CN111983058A - 中药抗非酒精性脂肪肝活性物质的筛选方法 - Google Patents
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Abstract
本发明提供了一种以线粒体自噬关键调控蛋白Parkin为靶点的集“识别‑分离‑鉴定”于一体的筛选新方法,实现从中药等复杂样品中高效筛选Parkin调节剂,发现抗NAFLD先导化合物,并为揭示中药调节Parkin而发挥抗NAFLD作用的药效物质提供依据。
Description
技术领域
本申请涉及一种抗非酒精性脂肪肝活性物质的筛选方法,尤其涉及以线粒体自噬蛋白Parkin为靶的中药抗非酒精性脂肪肝活性物质的筛选方法。
背景技术
非酒精性脂肪肝(Nonalcoholic fatty liver disease,NAFLD)已经成为重大健康威 胁,它不仅会引发肝脏严重病变乃至癌化,还可能引发肝外肿瘤、糖尿病、心血管及代谢疾病,且加快它们的病程。NAFLD病因不同于酒精性脂肪肝,在全球患病人群 数量庞大,国内约有近1/3的人群患有NAFLD。随着生活方式的迅速转变,我国 NAFLD发展趋势日益加重,且呈年轻化趋势。NAFLD的威胁在全球都存在被低估 的现象,且目前没有药物干预的手段,只能通过改善饮食、运动等习惯进行调理,尚 缺乏治疗NAFLD特效药物。研究NAFLD防治药物具有重要价值。
线粒体自噬(Mitophagy)是指细胞通过自噬的机制选择性地清除线粒体的过程。通过选择性地清除受损或功能不完整的线粒体,维持线粒体功能完整性和细胞生存, 达到延缓衰老、治疗疾病的目的。近期研究表明线粒体自噬与NAFLD密切相关,2009 年Nature首次报道了自噬调节脂质代谢,随后2018年Cell Death&Disease报道了线 粒体自噬在NAFLD中的作用。
Pink1/Parkin通路介导的线粒体自噬途径,可高效选择清除受损的线粒体,并促进线粒体增殖以维持线粒体正常生理功能。因此,Pink1/Parkin通过对线粒体的调控 对相关疾病有极大的相关性。Pink1/Parkin介导线粒体自噬分子机制:1)正常情况下, 蛋白激酶Pink1在胞质中合成后通过线粒体膜分子通道进入线粒体内部,被线粒体内 蛋白水解酶降解;2)线粒体受损致内膜电位消散,Pink1向内膜转移受阻,稳定并积 累在线粒体外膜上;3)Parkin作为一种E3泛素连接酶,被Pink1从胞质中招募到线 粒体外膜并使其发生磷酸化而激活;4)被激活的Parkin催化线粒体蛋白发生泛素化, 使之能被接头蛋白识别;5)泛素化的蛋白与吞噬膜上酵母自噬蛋白8家族同源蛋白 如微管相关蛋白轻链3、高尔基体相关ATP酶增强子等连接,形成线粒体自噬体;6) 线粒体自噬体与溶酶体融合形成成熟线粒体自噬溶酶体,启动线粒体降解程序。
中药作为天然来源化合物库,其中包含的化合物由于结构的多样性、毒性较低和来源广泛等特点,长期以来一直是新药或先导化合物发现的重要来源。目前上市药物 中,如紫杉醇、吗啡、青蒿素、青霉素以及大部分抗生素和半合成抗生素等,都是直 接来源于天然产物或以天然产物为先导化合物通过结构改造而成。目前已发现中药可 影响Pink1/Parkin通路而调节线粒体自噬,如,厚朴提取液通过Parkin蛋白表达调控 以改善泛素蛋白酶体系统功能活性,从而保护黑质区多巴胺能神经元;从中药中分离 的白藜芦醇、远志皂苷、槲皮素等亦能影响Pink1/Parkin通路而调节线粒体自噬。因 此,从中药及天然药物中搜寻Parkin调节剂是最有效、最直接的途径。
众所周知,中药是一个复杂体系,其组成成分数量庞大,种类繁多,使得中药活 性成分分析和筛选非常困难。经典筛选方法是:首先从中药中提取分离、制备得到纯 度较高的单体化合物;然后将化合物进行体内外药理实验验证,通过检测Parkin表达 量或酶活性及线粒体自噬的变化情况来反映化合物是否有效。可见,传统方法不能直 接从复杂体系中筛选活性成分,筛选成本高,劳动强度高,效率低,样品用量大、动 物消耗量大及筛选周期较长等缺点。为此,我们需建立不经分离纯化,能直接从中药 复杂体系中快速有效找到Parkin调节剂的新方法。
亲和超滤是由亲和采集与超滤技术结合而成,采用超滤膜分离与生物大分子 (>10kD的蛋白和DNA)相结合的小分子化合物,目前已成为筛选研究中药中作用 于生物大分子(如蛋白、酶、DNA等)的活性成分的有效途径之一。LC/MS技术具 备高分离、高灵敏度、高选择性以及提供丰富结构信息等优点,目前已用LC/MS技 术对大部分常用中药的化学成分进行了分析、鉴定,用LC/MS可实现活性成分的结 构鉴定分析。
因此,本研究拟联合亲和超滤与LC/MS(GC/MS),构建一种以Parkin为靶的集 “识别-分离-鉴定”于一体的中药活性组分筛选新方法;用所建方法筛选中药中Parkin 活性调节剂;并通过测定Parkin酶活力证实其对Parkin的调节作用(激动/拮抗);最 后用细胞实验测试化合物对NAFLD的缓解作用。
