CN114082222B - 狭果茶藨子游离氨基酸纯化方法 - Google Patents

狭果茶藨子游离氨基酸纯化方法 Download PDF

Info

Publication number
CN114082222B
CN114082222B CN202111241256.8A CN202111241256A CN114082222B CN 114082222 B CN114082222 B CN 114082222B CN 202111241256 A CN202111241256 A CN 202111241256A CN 114082222 B CN114082222 B CN 114082222B
Authority
CN
China
Prior art keywords
amino acid
adsorption
eluent
desorption
flow rate
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
CN202111241256.8A
Other languages
English (en)
Other versions
CN114082222A (zh
Inventor
叶英
杨芳
王虹
刘哲
石世薇
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Qinghai University
Original Assignee
Qinghai University
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Qinghai University filed Critical Qinghai University
Priority to CN202111241256.8A priority Critical patent/CN114082222B/zh
Publication of CN114082222A publication Critical patent/CN114082222A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN114082222B publication Critical patent/CN114082222B/zh
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Images

Classifications

    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01DSEPARATION
    • B01D15/00Separating processes involving the treatment of liquids with solid sorbents; Apparatus therefor
    • B01D15/08Selective adsorption, e.g. chromatography
    • B01D15/26Selective adsorption, e.g. chromatography characterised by the separation mechanism
    • B01D15/36Selective adsorption, e.g. chromatography characterised by the separation mechanism involving ionic interaction
    • B01D15/361Ion-exchange
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01DSEPARATION
    • B01D15/00Separating processes involving the treatment of liquids with solid sorbents; Apparatus therefor
    • B01D15/08Selective adsorption, e.g. chromatography
    • B01D15/10Selective adsorption, e.g. chromatography characterised by constructional or operational features
    • B01D15/20Selective adsorption, e.g. chromatography characterised by constructional or operational features relating to the conditioning of the sorbent material
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01DSEPARATION
    • B01D15/00Separating processes involving the treatment of liquids with solid sorbents; Apparatus therefor
    • B01D15/08Selective adsorption, e.g. chromatography
    • B01D15/42Selective adsorption, e.g. chromatography characterised by the development mode, e.g. by displacement or by elution
    • B01D15/424Elution mode
    • B01D15/426Specific type of solvent

Abstract

本发明提供了狭果茶藨子氨基酸纯化方法,狭果茶藨子乙醇提取物,过离子交换树脂,上样液浓度0.01~0.030g/mL,上样流速0.5~2.5mL/min,上样液pH 3~7,氨水洗脱液体积分数0.5~2.5%,洗脱流速0.5~2.5mL/min,洗脱液体积30~70mL。该研究可为青藏高原狭果茶藨子氨基酸成分的纯化提供技术支持。

