CN112980772A - 一种检测花青素诱导小鼠胰岛β细胞自噬效果的方法 - Google Patents

一种检测花青素诱导小鼠胰岛β细胞自噬效果的方法 Download PDF

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Abstract

本发明属于细胞生物学检测技术领域,公开了一种检测花青素诱导小鼠胰岛β细胞自噬效果的方法,包括:制备葡萄籽提取物,加水稀释获得花青素溶液;将建模小鼠进行高脂饲料饲养28天;令小鼠空腹6小时后,抽取饲养后小鼠的尾静脉血,测定血糖浓度;对糖尿病小鼠进行花青素溶液喂食28天;切取饲养后糖尿病小鼠的胰腺组织,使用组织固定剂进行固定;用石蜡包埋,作冠状切片;使用试剂盒进行胰岛β细胞凋亡情况的观察。本发明使用葡萄籽提取物作为花青素来源进行小鼠胰岛β细胞自噬效果检测,检测效果更好;糖尿病小鼠建模能够实现对糖尿病病体组织的获取,TUNEL细胞凋亡检测试剂盒仅需进行切片的洗涤和染色,检测效果展现更直观。

Description

一种检测花青素诱导小鼠胰岛β细胞自噬效果的方法
技术领域
本发明属于细胞生物学检测技术领域,尤其涉及一种检测花青素诱导小鼠胰岛β细胞自噬效果的方法。
背景技术
目前,自噬是细胞利用溶酶体降解已受损的大分子物质和细胞器的过程,自噬连续不断清理错误折叠的蛋白质、有害的代谢产物、老化的线粒体等细胞器,从而保持胰岛β细胞的正常状态。研究表明,花青素具有很强的自由基清除和抗氧化活性能力,在预防心血管疾病、肿瘤、糖尿病中发挥着重要的作用。桑树果实花色苷提取物素通过抗氧化应激抑制胰岛β细胞凋亡,从而预防糖尿病。但是目前暂无检测花青素诱导小鼠胰岛β细胞自噬效果的方法,无法为糖尿病防治提供理论依据。
通过上述分析,现有技术存在的问题及缺陷为:目前暂无检测花青素诱导小鼠胰岛β细胞自噬效果的方法,无法为糖尿病防治提供理论依据。
发明内容
针对现有技术存在的问题,本发明提供了一种检测花青素诱导小鼠胰岛β细胞自噬效果的方法。
本发明是这样实现的,一种检测花青素诱导小鼠胰岛β细胞自噬效果的方法,所述检测花青素诱导小鼠胰岛β细胞自噬效果的方法包括以下步骤:
步骤一,称取原料葡萄籽,将葡萄籽洗净后进行干燥;将干燥的葡萄籽粉碎,过80~120目筛,得到葡萄籽粉末。
步骤二,向葡萄籽粉末中加入粉末质量体积5~9倍量、温度为100~110℃的热水搅拌20~25min,过滤,得滤液A。
步骤三,将滤液A过大孔树脂DM21吸附,并用水洗杂,得滤液B;所述大孔树脂的加入量为所述滤液量的1.0~1.3倍。
步骤四,向滤液B中加入浓度为60%的乙醇,超声提取得到葡萄籽提取液;将葡萄籽提取液进行真空干燥,得到葡萄籽提取物。
步骤五,将葡萄籽提取物直接过LSK11树脂,收集流出液;将流出液用低温等离子体气氛处理葡萄籽提取物20~30min,得到纯化的葡萄籽提取物。
步骤六,将纯化的葡萄籽提取物减压浓缩为婆美度为15~20的浓缩液,并进行喷雾,得产品葡萄籽提取物;加水稀释获得花青素溶液,作为检测试剂。
步骤七,将建模小鼠进行高脂饲料饲养,饲养时间为28~30天;令小鼠空腹6~8h后,抽取饲养后小鼠的尾静脉血,测定血糖,血糖浓度高于16.7mmol/L的小鼠作为糖尿病小鼠模型。
步骤八,对糖尿病小鼠进行花青素溶液喂食,喂食时间为28~30天;切取饲养后糖尿病小鼠的胰腺组织,分离获得小鼠胰岛β细胞。
步骤九,将获得的小鼠胰岛β细胞接种于培养瓶中,预培养3~5天,得预培养体系;将所述预培养体系无菌注入材质为FEP的细胞培养袋中。