研究结果无疑将揭示所筛中药结合于Parkin的主要活性物质,为NAFLD及其他 线粒体自噬相关疾病防治新药的研发提供先导物,并为揭示中药调节线粒体自噬而发 挥药效的物质基础提供充分科学依据;所建筛选方法将为中药及天然药物复杂体系中 的Parkin调节剂的快速、有效筛选开辟新途径。
发明内容
本发明的目的是构建一种以线粒体自噬关键调控蛋白Parkin为靶点的集“识别-分离-鉴定”于一体的筛选新方法,实现从中药等复杂样品中高效筛选Parkin调节剂, 发现抗NAFLD先导化合物,并为揭示中药调节Parkin而发挥抗NAFLD作用的药效 物质提供依据。
具体的,本发明提供以下方案:
一种抗非酒精性脂肪肝活性物质的筛选方法,其特征在于,包括如下步骤:
1)分别将含有活性物质的待分析液和空白对照液与Parkin蛋白混悬液充分混合,含有活性物质的待分析液混合形成混合液A,空白对照液混合形成混合液B,采用水 浴孵育;
2)分别在混合液A和混合液B中加入PBS,离心,保留沉淀C和沉淀D;
3)在所述沉淀C和沉淀D中分别加入有机溶剂,使Parkin蛋白变性,离心,保 留上清液获得上清液E和上清液F;
4)分别对上清液E和上清液F微孔滤膜过滤,获得滤过液G和滤过液H;
5)采用HPLC/MS对滤过液G和滤过液H进行分析;
6)当滤过液G中的色谱峰面积显著高于(ΔP>20%)滤过液H中的色谱峰面积 时,该色谱峰所对应的活性物质即为抗非酒精性脂肪肝活性物质;
ΔP=(Pe–Pc)/Pe×100,Pe为滤过液G色谱峰面积,Pc为滤过液H色谱峰面 积。
进一步的,步骤1)中Parkin蛋白混悬液采用PH7.4的PBS溶液混悬;
步骤1)中Parkin蛋白悬液的蛋白浓度为0.5-1.5g/L;
步骤2)中水浴孵育条件为35-39℃水浴中孵育30-120min;
步骤2)中加入PBS前增加离心步骤,以弃去未与Parkin蛋白相互结合的成分;
该离心步骤的离心条件是0-6℃条件下,10000-20000×g离心10-60min;
步骤2)和3)中离心条件是0-6℃条件下,10000-20000×g离心10-60min;
步骤3)中有机溶剂为80%甲醇,采用超声方式使Parkin蛋白变性;
步骤3)重复完成2-5次,以充分洗去未与Parkin蛋白相互结合的成分;
步骤4)中在上清液E和上清液F微孔滤膜过滤前增加先吹干后再加入80%甲醇 复溶的步骤;
步骤4)中采用0.22μm微孔滤膜过滤。
进一步的,一种抗非酒精性脂肪肝活性物质的筛选方法,其特征在于,包括如下步骤:
1)Parkin蛋白用PH为7.0-8.0的PBS溶液混悬,制备蛋白浓度为0.8-1.2g/L的Parkin蛋白悬液,取200μL作为实验组用于活性筛选,另取200μL PBS作为空白对 照组;
2)取5μL含有活性物质的待分析液分别与实验组的200μL Parkin蛋白以及200 μLPBS涡旋混合,于36-38℃水浴中孵育40-80min,让活性物质充分与Parkin蛋白 作用;
3)将反应混合液分别倒入2支0.5mL10 kDa离心超滤管中,3-5℃条件下, 12000-16000×g离心20-30min,弃去未与Parkin蛋白相互结合的成分;
4)向离心后的沉淀中分别加入200μL PBS,3-5℃条件下,12000-16000×g离 心20-30min,洗去与Parkin蛋白非特异性结合的成分,此步骤重复操作2-4次;
5)向上述离心后的沉淀中分别加入400μL 80%甲醇水溶液,超声混合15-40min,从而使Parkin蛋白充分变性,解离结合于Parkin蛋白上的活性成分,室温下, 12000-16000×g离心20-30min,保留含有活性成分的上清液;
6)滤过液分别用氮吹仪吹干后加入100μL 80%甲醇水溶液复溶,接着用0.22μm微孔滤膜过滤,收集含活性物质的滤过液(实验组)和空白滤过液(空白对照组);
7)上述滤过液分别进入HPLC/MS系统分析;
8)活性成分判断标准:当实验组中的色谱峰面积显著高于(ΔP>20%)空白对 照组中的色谱峰面积时,该色谱峰所对应的活性物质即为抗非酒精性脂肪肝活性物 质;
ΔP=(Pe–Pc)/Pe×100,Pe为实验组色谱峰面积,Pc为空白对照组色谱峰面积。
进一步的,一种抗非酒精性脂肪肝活性物质的筛选方法,其特征在于,包括如下步骤:
1)Parkin蛋白用PH为7.4的PBS溶液混悬,制备蛋白浓度为1.0g/L的Parkin 蛋白悬液,取200μL作为实验组用于活性筛选,另取200μL PBS作为空白对照组;
2)取5μL含有活性物质的待分析液分别与实验组的200μL Parkin蛋白以及200 μLPBS涡旋混合,于37℃水浴中孵育60min,让活性物质充分与Parkin蛋白作用;
