蛋白:弃去滤液,将核酸纯化柱放回到2ml离心管,加入500μl洗液1,盖紧管盖,13,000rpm离心1分钟;
步骤四,洗涤,去盐:弃去滤液,将核酸纯化柱放回到2ml离心管,加入700μl洗液2,盖紧管盖,13,000rpm离心1分钟;
步骤五,洗脱RNA:弃去滤液,将核酸纯化柱放回到2ml离心管中,14,000rpm离心1分钟;弃去滤液和离心管,将核酸纯化柱置于一个无RNA酶的1.5ml离心管中,在纯化柱的膜中央加入50μl RNase-Free Water,盖紧管盖,室温静置1分钟,12,000rpm离心30秒;弃纯化柱,洗脱的RNA可立即用于分子生物学实验或者储存于-80℃备用。
表1为四份全血按实施例1方案提取RNA,在多功能酶标仪上检测的OD数值。
表1
实施例2
一种全血RNA快速裂解液配制方法,每1000ml体积由以下组分质量/体积组成:
硫氰酸胍,118.16g
硫氰酸铵,30.45g
无水乙酸钠,8.20g
冰乙酸,21.5ml
月桂酰基肌氨酸钠,5g
氯化钠,5.84g
甘油,50ml
水饱和酚溶液,300ml
其余为DEPC处理水。
对1份500μl人抗凝全血进行快速裂解液并提取RNA,包括以下步骤:
步骤一,全血裂解:在2ml离心管中加入1ml所述快速裂解液,再加入500μl新鲜人抗凝全血,盖上管盖,涡旋振荡30秒,13,000rpm离心10分钟;分层情况如图1右1所示;
步骤二,含RNA上清过纯化柱:在一个新的1.5ml离心管中加入400μl无水乙醇,吸取700μl步骤一的离心上清转移到该管中,用吸头吹吸混匀;吸取600μl混合物转移到核酸纯化柱中,盖紧管盖,13,000rpm离心1分钟;弃去滤液,将核酸纯化柱放回到2ml离心管中,将余下的混合物转移到核酸纯化柱中,盖紧管盖,13,000rpm离心1分钟;
步骤三,洗涤,去蛋白:弃去滤液,将核酸纯化柱放回到2ml离心管,加入500μl洗液1,盖紧管盖,13,000rpm离心1分钟;
步骤四,洗涤,去盐:弃去滤液,将核酸纯化柱放回到2ml离心管,加入700μl洗液2,盖紧管盖,13,000rpm离心1分钟;
步骤五,洗脱RNA:弃去滤液,将核酸纯化柱放回到2ml离心管中,14,000rpm离心1分钟;弃去滤液和离心管,将核酸纯化柱置于一个无RNA酶的1.5ml离心管中,在纯化柱的膜中央加入50μl RNase-Free Water,盖紧管盖,室温静置1分钟,12,000rpm离心30秒;弃纯化柱,洗脱的RNA可立即用于分子生物学实验或者储存于-80℃备用。
实施例3
一种全血RNA快速裂解液配制方法,每1000ml体积由以下组分质量/体积组成:
硫氰酸胍,236.32g
硫氰酸铵,152.24g
无水乙酸钠,2.75g
冰乙酸,9.5ml
月桂酰基肌氨酸钠,2.5g
氯化钠,5.84g
甘油,75ml
水饱和酚溶液,500ml
其余为DEPC处理水。
对3份-80℃存储一个月的人抗凝全血进行RNA提取,包括以下步骤:
步骤一,全血裂解:在2ml离心管中加入1ml所述快速裂解液,再加入500μl解冻后的人抗凝全血,盖上管盖,涡旋振荡30秒,13,000rpm离心10分钟;
步骤二,含RNA上清过纯化柱:在一个新的1.5ml离心管中加入400μl无水乙醇,吸取700μl步骤一的离心上清转移到该管中,用吸头吹吸混匀;吸取600μl混合物转移到核酸纯化柱中,盖紧管盖,13,000rpm离心1分钟;弃去滤液,将核酸纯化柱放回到2ml离心管中,将余下的混合物转移到核酸纯化柱中,盖紧管盖,13,000rpm离心1分钟;
步骤三,洗涤,去蛋白:弃去滤液,将核酸纯化柱放回到2ml离心管,加入500μl洗液1,盖紧管盖,13,000rpm离心1分钟;
步骤四,洗涤,去盐:弃去滤液,将核酸纯化柱放回到2ml离心管,加入700μl洗液2,盖紧管盖,13,000rpm离心1分钟;
步骤五,洗脱RNA:弃去滤液,将核酸纯化柱放回到2ml离心管中,14,000rpm离心1分钟;弃去滤液和离心管,将核酸纯化柱置于一个无RNA酶的1.5ml离心管中,在纯化柱的膜中央加入50μl RNase-Free Water,盖紧管盖,室温静置1分钟,12,000rpm离心30秒;弃纯化柱,洗脱的RNA可立即用于分子生物学实验或者储存于-80℃备用。
实施例4
按照实施例3的裂解液配方,对3份新鲜人抗凝全血进行RNA提取,包括以下步骤:
步骤一,全血裂解:在2ml离心管中加入1ml所述快速裂解液,再加入500μl解冻后的人抗凝全血,盖上管盖,涡旋振荡30秒,13,000rpm离心10分钟;
步骤二,将700μl上清转移至一个新的1.5ml离心管中,-20℃存储一周后再进入步骤三;
步骤三,在上述含上清的1.5ml离心管中加入400μl无水乙醇,用吸头吹吸混匀;吸取600μl混合物转移到核酸纯化柱中,盖紧管盖,13,000rpm离心1分钟;弃去滤液,将核酸纯化柱放回到2ml离心管中,将余下的混合物转移到核酸纯化柱中,盖紧管盖,13,000rpm离心1分钟;
步骤四,洗涤,去蛋白:弃去滤液,将核酸纯化柱放回到2ml离心管,加入500μl洗液1,盖紧管盖,13,000rpm离心1分钟;
步骤五,洗涤,去盐:弃去滤液,将核酸纯化柱放回到2ml离心管,加入700μl洗液2,盖紧管盖,13,000rpm离心1分钟;