步骤十,将含10%胎牛血清的RPMI 1640培养液的细胞培养基注入培养基保存袋中;利用联通管将所述细胞培养袋和培养基保存袋进行连接,所述联通管上设置有可拆卸的三通止流阀。
步骤十一,将所述细胞培养袋置于培养箱中进行培养,所述培养箱内设置温度为37℃,CO2浓度为5%;将所述培养基保存袋置于4℃冰箱内培养小鼠胰岛β细胞,利用流式细胞技术构建小鼠胰岛β细胞凋亡模型。
步骤十二,将培养后的小鼠胰岛β细胞使用组织固定剂进行固定;用石蜡包埋,作冠状切片。
步骤十三,使用碧云天生产的一步法TUNEL细胞凋亡检测试剂盒作为检测用试剂盒,并将已固定的冠状切片使用二甲苯进行2次脱蜡。
步骤十四,依次用100%、95%、75%乙醇进行水化,水化共进行三次,每次1min;使用PBS缓冲液进行二次洗涤,后进行染色,并室温孵育10min;使用PBS缓冲液进行三次洗涤,观察试剂盒胰岛β细胞凋亡情况的显示结果。
进一步,步骤四中,所述超声提取中的超声频率为35~45Hz,超声时间为30~40min,超声提取温度为40~50℃。
进一步,步骤五中,所述用低温等离子体气氛处理葡萄籽提取物时,低温等离子体气氛为体积比为1~2:1的O2和N2
进一步,步骤六中,所述减压浓缩的条件为-0.05~-0.1MPa,40~65℃;所述喷雾时的进口温度为180~200℃,出口温度为85~95℃。
进一步,步骤七中,所述建模小鼠为3~5月龄的雄性SD小鼠,体重为200~240克。
进一步,步骤七中,所述高脂饲料按照质量份数由麸皮10~15份、玉米10~12份、豆粕8~15份、酪蛋白6~8份、麦芽糊精10~12份、大豆油3~6份、胆固醇1~2份组成。
进一步,步骤八中,所述对糖尿病小鼠进行花青素溶液喂食时,花青素溶液摄入量为每天10ml。
进一步,步骤九中,所述无菌注入的方法包括:在无菌操作台上,取一个50mL注射器,去掉推塞后,悬挂于支架上,同时利用软管将注射器的套筒与细胞培养袋的进样口连接,然后注入所述预培养体系。
进一步,步骤十二中,所述组织固定剂为植物单宁与缓冲溶液的混合液,所述植物单宁与缓冲溶液的混合液的体积比为1:40。
进一步,所述缓冲溶液为氢氧化钠、柠檬酸、尿素、磷酸与去离子水的混合溶液。
结合上述的所有技术方案,本发明所具备的优点及积极效果为:本发明使用葡萄籽提取物作为花青素来源进行小鼠胰岛β细胞自噬效果检测,花青素含量高,检测效果更好;糖尿病小鼠建模能够实现对糖尿病病体组织的获取,方便实现检测;TUNEL细胞凋亡检测试剂盒仅需进行切片的洗涤和染色,即可实现显色,检测效果展现更直观。利用本发明所述方法进行小鼠胰岛β细胞的培养,培养过程从预培养后就封闭式培养,可以规避避免细菌污染;完全培养基在4℃保存,因子效价稳定,避免了营养物质37℃降解,每天的检测更加方便快捷,成本低。
附图说明
为了更清楚地说明本申请实施例的技术方案,下面将对本申请实施例中所需要使用的附图做简单的介绍,显而易见地,下面所描述的附图仅仅是本申请的一些实施例,对于本领域普通技术人员来讲,在不付出创造性劳动的前提下还可以根据这些附图获得其他的附图。
图1是本发明实施例提供的检测花青素诱导小鼠胰岛β细胞自噬效果的方法的流程图。
图2是本发明实施例提供的制备葡萄籽提取物的流程图。
图3是本发明实施例提供的使用TUNEL细胞凋亡检测试剂盒进行胰岛β细胞凋亡情况的观察的流程图。
图4~图5是本发明实施例提供的使用TUNEL细胞凋亡检测试剂盒进行胰岛β细胞凋亡情况的检测结果图。
具体实施方式
为了使本发明的目的、技术方案及优点更加清楚明白,以下结合实施例,对本发明进行进一步详细说明。应当理解,此处所描述的具体实施例仅仅用以解释本发明,并不用于限定本发明。