3)将反应混合液分别倒入2支0.5mL10 kDa离心超滤管中,4℃条件下,14,000 ×g离心25min,弃去未与Parkin蛋白相互结合的成分;
4)向离心后的沉淀中分别加入200μL PBS,4℃条件下,14,000×g离心25min, 洗去与Parkin蛋白非特异性结合的成分,此步骤重复操作3次;
5)向上述离心后的沉淀中分别加入400μL 80%甲醇水溶液,超声混合20min, 从而使Parkin蛋白充分变性,解离结合于Parkin蛋白上的活性成分,室温下,14,000 ×g离心25min,保留含有活性成分的上清液;
6)滤过液分别用氮吹仪吹干后加入100μL 80%甲醇水溶液复溶,接着用0.22μm微孔滤膜过滤,收集含活性物质的滤过液(实验组)和空白滤过液(空白对照组);
7)上述滤过液分别进入HPLC/MS系统分析;
8)活性成分判断标准:当实验组中的色谱峰面积显著高于(ΔP>20%)空白对 照组中的色谱峰面积时,该色谱峰所对应的活性物质即为抗非酒精性脂肪肝活性物 质;
ΔP=(Pe–Pc)/Pe×100,Pe为实验组色谱峰面积,Pc为空白对照组色谱峰面积。
本发明还提供了采用上述的方法对与Parkin蛋白结合的活性成分进行筛选的方法。
本发明所述的抗非酒精性脂肪肝活性物质可选的,存在于中药。
本发明所述的中药为具有抗非酒精性脂肪肝活性的中药,例如大黄、苦参、虎杖。
本发明所述的活性物质选自7,4′-二羟基-5-甲氧基-8-异戊烯基二氢黄酮、苦参醇 I、苦参酮、槐黄烷酮G、芦荟大黄素-8-O-葡萄糖苷、芹菜素、大黄素。
附图说明
图1:以Parkin蛋白为靶点的方法筛选药物混合溶液的HPLC色谱图
(A)直接将混合对照品进HPLC分析的色谱图;(B)采用筛选方法分析得到 的色谱图,包括待分析样品色谱图和空白对照色谱图
ST,DL-selenomethionine;AC,amoxicillin;DTT,DL-Dithiothreitol
图2:苦参活性成分筛选的HPLC图
苦参浓度为10.5g/L,Parkin蛋白浓度为1.0g/L,孵育时间为60min,(A)0–70 min;(B)70–140min。与空白对照比较,HPLC图中显示4个色谱峰(K1-K4)的峰 面积显著增大,为活性成分。
图3:荧光分光光度法检测人源Parkin蛋白活性(大黄素和芹菜素组,***P<0.001)
图4:荧光分光光度法检测人源Parkin蛋白活性(苦参醇、苦参酮、槐黄烷酮G组,***P<0.001)
图5:给予苦参醇I、苦参酮24h后的肝L-02细胞
A,正常组;B,模型组;C,非诺贝特组;D,苦参醇I低剂量组;E,苦参醇I 中剂量组;F,苦参酮低剂量组。
图6:苦参醇I、苦参酮对脂肪变性肝L-02细胞TG的调节作用(*P<0.05,**P<0.01,***P<0.001与模型组相比)
图7:苦参醇I、苦参酮对脂肪变性肝L-02细胞TC的调节作用(*P<0.05,**P<0.01,***P<0.001与模型组相比)
具体实施方式
实施例1 Parkin为靶的中药活性成分筛选方法构建
(一)主要试剂配制
1.反应缓冲液:50mM Tris-HCl(PH8.0)、2mM二硫苏糖醇、5mM MgCl2、4mM ATP、5%甘油。
2.对照品供试液(2mg/mL):分别取阿莫西林、DTT、DL-硒代蛋氨酸对照品溶 于DMSO中,制成浓度均为2mg/mL的3种对照品供试液。
3.混合对照品溶液(2mg/mL):将阿莫西林、DTT、DL-硒代蛋氨酸对照品混合 后,溶解于DMSO中,制成混合对照品溶液(每种药物的浓度均为2mg/mL)。
(二)活性成分筛选方法建立
1.Parkin蛋白用PBS(PH7.4)溶液混悬,制备蛋白浓度为1.0g/L的Parkin蛋白 悬液,取200μL作为实验组用于活性筛选,另取200μL PBS作为空白对照组;
2.取5μL待分析液分别与实验组的Parkin蛋白(200μL)以及PBS(200μL) 涡旋混合,于37℃水浴中孵育60min,让化合物充分与Parkin蛋白作用;
3.将上述反应混合液分别倒入2支0.5mL离心超滤管(10kDa)中,4℃条件 下,14,000×g离心25min,弃去未与Parkin蛋白相互结合的成分;
4.向上述离心后的沉淀中分别加入200μL PBS,4℃条件下,14,000×g离心25min,洗去与Parkin蛋白非特异性结合的成分,此步骤重复操作3次;
5.向上述离心后的沉淀中分别加入400μL 80%甲醇水溶液,超声混合20min, 从而使Parkin蛋白充分变性,解离结合于Parkin蛋白上的活性成分,室温下,14,000 ×g离心25min,保留上清液(含有活性成分);
6.滤过液分别用氮吹仪吹干后加入100μL 80%甲醇水溶液复溶,接着用0.22μm微孔滤膜过滤,收集含活性物质的滤过液(实验组)和空白滤过液(空白对照组);
7.上述滤过液分别进入HPLC/MS系统分析;
8.活性成分判断标准:当实验组中的色谱峰面积显著高于(ΔP>20%)空白对 照组中的色谱峰面积时,确认该色谱峰为与Parkin蛋白结合的活性成分。
ΔP=(Pe–Pc)/Pe×100,Pe为实验组色谱峰面积,Pc为空白对照组色谱峰面积。
(三)采用阳性药和阴性药评价筛选方法可行性
利用所建方法分别分析DTT(PDB数据库报道为Parkin配体)、DL-硒代蛋氨 酸(PDB数据库报道为Parkin配体)2种阳性药,阿莫西林(β-内酰胺类抗生素)1 种阴性药,以及3种对照品的混合溶液,考察方法的可行性。
(四)HPLC/MS分析条件
1.HPLC条件
阿莫西林供试液:色谱柱:Hypersil GOLDTM Amino,100mm×2.1mm。流动相: 甲醇:0.1%甲酸水=15:85;流速0.2mL/min;柱温30℃;进样体积2μL;检测波长 210nm。
DTT供试液:色谱柱:Hypersil GOLDTM Amino,100mm×2.1mm。流动相:水 (A)和甲醇(B)梯度洗脱;洗脱梯度:0min,100%B;2min,95%B;4min,85%B; 5min,90%B;7min,80%B;10min,70%B;15min,100%。流速0.2mL/min;柱 温30℃;进样体积2μL;检测波长210nm。
DL-硒代蛋氨酸供试液:色谱柱:Hypersil GOLDTM Amino,100mm×2.1mm。流 动相:水(A)和乙腈(B)梯度洗脱;洗脱梯度:0min,80%B;3min,60%B;4min, 40%B;5min,20%B;10min,80%B。流速0.2mL/min;柱温30℃;进样体积2μL; 检测波长210nm。
混合对照品供试液:色谱柱:Hypersil GOLDTM Amino,100mm×2.1mm。流动相: 水(A)和乙腈(B)梯度洗脱;洗脱梯度:0min,100%B;1.5min,90%B;4min, 85%B;7min,75%B;10min,25%B;15min,100%B;20min,100。流速0.2mL/min; 柱温30℃;进样体积2μL;检测波长210nm。
(五)结果与结论
1.3种对照品溶液的测定分析
结果显示:2种阳性药ΔP﹥20%,说明这2种化合物均能与Parkin蛋白结合,且 能用该方法分离、筛选出来。但是,1种阴性药与Parkin蛋白作用后检测到的峰面积 基本和药物与空白组检测到的峰面积相等(ΔP﹤20%),说明二者不能与Parkin蛋白 相结合。因此,确定ΔP﹥20%的化合物判定为活性成分。
表1对照品的LC/MS数据
aΔP=(Pe–Pc)/Pe×100,Pe代表实验组色谱峰面积,Pc代表空白对照组色谱峰面积。
2.混合对照品溶液的测定分析
结果(图1)显示:从图1-B中可看出R1峰和R 2峰显示实验组的峰面积明显 大于空白组的峰面积(ΔP﹥20%),说明它们是可与Parkin蛋白发生结合的活性成分。 通过比较A与B色谱峰的保留时间,可发现R1为DL-硒代蛋氨酸,R 2为二硫苏糖 醇。结果说明所建立的方法可选择性识别、分离混合物中与Parkin蛋白结合的成分。
DTT和DL-硒代蛋氨酸是Parkin蛋白的配体。因此,这两种化合物能与Parkin 蛋白发生特异性结合。然而,阿莫西林是一种β-内酰胺类抗生素,其主要作用是抑制 细菌细胞壁的合成,可选择性地作用于细菌中丰富的青霉素结合蛋白,所以不能与 Parkin蛋白特异性结合。
研究结果表明,所建方法集“识别-分离-鉴定”于一体。考虑到阳性对照药(与Parkin蛋白特异性结合的成分)的ΔP值均大于20%,而阴性对照药(不与Parkin蛋 白特异性结合的成分)的ΔP值均小于20%,我们将ΔP值大于20%的色谱峰认为是与 Parkin蛋白发生特异性结合的活性成分。
从图1中可发现,空白对照组中也检测到了目标成分,这是超滤膜对化合物的非特异性吸附导致的。为此,我们在实验设计时以蛋白储存液作为空白对照组,以排除 超滤膜的非特异性吸附的影响。
结论:采用Parkin蛋白,将亲和超滤技术和LC/MS技术联用,构建一种不经分 离纯化的、可快速筛选复杂体系中抗NAFLD成分的方法。利用2种阳性对照药和1 种阴性对照药,以及3种对照品的混合溶液验证了筛选方法的可行性,结果表明所建 方法是一种集“识别-分离-鉴定”于一体的快速、有效筛选中药复杂体系中抗NAFLD 成分的方法。
实施例2 Parkin为靶的中药活性成分筛选方法构建
(一)主要试剂配制
同实施例1。
(二)药材提取物冻干粉制备
苦参、虎杖提取物冻干粉:分别称取中药材粉末(过40目筛)约50g于锥形瓶 中,加入10倍量(500mL)甲醇,浸泡30min,超声提取60min后,减压过滤;残 渣中加入8倍量(400mL)70%甲醇溶液继续超声提取60min,减压过滤;合并两次 滤液,减压回收溶剂(旋转蒸发仪温度设置为45℃);所得浸膏置于-80℃冰箱中结 冰后,转移至冷冻干燥机中,冷冻干燥得冻干粉。将冻干粉研碎,混匀,置于干燥器 中保存备用。
(三)筛选供试品溶液制备
分别称取苦参、虎杖药材提取物冻干粉适量,充分溶解于DMSO中,制备苦参(400mg/mL)、虎杖(300mg/mL)供试品溶液,4℃保存备用。
(四)活性成分筛选
采用以Parkin蛋白为靶点的方法分别筛选、分析上述2种供试液,操作步骤见实施例1。
(五)HPLC/MS分析条件
虎杖供试液:色谱柱:shim-pack XR-ODS,2.2μm,2.0mm×10cm。流动相:0.1% 甲酸水(A)和乙腈(B)梯度洗脱;洗脱梯度:0min,5%B;10min,10%B;20min, 20%B;35min,30%B;55min,40%B;70min,60%B;75min,100%B。流速0.2 mL/min;柱温30℃;进样体积5μL;检测波长254nm。
苦参供试液:色谱柱:shim-pack XR-ODS,2.2μm,2.0mm×10cm。流动相:水 (A)和乙腈(B)梯度洗脱;洗脱梯度:0min,2%B;15min,5%B;30min,15%B; 40min,20%B;60min,25%B;75min,35%B;90min,40%B;105min,45%B; 120min,55%B;130min,65%B;140min,85%B。流速0.2mL/min;柱温30℃; 进样体积5μL;检测波长210nm。
MS条件:
质谱采用正负离子同时扫描模式检测;离子源为ESI;CDL温度250℃;喷雾气 流速:1.5L/min;加热模块:250℃;接口电压:(+)4.5kV,(-)-3.5kV。正离子模 式:MS1:质量范围m/z:100~1000Da;检测电压:1.70kV;ionaccumulation:20msec; MS2,MS3:质量范围m/z:50~1000Da;ion accumulation:10,20msec;CID energy: 50%。负离子模式:MS1:质量范围m/z:100~1000Da;检测电压:1.70KV;ion accumulation:20msec;MS2,MS3:质量范围m/z:50~1000;ion accumulation:10, 20msec;CID energy:50%。工作站:LC/MS solutionversion 3.60,分子式预测,精 确分子量计算。
(六)体外自泛素化验证活性成分筛选结果
Parkin蛋白用PBS稀释至蛋白浓度为1.0g/L。在反应缓冲液中加入5μM荧光标 记泛素、15nM的泛素激活酶E1、0.5μM泛素结合酶E2,1μM的原核表达的人源 Parkin蛋白(泛素连接酶E3),37℃孵育1h,进行泛素化反应后4℃过夜终止反应。
(七)苦参活性成分筛选
采用所建方法对苦参提取物进行了筛选,结果如图2。结果显示,与空白对照组 比较,苦参中共有4个色谱峰与Parkin蛋白作用后峰面积显著升高(ΔP>20%,表2), 为与Parkin蛋白结合的活性成分,这些成分可能是苦参作用于Parkin蛋白而发挥抗 NAFLD作用的主要物质基础。
活性物质的LC/MS数据及结构指认结果见表2,通过UV、MS和MSn数据的分 析,并与文献报道的LC/MS数据对照,同时利用对照品进行对照,指认了4种(K1: 7,4′-二羟基-5-甲氧基-8-异戊烯基二氢黄酮、K2:苦参醇I、K3:苦参酮、K4:槐黄 烷酮G)活性成分的化学结构。这些成分均为首次发现可与Parkin蛋白结合的化合物。
(八)虎杖活性成分筛选
采用所建方法对虎杖提取物进行了筛选,结果见图3。结果显示,与空白对照组 比较,虎杖中共有4个色谱峰与Parkin蛋白作用后峰面积显著升高(ΔP>20%,表3), 为与Parkin蛋白结合的活性成分,这些成分可能是虎杖作用于Parkin蛋白而发挥抗 NAFLD作用的主要物质基础。
活性物质的LC/MS数据及结构指认结果见表3,通过UV、MS和MSn数据的分 析,并与文献报道的LC/MS数据对照,同时利用对照品进行对照,指认了3种活性 成分的化学结构(H1:芦荟大黄素-8-O-葡萄糖苷、H2:芹菜素、H3:(Unidentified)、 H4:大黄素)。这些成分均为首次发现可与Parkin蛋白结合的化合物。
(九)体外自泛素化验证活性成分筛选结果
将本实施例所筛选到并经过对照品比对的化学结构的5种(芹菜素、大黄素、苦 参醇I、苦参酮、槐黄烷酮G)活性成分分别与Parkin蛋白进行孵育,通过体外泛素 化反应荧光分光光度法检测结果如图3-4,从图可知,随着洗涤次数的增加,洗涤液 中的荧光强度逐渐减弱,到第六次洗涤的时候荧光基本消失,说明非共价键结合的泛 素化蛋白已经基本上被洗涤除去。在加入溶解液溶解被截留组分之后荧光强度明显增 强(且明显高于阴性组),说明虎杖中的2种活性成分(大黄素、芹菜素),苦参中 的3种活性成分(苦参醇I、苦参酮、槐黄烷酮G)能增强Parkin蛋白的活性增强泛 素化反应。