步骤六,洗脱RNA:弃去滤液,将核酸纯化柱放回到2ml离心管中,14,000rpm离心1分钟;弃去滤液和离心管,将核酸纯化柱置于一个无RNA酶的1.5ml离心管中,在纯化柱的膜中央加入50μl RNase-Free Water,盖紧管盖,室温静置1分钟,12,000rpm离心30秒;弃纯化柱,洗脱的RNA可立即用于分子生物学实验或者储存于-80℃备用。
提取RNA进行琼脂糖凝胶电泳结果见图4。
以上所述仅为本发明的较佳实施例而已,并不用以限制本发明,凡在本发明的精神和原则之内所作的任何修改、等同替换或改进等,均应包含在本发明的保护范围之内。
Claims (7)
1.一种全血RNA快速裂解液,其特征在于,每1000ml体积由以下组分质量/体积组成:
硫氰酸胍,0.2M-4M;
硫氰酸铵,0.2M-3M;
无水乙酸钠,0.01M-0.2M;
冰乙酸,0.05M-0.3M;
月桂酰基肌氨酸钠,0.1%-2%(W/V);
氯化钠,0.02M-0.3M;
甘油,1%-15%(V/V);
水饱和酚溶液,10%-75%(V/V);
其余为DEPC处理水。
2.根据权利要求1所述全血RNA快速裂解液在全血柱法提取RNA的应用。
3.根据权利要求3所述的应用,其特征在于,包括以下步骤:
步骤一,全血裂解:在2ml离心管中加入1ml所述快速裂解液,再加入500μl新鲜全血或骨髓,盖上管盖,涡旋振荡30秒,13,000rpm离心10分钟;
步骤二,含RNA上清过纯化柱:在一个新的1.5ml离心管中加入400μl无水乙醇,吸取700μl步骤一的离心上清转移到该管中,用吸头吹吸混匀;吸取600μl混合物转移到核酸纯化柱中,盖紧管盖,13,000rpm离心1分钟;弃去滤液,将核酸纯化柱放回到2ml离心管中,将余下的混合物转移到核酸纯化柱中,盖紧管盖,13,000rpm离心1分钟;
步骤三,洗涤,去蛋白:弃去滤液,将核酸纯化柱放回到2ml离心管,加入500μl洗液1,盖紧管盖,13,000rpm离心1分钟;
步骤四,洗涤,去盐:弃去滤液,将核酸纯化柱放回到2ml离心管,加入700μl洗液2,盖紧管盖,13,000rpm离心1分钟;
步骤五,洗脱RNA:弃去滤液,将核酸纯化柱放回到2ml离心管中,14,000rpm离心1分钟;弃去滤液和离心管,将核酸纯化柱置于一个无RNA酶的1.5ml离心管中,在纯化柱的膜中央加入50μl RNase-Free Water,盖紧管盖,室温静置1分钟,12,000rpm离心30秒;弃纯化柱,洗脱的RNA可立即用于分子生物学实验或者储存于-80℃备用。
4.根据权利要求3所述的应用,其特征在于,所述的核酸纯化柱是表面覆盖有SiO2材料的硅胶吸附柱。
5.根据权利要求3所述的应用,其特征在于,所述洗液1配方为硫氰酸胍0.5M-4M、Tris-HCl(pH6.0-pH8.0)10mM-100mM、EDTA-2Na(pH8.0)10mM-50mM,无水乙醇占比40%-60%。
6.根据权利要求3所述的应用,其特征在于,所述洗液2为Tris-HCl(pH6.0-pH8.0)10mM-100mM、氯化钠20mM-300mM,无水乙醇占比60%-80%。
7.根据权利要求3所述的应用,其特征在于,所述RNase-Free Water为0.1%的DEPC处理水。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201910932018.8A CN110804609A (zh) | 2019-09-29 | 2019-09-29 | 一种全血rna快速裂解液及应用 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201910932018.8A CN110804609A (zh) | 2019-09-29 | 2019-09-29 | 一种全血rna快速裂解液及应用 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN110804609A true CN110804609A (zh) | 2020-02-18 |
Family
ID=69488017
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201910932018.8A Pending CN110804609A (zh) | 2019-09-29 | 2019-09-29 | 一种全血rna快速裂解液及应用 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN110804609A (zh) |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN112708618A (zh) * | 2020-12-30 | 2021-04-27 | 广州博江生物科技有限公司 | 一种快速裂解细胞、病毒及细菌进行核酸提取的裂解液 |
CN112725334A (zh) * | 2021-02-23 | 2021-04-30 | 山东思科捷生物技术有限公司 | 一种细胞rna快速提取试剂盒及rna提取方法 |
