发明内容
本发明的目的是:提供一种果桑新品种‘粤椹201’的SSR分子标记及其核心引物组、试剂盒和应用,操作简单,可用于果桑新品种‘粤椹201’真实性的鉴定,当出现品种假冒或有争议时可以有效的监督和仲裁。
本发明的第一个目的是提供一种鉴定果桑新品种‘粤椹201’的SSR分子标记,包括SSR分子标记M20310和/或M252;所述的SSR分子标记M20310的重复基序为(ATT)n,其中n≥5,其右侧序列如SEQ ID NO.6所示,其左侧序列如SEQ ID NO.5所示;所述的SSR分子标记M252的重复基序为(AT)n,其中n≥6,其右侧序列如SEQ ID NO.8所示,其左侧序列如SEQ IDNO.7所示。
本发明的第二个目的是提供一种鉴定果桑新品种‘粤椹201’的SSR分子标记的核心引物组,包括针对SSR分子标记M20310的引物和/或针对SSR分子标记M252的引物:
所述的针对SSR分子标记M20310的引物:
M20310-F:5’-AGGCTCTCAAGTTGGTAAAGAGG -3’(如SEQ ID NO.1所示);
M20310-R:5’-TCGATTCGATTTGTTCAGAAGAG -3’(如SEQ ID NO.2所示);
所述的引物M20310-F的5’端标记有荧光报告基团;
所述的针对SSR分子标记M252的引物:
M252-F:5’-ATGCTAGAACGAAGTCTCTGTGC-3’ (如SEQ ID NO.3所示);
M252-R:5’-AGATACATATGTGCAAGCGGTTC-3’ (如SEQ ID NO.4所示);
所述的引物M252-F的5’端标记有荧光报告基团。
优选,所述的荧光报告基团为FAM、HEX、TAMRA或ROX。
本发明的第三个目的是提供一种果桑新品种‘粤椹201’的快速检测试剂盒,包括上述的SSR分子标记的核心引物组。
优选,所述的快速检测试剂盒还包括dNTPs、Taq DNA聚合酶和ddH2O。
本发明的第四个目的是提供一种利用SSR分子标记鉴定果桑新品种‘粤椹201’的方法,包括以下步骤:
(1)提取待测果桑样品的基因组DNA;
(2)以步骤(1)提取的基因组DNA 为模板,分别利用上述的引物对M20310-F/M20310-R和M252-F/ M252-R进行PCR扩增;
(3)对步骤(2)中的PCR扩增产物进行分型,对分型结果进行条带判别;若以引物对M20310-F/M20310-R为引物扩增得到的PCR扩增产物只有138 bp和171 bp两条特异性条带,以引物对M252-F/ M252-R为引物扩增得到的PCR扩增产物只有112 bp、114 bp和130 bp三条特异性条带,则表明待测果桑样品为‘粤椹201’,否则,则表明待测果桑样品为非‘粤椹201’。
优选,步骤(2)所述的PCR扩增,其反应体系为20 μL,包括:50 ng/μL DNA模板0.5μL、10×PCR buffer 2 μL、25 mM MgCl2 2 μL、10 mM dNTPs 0.5 μL、5 U/μL Taq DNA聚合酶0.2 μL、10 μM上游引物0.5 μL、10 μM下游引物0.5 μL和ddH2O 13.8 μL。
优选,步骤(2)所述的PCR扩增,其反应程序为:95℃预变性5 min;95℃变性30 s,60℃退火30 s,每个循环降1℃,72℃延伸30 s,循环10次;94℃变性30 s,50℃退火30 s,72℃延伸30 s,循环30次;最后72℃延伸5 min。
本发明的第五个目的是提供上述的SSR分子标记或SSR分子标记的核心引物组或快速检测试剂盒在鉴定果桑新品种‘粤椹201’中的应用。
本发明利用荧光SSR技术,通过对桑树转录组序列设计开发出的300对SSR引物进行筛选,确认SSR分子标记M20310的核心引物M20310-F/M20310-R能够对果桑新品种‘粤椹201’扩增出138 bp和171 bpp两条特异性条带,SSR分子标记M252的核心引物M252-F /M252-R能够对果桑新品种‘粤椹201’扩增出112 bp、114 bp和130 bp三条特异性条带,可以分别从果桑品系(尤其是广东桑种)中鉴别出果桑新品种‘粤椹201’,可用于果桑新品种‘粤椹201’的快速鉴定和检测。本发明通过大量实验数据得到了扩增出‘粤椹201’特异性条带的特异性引物,通过直接检测‘粤椹201’的M20310标记和/或M252标记对其进行鉴定,克服了外部形态特征对其鉴定的不确定性,操作简单,检测效率高,结果可靠直观,为果桑新品种‘粤椹201’的保护提供了科学的技术保障,本发明有利于该品种的推广利用和保护。
具体实施方式
为更进一步阐述本发明为达到预定发明目的所采取的技术手段和功效,以下将结合具体实施例对本发明做进一步的阐述。
