CN112831458A - 一种全悬浮无血清mdck细胞扩繁传代的优化方法 - Google Patents
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Abstract
本发明属于微生物工程技术领域,具体涉及一种全悬浮无血清MDCK细胞扩繁传代的优化方法,本发明将MDCK‑sus细胞扩繁传代,然后于MDCK细胞无血清培养基中进行全悬浮无血清培养并扩繁传代,最后分瓶培养,通过优化MDCK‑sus细胞的接种密度和细胞传代时间点,优化全悬浮无血清MDCK细胞扩繁传代的方法,为后续生产高质量、高滴度的H9N2亚型禽流感病毒奠定基础。
Description
技术领域
本发明属于微生物工程技术领域,具体涉及一种全悬浮无血清MDCK细胞扩繁传代的优化方法。
背景技术
目前,家禽年出栏量和产值在逐年上升,但禽流感的持续爆发严重危害了养禽业,不仅造成了巨大的经济损失,还引起了多起公共卫生事件,接种禽流感疫苗是最有效的防控手段,因此必须提高禽流感疫苗技术水平。
传统禽流感疫苗通过鸡胚培养生产,效率低、成本高、品质不稳定。国内多家单位也开展了禽流感细胞苗的研究,但由于微载体工艺扩大困难、细胞密度和病毒滴度较低等的因素制约了其产业化进程。而细胞悬浮培养是大规模培养动物细胞生产生物制品的核心技术,是生物制药行业发展的必然趋势,该技术完全克服了以往技术的弊端。
目前全悬浮无血清MDCK细胞培养H9N2亚型禽流感病毒工艺尚未成熟,而把握全悬浮无血清MDCK细胞增值禽流感病毒的首要任务是控制全悬浮无血清MDCK的扩繁传代培养,工艺关键是要掌握活细胞的起始密度,为下一步工艺的探究作铺垫。
发明内容
本发明的目的是提供一种全悬浮无血清MDCK细胞扩繁传代优化方法,将 MDCK-sus细胞扩繁传代,然后于MDCK细胞无血清培养基中进行全悬浮无血清培养并扩繁传代,最后分瓶培养,通过优化MDCK-sus细胞的接种密度和细胞传代时间点,优化全悬浮无血清MDCK细胞扩繁传代的方法,为后续生产高质量、高滴度的H9N2亚型禽流感病毒奠定基础。
本发明的技术方案为:
一种全悬浮无血清MDCK细胞扩繁传代的优化方法,包括以下步骤:
(1)取MDCK-sus细胞扩繁传代;
(2)取扩繁传代之后的MDCK-sus细胞悬液,接种于MDCK细胞无血清培养基中,进行全悬浮无血清培养并扩繁传代;
(3)当步骤(2)中的MDCK-sus细胞密度达到对数生长期密度时,分瓶培养。
进一步地,步骤(2)中接种的起始活细胞密度为0.5×106~2.0×106cells/mL。
更进一步地,步骤(2)中接种的起始活细胞密度为1.5×106cells/mL。
进一步地,步骤(2)中全悬浮无血清培养60小时,MDCK-sus细胞密度达到对数生长期密度并分瓶培养。
进一步地,步骤(2)中所述培养具体是指在125mL摇瓶30mL培养体系中,转速为130r/min,温度为37℃,通入浓度为5%的CO2的条件下培养。
进一步地,步骤(3)中所述培养具体是指在125mL摇瓶30mL培养体系中,转速为130r/min,温度为37℃,通入浓度为5%的CO2的条件下培养。
本发明的有益效果如下:
本发明全悬浮无血清MDCK细胞扩繁传代优化方法通过优化MDCK-sus细胞的接种密度和细胞传代时间点,有效增加了细胞传代扩增效率,为后续生产高质量、高滴度的H9N2亚型禽流感病毒奠定基础。
附图说明
附图1为测试例1中不同接种密度培养MDCK-sus细胞活细胞密度变化曲线;
具体实施方式
下面结合具体实施方式,对本发明的技术方案作进一步的详细说明,但不构成对本发明的任何限制。
以下实施例中的试剂和细胞:
Driving-M MDCK细胞无血清培养基购自上海倍谙基生物科技有限公司;
全悬浮MDCK-sus细胞均由肇庆大华农农业部动物疫控生物技术与制品创制重点实验室保存供应。
实施例
一种全悬浮无血清MDCK细胞增殖H9N2亚型禽流感病毒的优化方法,包括以下步骤:
(1)取F1代MDCK-sus细胞,连续2代扩繁;
(2)取扩繁传代之后的MDCK-sus细胞悬液,按照1.5×106cells/mL的起始活细胞密度加Driving-M MDCK细胞无血清培养基至30mL,在125mL摇瓶30 mL培养体系中,转速为130r/min,温度为37℃,通入浓度为5%的CO2的条件下进行全悬浮无血清培养并扩繁传代;
(3)当步骤(2)中的MDCK-sus细胞密度达到对数生长期密度时,取30 mLMDCK-sus细胞悬液,按照1.5×106cells/mL的起始活细胞密度,传至125mL 摇瓶30mL培养体系中,转速为130r/min,温度为37℃,通入浓度为5%的CO2 的条件下继续培养。
本实施例步骤(2)中培养第4天(96小时),MDCK-sus细胞密度达到约 20×106cells/mL,且培养60小时即进入对数生长中期。
对比例
一种全悬浮无血清MDCK细胞增殖H9N2亚型禽流感病毒的优化方法,包括以下步骤:
(1)取F1代MDCK-sus细胞,连续2代扩繁;
(2)取扩繁传代之后的MDCK-sus细胞悬液,按照1×106cells/mL的起始活细胞密度加Driving-M MDCK细胞无血清培养基至30mL,在125mL摇瓶30 mL培养体系中,转速为130r/min,温度为37℃,通入浓度为5%的CO2的条件下进行全悬浮无血清培养并扩繁传代;
(3)当步骤(2)中的MDCK-sus细胞密度达到对数生长期密度时,取30 mLMDCK-sus细胞悬液,按照1.5×106cells/mL的起始活细胞密度,传至125mL 摇瓶30mL培养体系中,转速为130r/min,温度为37℃,通入浓度为5%的CO2 的条件下继续培养。
本对比例步骤(2)中培养第5天(120小时)接近峰值,达到约19×106 cells/mL。
通过实施例与对比例的对比,可初步判断步骤(2)中以1.5×106cells/mL 的活细胞接种密度培养具有最优的扩繁传代效率,并且全悬浮无血清培养60小时,MDCK-sus细胞密度达到对数生长期密度并分瓶培养最优。
测试例1
一种全悬浮无血清MDCK细胞增殖H9N2亚型禽流感病毒的优化方法,具体步骤按照对比例进行操作,不同点在于:在步骤(2)中分别设置4个不同的起始活细胞密度,即0.5×106cells/mL、1.0×106cells/mL、1.5×106cells/mL、 2.0×106cells/mL分别加新鲜Driving-M MDCK细胞无血清培养基至30mL,在 125mL摇瓶培养,每24小时取样计算活细胞密度,连续观察至第120小时,每个细胞密度做3个摇瓶重复。
绘制的不同接种密度培养MDCK-sus细胞活细胞密度变化曲线如附图1所示,随着时间的变化,活细胞密度逐渐上升。其中,0.5×106cells/mL组的细胞密度增加比较缓慢,培养第5天(120小时)约为19×106cells/mL,尚未达到最高密度,但增长幅度开始变慢;1×106cells/mL组、1.5×106cells/mL组峰值则随着起始活细胞的密度提高而明显提高,到达峰值的时间也相应提前,1.5× 106cells/mL组峰值位于培养第4天(96小时),达到约20×106cells/mL,且培养60小时即进入对数生长中期,而1×106cells/mL组培养第5天(120小时) 才接近峰值,达到约19×106cells/mL;2×106cells/mL组培养第3天(72小时) 左右达到峰值,但仅比1.5×106cells/mL略高,此后细胞密度开始降低,可能是因为其细胞起始数量过多,导致生长液营养消耗加快,代谢产物增加导致培养基环境不利于细胞生长。
由此可见,起始细胞密度过高虽然可以缩短细胞到达峰值平台期的时间,但是细胞对培养基营养消耗得也快,细胞提前进入衰老期,最高倍增幅度也难以相应提高,消耗细胞种子较多,降低了细胞传代扩增效率。而过低的起始细胞密度则要形成一定规模的细胞数量需要更长的时间。综合考虑,以1.5×106 cells/mL的活细胞接种密度培养具有最优的效率。
上述实施例为本发明较佳的实施方式,但本发明的实施方式并不受上述实施例的限制,其它的任何未背离本发明的精神实质与原理下所作的改变、修饰、替代、组合、简化,均应为等效的置换方式,都包含在本发明的保护范围之内。
Claims (6)
1.一种全悬浮无血清MDCK细胞扩繁传代的优化方法,其特征在于,包括以下步骤:
(1)取MDCK-sus细胞扩繁传代;
(2)取扩繁传代之后的MDCK-sus细胞悬液,接种于MDCK细胞无血清培养基中,进行全悬浮无血清培养并扩繁传代;
(3)当步骤(2)中的MDCK-sus细胞密度达到对数生长期密度时,分瓶培养。
2.根据权利要求1所述的一种全悬浮无血清MDCK细胞扩繁传代的优化方法,其特征在于,步骤(2)中接种的起始活细胞密度为0.5×106~2.0×106cells/mL。
3.根据权利要求2所述的一种全悬浮无血清MDCK细胞扩繁传代的优化方法,其特征在于,步骤(2)中接种的起始活细胞密度为1.5×106cells/mL。
4.根据权利要求1所述的一种全悬浮无血清MDCK细胞扩繁传代的优化方法,其特征在于,步骤(2)中全悬浮无血清培养60小时,MDCK-sus细胞密度达到对数生长期密度并分瓶培养。
5.根据权利要求1所述的一种全悬浮无血清MDCK细胞扩繁传代的优化方法,其特征在于,步骤(2)中所述培养具体是指在125mL摇瓶30mL培养体系中,转速为130r/min,温度为37℃,通入浓度为5%的CO2的条件下培养。
6.根据权利要求1所述的一种全悬浮无血清MDCK细胞扩繁传代的优化方法,其特征在于,步骤(3)中所述培养具体是指在125mL摇瓶30mL培养体系中,转速为130r/min,温度为37℃,通入浓度为5%的CO2的条件下培养。
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