CN114908081A (zh) * | 2022-04-29 | 2022-08-16 | 杭州新景生物试剂开发有限公司 | 一种核酸提取试剂及其试剂盒以及快速萃取分离纯化核酸的方法 |
Citations (9)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH0614800A (ja) * | 1992-07-02 | 1994-01-25 | Tosoh Corp | ヒトc型肝炎ウイルスの検出方法及びそのためのプライマ−対 |
CN1997740A (zh) * | 2004-04-16 | 2007-07-11 | 彼得·科姆钦斯基 | 用于分离纯化的rna的试剂和方法 |
CN102876663A (zh) * | 2012-10-10 | 2013-01-16 | 北京百泰克生物技术有限公司 | 一种从液体样本中快速提取总rna的试剂及方法 |
US20140057247A1 (en) * | 2012-08-24 | 2014-02-27 | The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University | Method of preparing rna from ribonuclease-rich sources |
EP2557161B1 (de) * | 2011-08-11 | 2015-05-20 | AXAGARIUS GmbH & Co. KG | Verfahren zur Isolierung von RNA aus Vollblutproben |
CN105385680A (zh) * | 2015-12-24 | 2016-03-09 | 天津脉络生物科技有限公司 | 用于dna和rna同时提取的试剂,提取方法和用途 |
CN106434633A (zh) * | 2016-10-25 | 2017-02-22 | 山东艾莱普生物科技有限公司 | 骨组织rna快速提取试剂盒 |
CN108070584A (zh) * | 2016-11-16 | 2018-05-25 | 江苏然科生物技术有限公司 | 一种血浆或血清游离dna和rna的硅胶吸附柱提取试剂盒及方法 |
CN109385418A (zh) * | 2017-08-03 | 2019-02-26 | 杭州优思达生物技术有限公司 | 一种用于动物样本中病毒/细菌核酸提取的方法及试剂 |
-
2019
- 2019-09-29 CN CN201910932018.8A patent/CN110804609A/zh active Pending
Patent Citations (9)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH0614800A (ja) * | 1992-07-02 | 1994-01-25 | Tosoh Corp | ヒトc型肝炎ウイルスの検出方法及びそのためのプライマ−対 |
CN1997740A (zh) * | 2004-04-16 | 2007-07-11 | 彼得·科姆钦斯基 | 用于分离纯化的rna的试剂和方法 |
EP2557161B1 (de) * | 2011-08-11 | 2015-05-20 | AXAGARIUS GmbH & Co. KG | Verfahren zur Isolierung von RNA aus Vollblutproben |
US20140057247A1 (en) * | 2012-08-24 | 2014-02-27 | The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University | Method of preparing rna from ribonuclease-rich sources |
CN102876663A (zh) * | 2012-10-10 | 2013-01-16 | 北京百泰克生物技术有限公司 | 一种从液体样本中快速提取总rna的试剂及方法 |
CN105385680A (zh) * | 2015-12-24 | 2016-03-09 | 天津脉络生物科技有限公司 | 用于dna和rna同时提取的试剂,提取方法和用途 |
CN106434633A (zh) * | 2016-10-25 | 2017-02-22 | 山东艾莱普生物科技有限公司 | 骨组织rna快速提取试剂盒 |
CN108070584A (zh) * | 2016-11-16 | 2018-05-25 | 江苏然科生物技术有限公司 | 一种血浆或血清游离dna和rna的硅胶吸附柱提取试剂盒及方法 |
CN109385418A (zh) * | 2017-08-03 | 2019-02-26 | 杭州优思达生物技术有限公司 | 一种用于动物样本中病毒/细菌核酸提取的方法及试剂 |
Non-Patent Citations (2)
Title |
---|
CATHERINE BONAÏTI等: "Novel extraction strategy of ribosomal RNA and genomic DNA from cheese for PCR-based investigations", 《INT J FOOD MICROBIOL》 * |