实施例1果桑新品种‘粤椹201’特异性引物序列的筛选获得
1、SSR引物选择
利用MISA软件对桑树基因组数据库中的基因组序列进行检索,检索出基因组序列中SSR位点,检索的SSR基序重复单元长度为2~6个核苷酸,分别设置2个、3个、4个、5个、6个核苷酸的最少搜索重复次数为6、5、5、4、4 次,且SSR位点侧翼序列的长度≥150 bp,根据搜索到的SSR位点用Primer3v2. 3. 4( http:// primer3.sourcego-rge.net) 软件设计SSR引物,设计标准为:引物长度为18-25bp,退火温度为57-63℃,GC含量为40-70%,PCR产物的长度为100-300bp,随机选取能与NCBI非冗余蛋白质数据库进行比对的SSR位点合成出300对引物,每对引物由一个上游引物A和一个下游引物B组成。引物序列由深圳华大基因科技有限公司合成。
2、果桑品种DNA的提取
以果桑新品种‘粤椹201’、母本‘塘10’、父本‘航诱31’及44个亲缘、表型相近的广东桑种其他果桑优良品系,共45个(序号1-45,其中包括具有‘粤椹201’亲本血统的18个果桑品系,这18个果桑品系与‘粤椹201’亲缘关系较近;其余24个果桑品系与‘粤椹201’表型相近)进行初步筛选。初步筛选所用的果桑品系具体见表1(取自国家桑树种质资源圃-华南分圃)。
表1初步筛选所用的45个果桑品系
具体筛选步骤如下:
利用改良的CTAB法提取果桑新品种‘粤椹201’及同为广东桑种的其他44个果桑优良品系(见表1)的DNA,DNA提取具体步骤如下:
(1)配制CTAB提取液(十六烷基三甲基溴化铵,Hexadecyl trimethyl ammoniumbromide )的配方为:2%CTAB,0.1M Tris-HCl,20mM EDTA,1.4M NaCl,TE缓冲液( 10mMTris-HCl,1mM EDTA,pH8.0 );
(2)将1g材料(尽量选取幼嫩材料)放入研钵中,液氮研磨至粉末;
(3)将研磨后的材料加入10 mL离心管中,加入4 mL CTAB提取液和80 μLβ-巯基乙醇 (已在65℃中预热)混匀后65℃水浴45 min,中间混匀3~4次;
(4)加入1mL 5M KAc,冰浴20 min;
(5)加入4 mL氯仿:异戊醇(24:1),轻柔混匀乳化10 min;
(6)室温下12000 rpm离心10 min,离心后将上清液转移至一新的10mL离心管中;
(7)取上清液并加入1/10~1/5体积的3 M NaAc(pH 5.2)翻转混匀,加入等体积的异丙醇,混匀至出现DNA沉淀;
(8)沉淀中加入1 mL 75%乙醇漂洗3~4次,并用无水乙醇漂洗1次;DNA沉淀,晾干;
(9)加入100 μL含10 μg/ml RNase A的TE缓冲液溶解沉淀,37℃水浴1h以降解RNA;
(10)用电泳法检测质量,用分光光度计法检测DNA浓度,调节DNA浓度为50ng/μL,保存于-20℃。
3、PCR扩增
以步骤2提取的桑树基因组DNA为模版,利用SSR荧光标记检测技术进行PCR扩增,引物包括一个5’端标记有荧光报告基团(FAM、HEX、TAMRA、或ROX,本发明中使用HEX荧光标记)的上游引物和一个下游引物,所述上游引物为在步骤1设计合成的上游引物,所述下游引物为步骤1设计合成的下游引物。5’端标记有荧光报告基团的上游引物引导的PCR扩增产生带有荧光的PCR产物。
PCR反应总体系为20 μL,其中,50 ng/μL DNA模板0.5 μL,10×PCR buffer 2.0 μL,25 mM MgCl2 2.0 μL,10 mM dNTPs 0.5 μL,5 U/μL Taq DNA聚合酶0.2 μL,10 μM上游引物0.5 μL, 10 μM下游引物0.5 μL,ddH2O 13.8 μL。
PCR反应条件为95℃预变性5 min;95℃变性30 s,60℃(每个循环降1℃)退火30s,72℃延伸30 s,循环10次;94℃变性30 s,50℃退火30 s,72℃延伸30 s,循环30次;最后72℃延伸5 min,得到扩增产物。
4、多态性引物的筛选
上述步骤3扩增产物取2.5μL,加入1.5μL Loading Buffer混匀上样,2%的琼脂糖凝胶电泳25min后进行条带检测,筛选有扩增条带的产物用于测序分型。将上述步骤筛选到的有扩增产物条带的产物稀释到0.5ng以内,取0.5μL至含有liz500的Hidi中,用3730XLDNA测序仪( ABI,USA )进行分型,分型结果用GeneMarker( soft Genetics LLC,USA )进行条带判别。
5、数据分析
筛选结果显示,上述步骤1合成的300对引物中共筛选出124对多态性引物;进一步选择重复性、稳定性好,能够对果桑新品种‘粤椹201’扩增出特异性等位位点的核心引物,最终得到引物对M20310-F/M20310-R(M20310-F:5’-AGGCTCTCAAGTTGGTAAAGAGG -3’,如SEQID NO.1所示,M20310-R:5’- TCGATTCGATTTGTTCAGAAGAG -3’,如SEQ ID NO.2所示)和引物对M252-F/M252-R(M252-F:5’-ATGCTAGAACGAAGTCTCTGTGC-3’,如SEQ ID NO.3所示,M252-R:5’-AGATACATATGTGCAAGCGGTTC-3’ -3’,如SEQ ID NO.4所示)可作为鉴定‘粤椹201’的特异性核心引物。核心引物M20310-F/M20310-R对应的SSR分子标记为M20310标记,其重复基序为(ATT)n ,n≥5,该M20310标记的右侧序列如SEQ ID NO.6所示,左侧序列如SEQ IDNO.5所示。核心引物M252-F/M252-R对应的SSR分子标记为M252标记,其重复基序为(AT)n,n≥6,该M252标记的右侧序列如SEQ ID NO.8所示,左侧序列如SEQ ID NO.7所示。
以SSR荧光标记引物M20310-F/M20310-R为引物,果桑新品种‘粤椹201’在M20310标记的扩增产物为138 bp(如SEQ ID NO.9所示)和171 bp(如SEQ ID NO.10所示)两条特异性条带,以SSR荧光标记引物M252-F/M252-R为引物,果桑新品种‘粤椹201’在M252标记的扩增产物为112 bp(如SEQ ID NO.11所示)、114 bp(如SEQ ID NO.12所示)和130 bp(如SEQID NO.13所示)三条特异性条带,仅用SSR荧光标记引物M252-F/M252-R或M20310-F/M20310-R就可以从‘粤椹201’及其44个亲缘、表型相近的果桑品系中鉴别出果桑新品种‘粤椹201’(图1和2),指纹数据见表2。
表2 2对引物分别对45个果桑品系毛细管电泳条带统计
6、引物的进一步验证
对筛选得到的2对鉴定‘粤椹201’的特异性核心引物M20310-F/M20310-R、M252-F/M252-R进行进一步地验证,选取19个目前全国育成的果桑新品种及在生产上具有一定面推广应用的果桑品系与‘粤椹201’同时进行扩增检测,DNA提取、扩增及检测方法同上,结果发现,这2对特异性核心引物均可以将‘粤椹201’与其他品种区分开(图3和4),‘粤椹201’及其他品种的扩增特异性等位位点如表3所示。
表3 验证所用育成的果桑新品种、生产推广应用新品系毛细管电泳条带统计
由上述表2和表3结果可以看出,SSR分子标记M20310和M252均具有高度的多态性,均能够快速的从45个亲缘、表型相近的果桑品系和20个育成的果桑新品种、生产推广应用新品系中准确鉴定出‘粤椹201’。但考虑到未来可能会有更多新品种出现,所以为了鉴定的科学性,本发明建议采用以上2种SSR分子标记的核心引物同时进行检测,若2对SSR荧光标记引物扩增得到的结果与本发明一致,则可以鉴定该品种为桑果新品种‘粤椹201’。
在获取鉴定‘粤椹201’特异性分子标记的过程中,本发明首先重视了引物的获取,从桑树基因组数据库中随机设计获取了300对SSR引物,以便客观的评价品种特性。引物筛选时对果桑品系做了适当选取,首先用40个亲缘、表型相近的果桑品系进行初步筛选,这些品系与‘粤椹201’在表型性状上较相似,通过表型鉴定存在一定困难,因此在这些品系中筛选得到能够对果桑新品种‘粤椹201’扩增出特异性条带的特异性核心引物具有十分重要的意义。在初步筛选获得特异性核心引物的基础上,通过选取20个育成的果桑新品种、生产推广应用新品系进行验证,带型结果与前面表现一致,能够快速准确的从中鉴定出‘粤椹201’,表明这对引物其特异性和稳定性较好。
上述方法中采用特异性核心引物M20310-F/M20310-R和M252-F/M252-R为‘粤椹201’的快速、准确检测、鉴定提供了较好的保障。
上述特异性核心引物M20310-F/M20310-R和M252-F/M252-R也可直接作为快速检测试剂盒的一部分,用于快速鉴定桑果新品种‘粤椹201’。
以上所述实施例的各技术特征可以进行任意的组合,为使描述简洁,未对上述实施例中的各个技术特征所有可能的组合都进行描述,然而,只要这些技术特征的组合不存在矛盾,都应当认为是本说明书记载的范围。
需要特别说明的是,以上所述实施例仅表达了本发明的几种实施方式,但并不能因此而理解为对发明专利范围的限制。本领域的普通技术人员能从本发明公开的内容直接导出或联想到的所有变形,均应认为是本发明的保护范围。
序列表
<110> 广东省农业科学院蚕业与农产品加工研究所
<120> 一种果桑新品种‘粤椹201’的SSR分子标记及其核心引物组、试剂盒和应用