针对现有技术存在的问题,本发明提供了一种检测花青素诱导小鼠胰岛β细胞自噬效果的方法,下面结合附图对本发明作详细的描述。
如图1所示,本发明实施例提供的检测花青素诱导小鼠胰岛β细胞自噬效果的方法包括以下步骤:
S101,制备葡萄籽提取物,加水稀释获得花青素溶液,作为检测试剂;将建模小鼠进行高脂饲料饲养,饲养时间为28~30天。
S102,令小鼠空腹6~8h后,抽取饲养后小鼠的尾静脉血,测定血糖,血糖浓度高于16.7mmol/L的小鼠作为糖尿病小鼠模型。
S103,对糖尿病小鼠进行花青素溶液喂食,喂食时间为28~30天;切取饲养后糖尿病小鼠的胰腺组织,分离获得小鼠胰岛β细胞。
S104,将获得的小鼠胰岛β细胞接种于培养瓶中,预培养3~5天,得预培养体系;将所述预培养体系无菌注入材质为FEP的细胞培养袋中。
S105,将含10%胎牛血清的RPMI 1640培养液的细胞培养基注入培养基保存袋中;利用联通管将所述细胞培养袋和培养基保存袋进行连接,所述联通管上设置有可拆卸的三通止流阀。
S106,将所述细胞培养袋置于培养箱中进行培养,所述培养箱内设置温度为37℃,CO2浓度为5%;将所述培养基保存袋置于4℃冰箱内培养小鼠胰岛β细胞,利用流式细胞技术构建小鼠胰岛β细胞凋亡模型。
S107,将培养后的小鼠胰岛β细胞使用组织固定剂进行固定;用石蜡包埋,作冠状切片;使用TUNEL细胞凋亡检测试剂盒进行胰岛β细胞凋亡情况的观察。
本发明实施例提供的步骤S101中,所述建模小鼠为3~5月龄的雄性SD小鼠,体重为200~240克。
本发明实施例提供的步骤S101中,所述高脂饲料按照质量份数由麸皮10~15份、玉米10~12份、豆粕8~15份、酪蛋白6~8份、麦芽糊精10~12份、大豆油3~6份、胆固醇1~2份组成。
本发明实施例提供的步骤S103中,所述对糖尿病小鼠进行花青素溶液喂食时,花青素溶液摄入量为每天10ml。
本发明实施例提供的步骤S104中,所述无菌注入的方法包括:在无菌操作台上,取一个50mL注射器,去掉推塞后,悬挂于支架上,同时利用软管将注射器的套筒与细胞培养袋的进样口连接,然后注入所述预培养体系。
本发明实施例提供的步骤S107中,所述组织固定剂为植物单宁与缓冲溶液的混合液,所述植物单宁与缓冲溶液的混合液的体积比为1:40。
本发明实施例提供的缓冲溶液为氢氧化钠、柠檬酸、尿素、磷酸与去离子水的混合溶液。
如图2所示,本发明实施例提供的葡萄籽提取物的制备方法包括:
S201,称取原料葡萄籽,将葡萄籽洗净后进行干燥;将干燥的葡萄籽粉碎,过80~120目筛,得到葡萄籽粉末。
S202,向葡萄籽粉末中加入粉末质量体积5~9倍量、温度为100~110℃的热水搅拌20~25min,过滤,得滤液A。
S203,将滤液A过大孔树脂DM21吸附,并用水洗杂,得滤液B;所述大孔树脂的加入量为所述滤液量的1.0~1.3倍。
S204,向滤液B中加入浓度为60%的乙醇,超声提取得到葡萄籽提取液;将葡萄籽提取液进行真空干燥,得到葡萄籽提取物。
S205,将葡萄籽提取物直接过LSK11树脂,收集流出液;将流出液用低温等离子体气氛处理葡萄籽提取物20~30min,得到纯化的葡萄籽提取物。
S206,将纯化的葡萄籽提取物减压浓缩为婆美度为15~20的浓缩液,并进行喷雾,得产品葡萄籽提取物;加水稀释获得花青素溶液,作为检测试剂。
本发明实施例提供的步骤S204中,所述超声提取中的超声频率为35~45Hz,超声时间为30~40min,超声提取温度为40~50℃。
本发明实施例提供的步骤S205中,所述用低温等离子体气氛处理葡萄籽提取物时,低温等离子体气氛为体积比为1~2:1的O2和N2