Description

狭果茶藨子游离氨基酸纯化方法
技术领域
本发明涉及对天然植物有效成分的提取。
背景技术
狭果茶藨子(Ribes stenocarpum Maxim.)又名长果醋栗[1],是青藏高原地区特有的野生浆果资源。该属植物果实椭圆鲜亮,富含浆汁,其中含有丰富的生物活性成分,如氨基酸、维生素、酚类化合物等,不仅表现出很高的营养价值,而且具有清热解毒、抗菌等作用[2],长期以来被当地居民作为食物用来预防感冒,因此,被认为是潜在很高的药用价值。研究表明,增加可食性浆果的摄入,对降低糖尿病和高血压等多种慢性疾病具有防护作用[3-5]。青藏高原茶藨子资源丰富,大多处于野生状态,其对其化学成分的研究尚处于起步阶段,因此,对狭果茶藨子中氨基酸成分研究具有重要意义。
氨基酸作为生命活动必需的物质基础,其中大部分以游离态或结合态形式存在于肽和蛋白质中[6-7]。在天然植物资源中主要以游离态形式存在,且丰富的游离氨基酸是浆果中主要的营养成分[8-9],不仅可以参与人体新陈代谢,提高免疫机制,同时氨基酸的含量与种类也是评价食品营养价值的重要指标之一[10]。目前,国内外研究多关注于蛋白质中结合态氨基酸的提取、纯化及成分分析[11-14],从而忽略了关于植物浆果鲜样中游离氨基酸的相关研究。现已证明,植物资源中游离氨基酸具有抗肿瘤、降血压及调节肠道菌群等多种生理功能[15-17],但是由于不同溶剂提取的游离氨基酸粗提液会伴随其他成分的溶出,影响其纯度,因而有必要对氨基酸粗提液进行纯化,以便下一步更加系统科学的分析其生物活性。如今,离子交换树脂通过离子间吸附、交换等功能,在稳定性、吸附能力、机械强度方面表现出了很好的优势[18],在天然产物氨基酸混合溶液提纯中得到了广泛的应用。因此,课题组在前期确定狭果茶藨子氨基酸最优提取工艺的基础上,通过考察5种不同类型离子交换树脂对狭果茶藨子鲜果中游离氨基酸静态动力学的试验,筛选出具有良好吸附、解吸性能的树脂,并结合动态吸附-解吸动力学单因素和响应面试验对狭果茶藨子鲜果中游离氨基酸进行纯化工艺研究,旨在为提高青藏高原狭果茶藨子的成分研究与后续开发提供理论科学依据。
发明内容
本发明提供了狭果茶藨子氨基酸纯化方法,狭果茶藨子乙醇提取物,过离子交换树脂,上样液浓度0.01~0.030g/mL,上样流速0.5~2.5mL/min,上样液pH 3~7,氨水洗脱液体积分数0.5~2.5%,洗脱流速0.5~2.5mL/min,洗脱液体积30~70mL。
其中,所述离子交换树脂选自SA-2、001*7、201*7、D61、D152。
进一步地,所述离子交换树脂选自001*7。
其中,上样浓度0.02-0.03mg/mL,上样流速0.8~1.0mL/min,上样液pH 4.6-4.7,氨水洗脱液体积分数1.-1.6%,洗脱流速1.4-1.6mL/min,洗脱液体积60~62mL。
进一步地,上样液浓度0.025mg/mL,上样流速0.9mL/min,上样液pH 4.66,氨水洗脱液体积分数1.54%,洗脱流速1.50mL/min,洗脱液体积61.67mL。
其中,狭果茶藨子乙醇提取物,是以30~50%乙醇提取所得。
进一步地,乙醇提取物的提取方法:超声时间30min、料液比1:35g/mL、超声温度55℃、超声功率300W、乙醇浓度40%、提取次数2次,即得。
为建立狭果茶藨子鲜果氨基酸纯化工艺,提高青藏高原狭果茶藨子天然资源的利用价值。本研究通过静态吸附-解吸动力学试验对SA-2、201*7、001*7、D61、D152共5种不同类型的离子交换树脂进行筛选,并结合动态吸附-解吸动力学单因素试验和响应面设计优化狭果茶藨子鲜果氨基酸纯化工艺。结果表明,001*7离子交换树脂对狭果茶藨子鲜果氨基酸有较好的吸附和解吸效果,吸附率达70.73±0.47%,解吸率达91.29±2.60%。最优纯化条件为:狭果茶藨子氨基酸质量浓度0.025g/mL,上样液流速0.9mL/min,上样液pH 4.66,氨水洗脱液体积分数1.54%,洗脱流速1.50mL/min,洗脱液体积61.67mL,此条件下狭果茶藨子氨基酸纯度从23.26%提高到77.50%,提高了54.24%。该研究可为青藏高原狭果茶藨子氨基酸成分的纯化提供技术支持。
附图说明
图1上样液浓度对吸附效果的影响
图2上样液流速对吸附效果的影响
图3上样液的pH值对吸附效果的影响
图4洗脱液体积分数对解吸效果的影响
图5洗脱液体积对吸附效果的影响
图6洗脱流速对解吸效果的影响
图7吸附工艺优化试验响应面模型及等高线图
图8解吸工艺优化试验响应面模型及等高线图
具体实施方式
实施例1本发明纯化工艺研究
1材料与方法
1.1材料与试剂
狭果茶藨子:青海省互助,采集地海拔3029米,经度101° 50.926,纬度36°57.670,采摘后于-20℃冰箱冻藏备用。
SA-2、001*7、201*7、D61、D152型树脂(批号:HC210409,郑州和成新材料科技有限公司);无水乙醇、水合茚三酮、磷酸二氢钾、磷酸氢二钠、氨水、盐酸(分析纯,天津永大化学试剂)。