结论:1、本实施例利用以Parkin蛋白为靶点的方法从2味中药材(苦参、虎杖) 中共筛选到8种活性成分,通过LC/MS指认了7种,且这7种均为首次发现的可与 Parkin蛋白结合的活性成分。研究结果初步揭示了苦参和虎杖作用于Parkin蛋白的主 要物质基础,为深入探讨中药药理机制提供科学依据。
2、体外自泛素化实验进一步验证了所筛选到5种化合物(大黄素、芹菜素、苦 参酮、苦参醇、槐黄烷酮G)能增强Parkin蛋白的活力,促进泛素化。为Parkin蛋 白相关疾病防治新药的研发提供新的思路。
实施例3采用细胞实验验证化合物的抗非酒精性脂肪肝作用
一、实验方法
1.试液配制
RPMI-1640培养液:精密称取1.69g Hepes,165mg丙酮酸钠(Pyruril Acid SodiumSalt),2g碳酸氢钠(NaHCO3),150mg谷氨酰胺(L-Glutamine),10.0g RPMI-1640 粉溶于1L超纯水中,用HCl调节pH至7.20,0.22μm孔径滤器过滤除菌分装,4℃ 保存备用。
正常培养液的配制(含10%FBS的RPMI-1640培养液):将450mL RPMI-1640 与50mL的FBS培养基混匀,4℃冰箱保存备用。
G0液的配制(含有0.2%血清的RPMI-1640培养液):将499mL RPMI-1640培养 基与1mL的FBS混匀,4℃冰箱保存备用。
磷酸缓冲液(PBS):精密称取0.2g KCl,0.2g K2HPO4,3.49g NaHPO4.12H2O, 8gNaCl充分溶于800mL超纯水,于室温充分搅拌均匀,调节pH7.4,定容至1000mL, 0.22μm孔径滤器过滤除菌分装,4℃保存备用。
0.25%胰酶溶液:精密称取0.5g胰蛋白酶,溶于200mL PBS缓冲液中,0.22μm 孔径滤器过滤除菌分装,4℃保存备用。
细胞冻存液:将正常培养液与细胞级DMSO溶液按9:1的比例混合而成,现用 现配。
造模液的配制(医用脂肪乳RPMI-1640造模液):将5mL医用脂肪乳充分溶解 于含10%胎牛血清的RPMI-1640培养液中并定容至100mL,即为医用脂肪乳诱导液。
0.01%Triton X-100溶液:10mL超纯水中加入100μL Triton X-100,充分搅拌混匀后,4℃保存备用。
2.肝L-02细胞的复苏、传代、冻存
(1)细胞复苏
将新鲜培养基置于37℃水槽中回温,回温后喷以75%酒精并擦拭之,移入无菌 操作台内。自液氮中取出一支冻存的肝L-02细胞,立即放入37℃水浴锅中快速解冻, 轻摇冷冻管使其在1分钟内全部融化,以75%酒精擦拭保存管外部,移入无菌操作台 内。取出解冻的细胞悬浮液,缓缓加入有培养液的培养瓶内(稀释比例为1:10~1:15), 混合均匀,放入CO2培养箱培养。另取0.1ml解冻细胞悬浮液作存活测试。
(2)细胞传代
培养液瓶打开后,过酒精灯火焰,置酒精灯火焰周围。打开培养瓶,瓶口过火, 将培养瓶内的培养液轻轻倒入废液缸,用2-4mL PBS洗去残留的培养基2次。向有 L-02细胞的培养瓶加入1-2ml 0.25%胰酶,37℃消化,倒置显微镜下观察到细胞变圆 或漂浮时,加入含血清的新鲜培养基终止消化,并轻轻吹打细胞,使其充分脱壁并分 散。于4℃下2000rpm离心5min,弃去上清液,加入PBS重悬,重复1-2次;加入 新鲜的正常培养液重悬,分取一定量细胞加入培养瓶中,将培养瓶放回5%CO2、37℃ 细胞培养箱中培养。
(3)细胞冻存
肝L-02细胞生长至对数生长期,按上述细胞传代所述方法获得细胞,加入适量 细胞冻存液(细胞用DMSO:培养液=1:9),制备单细胞混悬液,转入冻存管并置于 程序降温冻存盒中,分别置于4℃20min,-20℃4h,-80℃过夜后转入液氮罐冻存。
3.肝细胞脂肪变性模型复制及给药
(1)肝细胞脂肪变性模型复制
用0.25%胰蛋白酶消化对数生长期的正常人肝L-02细胞,细胞计数后用正常培养液配成单个细胞悬液,以每孔3×105个细胞的密度接种于6孔培养板中,每孔培养 液体积2mL。将培养板放到CO2培养箱中,在37℃、5%CO2及饱和湿度条件下, 培养48h使其充分贴壁生长,待细胞长至80%时,换成G0液培养24h,使细胞周期 同步化。加入造模液(医用脂肪乳RPMI-1640)刺激24h,对照组则给予正常培养液 相同的时间,即可得到脂肪变性的肝L-02细胞。
(2)实验分组及给药
将肝细胞传板至6孔板,分为正常组、模型组、给药组,细胞按本节“2”项下的 方法进行培养,各组细胞周期同步化,参照文献[1]方法复制医用脂肪乳诱导的肝L-02 细胞脂肪变性模型,PBS清洗2-3次后给药刺激:
1)正常组:正常培养液;
2)模型组:正常培养液;
3)给药组:阳性对照非诺贝特组(100μM/L);苦参酮低剂量组(25μM/L); 苦参醇I低剂量组(25μM/L);苦参醇I中剂量组(50μM/L)。
每个浓度设3个复孔,给药刺激24h后,分别置于倒置显微镜下观察细胞形态, 并取细胞裂解液检测其中TC、TG水平。
4.统计学处理
二、结果与讨论
(一)苦参醇I及苦参酮对脂肪变性肝L-02细胞中脂滴的影响
给药之前,正常组细胞正常生长(图5A),其余各组给予医用脂肪乳后均 产生脂滴(图5B~F),表明造模成功。给药24h后,阳性药非诺贝特及苦参醇 I低、中剂量组和苦参酮低剂量组细胞脂滴数量较模型组一定程度减少,细胞贴 壁生长良好,边缘规则清晰,结果说明苦参醇I和苦参酮可明显减少医用脂肪乳 诱导的肝L-02细胞中脂滴。由于苦参酮中剂量(50μM/L)毒性较大造成细胞死 亡,导致没有进行TG、TC的检测。
(二)苦参醇I及苦参酮对脂肪变性肝L-02细胞中TC与TG的影响
如图6和图7所示,与正常组相比,模型组TG含量显著升高(P<0.001),TC 含量也显著升高(P<0.01),表明医用脂肪乳诱导肝细胞脂质异常。与模型组相比, 非诺贝特肝细胞中TG含量降低但无显著性,苦参醇I低、中剂量组及苦参酮低剂量 组肝细胞中TG含量均显著降低(P<0.001);此外,非诺贝特组、苦参酮低剂量组 肝细胞中TC含量均均显著降低(P<0.05,P<0.001),苦参醇各剂量组无显著变化 (与模型组比较)。结果表明苦参醇I、苦参酮可一定程度改善医用脂肪乳诱导的肝细 胞脂质异常。
三、结论
苦参醇I和苦参酮可通过降低TG、TC缓解医用脂肪乳诱导的肝L-02细胞脂肪 变性,其机制可能与Parkin介导的线粒体自噬有关。
综上,联合亲和超滤和LC/MS,构建以Parkin蛋白为靶点的集“识别-分离-鉴定”于一体的抗NAFLD成分筛选方法,并利用阳性对照物(二硫苏糖醇(DTT)、DL- 硒代蛋氨酸)、阴性对照物(阿莫西林)以及它们所组成的混合对照品溶液验证筛选 方法可行性。
用所建方法筛选2种中药(苦参、虎杖)提取液中作用于Parkin蛋白的活性成分,并用LC/MS及对照品指认活性化合物结构;采用体外自泛素化反应,验证被筛选化 合物与Parkin蛋白的直接作用;通过考察化合物对脂肪变性肝L-02细胞总胆固醇(TC)、甘油三酯(TG)的影响,验证本方法筛选出的苦参中2种化合物的抗NAFLD 活性。
结果显示:
人源Parkin蛋白在Escherichia coli BL21(DE3)中获高表达,经Western blot检测已经除去了大量杂蛋白,得到纯度较高的Parkin蛋白;Western blot和荧光分光光 度法检测均证实异源表达的人源Parkin蛋白具有生物活性。
综上所述,以Parkin蛋白为靶点的筛选方法可选择性地识别出混合物中结合于Parkin蛋白的活性物质(阳性对照物),且利用超滤技术可将识别到的活性成分分离, 并直接排除不与Parkin蛋白结合的非活性成分(阴性对照物),最后采用LC/MS鉴定 活性物质的结构,所建筛选方法集“识别-分离-鉴定”于一体。
采用所建方法从2种中药中共筛选到8种可与Parkin蛋白结合的活性化合物,采用LC/MS和对照品指认了7种,且7种为本研究首次发现可与Parkin蛋白结合的活 性物质。采用体外泛素化反应验证筛选结果发现5种(芹菜素、大黄素、苦参酮、苦 参醇I、槐黄烷酮G)化合物均可显著增强Parkin酶活性,提高底物泛素化水平。体 外实验证实2种(苦参醇I、苦参酮)被筛选化合物均能显著减少细胞中脂滴,且TC、 TG水平显著降低,具有潜在抗NAFLD活性。
结论:
本研究建立了一种以Parkin蛋白为靶点的集“识别-分离-鉴定”于一体的筛选方法,为快速、有效地筛选中药复杂体系中的抗NAFLD成分提供新途径。从苦参、虎 杖2种中药材中筛选到8种活性物质,已证实其中5种(芹菜素、大黄素、苦参酮、 苦参醇I、槐黄烷酮G)被筛选的活性化合物可直接调节Parkin蛋白活性,这些成分 可能是被筛选中药直接作用于Parkin蛋白的主要物质基础。利用体外药理实验证实了 苦参中2种(苦参酮、苦参醇I)被筛选化合物的抗NAFLD作用,结果将有助于揭 示被筛选中药调节Parkin而发挥抗NAFLD作用的药效物质。
Claims (10)
1.一种筛选抗非酒精性脂肪肝活性物质的方法,其特征在于,包括如下步骤:
1)分别将含有活性物质的待分析液和空白对照液与Parkin蛋白混悬液充分混合,含有活性物质的待分析液混合形成混合液A,空白对照液混合形成混合液B,采用水浴孵育;
2)分别在混合液A和混合液B中加入PBS,离心,保留沉淀C和沉淀D;
3)在所述沉淀C和沉淀D中分别加入有机溶剂,使Parkin蛋白变性,离心,保留上清液获得上清液E和上清液F;
4)分别对上清液E和上清液F微孔滤膜过滤,获得滤过液G和滤过液H;
5)采用HPLC/MS对滤过液G和滤过液H进行分析;
6)当滤过液G中的色谱峰面积显著高于(ΔP>20%)滤过液H中的色谱峰面积时,该色谱峰所对应的活性物质即为抗非酒精性脂肪肝活性物质;
ΔP=(Pe–Pc)/Pe×100,Pe为滤过液G色谱峰面积,Pc为滤过液H色谱峰面积。
2.一种筛选能与Parkin蛋白结合的活性成分的方法,其特征在于,包括如下步骤:
1)分别将含有活性物质的待分析液和空白对照液与Parkin蛋白混悬液充分混合,含有活性物质的待分析液混合形成混合液A,空白对照液混合形成混合液B,采用水浴孵育;
2)分别在混合液A和混合液B中加入PBS,离心,保留沉淀C和沉淀D;
3)在所述沉淀C和沉淀D中分别加入有机溶剂,使Parkin蛋白变性,离心,保留上清液获得上清液E和上清液F;
4)分别对上清液E和上清液F微孔滤膜过滤,获得滤过液G和滤过液H;
5)采用HPLC/MS对滤过液G和滤过液H进行分析;
6)当滤过液G中的色谱峰面积显著高于(ΔP>20%)滤过液H中的色谱峰面积时,该色谱峰所对应的活性物质即为能与Parkin蛋白结合的活性成分;
ΔP=(Pe–Pc)/Pe×100,Pe为滤过液G色谱峰面积,Pc为滤过液H色谱峰面积。
3.如权利要求1或2所述的筛选方法,其特征在于:步骤1)中Parkin蛋白混悬液采用PH7.4的PBS溶液混悬;步骤1)中Parkin蛋白悬液的蛋白浓度为0.5-1.5g/L。
4.如权利要求1或2所述的筛选方法,其特征在于:步骤2)中水浴孵育条件为35-39℃水浴中孵育30-120min;步骤2)中加入PBS前增加离心步骤,以弃去未与Parkin蛋白相互结合的成分;该离心步骤的离心条件是0-6℃条件下,10000-20000×g离心10-60min。
5.如权利要求1或2所述的筛选方法,其特征在于:步骤2)和3)中离心条件是0-6℃条件下,10000-20000×g离心10-60min。
6.如权利要求1或2所述的筛选方法,其特征在于:步骤3)中有机溶剂为80%甲醇,采用超声方式使Parkin蛋白变性;步骤3)重复完成2-5次,以充分洗去未与Parkin蛋白相互结合的成分。
7.如权利要求1或2所述的筛选方法,其特征在于:步骤4)中在上清液E和上清液F微孔滤膜过滤前增加先吹干后再加入80%甲醇复溶的步骤;步骤4)中采用0.22μm微孔滤膜过滤。
8.如权利要求1或2所述的筛选方法,其特征在于:包括如下步骤:
1)Parkin蛋白用PH为7.0-8.0的PBS溶液混悬,制备蛋白浓度为0.8-1.2g/L的Parkin蛋白悬液,取200μL作为实验组用于活性筛选,另取200μL PBS作为空白对照组;
2)取5μL含有活性物质的待分析液分别与实验组的200μL Parkin蛋白以及200μL PBS涡旋混合,于36-38℃水浴中孵育40-80min,让活性物质充分与Parkin蛋白作用;
3)将反应混合液分别倒入2支0.5mL10 kDa离心超滤管中,3-5℃条件下,12000-16000×g离心20-30min,弃去未与Parkin蛋白相互结合的成分;
4)向离心后的沉淀中分别加入200μL PBS,3-5℃条件下,12000-16000×g离心20-30min,洗去与Parkin蛋白非特异性结合的成分,此步骤重复操作2-4次;
5)向上述离心后的沉淀中分别加入400μL 80%甲醇水溶液,超声混合15-40min,从而使Parkin蛋白充分变性,解离结合于Parkin蛋白上的活性成分,室温下,12000-16000×g离心20-30min,保留含有活性成分的上清液;
6)滤过液分别用氮吹仪吹干后加入100μL 80%甲醇水溶液复溶,接着用0.22μm微孔滤膜过滤,收集含活性物质的滤过液(实验组)和空白滤过液(空白对照组);
7)上述滤过液分别进入HPLC/MS系统分析;
8)活性成分判断标准:当实验组中的色谱峰面积显著高于(ΔP>20%)空白对照组中的色谱峰面积时,该色谱峰所对应的活性物质即为抗非酒精性脂肪肝活性物质;
ΔP=(Pe–Pc)/Pe×100,Pe为实验组色谱峰面积,Pc为空白对照组色谱峰面积。
9.如权利要求1所述的方法,其特征在于,所述的活性物质存在于中药,例如大黄、苦参、虎杖。
10.如权利要求2所述的方法,其特征在于,所述的活性成分选自7,4′-二羟基-5-甲氧基-8-异戊烯基二氢黄酮、苦参醇I、苦参酮、槐黄烷酮G、芦荟大黄素-8-O-葡萄糖苷、芹菜素、大黄素。
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PB01 | Publication | ||
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GR01 | Patent grant | ||
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