RU2808832C1 - Способ выделения рибонуклеиновой кислоты вируса из спинномозговой жидкости для молекулярно-биологических исследований - Google Patents

Способ выделения рибонуклеиновой кислоты вируса из спинномозговой жидкости для молекулярно-биологических исследований Download PDF

Info

Publication number
RU2808832C1
RU2808832C1 RU2022130421A RU2022130421A RU2808832C1 RU 2808832 C1 RU2808832 C1 RU 2808832C1 RU 2022130421 A RU2022130421 A RU 2022130421A RU 2022130421 A RU2022130421 A RU 2022130421A RU 2808832 C1 RU2808832 C1 RU 2808832C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
rna
sample
csf
ratio
resulting
Prior art date
Application number
RU2022130421A
Other languages
English (en)
Inventor
Тарек Мохамедович Итани
Александр Григорьевич Сергеев
Владислав Игоревич Чалапа
Original Assignee
Федеральное бюджетное учреждение науки "Федеральный научно-исследовательский институт вирусных инфекций "ВИРОМ" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (ФБУН ФНИИВИ "ВИРОМ" Роспотребнадзора)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное бюджетное учреждение науки "Федеральный научно-исследовательский институт вирусных инфекций "ВИРОМ" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (ФБУН ФНИИВИ "ВИРОМ" Роспотребнадзора) filed Critical Федеральное бюджетное учреждение науки "Федеральный научно-исследовательский институт вирусных инфекций "ВИРОМ" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (ФБУН ФНИИВИ "ВИРОМ" Роспотребнадзора)
Application granted granted Critical
Publication of RU2808832C1 publication Critical patent/RU2808832C1/ru

Links

Images

Abstract

Изобретение относится к молекулярной биологии. Предложен способ выделения РНК вируса из спинномозговой жидкости (СМЖ), включающий концентрацию образца СМЖ в центробежном вакуумном концентраторе с ускорением 150-300 g и отрицательным давлением 2 кПа до уменьшения конечного объема образца в 4 или в 5 раз; добавление в соотношении 1:10 лизирующего раствора, содержащего 4 М гуанидина тиоцианата, 25 мМ цитрата натрия, 0,5% натрия лаурилсаркозината, 0,1 М 2-меркоптоэтанола, инкубирование смеси до полного растворения компонентов; далее последовательно добавляют в соотношении 1:10:2 1-3 М ацетат натрия, фенол и смесь хлороформа с изоамиловым спиртом в соотношении 49:1 при перемешивании; охлаждают и центрифугируют с ускорением 10-13 тыс. g; верхнюю прозрачную водную фазу переосаждают добавлением изопропанола и инкубированием при минус 20°С; полученную РНК дополнительно очищают методом аффинной сорбции с использованием диоксида кремния. Изобретение обеспечивает повышение концентрации и степени очистки РНК при ее выделении из биологических образцов СМЖ с низкой исходной концентрацией возбудителя. 1 ил., 2 табл., 4 пр.