1.2仪器与设备
YM-031S型超声波清洗机(深圳市福洋科技有限公司);R-1001VN型旋蒸仪(郑州长城科技工贸有限公司);SPH-304型新型脱色摇床(上海世平试验设备有限公司);HL-2B恒流泵(上海驰唐电子有限公司);UV-1780型紫外可见分光光度计(苏州岛津仪器有限分公司)。
1.3实验方法
1.3.1狭果茶藨子游离氨基酸的提取
取适量成熟饱满且无机械损伤的狭果茶藨子鲜果,室温下解冻,洗净、沥干水分,用多样品组织研磨仪研磨成浆状。采用超声波辅助提取法提取狭果茶藨子游离氨基酸,工艺参数为:超声时间30min、料液比1:35(g/mL)、超声温度55℃、超声功率300W、乙醇浓度40%、提取次数2次,得游离氨基酸粗提取液,于4℃冰箱冷藏备用。
1.3.2狭果茶藨子游离氨基酸的测定[19]
量取5mg/mL的谷氨酸标品溶液0.00、0.20、0.40、0.60、0.80、1.00、1.20mL于试管,蒸馏水补至10mL,移取上述溶液各2mL于10mL容量瓶,分别加入磷酸盐缓冲液2mL,茚三酮溶液1mL,摇匀,沸水浴20min,冷却后定容,于566nm处测定吸光度值,以谷氨酸浓度为横坐标,吸光度为纵坐标,得到回归方程y=1.6491x-0.0116,R2=0.9957。准确移取稀释到一定浓度的狭果茶藨子游离氨基酸溶液2mL,按上述标准曲线操作方法,依次加入各试剂,在566nm处测定吸光度,按照回归方程计算狭果茶藨子中的游离氨基酸含量:
Figure BDA0003319622310000031
式中:c-狭果茶藨子氨基酸质量浓度,mg/mL;v-提取液总体积,mL;n-稀释倍数;m-狭果茶藨子鲜果浆液的质量,g。
1.3.3树脂的预处理和再生
分别称取适量型号为SA-2、001*7、201*7、D61、D152的离子交换树脂按照文献[20]进行预处理。
1.3.4最佳树脂类型的筛选
吸附率的计算:分别称取4.0g预处理好的SA-2、001*7、201*7、D61和D152共5种不同型号的离子交换树脂,依次加入25mL的狭果茶藨子氨基酸提取液于三角瓶内,25℃、200r/min下恒温振荡12h,抽滤,取滤液测定狭果茶藨子游离氨基酸的含量[21]。根据公式(2)(3)计算树脂吸附量、吸附率。
Figure BDA0003319622310000041
Figure BDA0003319622310000042
式中:C0-提取液初始氨基酸浓度,mg/mL;C1-吸附后滤液中氨基酸浓度,mg/mL;V0-为狭果茶藨子提取液体积,mL;m-为树脂质量,g。
解吸率的计算:将抽滤后的树脂加入3%的氨水溶液(50mL),同等条件解吸12h,抽滤,测定解吸后滤液中游离氨基酸的含量。根据公式(4)计算树脂解吸率。
Figure BDA0003319622310000043
式中:V2-洗脱溶液体积,mL;V1-上样液体积,mL;C2-解吸后滤液中氨基酸浓度,mg/mL。
1.3.5阳离子交换树脂纯化游离氨基酸动态吸附及解吸的单因素实验
根据静态吸附研究结果,取预处理好的树脂(约20g),装柱,以吸附率为指标,固定上样量体积为80mL,考察不同上样液浓度(0.010、0.015、0.020、0.025、0.030g/mL)、不同上样液流速(0.5、1.0、1.5、2.0、2.5mL/min)、不同上样液pH(3、4、5、6、7)对狭果茶藨子氨基酸吸附效果的影响。
根据静态吸附研究结果,取预处理好的树脂(约20g),装柱,固定上样量为80mL,以解吸率为指标,考察不同洗脱液体积(30、40、50、60、70mL)、不同洗脱液体积分数(0.5%、1.0%、1.5%、2.0%、2.5%)、不同洗脱液流速(0.5、1.0、1.5、2.0、2.5mL/min)对狭果茶藨子氨基酸解吸效果的影响。
1.3.6响应面试验优化游离氨基酸纯化工艺
根据单因素结果,以吸附率、解吸率为响应值,分别以上样浓度、上样流速及上样pH;洗脱液体积分数、洗脱流速及洗脱体积为自变量设计响应面试验,因素水平见表1和表2[22]
表1吸附试验自变量因素编码及水平
Figure BDA0003319622310000044
Figure BDA0003319622310000051
表2解吸试验自变量因素编码及水平
Figure BDA0003319622310000052
1.3.7狭果茶藨子游离氨基酸纯化最佳工艺验证
按上述纯化工艺最佳条件重复3次试验,取100g狭果茶藨子鲜果进行纯化,收集洗脱液,浓缩至一定体积V,紫外分光光度法测定氨基酸浓度C(以谷氨酸为标准品),按公式(5)计算氨基酸纯度。
Figure BDA0003319622310000053
式中:C-洗脱液中氨基酸浓度,mg/mL;V-洗脱液体积,mL;m-纯化后样品质量,mg。
1.4数据处理