<160> 13
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 23
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 1
aggctctcaa gttggtaaag agg 23
<210> 2
<211> 23
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 2
tcgattcgat ttgttcagaa gag 23
<210> 3
<211> 23
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 3
atgctagaac gaagtctctg tgc 23
<210> 4
<211> 23
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 4
agatacatat gtgcaagcgg ttc 23
<210> 5
<211> 92
<212> DNA
<213> 桑(Morus alba L.)
<400> 5
aggctctcaa gttggtaaag aggggcgtcg gaggagtcgg cggcggagac ggcttccacc 60
acagacctca cgtccacaat ctgctcttca tc 92
<210> 6
<211> 31
<212> DNA
<213> 桑(Morus alba L.)
<400> 6
gtcctcttct cttctgaaca aatcgaatcg a 31
<210> 7
<211> 73
<212> DNA
<213> 桑(Morus alba L.)
<400> 7
atgctagaac gaagtctctg tgcgtgtcat gtgtgtgggg ctaaaggagt atgattggat 60
tcgagcaaac caa 73
<210> 8
<211> 27
<212> DNA
<213> 桑(Morus alba L.)
<400> 8
aaacgaaccg cttgcacata tgtatct 27
<210> 9
<211> 138
<212> DNA
<213> 桑(Morus alba L.)
<400> 9
aggctctcaa gttggtaaag aggggcgtcg gaggagtcgg cggcggagac ggcttccacc 60
acagacctca cgtccacaat ctgctcttca tcattattat tattattgtc ctcttctctt 120
ctgaacaaat cgaatcga 138
<210> 10
<211> 171
<212> DNA
<213> 桑(Morus alba L.)
<400> 10
aggctctcaa gttggtaaag aggggcgtcg gaggagtcgg cggcggagac ggcttccacc 60
acagacctca cgtccacaat ctgctcttca tcattattat tattattatt attattatta 120
ttattattat tattattatt gtcctcttct cttctgaaca aatcgaatcg a 171
<210> 11
<211> 112
<212> DNA
<213> 桑(Morus alba L.)
<400> 11
atgctagaac gaagtctctg tgcgtgtcat gtgtgtgggg ctaaaggagt atgattggat 60
tcgagcaaac caaatatata tatataaacg aaccgcttgc acatatgtat ct 112
<210> 12
<211> 114
<212> DNA
<213> 桑(Morus alba L.)
<400> 12
atgctagaac gaagtctctg tgcgtgtcat gtgtgtgggg ctaaaggagt atgattggat 60
tcgagcaaac caaatatata tatatataaa cgaaccgctt gcacatatgt atct 114
<210> 13
<211> 130
<212> DNA
<213> 桑(Morus alba L.)
<400> 13
atgctagaac gaagtctctg tgcgtgtcat gtgtgtgggg ctaaaggagt atgattggat 60
tcgagcaaac caaatatata tatatatata tatatatata tataaacgaa ccgcttgcac 120
atatgtatct 130