Description

Изобретение относится к способам выделения РНК вируса из спинномозговой жидкости (СМЖ) и может быть использовано в области медицины и молекулярной биологии для индикации и идентификации нейровирулентных РНК-содержащих вирусов с применением полимеразной цепной реакции с обратной транскрипцией (ОТ-ПЦР) и других молекулярно-биологических методов.
Известно, что концентрация нейровирулентных вирусов в СМЖ может быть крайне низкой, что затрудняет индикацию и идентификацию возбудителя молекулярно-биологическими методами [1-5]. Применительно к диагностике энтеровирусной инфекции это приводит к необходимости детекции РНК возбудителя в фекалиях, что в свою очередь увеличивает вероятность ложноположительного результата из-за высокой распространенности бессимптомного носительства возбудителя [2]. Использование культуральных методов для повышения концентрации возбудителя применяется, но является длительным и трудоемким [1,5].
Выделение нуклеиновых кислот (НК) из образцов биоматериала включает следующие этапы: высвобождение (лизирование), сепарация (отделение НК от балластных веществ, включая механические примеси, белки и т.п.), очистка (удаление остаточных примесей) и (опционально) концентрирование [6].
Известные методы лизирования включают воздействие солей [7], хаотропных агентов (гуанидина тиоцианат), детергентов (натрия додецилсульфат), ферментов и физических факторов [8,9]. При этом гуанидина тиоцианат является предпочтительным средством лизирования для выделения РНК, поскольку обладает свойством инактивировать нуклеазы [10].
Для отделения НК от балластных веществ и примесей применяются методы, связанные с разделением в жидкой или твердой фазах [6]. Для отделения НК в жидкой среде используется фенол (который также денатурирует белки), часто в сочетании с хлороформом и изоамиловым спиртом [11]. Последние способствуют разделению фаз с переходом НК в водный раствор, а также препятствуют пенообразованию. Дальнейшим этапом выделения и концентрирования является осаждение НК спиртами (этанолом или изопропанолом) в присутствии солей (ацетата натрия, ацетата аммония, хлорида натрия) [12]. Осажденные НК концентрируются путем центрифугирования и промываются с последующим их растворением. Описанный метод позволяет получать высокоочищенные НК, однако отличается трудоемкостью. Кроме того, спирты помимо НК способны осаждать и другие вещества, содержащиеся в исходных образцах [6].
Отделение НК с использованием твердой фазы предполагает разделение в геле, основанное на разнице молекулярных масс [13], ионообменную хроматографию с обратимой адсорбцией на основе заряда молекул [14, 15] и аффинную хроматографию с обратимой адсорбцией [16]. Последний метод является наиболее распространенным и основан на способности НК адсорбироваться на поверхности диоксида кремния (диатомита) в присутствии спиртов и солей или хаотропных агентов при рН менее 7 в безводной среде. Данный метод отличается технической простотой реализации, поскольку не требует неоднократного промывания осажденной НК с ручным удалением надосадочной жидкости.
Известен способ выделения РНК кишечных вирусов для анализа с использованием обратной транскрипции/полимеразной цепной реакции (патент РФ №2313792, МПК G01N 33/50, С 12Q1 /68, опубл. 27.12.2007 г.) [20], включающий разрушение вирионов путем прогревания в лизирующем буфере, фракционирование лизата и осаждение целевого продукта, отличающийся тем, что фракционирование лизата проводят путем центрифугирования в присутствии перхлората натрия, РНК осаждают охлажденным изопропиловым спиртом.
Известен способ выделения нуклеиновых кислот из СМЖ (патент США №10633647, МПК C12N 15/10, опубл. 28.04.2020 г.) [18], включающий: получение связывающего фрагмента раствора в технологической камере; смешивание связующего раствора фрагмента с биологическим образцом в технологической камере с целью получения смеси из фрагмента образца; инкубация смеси фрагмента-образца в течение временного окна, тем самым получая раствор, содержащий набор частиц нуклеиновых кислот, связанных фрагментом, и объем отходов; отделение множества связанных с фрагментами частиц нуклеиновых кислот от объема отходов; промывка набора частиц нуклеиновых кислот, связанных с фрагментами; и высвобождение образца нуклеиновой кислоты из набора частиц нуклеиновых кислот, связанных фрагментами. Способ предпочтительно использует связующий фрагмент, содержащий, по меньшей мере, один из поли(аллиламина) и полипропиленимин тетрамина дендримера, оба из которых обратимо связываются и не привязаны к нуклеиновым кислотам на основе рН окружающей среды.