采用Excel软件处理数据和图表绘制,采用Design-Expert 8.0进行响应面设计与分析。
2结果与分析
2.1狭果茶藨子游离氨基酸离子交换树脂的筛选
离子交换树脂法是根据不溶性高分子化合物对样品吸附能力的差异,对混合物形成吸附作用,再通过溶剂洗脱进行解吸,从而实现对目标物的分离纯化[23]。由图2可知,5种树脂对狭果茶藨子氨基酸的吸附率大小依次为:001*7>D61>SA-2>D152>201*7,解吸率大小依次为:001*7>SA-2>D152>D61>201*7。其中001*7型树脂对狭果茶藨子氨基酸的吸附率和解吸率均为最高,吸附率可达70.73%,解吸率可达91.29%。D61型树脂吸附率为69.51%,虽与001*7型树脂相差不大,但其解吸率却较001*7型树脂偏低。此研究结果与提取加纳籽提取液中5-羟基色氨酸的研究结果一致[24]。因此,综合考虑选用对狭果茶藨子游离氨基酸吸附和解吸性能均较好的阳离子交换树脂001*7进行动态动力学纯化工艺的研究。
表3不同类型离子交换树脂筛选结果
Figure BDA0003319622310000054
Figure BDA0003319622310000061
2.2 001*7型阳离子树脂纯化狭果茶藨子氨基酸动态吸附单因素试验结果
2.2.1上样液质量浓度的选择
由图1可知,当上样液浓度范围在0.01~0.025g/mL之间时,随着上样液浓度的增加,吸附率逐渐升高,并在0.025g/mL时,树脂的吸附率达到最高值69.71%,继续增大浓度时,吸附率开始略有降低,故选择上样液浓度0.020、0.025、0.030g/mL为中心组合,进行动态吸附响应面优化试验。
2.2.2上样流速的选择
由图2可知,当上样液流速范围在0.5~2.5mL/min时,狭果茶藨子氨基酸吸附率随流速的增大先上升后减小。这可能是由于上样速度较小时,样品溶液能够长时间停留在树脂间缝,从而使氨基酸与树脂充分接触,而随着上样流速的增大,氨基酸还未完全与树脂接触吸附就已经流出,从而降低了树脂的吸附率,但同时流速过低,会导致吸附时间延长,因此选择上样液流速0.5、1.0、1.5mL/min为中心组合,进行动态吸附响应面优化试验。
2.2.3上样液pH的选择
由图3可知,当上样液pH在3~7范围时,随着上样液pH的增加,吸附率呈现出先上升后下降的趋势,当pH为5时,氨基酸吸附率达到最高91.57%,这可能是由于狭果茶藨子果实中含有大量有机酸而表现出弱酸性环境,从而提高了氨基酸的吸附能力,因此选择上样液pH 4、5、6为中心组合,进行动态吸附响应面优化试验。
2.3 001*7型阳离子树脂纯化狭果茶藨子氨基酸动态解吸单因素试验结果[25]
2.3.1洗脱液体积分数的选择
由图4可知,当氨水洗脱液体积分数在0.5~1.5%的浓度范围内,001*7树脂的解吸率随氨水体积分数的增加呈显著增加趋势,当达到1.5%时,树脂对狭果茶藨子中氨基酸的解吸率达到最大,之后当体积分数超过1.5%时,解吸率反而下降,根据相似相溶的原理,表明1.5%的氨水极性与氨基酸分子极性较为接近,因此,在该条件下解吸率最高,故选择洗脱液体积分数1%、1.5%、2%作为中心组合,进行解吸响应面优化试验。
2.3.2洗脱液体积的选择
由图5可知,当洗脱液体积在30~60mL时,解吸率呈现增加趋势,并在60mL时达到最大,说明少量的氨水洗脱液不足以将树脂中吸附的氨基酸完全洗脱下来。当洗脱液体积超过60mL时,解吸率显著下降,故选择洗脱体积50、60、70mL作为中心组合,进行解吸响应面优化试验。
2.3.3洗脱流速的选择
由图6可知,洗脱流速在0.5~1.5mL/min时,解吸率随洗脱流速的增加而升高,当洗脱流速1.5mL/min时,解吸率达最大,再增大流速,解吸率开始下降,可能是因为一定的洗脱流速使树脂与解吸液充分接触,从而更好地扩散到树脂颗粒内部,使氨基酸成分被交换出来。相反,洗脱流速过快,两者接触时间缩短,部分氨基酸不能被及时洗脱出,树脂的解吸率降低,故选择洗脱流速1、1.5、2mL/min作为中心组合,进行解吸响应面优化试验。
2.4 001*7型阳离子树脂纯化狭果茶藨子氨基酸响应面试验结果
2.4.1动态吸附响应面试验结果与分析
在单因素的试验基础之上,设计动态吸附优化试验,结果见表4,方差分析见表5。
表4吸附响应面试验结果
Figure BDA0003319622310000071
表5吸附试验回归模型方差分析结果
Figure BDA0003319622310000072
Figure BDA0003319622310000081
注:**表示P<0.01,差异极显著;*表示P<0.05,差异显著。
对表4中动态吸附优化结果进行分析,得到001*7型阳离子交换树脂对狭果茶藨子游离氨基酸吸附率的二次多项式回归:Y(%)=92.25-0.049A-0.21B-2.42C-0.12AB+0.46AC+0.67BC-1.47A2-1.07B2-3.80C2。方差分析结果如表5所示,该模型呈极显著性(P<0.01),R2=0.9832,R2 Adj=0.9616,且失拟度不显著(P失拟=0.6183>0.05),说明该吸附响应面试验模型拟合良好,可以用于对狭果茶藨子氨基酸动态吸附动力学试验的预测和分析。表中呈极显著的项有C、A2、B2、C2,显著的项有BC。通过对F值分析可知,各因素对吸附效果影响的主次顺序为:上样液pH>上样液流速>上样液浓度。
研究表明,响应面图反映各因素间的交互作用对响应值的影响,等高线图反映了各因素间交互作用的强度,结合两者分析,可以更加直观地看出各因素间的作用效果[26]。如图7所示,随着上样浓度、上样流速和上样pH水平的增加,001*7型树脂对氨基酸吸附率表现出先增加后下降的趋势,均能找到其最佳值,与上述显著性结果一致。根据吸附试验响应面模型预测结果可知:在狭果茶藨子氨基酸样品溶液浓度为0.025mg/mL、上样流速为0.9mL/min、上样液pH为4.66的最优工艺条件下,吸附率最大可达92.68%。
2.4.2动态解吸响应面试验结果与分析
在单因素的试验基础之上,设计动态解吸优化试验,结果见表6,方差分析结果见表7。
表6解吸响应面试验结果
Figure BDA0003319622310000082
Figure BDA0003319622310000091
表7解吸试验回归模型方差分析结果
Figure BDA0003319622310000092
注:*表示差异显著(P<0.05);**表示差异极显著(P<0.01)
对表6中动态解吸优化试验数据进行分析,得到关于001*7型阳离子树脂对狭果茶藨子
氨基酸解吸率的二次多项式回归方程为:Y(%)=93.71+0.37A-0.33B+0.39C+1.67AB+0.70AC+0.88BC-2.87A2-2.18B2-0.96C2。方差分析结果如表7所示,P模型<0.0001,该模型呈极显著性,R2=0.9835,R2 Adj=0.9622,且失拟度不显著(P=0.5646>0.05),说明该吸附响应面试验模型拟合良好,可以用于对狭果茶藨子氨基酸动态解吸率的预测和分析。模型中对解吸率影响极显著的有交互项AB、BC和二次项A2、B2、C2,对解吸率影响显著的项有一次性C和交互项AC。通过对F值分析可知,各因素对吸附效果影响的主次顺序为:洗脱液体积>洗脱液浓度>洗脱流速。
通过对各因素间响应面模型图和等高线图进行分析。如图8所示,所有响应面开口均向下,解吸率与三个考察因素呈明显的二次抛物关系,随着洗脱液体积分数、洗脱流速及洗脱液体积水平的增加,001*7型树脂对氨基酸解吸率表现出先增加后下降的趋势,均能找到其最佳值[27],与上述方差分析结果一致。根据解吸试验响应面模型分析结果可预测:在氨水溶液体积分数为1.54%、洗脱流速为1.50mL/min、洗脱液体积为61.67mL的最佳优化工艺条件下,解吸率最大可达到93.75%。
2.5狭果茶藨子氨基酸纯化工艺验证结果
以纯化最优工艺条件进行3次验证试验,结果见表8,该纯化工艺稳定,3次试验得到的氨基酸纯度结果无显著差异(P>0.05),狭果茶藨子氨基酸纯度从23.26%提高到77.50%,提高了54.24%。说明001*7离子交换树脂可有效用于狭果茶藨子氨基酸的分离纯化,且优化的工艺条件在实验室级别稳定可行。
表8狭果茶藨子氨基酸纯化工艺验证结果
Figure BDA0003319622310000101
3结论
本试验通过考察5种(SA-2、001*7、201*7、D61、D152)不同型号的离子交换树脂对狭果茶藨子游离氨基酸的静态吸附-解吸动力学性能,确定了001*7离子交换树脂为纯化狭果茶藨子提取液中游离氨基酸的理想树脂。通过单因素试验及响应面试验进行优化,预测得到最优纯化工艺为:上样浓度0.025mg/mL,上样流速0.9mL/min,上样液pH 4.66,氨水洗脱液体积分数1.54%,洗脱流速1.50mL/min,洗脱液体积61.67mL,此条件下,狭果茶藨子氨基酸纯度从23.26%提高到77.50%,提高了54.24%。说明该纯化工艺操作简单、参数准确、经济环保,结果可为狭果茶藨子氨基酸后续研究提供一定的参考价值。
参考文献:
[1]张玉祥,闫双虎.狭果茶蔍硬枝扦插育苗试验[J].青海农林科技,2014(01):56-58.
[2]杨永昌,何廷农,卢生莲,等.藏药志[M].西宁:青海人民出版社,1991:404-406.
[3]GUO X,YANG B,TAN J,et al.Associations of dietary intakes ofanthocyanins and berry fruits with risk of type 2diabetes mellitus:asystematic review and meta-analysis of prospective cohort studies[J].EUR JCLIN NUTR,2016,70:1360-1367.
[4]
Figure BDA0003319622310000111
F,ROY D,PILON G,et al.A polyphenol-rich cranberry extractprotects from diet-induced obesity,insulin resistance and intestinalinflammation in association with increased Akkermansia spp.population in thegut microbiota of mice[J].GUT,2015,64(6):872-883.
[5]NACHAR A,EID H M,VINQVIST-TYMCHUK M,et al.Phenolic compoundsisolated from fermented blueberry juice decrease hepatocellular glucoseoutput and enhance muscle glucose uptake in cultured murine and human cells[J].BMC COMPLEM ALTERN M,2017,17(1):138.
[6]顾晓敏,童川,韩延超,等.不同品种莲藕游离氨基酸多样性分析[J/OL].食品科学,(4):1-13.
[7]STABLER D,POWER E F,BORLAND A M,et al.A method for analysing smallsamples of floral pollen for free and protein-bound amino acids[J].METHODSECOL EVOL,2018,9(2):430-438.
[8]丁春瑞,郭武军,远辉.新疆黑枸杞中氨基酸含量的测定及分析[J].食品工业,2016,37(12):151-152.
[9]张星,毕金峰,陈芹芹,等.4种浆果成分分析及抗氧化活性研究[J].食品科技,2020,45(06):52-58.
[10]EGYDIO A P M,SANTA C C,FLOH E I S,et al.Free amino acidcomposition of Annona(Annonaceae)fruit species of economic interest[J].INDCROP PROD,2013,45:373-376.
[11]魏决,罗雯.燕麦中蛋白质的提取、纯化及氨基酸成分分析[J].成都大学学报(自然科学版),2007(04):283-285.
[12]王晴,臧凤,钱玉梅,等.沙棘籽蛋白质分级提取及其氨基酸组成研究[J].通化师范学院学报,2021,42(02):76-80.
[13]崔晓瑞,徐毓谦,王丽,等.大球盖菇两种提取蛋白氨基酸营养评价[J].农产品加工,2021(01):46-49.
[14]石嘉怿,王婷婷.粳稻总蛋白提取工艺的响应面优化及其氨基酸组分分析[J].粮食与油脂,2020,33(09):34-38.
[15]杨建华,石一复.茶氨酸抗肿瘤作用及其机制研究进展[J].国际肿瘤学杂志,2004,31(9):686-689.
[16]NOYAN G.L-arginine and hypertension.[J].Journal of Nutrition,2004(10):10.
[17]张文杰,马健,王志远,等.色氨酸的代谢与功能及其在动物生产中的应用[J].家畜生态学报,2020,41(07):73-78.
[18]司文青.离子交换树脂法分离纯化赖氨酸的研究[D].重庆:重庆大学,2017.
[19]杨玲引,蔡静,刘华锋,等.假奓包叶氨基酸提取纯化工艺及其氨基酸组成分析[J].精细化工,2012,29(8):765-769.
[20]崔耀天,赵乐荣,于建伟,等.玛咖中总游离氨基酸的提取纯化工艺研究[J].食品科技,2017,42(12):235-238.
[21]李珊,刘哲,赵永珍,等.青藏高原狭果茶藨子黄酮纯化工艺及抗氧化活性研究[J].食品科技,2021,46(01):212-219.
[22]应锐,张朝辉,段筱杉,等.紫菜中类菌孢素氨基酸纯化工艺的优化及其抗紫外辐射作用研究[J].海洋科学,2017,41(02):71-80.
[23]吴月娜.青天葵中总氨基酸的提取纯化工艺及指纹图谱研究[D].广州:广州中医药大学,2011.
[24]冯建光.离子交换树脂分离纯化加纳籽中5-羟基色氨酸[J].中草药,2013,44(17):2410-2415.
[25]朱玉婷.鹿药游离氨基酸的提取及在化妆品中的应用[D].长春:吉林农业大学,2014.
[26]谢婧.响应面法优化香芋豌豆饼干配方[J].食品研究与开发,2021,42(02):116-121.
[27]刘富岗,李汉伟,郑群杰,等.响应面法优选泽兰多糖的大孔吸附树脂纯化工艺[J].暨南大学学报(自然科学与医学版),2019,40(1):1-9.

Claims (2)

1.狭果茶藨子氨基酸纯化方法,其特征在于:狭果茶藨子30~50%乙醇提取物,过离子交换树脂001*7,上样液浓度0.025g/mL,上样流速0.9mL/min,上样液pH 4.66,氨水洗脱液体积分数1.54%,洗脱流速1.50mL/min,洗脱液体积61.67mL。
2.根据权利要求1所述的纯化方法,其特征在于:乙醇提取物的提取方法:超声时间30min、料液比1:35g/mL、超声温度55℃、超声功率300W、乙醇浓度40%、提取次数2次,即得。
CN202111241256.8A 2021-10-25 2021-10-25 狭果茶藨子游离氨基酸纯化方法 Active CN114082222B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202111241256.8A CN114082222B (zh) 2021-10-25 2021-10-25 狭果茶藨子游离氨基酸纯化方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202111241256.8A CN114082222B (zh) 2021-10-25 2021-10-25 狭果茶藨子游离氨基酸纯化方法

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN114082222A CN114082222A (zh) 2022-02-25
CN114082222B true CN114082222B (zh) 2023-03-17

Family

ID=80297810

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN202111241256.8A Active CN114082222B (zh) 2021-10-25 2021-10-25 狭果茶藨子游离氨基酸纯化方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN114082222B (zh)

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN114081179A (zh) * 2021-08-19 2022-02-25 青海大学 狭果茶藨子氨基酸类提取物及其制备方法

Citations (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2007046951A (ja) * 2005-08-08 2007-02-22 T Hasegawa Co Ltd 総アミノ酸量の簡便な定量法
EP2144868A1 (en) * 2007-05-11 2010-01-20 Unilever PLC Process for purifying theanine
WO2010006621A1 (en) * 2008-07-18 2010-01-21 Københavns Universitet Processes for manufacture of products from plants
WO2015172752A2 (zh) * 2014-05-16 2015-11-19 中国人民解放军军事医学科学院生物工程研究所 血小板衍生生长因子b突变体、其制备方法及用途
CN106421286A (zh) * 2016-10-25 2017-02-22 西安交通大学 一种用大孔吸附树脂分离纯化延龄草甾体皂苷的工艺
CN109999064A (zh) * 2018-12-11 2019-07-12 青海大学 茶藨子果实乙酸乙酯提取物及其制备方法
CN109999066A (zh) * 2018-12-11 2019-07-12 青海大学 茶藨子果实乙酸乙酯提取物的用途
CN109999062A (zh) * 2018-12-11 2019-07-12 青海大学 茶藨子果实有机酸提取物
WO2021000224A1 (zh) * 2019-07-01 2021-01-07 大连理工大学 一种葡萄多酚的树脂分离纯化方法

Family Cites Families (14)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB1145512A (en) * 1965-09-21 1969-03-19 Kyowa Hakko Kogyo Company Ltd Method for isolating tryptophan
US4769474A (en) * 1985-04-10 1988-09-06 Mitsui Toatsu Chemicals, Inc. Process for purifying tryptophane
JPH04134054A (ja) * 1990-09-25 1992-05-07 Ajinomoto Co Inc イオン交換樹脂を用いるアミノ酸の精製方法
JP2971664B2 (ja) * 1992-05-12 1999-11-08 三井化学株式会社 ペプチド類からアミノ酸を回収する方法
JP4400459B2 (ja) * 2002-12-27 2010-01-20 味の素株式会社 カラム法によるアミノ酸又はその塩の製造方法及びその製造装置
US7303773B2 (en) * 2003-10-21 2007-12-04 The Procter & Gamble Company Process for enriching extracts of natural theanine
US8143071B2 (en) * 2006-12-21 2012-03-27 Phynexus, Inc. Method and device for extracting an analyte
WO2014118797A1 (en) * 2013-01-29 2014-08-07 Neuland Health Sciences Private Limited Purification of organic compounds using surrogate stationary phases on reversed phase columns
BR112016015718B1 (pt) * 2014-01-07 2021-12-07 Novasep Process Solutions Processo de purificação de aminoácidos aromáticos
CN104262231B (zh) * 2014-09-29 2016-05-11 中国科学院西北高原生物研究所 从白刺种子中提取分离l-色氨酸的方法
CN107929367B (zh) * 2017-10-30 2021-02-19 福建医科大学 离子交换法从钩吻中分离制备钩吻生物碱的方法
CN109999068A (zh) * 2018-12-11 2019-07-12 青海大学 茶藨子果实或其提取物的抗疲劳用途
US20210230110A1 (en) * 2020-01-24 2021-07-29 The Regents Of The University Of California Method for separation of methionine sulfoxide diastereomers
CN112970830A (zh) * 2021-02-25 2021-06-18 青海大学 一种茶藨子提取物及其防腐用途

Patent Citations (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2007046951A (ja) * 2005-08-08 2007-02-22 T Hasegawa Co Ltd 総アミノ酸量の簡便な定量法
EP2144868A1 (en) * 2007-05-11 2010-01-20 Unilever PLC Process for purifying theanine
WO2010006621A1 (en) * 2008-07-18 2010-01-21 Københavns Universitet Processes for manufacture of products from plants
WO2015172752A2 (zh) * 2014-05-16 2015-11-19 中国人民解放军军事医学科学院生物工程研究所 血小板衍生生长因子b突变体、其制备方法及用途
CN106421286A (zh) * 2016-10-25 2017-02-22 西安交通大学 一种用大孔吸附树脂分离纯化延龄草甾体皂苷的工艺
CN109999064A (zh) * 2018-12-11 2019-07-12 青海大学 茶藨子果实乙酸乙酯提取物及其制备方法
CN109999066A (zh) * 2018-12-11 2019-07-12 青海大学 茶藨子果实乙酸乙酯提取物的用途
CN109999062A (zh) * 2018-12-11 2019-07-12 青海大学 茶藨子果实有机酸提取物
WO2021000224A1 (zh) * 2019-07-01 2021-01-07 大连理工大学 一种葡萄多酚的树脂分离纯化方法

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Bioavailability of anthocyanins and colonic polyphenol metabolites following consumption of aronia berry extract;Liyang Xie et al.;《Food Chemistry》;20161115;第211卷;第860-868页 *
Quantitative amino acids profile of monofloral bee pollens by microwave hydrolysis and fluorimetric high performance liquid chromatography;Thomas Themelis et al.;《Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis》;20190905;第173卷;第144-153页 *

Also Published As

Publication number Publication date
CN114082222A (zh) 2022-02-25

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Lu et al. Characteristic and mechanism of Cr (VI) adsorption by ammonium sulfamate-bacterial cellulose in aqueous solutions
CN114082222B (zh) 狭果茶藨子游离氨基酸纯化方法
CN105924498B (zh) 一种具有降血脂功效的绿豆蛋白的制备方法
CN110632208B (zh) 一种用于清肺化痰、止咳平喘的中药组合物的主要成分的检测方法
CN109061016A (zh) 一种富集生物胺的固相萃取柱的制备方法与应用
CN102944622B (zh) 菊芋果聚糖的提取与检测方法
Gao et al. Optimisation of enzyme-assisted extraction of Erythronium sibiricum bulb polysaccharide and its effects on immunomodulation
CN112071374A (zh) 一种用于优化山茱萸叶多糖提取的数学回归模型及其用途
CN101962402B (zh) 一种黄芪糖蛋白及其制备方法和用途
CN102495169B (zh) 一种紫菜可控酶解后的抗氧化活性肽的纯化及分析鉴定方法
Kakigi et al. Analysis of terpene lactones in a Ginkgo leaf extract by high-performance liquid chromatography using charged aerosol detection
CN107177650A (zh) 一种北太平洋鱿鱼缠卵腺抗氧化酶解寡肽的制备方法
Xiaoyong et al. Retracted Article: Extraction of flavonoids and kinetics of purification by macroporous resins from quinoa
CN111704593A (zh) 基于响应面的生物酶法优化提取丹参中丹参酮iia和丹酚酸b的工艺方法
Oziyci et al. Concentration of D-pinitol in carob extract by using multi-stage enrichment processes.
CN109400743B (zh) 一种从海葡萄中提取硫酸半乳聚糖的方法
CN111991478A (zh) 一种裸花紫珠苯乙醇苷的分离纯化方法
CN114081179A (zh) 狭果茶藨子氨基酸类提取物及其制备方法
Chen et al. Extraction, Preliminary Characterization, and Antioxidant Activity of Polysaccharides From Laetiporus Sulphureus Mushroom.
CN113567578B (zh) 一种同时测定山西老陈醋中两种黄烷醇类物质的spe-des-hplc方法
CN116970542B (zh) 一种富硒葛仙米的两步培养法和生物富硒葛仙米胞外多糖的制备方法
CN111239270B (zh) 一种参葵通脉颗粒的质量检测方法
Zhu Study on Amino Acids in Ginseng Yanping Zhu Jilin Agricultural University
CN111732672B (zh) 一种具有降尿酸功效的黄秋葵聚半乳糖醛酸及其制备方法和用途
CN113350398A (zh) 一种油樟总黄酮的提取、纯化方法及其用途

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
GR01 Patent grant
GR01 Patent grant