本发明实施例提供的步骤S206中,所述减压浓缩的条件为-0.05~-0.1MPa,40~65℃;所述喷雾时的进口温度为180~200℃,出口温度为85~95℃。
如图3所示,本发明实施例提供的使用TUNEL细胞凋亡检测试剂盒进行胰岛β细胞凋亡情况观察的方法包括:
S301,使用碧云天生产的一步法TUNEL细胞凋亡检测试剂盒作为检测用试剂盒;将已固定的冠状切片使用二甲苯进行2次脱蜡。
S302,依次用100%、95%、75%乙醇进行水化,水化共进行三次,每次1min;使用PBS缓冲液进行二次洗涤,后进行染色,并室温孵育10min。
S303,使用PBS缓冲液进行三次洗涤,观察试剂盒显示结果。
下面结合具体实施例对本发明的技术方案作进一步的描述。
实施例1
制备葡萄籽提取物,加水稀释获得花青素溶液,作为检测试剂。
将建模小鼠进行高脂饲料饲养,饲养时间为28天;令小鼠空腹6小时后,抽取饲养后小鼠的尾静脉血,测定血糖,血糖浓度高于16.7mmol/L的小鼠作为糖尿病小鼠模型;对糖尿病小鼠进行花青素溶液喂食,喂食时间为28天;切取饲养后糖尿病小鼠的胰腺组织,对切取组织使用组织固定剂进行固定;用石蜡包埋,作冠状切片。
实施例2
使用碧云天生产的一步法TUNEL细胞凋亡检测试剂盒作为检测用试剂盒;将实施例1制备的冠状切片使用二甲苯进行2次脱蜡;依次用100%、95%、75%乙醇进行水化,水化共进行三次,每次1分钟;使用PBS缓冲液进行二次洗涤,后进行染色;使用PBS缓冲液进行三次洗涤,观察试剂盒显示结果。染色结果如图4所示。
实施例3
使用碧云天生产的一步法TUNEL细胞凋亡检测试剂盒作为检测用试剂盒;将实施例1制备的冠状切片使用二甲苯进行2次脱蜡;依次用100%、95%、75%乙醇进行水化,水化共进行三次,每次1分钟;使用PBS缓冲液进行二次洗涤,后进行染色,并室温孵育10分钟;使用PBS缓冲液进行三次洗涤,观察试剂盒显示结果。染色结果如图5所示。
在本发明的描述中,除非另有说明,“多个”的含义是两个或两个以上;术语“上”、“下”、“左”、“右”、“内”、“外”、“前端”、“后端”、“头部”、“尾部”等指示的方位或位置关系为基于附图所示的方位或位置关系,仅是为了便于描述本发明和简化描述,而不是指示或暗示所指的装置或元件必须具有特定的方位、以特定的方位构造和操作,因此不能理解为对本发明的限制。此外,术语“第一”、“第二”、“第三”等仅用于描述目的,而不能理解为指示或暗示相对重要性。
以上所述,仅为本发明的具体实施方式,但本发明的保护范围并不局限于此,任何熟悉本技术领域的技术人员在本发明揭露的技术范围内,凡在本发明的精神和原则之内所作的任何修改、等同替换和改进等,都应涵盖在本发明的保护范围之内。

Claims (10)

1.一种检测花青素诱导小鼠胰岛β细胞自噬效果的方法,其特征在于,所述检测花青素诱导小鼠胰岛β细胞自噬效果的方法包括以下步骤:
步骤一,称取原料葡萄籽,将葡萄籽洗净后进行干燥;将干燥的葡萄籽粉碎,过80~120目筛,得到葡萄籽粉末;
步骤二,向葡萄籽粉末中加入粉末质量体积5~9倍量、温度为100~110℃的热水搅拌20~25min,过滤,得滤液A;
步骤三,将滤液A过大孔树脂DM21吸附,并用水洗杂,得滤液B;所述大孔树脂的加入量为所述滤液量的1.0~1.3倍;
步骤四,向滤液B中加入浓度为60%的乙醇,超声提取得到葡萄籽提取液;将葡萄籽提取液进行真空干燥,得到葡萄籽提取物;
步骤五,将葡萄籽提取物直接过LSK11树脂,收集流出液;将流出液用低温等离子体气氛处理葡萄籽提取物20~30min,得到纯化的葡萄籽提取物;
步骤六,将纯化的葡萄籽提取物减压浓缩为婆美度为15~20的浓缩液,并进行喷雾,得产品葡萄籽提取物;加水稀释获得花青素溶液,作为检测试剂;
步骤七,将建模小鼠进行高脂饲料饲养,饲养时间为28~30天;令小鼠空腹6~8h后,抽取饲养后小鼠的尾静脉血,测定血糖,血糖浓度高于16.7mmol/L的小鼠作为糖尿病小鼠模型;
步骤八,对糖尿病小鼠进行花青素溶液喂食,喂食时间为28~30天;切取饲养后糖尿病小鼠的胰腺组织,分离获得小鼠胰岛β细胞;
步骤九,将获得的小鼠胰岛β细胞接种于培养瓶中,预培养3~5天,得预培养体系;将所述预培养体系无菌注入材质为FEP的细胞培养袋中;
步骤十,将含10%胎牛血清的RPMI 1640培养液的细胞培养基注入培养基保存袋中;利用联通管将所述细胞培养袋和培养基保存袋进行连接,所述联通管上设置有可拆卸的三通止流阀;
步骤十一,将所述细胞培养袋置于培养箱中进行培养,所述培养箱内设置温度为37℃,CO2浓度为5%;将所述培养基保存袋置于4℃冰箱内培养小鼠胰岛β细胞,利用流式细胞技术构建小鼠胰岛β细胞凋亡模型;
步骤十二,将培养后的小鼠胰岛β细胞使用组织固定剂进行固定;用石蜡包埋,作冠状切片;
步骤十三,使用碧云天生产的一步法TUNEL细胞凋亡检测试剂盒作为检测用试剂盒,并将已固定的冠状切片使用二甲苯进行2次脱蜡;
步骤十四,依次用100%、95%、75%乙醇进行水化,水化共进行三次,每次1min;使用PBS缓冲液进行二次洗涤,后进行染色,并室温孵育10min;使用PBS缓冲液进行三次洗涤,观察试剂盒胰岛β细胞凋亡情况的显示结果。
2.如权利要求1所述检测花青素诱导小鼠胰岛β细胞自噬效果的方法,其特征在于,步骤四中,所述超声提取中的超声频率为35~45Hz,超声时间为30~40min,超声提取温度为40~50℃。
3.如权利要求1所述检测花青素诱导小鼠胰岛β细胞自噬效果的方法,其特征在于,步骤五中,所述用低温等离子体气氛处理葡萄籽提取物时,低温等离子体气氛为体积比为1~2:1的O2和N2
4.如权利要求1所述检测花青素诱导小鼠胰岛β细胞自噬效果的方法,其特征在于,步骤六中,所述减压浓缩的条件为-0.05~-0.1MPa,40~65℃;所述喷雾时的进口温度为180~200℃,出口温度为85~95℃。
5.如权利要求1所述检测花青素诱导小鼠胰岛β细胞自噬效果的方法,其特征在于,步骤七中,所述建模小鼠为3~5月龄的雄性SD小鼠,体重为200~240克。
6.如权利要求1所述检测花青素诱导小鼠胰岛β细胞自噬效果的方法,其特征在于,步骤七中,所述高脂饲料按照质量份数由麸皮10~15份、玉米10~12份、豆粕8~15份、酪蛋白6~8份、麦芽糊精10~12份、大豆油3~6份、胆固醇1~2份组成。
7.如权利要求1所述检测花青素诱导小鼠胰岛β细胞自噬效果的方法,其特征在于,步骤八中,所述对糖尿病小鼠进行花青素溶液喂食时,花青素溶液摄入量为每天10ml。
8.如权利要求1所述检测花青素诱导小鼠胰岛β细胞自噬效果的方法,其特征在于,步骤九中,所述无菌注入的方法包括:在无菌操作台上,取一个50mL注射器,去掉推塞后,悬挂于支架上,同时利用软管将注射器的套筒与细胞培养袋的进样口连接,然后注入所述预培养体系。
9.如权利要求1所述检测花青素诱导小鼠胰岛β细胞自噬效果的方法,其特征在于,步骤十二中,所述组织固定剂为植物单宁与缓冲溶液的混合液,所述植物单宁与缓冲溶液的混合液的体积比为1:40。
10.如权利要求9所述检测花青素诱导小鼠胰岛β细胞自噬效果的方法,其特征在于,所述缓冲溶液为氢氧化钠、柠檬酸、尿素、磷酸与去离子水的混合溶液。
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