Наиболее близким аналогом (прототипом) к предлагаемому способу является метод выделения РНК с использованием гуанидина тиоцианата, фенола и хлороформа [17] (далее сравниваемый метод №1). Указанный способ выделения общей РНК из биологических образцов различных источников состоит в следующем. РНК отделяют от ДНК после экстракции кислым раствором, содержащим тиоцианат гуанидина, ацетат натрия, фенол и хлороформ, с последующим центрифугированием. В кислых условиях общая РНК остается в верхней водной фазе, в то время как большая часть ДНК и белков остается либо в интерфазе, либо в нижней органической фазе.
Затем общая РНК восстанавливается путем осаждения изопропанолом и может быть использована для нескольких применений. Оригинальный протокол позволяет выделять РНК из клеток и тканей менее чем за 4 часа. Данный метод является одним из наиболее эффективных с точки зрения полноты выделения продукта и степени его очистки [10].
Вместе с тем, он не устраняет проблему низкой концентрации вируса в исходном образце, а получаемый препарат РНК нуждается в повторном переосаждении для удаления остаточного количества примесей, что может приводить к частичной потере РНК.
В отличие от способа-прототипа, предлагаемый способ предполагает предварительное концентрирование образца и дополнительную очистку РНК методом аффинной сорбции.
В отличие от другого способа выделения РНК нейровирулентного вируса из СМЖ [18] и от выделения методом аффинной сорбции [16] (далее сравниваемый метод №2), предлагаемый способ включает этапы концентрирования и избирательного растворения РНК с последующим осаждением, что обеспечивает повышение концентрации и степени очистки РНК при ее выделении из биологических образцов (спинномозговой жидкости) с низкой исходной концентрацией возбудителя при ожидаемом отсутствии ингибиторов ОТ и ПЦР.
Техническим результатом заявляемого технического решения является повышение концентрации и степени очистки РНК при ее выделении из биологических образцов СМЖ с низкой исходной концентрацией возбудителя при ожидаемом отсутствии ингибиторов ОТ и ПЦР.
Указанный технический результат достигается тем, что в способе выделения РНК вируса из спинномозговой жидкости (СМЖ) для молекулярно-биологических исследований, согласно изобретения, образец СМЖ предварительно концентрируют в центробежном вакуумном концентраторе для частичного удаления из него воды с ускорением 150-300 g и отрицательным давлением 2 кПа до уменьшения конечного объема образца не менее чем в 5 раз; к полученному концентрату СМЖ добавляют в соотношении 1:10 лизирующий раствор, содержащий 4 М гуанидина тиоцианата, 25 мМ цитрата натрия, 0,5% натрия лаурилсаркозината, 0,1 М 2-меркоптоэтанола, смесь инкубируют до полного растворения компонентов и к полученному раствору последовательно добавляют в соотношении 1:10:2 1-3 М ацетат натрия, фенол и смесь хлороформа с изоамиловым спиртом в соотношении 49:1 при перемешивании; полученный образец охлаждают и центрифугируют с ускорением 10-13 тыс. g; из полученной жидкости отбирают верхнюю прозрачную водную фазу, содержащую растворенную РНК, которую переосаждают добавлением изопропанола и инкубированием при температуре не менее минус 20°С; полученный образец осадка РНК переносят в колонку с мембраной из диоксида кремния и центрифугируют при 10-13 тыс. g; адсорбированную РНК промывают 70-90% раствором этанола и остаток этанола с мембраны удаляют центрифугированием с ускорением 10-13 тыс. g с последующим удалением очищенной РНК с мембраны колонки растворением в воде.
Таким образом сущность изобретения заключается в предварительном концентрировании образца, выделением РНК путем ее высвобождения под воздействием хаотропного агента - гуанидина тиоцианата, сепарации в присутствии фенола и хлороформа в кислой среде с последующим переосаждением и очисткой методом аффинной сорбции диоксидом кремния.
Изобретение поясняется чертежом, представленным на фиг. 1, на котором изображены стадии выделения РНК вируса из спинномозговой жидкости для молекулярно-биологических исследований.
Пример 1. Способ выделения рибонуклеиновой кислоты вируса из спинномозговой жидкости для молекулярно-биологических исследований представлен на фиг. 1 и более подробно реализуется (с минимальным содержанием веществ и других параметров способа) следующим образом. Образец СМЖ объемом 0,5 мл переносят в стерильную пробирку и помещают в центробежный вакуумный концентратор для частичного удаления воды из образца. Образец концентрируется с ускорением 150 g и отрицательным давлением 2 кПа в течение 40 минут. Для предотвращения пересушивания образца процедуру проводят до достижения конечного объема образца 0,1 мл. К 0,1 мл полученного концентрата добавляют 1 мл лизирующего раствора, содержащего 4 М гуанидина тиоцианата, 25 мМ цитрата натрия, рН 6, натрия лаурилсаркозината в концентрации 0,5%, 0,1 М 2-меркоптоэтанола. Смесь инкубируют при комнатной температуре в течение 12 минут. К полученному раствору последовательно добавляют 0,1 мл 1 М ацетата натрия, рН 4,0, 1 мл фенола, 0,2 мл смеси хлороформа с изоамиловым спиртом в соотношении 49:1; полученную смесь перемешивают встряхиванием вручную в течение 10 секунд. Образец охлаждают на льду в течение 15 минут и центрифугируют с ускорением 10 тыс.g в течение 20 минут при температуре 4°С. Из полученной жидкости отбирают верхнюю прозрачную водную фазу, содержащую растворенную РНК. Раствор переосаждают добавлением 1 мл изопропанола и инкубированием при температуре - 20°С в течение 60 минут. Образец переносят в колонку с мембраной из диоксида кремния и центрифугируют при 10 тыс.g в течение 30 секунд. Адсорбированную РНК дважды промывают 70% раствором этанола объемом 0,5 мл, остаток этанола с мембраны удаляют центрифугированием с ускорением 10 тыс.g в течение 30 секунд и подсушиванием на воздухе при комнатной температуре в течение 5 минут. Затем РНК элюируют в 25 мкл воды, оставляя мембрану колонки с нанесенной на нее водой в течение 3 минут.
Пример 2. Способ выделения рибонуклеиновой кислоты вируса из спинномозговой жидкости для молекулярно-биологических исследований (фиг. 1) более подробно реализуется (с максимальным содержанием веществ и других параметров способа) следующим образом. Образец СМЖ объемом 0,6 мл переносят в стерильную пробирку и помещают в центробежный вакуумный концентратор для частичного удаления воды из образца. Образец концентрируется с ускорением 300 g и отрицательным давлением 2 кПа в течение 60 минут. Для предотвращения пересушивания образца процедуру проводят до достижения конечного объема образца 0,15 мл. К 0,15 мл полученного концентрата добавляют 1 мл лизирующего раствора, содержащего 4 М гуанидина тиоцианата, 25 мМ цитрата натрия, рН 8, натрия лаурилсаркозината в концентрации 0,5%, 0,1 М 2-меркоптоэтанола. Смесь инкубируют при комнатной температуре в течение 15 минут. К полученному раствору последовательно добавляют 0,1 мл 3 М ацетата натрия, рН 4,0, 1 мл фенола, 0,2 мл смеси хлороформа с изоамиловым спиртом в соотношении 49:1; полученную смесь перемешивают встряхиванием вручную в течение 15 секунд. Образец охлаждают на льду в течение 15 минут и центрифугируют с ускорением 13 тыс. g в течение 20 минут при температуре 4°С. Из полученной жидкости отбирают верхнюю прозрачную водную фазу, содержащую растворенную РНК. Раствор переосаждают добавлением 1 мл изопропанола и инкубированием при температуре - 20°С в течение 70 минут. Образец переносят в колонку с мембраной из диоксида кремния и центрифугируют при 13 тыс. g в течение 40 секунд. Адсорбированную РНК дважды промывают 90% раствором этанола объемом 0,5 мл, остаток этанола с мембраны удаляют центрифугированием с ускорением 13 тыс. g в течение 60 секунд и подсушиванием на воздухе при комнатной температуре в течение 10 минут. Затем РНК элюируют в 25 мкл воды, оставляя мембрану колонки с нанесенной на нее водой в течение 5 минут.
Ниже приведены примеры 3-4 конкретного выполнения заявляемого способа.
Пример 3. Сравнительные результаты выделения РНК Echovirus Е6 с использованием предлагаемого способа и двух альтернативных методов-аналогов.
Результаты выделения РНК сравнивали, используя продукт выделения для ОТ-ПЦР в соответствии с ранее описанной методикой, применяемой для генотипирования энтеровирусов [19]. Образцы РНК из СМЖ выделяли предлагаемым методом по примеру 1, а также методом с использованием гуанидина тиоцианата, фенола и хлороформа (далее метод №1) и методом аффинной сорбции с диоксидом кремния (далее метод №2). Образцы РНК использовали для постановки ОТ-ПЦР, результаты визуализировали с использованием электрофореза в агарозном геле с окрашиванием бромистым этидием. Ампликоны выделяли из геля и очищали с использованием коммерческого набора «Cleanup Standard)) (производитель ЗАО «Евроген))) и концентрацию продукта измеряли с использованием спектрофотометра.
Концентрация продукта ОТ-ПЦР, РНК для постановки которой была выделена предлагаемым методом, была статистически значимо выше, чем в группе метода №1 и метода №2 (критерий Краскела-Уоллиса 8,96, df=2, р=0,01; post-hoc тест Коновера-Аймана: р=0,0022 для предлагаемого метода и метода №1, р=0,0005 для предлагаемого метода и метода №2, таблица 1).
Пример 4. Сравнительные результаты выделения РНК Coxsackievirus А9 с использованием предлагаемого метода и двух альтернативных методов. Образцы РНК из СМЖ выделяли предлагаемым методом по примеру 2, а также методом с использованием гуанидина тиоцианата, фенола и хлороформа (далее метод №1) и методом аффинной сорбции с диоксидом кремния (далее метод №2).
Результаты выделения РНК сравнивали, как описано в Примере 3.
Концентрация продукта ОТ-ПЦР, РНК для постановки которой была выделена предлагаемым методом, была статистически значимо выше, чем в группе метода №1 и метода №2 (критерий Краскела-Уоллиса 6.74, df=2, р=0,03; post-hoc тест Коновера-Аймана: р=0,0109 для предлагаемого метода и метода №1, р=0,0047 для предлагаемого метода и метода №2, таблица 2).
Источники научно-технической и патентной информации
1. Kermanian М. и др. Enrichment of cerebrospinal fluid samples on cell culture for enhancement of sensitivity of mumps and enterovirus detection by multiplex RT-PCR // Diagn Microbiol Infect Dis. 2008. T. 60, №4. C. 375-379.
2. Harvala H. и др. Recommendations for enterovirus diagnostics and characterisation within and beyond Europe // Journal of Clinical Virology. 2018. T. 101. C. 11-17.
3. Edridge A.W.D. и др. Viral Metagenomics on Cerebrospinal Fluid // Genes (Basel). 2019. T. 10, №5. C. 332.
4. Miller S. и др. Laboratory validation of a clinical metagenomic sequencing assay for pathogen detection in cerebrospinal fluid // Genome Res. 2019. T. 29, №5. C. 831-842.
5. Faleye T.O.C., Adewumi M.O., Adeniji J.A. Defining the Enterovirus Diversity Landscape of a Fecal Sample: A Methodological Challenge? // Viruses. 2016. T. 8, №1. С. E18.
6. Thatcher S.A. DNA/RNA Preparation for Molecular Detection // Clinical Chemistry. 2015. T. 61, №1. c. 89-99.
7. Miller S.A., Dykes D.D., Polesky H.F. A simple salting out procedure for extracting DNA from human nucleated cells // Nucleic Acids Res. 1988. T. 16, №3. C. 1215.
8. Birnboim H.C., Doly J. A rapid alkaline extraction procedure for screening recombinant plasmid DNA //Nucleic Acids Res. 1979. T. 7, №6. C. 1513-1523.
9. van Tongeren S.P., Degener J.E., Harmsen H.J.M. Comparison of three rapid and easy bacterial DNA extraction methods for use with quantitative real-time PCR // Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 2011. T. 30, №9. С.1053-1061.
10. Chomczynski P., Sacchi N. The single-step method of RNA isolation by acid guanidinium thiocyanate-phenol-chloroform extraction: twenty-something years on // Nat Protoc. 2006. Т. 1, №2. C. 581-585.
11. Moore D., Dowhan D. Purification and concentration of DNA from aqueous solutions // Curr Protoc Mol Biol. 2002. T. Chapter 2. C. Unit 2.1 A.
12. Eickbush Т.Н., Moudrianakis E.N. The compaction of DNA helices into either continuous supercoils or folded-fiber rods and toroids // Cell. 1978. T. 13, №2. C. 295-306.
13. Adeli K., Ogbonna G. Rapid purification of human DNA from whole blood for potential application in clinical chemistry laboratories // Clin Chem. 1990. T. 36, №2. C. 261-264.
14. Polski J.M. и др. Rapid and effective processing of blood specimens for diagnostic PCR using filter paper and Chelex-100 // Mol Pathol. 1998. T. 51, №4. C. 215-217.
15. Feng G. и др. A new ion-exchange adsorbent with paramagnetic properties for the separation of genomic DNA // Analyst. 2011. T. 136, №22. C. 4822-4829.
16. Vogelstein В., Gillespie D. Preparative and analytical purification of DNA from agarose // Proc Natl Acad Sci USA. 1979. T. 76, №2. C. 615-619.
17. Chomczynski P., Sacchi N. Single-step method of RNA isolation by acid guanidinium thiocyanate-phenol-chloroform extraction // Anal Biochem. 1987. T. 162, №1. С. 156-159 (прототип).
18. Патент США №10633647, МПК C12N 15/10, опубл. 28.04.2020 г.
19. Nix W.A., Oberste M.S., Pallansch M.A. Sensitive, Seminested PCR Amplification of VP1 Sequences for Direct Identification of All Enterovirus Serotypes from Original Clinical Specimens // Journal of Clinical Microbiology. 2006. T. 44, №8. C. 2698-2704.
20. Патент РФ №2313792, МПК G01N33/50, С 12Q1/68, опубл. 27.12.2007 г.

Claims (1)

  1. Способ выделения РНК вируса из спинномозговой жидкости (СМЖ) для молекулярно-биологических исследований, характеризующийся тем, что образец СМЖ предварительно концентрируют в центробежном вакуумном концентраторе для частичного удаления из него воды с ускорением 150-300 g и отрицательным давлением 2 кПа до уменьшения конечного объема образца в 4 или в 5 раз; к полученному концентрату СМЖ добавляют в соотношении 1:10 лизирующий раствор, содержащий 4 М гуанидина тиоцианата, 25 мМ цитрата натрия, 0,5% натрия лаурилсаркозината, 0,1 М 2-меркоптоэтанола, смесь инкубируют до полного растворения компонентов и к полученному раствору последовательно добавляют в соотношении 1:10:2 1-3 М ацетат натрия, фенол и смесь хлороформа с изоамиловым спиртом в соотношении 49:1 при перемешивании; полученный образец охлаждают и центрифугируют с ускорением 10-13 тыс. g; из полученной жидкости отбирают верхнюю прозрачную водную фазу, содержащую растворенную РНК, которую переосаждают добавлением изопропанола и инкубированием при температуре минус 20°С; полученный образец осадка РНК переносят в колонку с мембраной из диоксида кремния и центрифугируют при 10-13 тыс. g; адсорбированную РНК промывают 70-90% раствором этанола и остаток этанола с мембраны удаляют центрифугированием с ускорением 10-13 тыс. g с последующим удалением очищенной РНК с мембраны колонки растворением в воде.
RU2022130421A 2022-11-23 Способ выделения рибонуклеиновой кислоты вируса из спинномозговой жидкости для молекулярно-биологических исследований RU2808832C1 (ru)

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2808832C1 true RU2808832C1 (ru) 2023-12-05

Family

ID=

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2382081C2 (ru) * 2008-03-12 2010-02-20 Объединенный Институт Ядерных Исследований Способ выделения и очистки нуклеиновых кислот
RU2585232C1 (ru) * 2015-05-06 2016-05-27 Общество с ограниченной ответственностью "БиоСилика" Способ выделения микрорнк из биологических жидкостей

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2382081C2 (ru) * 2008-03-12 2010-02-20 Объединенный Институт Ядерных Исследований Способ выделения и очистки нуклеиновых кислот
RU2585232C1 (ru) * 2015-05-06 2016-05-27 Общество с ограниченной ответственностью "БиоСилика" Способ выделения микрорнк из биологических жидкостей

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
CHOMCZYNSKI P., SACCHI N. "The single-step method of RNA isolation by acid guanidinium thiocyanate-phenol-chloroform extraction: twenty-something years on"; Natural protocols, 2006, v.1, N 2, p.581-585. VOGELSEIN B., GILLESPIE D. "Preparative and analytical purification of DNA from agarose"; Proceedings of the National Academy of Sciences, 1979, v.76(2), p.615-619. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US10947527B2 (en) Compositions and methods for purifying nucleic acids from stabilization reagents
KR101005924B1 (ko) 핵산 추출 장치
ES2535809T3 (es) Métodos para aislar ácidos nucleicos
CN109385418B (zh) 一种用于动物样本中病毒/细菌核酸提取的方法及试剂
CN108410951B (zh) 一种新的核酸提取试剂及其应用
McCaustland et al. Application of two RNA extraction methods prior to amplification of hepatitis E virus nucleic acid by the polymerase chain reaction
US9006420B2 (en) Method for concentrating and isolating biomolecules or viruses
KR101006562B1 (ko) 핵산 추출 방법
AU1633199A (en) Methods of nucleic acid isolation
JP2005508641A (ja) 核酸の単離および精製
EP2115123A2 (en) Selective lysis of sperm cells
JP2019521640A (ja) タンパク質系試料回収マトリックス及び装置
WO2022008591A1 (en) Method for isolating nucleic acid
JP2004500002A (ja) Dnaを単離するための溶出試薬、方法およびキット
RU2808832C1 (ru) Способ выделения рибонуклеиновой кислоты вируса из спинномозговой жидкости для молекулярно-биологических исследований
ES2965460T3 (es) Método automatizable para el aislamiento de ácidos nucleicos
CN111718927A (zh) 一种提高核酸稳定性的保存液及其应用
ES2665280T3 (es) Métodos para la extracción y purificación de componentes de muestras biológicas
Thatcher Nucleic acid isolation
JP2003529314A (ja) Dnaを単離し、増幅し、そして特性化するための方法
CN112251490B (zh) 一种RNA pulldown的回收试剂盒及其应用
US10982207B2 (en) Method of isolating nucleic acids for long sequencing reads
CN108866042B (zh) 一种微量rna的提取方法
JP4519247B2 (ja) 核酸の抽出精製用試薬
RU2628695C1 (ru) Способ выделения РНК и ДНК из сухих биологических образцов, хранившихся на бумажном носителе, и набор для его осуществления