杨利丽等: "一种改进的异硫氰酸胍法结合硅胶膜离心吸附柱提取孕妇外周血微量胎儿RNA的方法", 《中国生物化学与分子生物学报》 * |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN112708618A (zh) * | 2020-12-30 | 2021-04-27 | 广州博江生物科技有限公司 | 一种快速裂解细胞、病毒及细菌进行核酸提取的裂解液 |
CN112725334A (zh) * | 2021-02-23 | 2021-04-30 | 山东思科捷生物技术有限公司 | 一种细胞rna快速提取试剂盒及rna提取方法 |
CN114908081A (zh) * | 2022-04-29 | 2022-08-16 | 杭州新景生物试剂开发有限公司 | 一种核酸提取试剂及其试剂盒以及快速萃取分离纯化核酸的方法 |
CN114908081B (zh) * | 2022-04-29 | 2024-06-18 | 杭州新景生物试剂开发有限公司 | 一种核酸提取试剂及其试剂盒以及快速萃取分离纯化核酸的方法 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN110804609A (zh) | 一种全血rna快速裂解液及应用 | |
US8048681B2 (en) | Methods for nucleic acid isolation and instruments for nucleic acid isolation | |
CN111808844A (zh) | 一种同时提取dna和rna的试剂盒及其使用方法 | |
US8017332B2 (en) | Magnetic method for recovering nucleic acid from a mixed cell suspension | |
WO2008089280A2 (en) | Selective lysis of sperm cells | |
CN110257368A (zh) | 从含有游离核酸的样品中分离游离核酸的方法和系统 | |
CN111996190A (zh) | 一种全血基因组dna提取试剂盒 | |
JP2018198599A (ja) | 核酸の精製のための1工程法 | |
CN102154264A (zh) | 一种快速提取血液总核糖核酸的方法 | |
CN112941067A (zh) | 一种全血核酸提取用裂解结合液及其试剂盒和应用 | |
CN114908081B (zh) | 一种核酸提取试剂及其试剂盒以及快速萃取分离纯化核酸的方法 | |
CN106928315B (zh) | 基于氧化石墨烯的核酸结合蛋白提取方法 | |
CN110699429B (zh) | 一种尿液dna提取保存液、尿液保存管、提取试剂盒和提取方法 | |
CN112080492A (zh) | 一种高得率的游离dna和rna共抽提试剂盒及使用方法 | |
CN108866042B (zh) | 一种微量rna的提取方法 | |
CN112458082A (zh) | 快速一步法核酸提取试剂及其制备方法 | |
RU2603098C1 (ru) | Способ выделения циркулирующих днк из плазмы или сыворотки крови | |
RU2808832C1 (ru) | Способ выделения рибонуклеиновой кислоты вируса из спинномозговой жидкости для молекулярно-биологических исследований | |
CN109182328B (zh) | 一种线粒体dna提取试剂盒和方法 | |
CN109355286A (zh) | 一种免前处理自动化提取大体积全血dna的方法 | |
DE19607202A1 (de) | Reagenzienkit zur Präparation von Nukleinsäuren | |
CN114107449B (zh) | 一种单细胞内原位qPCR方法 | |
CN117625740B (zh) | 一种从Trizol样品中快速提取适用于高通量测序的DNA的方法 | |
CN115201356B (zh) | 一种高通量无偏见的内源性液-液相分离蛋白质筛选方法 | |
US20240002833A1 (en) | Method for isolating nucleic acid using binding buffer including compound having low or intermediate dielectric constant |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
PB01 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination |