CN111679021B - 一种用于检测固体样品中杂环胺的方法 - Google Patents
一种用于检测固体样品中杂环胺的方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN111679021B CN111679021B CN202010638832.1A CN202010638832A CN111679021B CN 111679021 B CN111679021 B CN 111679021B CN 202010638832 A CN202010638832 A CN 202010638832A CN 111679021 B CN111679021 B CN 111679021B
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- sample
- heterocyclic amine
- extraction reagent
- purified
- amino
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Active
Links
Classifications
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N30/00—Investigating or analysing materials by separation into components using adsorption, absorption or similar phenomena or using ion-exchange, e.g. chromatography or field flow fractionation
- G01N30/02—Column chromatography
- G01N30/04—Preparation or injection of sample to be analysed
- G01N30/06—Preparation
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N30/00—Investigating or analysing materials by separation into components using adsorption, absorption or similar phenomena or using ion-exchange, e.g. chromatography or field flow fractionation
- G01N30/02—Column chromatography
- G01N30/62—Detectors specially adapted therefor
- G01N30/72—Mass spectrometers
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N30/00—Investigating or analysing materials by separation into components using adsorption, absorption or similar phenomena or using ion-exchange, e.g. chromatography or field flow fractionation
- G01N30/02—Column chromatography
- G01N30/62—Detectors specially adapted therefor
- G01N30/74—Optical detectors
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N30/00—Investigating or analysing materials by separation into components using adsorption, absorption or similar phenomena or using ion-exchange, e.g. chromatography or field flow fractionation
- G01N30/02—Column chromatography
- G01N30/88—Integrated analysis systems specially adapted therefor, not covered by a single one of the groups G01N30/04 - G01N30/86
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02A—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
- Y02A50/00—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
- Y02A50/30—Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change
Landscapes
- Physics & Mathematics (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- General Physics & Mathematics (AREA)
- Immunology (AREA)
- Pathology (AREA)
- Spectroscopy & Molecular Physics (AREA)
- Other Investigation Or Analysis Of Materials By Electrical Means (AREA)
Abstract
本发明公开了一种用于杂环胺分析的固体样品快速净化试剂盒,包括第一提取试剂和第二提取试剂,所述第一提取试剂由氯化钠、SDS、碳酸钠、醋酸铅中的一种或多种组成;所述第二提取试剂为Fe3O4@PDA。使用所述试剂盒对杂环胺检测时的固体样品进行净化,除去脂类、色素等基质干扰。所述净化方法包括步骤:取第一提取试剂溶于水,得第三提取试剂;取待净化样品,加入第三提取试剂匀浆并清洗匀浆刀头,将洗涤所得液体与匀浆液混合,离心取上清液,加入第二提取试剂震荡,将固体取出加入甲醇震荡,取甲醇层,得净化样品制备液。可用高效液相色谱‑紫外检测法和高效/超高效液相色谱串联二级质谱等方法,对净化样品制备液中的杂环胺进行检测。
Description
技术领域
本发明属于食品安全检测技术领域,具体涉及一种用于杂环胺分析的固体样品快速净化试剂盒及净化方法。
背景技术
杂环胺是富含蛋白质的食品在加热过程中经过化学反应产生的一系列致癌、致突变的化合物。流行病学报告显示:过量的杂环胺摄入会使患食道癌、胃癌、结肠癌、胰腺癌等癌症的风险增大。现阶段,杂环胺的检测技术已较为成熟,最为常用的是高效液相色谱-紫外检测法(HPLC-UV)和高效/超高效液相色谱串联二级质谱法(HPLC/UPLC-MS-MS),这两种方法自动化程度高,仪器重复性好。但这些测试方法需要对样品特别是固体样品进行净化,以除去样品中脂类、色素等基质干扰。现有前处理手段实验过程耗时长,试剂消耗量大,无法实现大批量样品杂环胺分析。本发明的目的是建立一种简单、快速、稳定、试剂消耗量小的样品前处理试剂盒,改进现有杂环胺分析技术效率和性能。
发明内容
本发明的目的是提供一种样品处理时间短、检测成本低、试剂消耗量小、无需过固相萃取小柱净化的快速测定固体样品中杂环胺的试剂盒。
本发明的另一个目的是提供一种用所述试剂盒净化固体样品的方法。
为了达到上述目的,本发明所采用的技术方案是:
一种用于杂环胺分析的固体样品快速净化试剂盒,包括第一提取试剂和第二提取试剂,所述第一提取试剂由氯化钠、SDS、碳酸钠、醋酸铅中的一种或多种组成;所述第二提取试剂为Fe3O4@PDA;
优选方式下,所述Fe3O4@PDA的制备方法,包括步骤:
S1:取三羟甲基氨基甲烷(Tris),溶于超纯水中,用盐酸调至pH为7.5~9,得到Tris-HCl溶液;所述Tris和超纯水的质量体积比是(1~10):2g/L;
S2:取多巴胺(PDA),溶于步骤S1所述Tris-HCl溶液中,得到PDA-Tris-HCl溶液;所述PDA与Tris-HCl溶液的质量体积比是(1~10):2g/L;
S3:取四氧化三铁(Fe3O4),置于PDA-Tris-HCl溶液中,超声使Fe3O4在溶液中分散均匀,得到Fe3O4 @PDA制备液,震荡;所述Fe3O4与PDA-Tris-HCl溶液的质量体积比是(1~10):2g/L;
S4:用磁铁将震荡后的Fe3O4@PDA制备液中的固液分离,弃去液体;依次使用醇和去离子水清洗去除杂质,磁力分离,弃去液体;干燥至恒重,得到Fe3O4@PDA。
优选方式下,步骤S3所述震荡参数为:100~300rpm,室温震荡2~12h。
优选方式下,步骤S4所述醇是甲醇或乙醇,所述醇的添加量与步骤S2所述Tris-HCl溶液的体积比为(0.5~5):1;所述去离子水的添加量与步骤S2所述Tris-HCl溶液的体积比为(0.5~5):1;步骤S4所述清洗次数为2~5次。
最优方式下,所述Fe3O4@PDA的制备方法,包括步骤:
S1:称取0.07g三羟甲基氨基甲烷(Tris),溶于100mL超纯水中,用盐酸调至pH为8.5,得到Tris-HCl溶液;
S2:称取10mg多巴胺(PDA),溶于10mL Tris-HCl溶液中,得到PDA-Tris-HCl溶液;
S3:称取5mg四氧化三铁(Fe3O4),置于10mL PDA-Tris-HCl溶液中,800W水浴超声1min使Fe3O4在溶液中分散均匀,得到Fe3O4@PDA制备液,100rpm震荡4h;
S4:用磁铁将震荡后的Fe3O4@PDA制备液中的固液分离,弃去液体;使用20mL甲醇清洗三次,再使用20mL去离子水清洗三次,以去除杂质,磁力分离,弃去液体;60℃干燥4h,得到Fe3O4@PDA。
所述用于杂环胺分析的固体样品快速净化试剂盒可以用于杂环胺检测时,对固体样品进行净化。
一种使用所述用于杂环胺分析的固体样品快速净化试剂盒净化固体样品的方法,包括步骤:
S1:取第一提取试剂,溶于超纯水中,得到第三提取试剂;所述第一提取试剂和超纯水的质量体积比是(2~20):50g/mL;
S2:称取待净化样品,加入第三提取试剂A,匀浆,得匀浆液;用第三提取试剂B洗涤匀浆机刀头,将洗涤后所得液体与所述匀浆液混合,离心取上清液;取所述上清液,加入第二提取试剂,漩涡震荡,磁力分离后弃去上清液,将所得固体加入甲醇,漩涡震荡,磁力分离,取甲醇层,得净化样品制备液;
其中,所述待净化样品可以是固体样品;所述待净化样品和所述第三提取试剂A的质量体积比为(1~5):10g/mL;所述上清液和所述第二提取试剂的体积质量比为(0.5~5):(5~100)mL/mg;所述甲醇的添加量为0.5~5mL;
S3:不称待净化取样品,其余操作同步骤S2,得到试样空白液。
优选方式下,步骤S2所述待净化样品为牛肉、鸡肉或鲫鱼等固体样品;所述匀浆的参数为:4000~8000rpm匀浆1~3min;所述离心的转速为3000~10000rpm、时间5~20min;所述漩涡震荡的转速为3000~6000rpm、时间0.5~2min;步骤S2所述第三提取试剂B和第三提取试剂A的体积比是(0.2~1):1。
可以使用高效液相色谱-紫外检测法(HPLC-UV)和高效/超高效液相色谱串联二级质谱法(HPLC/UPLC-MS-MS)等方法,对所述净化样品制备液中的杂环胺进行检测。
可以按下述方法,以试样空白液为对照,对净化样品制备液中的杂环胺进行测定,再通过公式计算待净化样品中的杂环胺含量:
S1:将所述净化样品制备液过0.22μm的有机系微孔滤膜,进行高效液相色谱串联三重四级杆质谱测定,得到第一色谱图;
S2:以甲醇为溶剂,配制六个不同质量体积浓度的杂环胺混合标准溶液,该六个标准溶液中杂环胺的质量体积浓度依次分别为:0.50ng/mL、1.00ng/mL、5.00ng/mL、50.00ng/mL、250.00ng/mL、1000.00ng/mL;将杂环胺系列混合标准溶液于附带三重四级杆质谱的高效液相色谱仪中测定,得第二色谱图,由该第二色谱图得到系列标准溶液中杂环胺在该色谱条件下的出峰时间和不同浓度的峰面积;并以标准溶液质量体积浓度为横坐标,色谱峰面积为纵坐标,绘制杂环胺标准溶液的工作曲线;
S3:根据步骤S1测得的净化样品制备液的峰面积值,从步骤S2绘制的系列杂环胺标准溶液的工作曲线上找到峰面积值对应的杂环胺的含量,按下式计算待测固体样品中杂环胺的含量X:
式中:X表示试样(即待净化样品)中的杂环胺含量,单位ng/g;C1表示步骤S1测得的样品制备液的峰面积所对应的杂环胺的含量,单位ng/mL;C0表示试样空白液中杂环胺的含量,单位ng/mL;m表示试样质量(即所述待净化样品的质量),单位g;V表示第三提取试剂的体积(即第三提取试剂A和第三提取试剂B的体积之和),单位mL;V1表示净化样品制备液的体积,单位mL;V2表示上清液的体积,单位mL。
本发明试剂盒制造成本低,对杂环胺有一定的吸附性,对油脂、淀粉等大分子杂质不产生吸附,可以有效地净化样品。实验过程中采用磁性材料对样品中杂环胺进行吸附,易
于分离。
附图说明
图1是本发明实施例1,对烤牛肉净化后,用高效液相色谱串联三重四级杆质谱测定得到的2-氨基-3-甲基咪唑[4,5-f]-喹啉色谱图;
图2是本发明实施例1,对烤牛肉净化后,用高效液相色谱串联三重四级杆质谱测定得到的2-氨基-3,4-二甲基咪唑[4,5-f]-喹啉色谱图;
图3是本发明实施例1,对烤牛肉净化后,用高效液相色谱串联三重四级杆质谱测定得到的2-氨基-3-甲基咪唑[4,5-f]-喹喔啉色谱图;
图4是本发明实施例1,对烤牛肉净化后,用高效液相色谱串联三重四级杆质谱测定得到的2-氨基-3,8-二甲基咪唑[4,5-f]-喹喔啉色谱图;
图5是本发明实施例1,对烤牛肉净化后,用高效液相色谱串联三重四级杆质谱测定得到的2-氨基-3,7,8-三甲基咪唑[4,5-f]-喹喔啉色谱图;
图6是本发明实施例1,对烤牛肉净化后,用高效液相色谱串联三重四级杆质谱测定得到的9H-吡啶并[3,4-b]吲哚色谱图;
图7是本发明实施例1,对烤牛肉净化后,用高效液相色谱串联三重四级杆质谱测定得到的1-甲基-9H-吡啶并[3,4-b]吲哚色谱图;
图8是本发明实施例1,对烤牛肉净化后,用高效液相色谱串联三重四级杆质谱测定得到的2-氨基-9H-吡啶并[2,3-b]吲哚色谱图;
图9是本发明实施例1,对烤牛肉净化后,用高效液相色谱串联三重四级杆质谱测定得到的2-氨基-3-甲基-9H-吡啶并[2,3-b]吲哚色谱图;
图10是本发明实施例1,对烤牛肉净化后,用高效液相色谱串联三重四级杆质谱测定得到的2-氨基-1,6-二甲基咪唑[4,5-b]-吡啶色谱图;
图11是本发明实施例1,对烤牛肉净化后,用高效液相色谱串联三重四级杆质谱测定得到的2-氨基-1,5,6-三甲基咪唑[4,5-b]-吡啶色谱图;
图12是对混合标准溶液进行高效液相色谱串联三重四级杆质谱测定得到的2-氨基-3-甲基咪唑[4,5-f]-喹啉色谱图;
图13是对混合标准溶液进行高效液相色谱串联三重四级杆质谱测定得到的2-氨基-3,4-二甲基咪唑[4,5-f]-喹啉色谱图;
图14是对混合标准溶液进行高效液相色谱串联三重四级杆质谱测定得到的2-氨基-3-甲基咪唑[4,5-f]-喹喔啉色谱图;
图15是对混合标准溶液进行高效液相色谱串联三重四级杆质谱测定得到的2-氨基-3,8-二甲基咪唑[4,5-f]-喹喔啉色谱图;
图16是对混合标准溶液进行高效液相色谱串联三重四级杆质谱测定得到的2-氨基-3,7,8-三甲基咪唑[4,5-f]-喹喔啉色谱图;
图17是对混合标准溶液进行高效液相色谱串联三重四级杆质谱测定得到的9H-吡啶并[3,4-b]吲哚色谱图;
图18是对混合标准溶液进行高效液相色谱串联三重四级杆质谱测定得到的1-甲基-9H-吡啶并[3,4-b]吲哚色谱图;
图19是对混合标准溶液进行高效液相色谱串联三重四级杆质谱测定得到的2-氨基-9H-吡啶并[2,3-b]吲哚色谱图;
图20是对混合标准溶液进行高效液相色谱串联三重四级杆质谱测定得到的2-氨基-3-甲基-9H-吡啶并[2,3-b]吲哚色谱图;
图21是对混合标准溶液进行高效液相色谱串联三重四级杆质谱测定得到的2-氨基-1,6-二甲基咪唑[4,5-b]-吡啶色谱图;
图22是对混合标准溶液进行高效液相色谱串联三重四级杆质谱测定得到的2-氨基-1,5,6-三甲基咪唑[4,5-b]-吡啶色谱图。
具体实施方式
下面结合附图和具体实施方式对本发明进行详细说明。
一种用于杂环胺分析的固体样品快速净化试剂盒,包括第一提取试剂和第二提取试剂,所述第一提取试剂由氯化钠、SDS、碳酸钠、醋酸铅中的一种或多种组成;所述第二提取试剂为Fe3O4@PDA;
优选方式下,所述Fe3O4@PDA的制备方法,包括步骤:
S1:取三羟甲基氨基甲烷(Tris),溶于超纯水中,用盐酸调至pH为7.5~9,得到Tris-HCl溶液;所述Tris和超纯水的质量体积比是(1~10):2g/L;
S2:取多巴胺(PDA),溶于Tris-HCl溶液中,得到PDA-Tris-HCl溶液;所述PDA与Tris-HCl溶液的质量体积比是(1~10):2g/L;
S3:取四氧化三铁(Fe3O4),置于PDA-Tris-HCl溶液中,超声使Fe3O4在溶液中分散均匀,得到Fe3O4@PDA制备液,震荡;所述Fe3O4与PDA-Tris-HCl溶液的质量体积比是(1~10):2g/L;
S4:用磁铁将震荡后的Fe3O4@PDA制备液中的固液分离,弃去液体;依次使用醇和去离子水清洗去除杂质,磁力分离,弃去液体;干燥至恒重,得到Fe3O4@PDA。
优选方式下,步骤S3所述震荡参数为:100~300rpm,室温震荡2~12h;步骤S4所述醇是甲醇或乙醇,所述醇的添加量与步骤S2所述Tris-HCl溶液的体积比为(0.5~5):1;所述去离子水的添加量与步骤S2所述Tris-HCl溶液的体积比为(0.5~5):1;步骤S4所述清洗次数为2~5次。
所述用于杂环胺分析的固体样品快速净化试剂盒可以用于杂环胺检测时,对固体样品进行净化。
一种使用所述用于杂环胺分析的固体样品快速净化试剂盒净化固体样品的方法,包括步骤:
S1:取第一提取试剂,溶于超纯水中,得到第三提取试剂;所述第一提取试剂和超纯水的质量体积比是(2~20):50g/mL;
S2:称取待净化样品,加入第三提取试剂A,匀浆,得匀浆液;用第三提取试剂B洗涤匀浆机刀头,将洗涤后所得液体与所述匀浆液混合,离心取上清液;取所述上清液,加入第二提取试剂,漩涡震荡,磁力分离后弃去上清液,将所得固体加入甲醇,漩涡震荡,磁力分离,取甲醇层,得净化样品制备液;
其中,所述待净化样品可以是固体样品;所述待净化样品和所述第三提取试剂A的质量体积比为(1~5):10g/mL;所述上清液和所述第二提取试剂的体积质量比为(0.5~5):(5~100)mL/mg;所述甲醇的添加量为0.5~5mL;
S3:不称取样品,其余操作同步骤S2,得到试样空白液。
优选方式下,步骤S2所述待净化样品为牛肉、鸡肉或鲫鱼等固体样品;步骤S2所述匀浆的参数为:4000~8000rpm匀浆1~3min;所述离心的转速为3000~10000rpm、时间5~20min;所述漩涡震荡的转速为3000~6000rpm、时间0.5~2min;步骤S2所述第三提取试剂B和第三提取试剂A的体积比是(0.2~1):1。
可以使用高效液相色谱-紫外检测法(HPLC-UV)和高效/超高效液相色谱串联二级质谱法(HPLC/UPLC-MS-MS)等方法,对所述净化样品制备液中的杂环胺进行检测。
可以按下述方法,对净化样品中的杂环胺含量进行测定:
S1:所述净化样品制备液过0.22μm的有机系微孔滤膜,然后进行高效液相色谱串联三重四级杆质谱测定;色谱条件:色谱柱:C8 2.1×100mm分析柱;流动相A:10mM乙酸铵溶液,流动相B:乙腈,梯度洗脱程序:0~0.1min:10%B,0.1~18min:10%~30%B,18~20min:30%~100%B,20~21min:100%~10%B,21~25min:10%B;流速:0.3mL/min;柱温:35℃;进样量:1μL;质谱条件:见表1;得图1~11所示的第一色谱图;
S2:以甲醇为溶剂,配制六个不同质量体积浓度的11种杂环胺混合标准溶液,该六个标准溶液中杂环胺的质量体积浓度依次分别为:0.50ng/mL、1.00ng/mL、5.00ng/mL、50.00ng/mL、250.00ng/mL、1000.00ng/mL;将杂环胺系列混合标准溶液于附带三重四级杆质谱的高效液相色谱仪中测定,色谱条件:色谱柱:C82.1×100mm分析柱;流动相A:10mM乙酸铵溶液,流动相B:乙腈,梯度洗脱程序:0~0.1min:10%B,0.1~18min:10%~30%B,18~20min:30%~100%B,20~21min:100%~10%B,21~25min:10%B;流速:0.3mL/min;柱温:35℃;进样量:1μL;质谱条件:见表1。得图12~22所示的第二色谱图,由该第二色谱图得到的系列标准溶液中杂环胺在该色谱条件下的出峰时间和不同浓度的峰面积。并以标准溶液质量体积浓度为横坐标,色谱峰面积为纵坐标,绘制杂环胺标准溶液的工作曲线;该标准曲线的线性范围、回归方程、相关系数见表2。
表1杂环胺的质谱条件
测定物质 | 定量离子对(m/z) | 去簇电压(V) | 碰撞电压(V) |
2-氨基-3-甲基咪唑[4,5-f]-喹啉 | 199.2/184.1 | 156 | 35 |
2-氨基-3,4-二甲基咪唑[4,5-f]-喹啉 | 213.0/198.1 | 109 | 33 |
2-氨基-3-甲基咪唑[4,5-f]-喹喔啉 | 200.0/185.0 | 138 | 35 |
2-氨基-3,8-二甲基咪唑[4,5-f]-喹喔啉 | 214.0/199.0 | 172 | 36 |
2-氨基-3,7,8-三甲基咪唑[4,5-f]-喹喔啉 | 227.9/213.1 | 167 | 33 |
9H-吡啶并[3,4-b]吲哚 | 170.0/116.0 | 132 | 45 |
1-甲基-9H-吡啶并[3,4-b]吲哚 | 182.8/115.0 | 136 | 42 |
2-氨基-9H-吡啶并[2,3-b]吲哚 | 184.1/167.1 | 191 | 30 |
2-氨基-3-甲基-9H-吡啶并[2,3-b]吲哚 | 198.1/181.0 | 194 | 28 |
2-氨基-1,6-二甲基咪唑[4,5-b]-吡啶 | 163.1/148.0 | 165 | 32 |
2-氨基-1,5,6-三甲基咪唑[4,5-b]-吡啶 | 176.9/162.0 | 128 | 32 |
表2标准曲线的线性范围、回归方程、相关系数
组分名称 | 线性范围(ng/mL) | 回归方程 | 相关系数(R2) |
2-氨基-3-甲基咪唑[4,5-f]-喹啉 | 0.5~1000 | y=84361.2x-40404.6 | 0.99118 |
2-氨基-3,4-二甲基咪唑[4,5-f]-喹啉 | 0.5~1000 | y=61095.1x-32556.4 | 0.99134 |
2-氨基-3-甲基咪唑[4,5-f]-喹喔啉 | 0.5~1000 | y=27906.3x-2938.3 | 0.99250 |
2-氨基-3,8-二甲基咪唑[4,5-f]-喹喔啉 | 0.5~1000 | y=14527x-5647.5 | 0.99932 |
2-氨基-3,7,8-三甲基咪唑[4,5-f]-喹喔啉 | 0.5~1000 | y=26158.9x-13251.4 | 0.99440 |
9H-吡啶并[3,4-b]吲哚 | 0.5~1000 | y=8853.2x-1718.9 | 0.99266 |
1-甲基-9H-吡啶并[3,4-b]吲哚 | 0.5~1000 | y=61979.5x-15312.4 | 0.99509 |
2-氨基-9H-吡啶并[2,3-b]吲哚 | 0.5~1000 | y=2068x+1452.9 | 0.99148 |
2-氨基-3-甲基-9H-吡啶并[2,3-b]吲哚 | 0.5~1000 | y=14503.6x+4747.3 | 0.99272 |
2-氨基-1,6-二甲基咪唑[4,5-b]-吡啶 | 0.5~1000 | y=39768.4x-13637.4 | 0.99191 |
2-氨基-1,5,6-三甲基咪唑[4,5-b]-吡啶 | 0.5~1000 | y=6005.2x-17311.5 | 0.99443 |
表2中所述回归方程中,x表示杂环胺的浓度,y表示杂环胺的色谱峰面积;
S3:根据步骤S1测得的净化样品制备液的峰面积值,从步骤S2绘制的系列杂环胺标准溶液的工作曲线上找到峰面积值对应的杂环胺的含量,按下式计算待测固体样品中杂环胺的含量X:
式中:X表示试样(即待净化样品)中的杂环胺含量,单位ng/g;C1表示步骤S1测得的样品制备液的峰面积所对应的杂环胺的含量,单位ng/mL;C0表示试样空白液中杂环胺的含量,单位ng/mL;m表示试样质量(即所述待净化样品的质量),单位g;V表示第三提取试剂的体积(即第三提取试剂A和第三提取试剂B的体积之和),单位mL;V1表示净化样品制备液的体积,单位mL;V2表示上清液的体积,单位mL。
下述各实施例中使用的Fe3O4@PDA的制备方法,步骤如下:
S1:称取0.07g三羟甲基氨基甲烷(Tris),溶于100mL超纯水中,用盐酸调至pH为8.5,得到Tris-HCl溶液;
S2:称取10mg多巴胺(PDA),溶于10mL Tris-HCl溶液中,得到PDA-Tris-HCl溶液;
S3:称取5mg四氧化三铁(Fe3O4),置于10mL PDA-Tris-HCl溶液中,800W水浴超声1min使Fe3O4在溶液中分散均匀,得到Fe3O4@PDA制备液,100rpm震荡4h;
S4:用磁铁将震荡后的Fe3O4@PDA制备液中的固液分离,弃去液体;使用20mL甲醇清洗三次,再使用20mL去离子水清洗三次,以去除杂质,磁力分离,弃去液体;60℃干燥4h,得到Fe3O4@PDA。
如无特殊说明,下述各例使用的烤牛肉为普通烤肉店购买的同一批次的烤牛肉,各例之间烤牛肉样品中的杂环胺含量无显著差异
实施例1:
一种用于杂环胺分析的固体样品快速净化试剂盒,包括第一提取试剂和第二试剂,所述第一提取试剂是氯化钠;所述第二提取试剂为Fe3O4@PDA;
使用所述用于杂环胺分析的固体样品快速净化试剂盒净化固体样品的方法,包括步骤:
S1:称取3.00g第一提取试剂,溶于50mL超纯水中,得到第三提取试剂;
S2:称取2.00g烤牛肉于离心管中,加入10mL第三提取试剂A,6000rpm匀浆1min,得匀浆液;用5mL第三提取试剂B洗涤匀浆机刀头,将洗涤后所得液体与所述匀浆液合并,4000rpm离心10min,得上清液和沉淀物;取1mL所述上清液,加入10mg第二提取试剂,5000rpm漩涡震荡30s,磁力分离后弃去上清液,加入1mL甲醇,5000rpm漩涡震荡30s,磁力分离,取甲醇层,得净化样品制备液;
S3:不称取样品,其余操作同步骤S2,得到试样空白液。
取本实施例获得的净化样品制备液,进行杂环胺的测定,包括步骤:
S1:所述净化样品制备液过0.22μm的有机系微孔滤膜,然后进行高效液相色谱串联三重四级杆质谱测定;色谱条件:色谱柱:C8 2.1×100mm分析柱;流动相A:10mM乙酸铵溶液,流动相B:乙腈,梯度洗脱程序:0~0.1min:10%B,0.1~18min:10%~30%B,18~20min:30%~100%B,20~21min:100%~10%B,21~25min:10%B;流速:0.3mL/min;柱温:35℃;进样量:1μL;质谱条件:见表1;得第一色谱图。
S2:以甲醇为溶剂,配制六个不同质量体积浓度的11种杂环胺混合标准溶液,该六个标准溶液中杂环胺的质量体积浓度依次分别为:0.50ng/mL、1.00ng/mL、5.00ng/mL、50.00ng/mL、250.00ng/mL、1000.00ng/mL;将杂环胺系列混合标准溶液于附带三重四级杆质谱的高效液相色谱仪中测定;
色谱条件:色谱柱:C8 2.1×100mm分析柱;流动相A:10mM乙酸铵溶液,流动相B:乙腈,梯度洗脱程序:0~0.1min:10%B,0.1~18min:10%~30%B,18~20min:30%~100%B,20~21min:100%~10%B,21~25min:10%B;流速:0.3mL/min;柱温:35℃;进样量:1μL;
质谱条件:见表1。得第二色谱图,由该第二色谱图得到的系列标准溶液中杂环胺在该色谱条件下的出峰时间和不同浓度的峰面积。并以标准溶液质量体积浓度为横坐标,色谱峰面积为纵坐标,绘制杂环胺标准溶液的工作曲线;根据测得的样品制备液的峰面积值,从表2绘制的系列杂环胺标准溶液的工作曲线上找到峰面积值对应的杂环胺的含量,按下式计算待测固体样品中杂环胺的含量X:
式中:X表示试样(即烤牛肉)中的杂环胺含量,单位ng/g;C1表示测得的样品制备液的峰面积所对应的杂环胺的含量,单位ng/mL;C0表示试样空白液中杂环胺的含量,单位ng/mL;m表示试样质量(即2.00g),单位g;V表示步骤2中第三提取试剂的体积(即15mL),单位mL;V1表示净化样品制备液的体积(即1mL),单位mL;V2表示上清液的体积(即1mL),单位mL。
本实施例测得的结果,见表3。
表3烤牛肉中杂环胺的含量
杂环胺 | 含量(ng/g) |
2-氨基-3-甲基咪唑[4,5-f]-喹啉 | 0.43±0.03 |
2-氨基-3,4-二甲基咪唑[4,5-f]-喹啉 | 1.82±0.51 |
2-氨基-3-甲基咪唑[4,5-f]-喹喔啉 | 3.06±0.21 |
2-氨基-3,8-二甲基咪唑[4,5-f]-喹喔啉 | 33.51±3.63 |
2-氨基-3,7,8-三甲基咪唑[4,5-f]-喹喔啉 | 1.36±0.15 |
9H-吡啶并[3,4-b]吲哚 | 20.68±2.98 |
1-甲基-9H-吡啶并[3,4-b]吲哚 | 23.14±3.38 |
2-氨基-9H-吡啶并[2,3-b]吲哚 | 0.30±0.02 |
2-氨基-3-甲基-9H-吡啶并[2,3-b]吲哚 | - |
2-氨基-1,6-二甲基咪唑[4,5-b]-吡啶 | 11.70±2.09 |
2-氨基-1,5,6-三甲基咪唑[4,5-b]-吡啶 | 98.19±2.18 |
注:-未检测出
实施例2:
一种用于杂环胺分析的固体样品快速净化试剂盒,包括第一提取试剂和第二试剂,所述第一提取试剂由:氯化钠和醋酸铅按质量比2:5组成;所述第二提取试剂为Fe3O4@PDA;
使用所述用于杂环胺分析的固体样品快速净化试剂盒净化固体样品的方法,步骤为:
S1:称取7g第一提取试剂,溶于50mL超纯水中,得到第三提取试剂;
S2:称取2.00g烤牛肉于离心管中,加入10mL第三提取试剂A,6000rpm匀浆1min,得匀浆液;用5mL第三提取试剂B洗涤匀浆机刀头,将洗涤后所得液体与所述匀浆液合并,4000rpm离心10min,得上清液和沉淀物;取1mL所述上清液,加入10mg第二提取试剂,5000rpm漩涡震荡30s,磁力分离后弃去上清液,加入1mL甲醇,5000rpm漩涡震荡30s,磁力分离,取甲醇层,得净化样品制备液;
S3:不称取样品,其余操作同步骤S2,得到试样空白液。
取本实施例获得的净化样品制备液,进行杂环胺的测定,包括步骤:
S1:所述净化样品制备液过0.22μm的有机系微孔滤膜,然后进行高效液相色谱串联三重四级杆质谱测定;色谱条件:色谱柱:C8 2.1×100mm分析柱;流动相A:10mM乙酸铵溶液,流动相B:乙腈,梯度洗脱程序:0~0.1min:10%B,0.1~18min:10%~30%B,18~20min:30%~100%B,20~21min:100%~10%B,21~25min:10%B;流速:0.3mL/min;柱温:35℃;进样量:1μL;质谱条件:见表1;得第一色谱图。
S2:以甲醇为溶剂,配制六个不同质量体积浓度的11种杂环胺混合标准溶液,该六个标准溶液中杂环胺的质量体积浓度依次分别为:0.50ng/mL、1.00ng/mL、5.00ng/mL、50.00ng/mL、250.00ng/mL、1000.00ng/mL;将杂环胺系列混合标准溶液于附带三重四级杆质谱的高效液相色谱仪中测定;
色谱条件:色谱柱:C8 2.1×100mm分析柱;流动相A:10mM乙酸铵溶液,流动相B:乙腈,梯度洗脱程序:0~0.1min:10%B,0.1~18min:10%~30%B,18~20min:30%~100%B,20~21min:100%~10%B,21~25min:10%B;流速:0.3mL/min;柱温:35℃;进样量:1μL;
质谱条件:见表1。得第二色谱图,由该第二色谱图得到的系列标准溶液中杂环胺在该色谱条件下的出峰时间和不同浓度的峰面积。并以标准溶液质量体积浓度为横坐标,色谱峰面积为纵坐标,绘制杂环胺标准溶液的工作曲线;根据测得的样品制备液的峰面积值,从表2绘制的系列杂环胺标准溶液的工作曲线上找到峰面积值对应的杂环胺的含量,按下式计算待测固体样品中杂环胺的含量X:
式中:X表示试样(即烤牛肉)中的杂环胺含量,单位ng/g;C1表示测得的样品制备液的峰面积所对应的杂环胺的含量,单位ng/mL;C0表示试样空白液中杂环胺的含量,单位ng/mL;m表示试样质量(即2.00g),单位g;V表示步骤2中第三提取试剂的体积(即15mL),单位mL;V1表示净化样品制备液的体积(即1mL),单位mL;V2表示上清液的体积(即1mL),单位mL。
本实施例测得的结果,见表4。
表4烤牛肉中杂环胺的含量
杂环胺 | 含量(ng/g) |
2-氨基-3-甲基咪唑[4,5-f]-喹啉 | 0.45±0.03 |
2-氨基-3,4-二甲基咪唑[4,5-f]-喹啉 | 1.79±0.15 |
2-氨基-3-甲基咪唑[4,5-f]-喹喔啉 | 3.15±0.28 |
2-氨基-3,8-二甲基咪唑[4,5-f]-喹喔啉 | 34.33±3.04 |
2-氨基-3,7,8-三甲基咪唑[4,5-f]-喹喔啉 | 1.30±0.15 |
9H-吡啶并[3,4-b]吲哚 | 21.39±2.24 |
1-甲基-9H-吡啶并[3,4-b]吲哚 | 25.03±2.46 |
2-氨基-9H-吡啶并[2,3-b]吲哚 | 0.27±0.02 |
2-氨基-3-甲基-9H-吡啶并[2,3-b]吲哚 | - |
2-氨基-1,6-二甲基咪唑[4,5-b]-吡啶 | 12.39±1.94 |
2-氨基-1,5,6-三甲基咪唑[4,5-b]-吡啶 | 95.24±8.16 |
注:-未检测出
实施例3:
一种用于杂环胺分析的固体样品快速净化试剂盒,包括第一提取试剂和第二试剂,所述第一提取试剂包括:第一提取试剂由SDS和碳酸钠按质量比7:3组成;所述第二提取试剂为Fe3O4@PDA;
使用所述用于杂环胺分析的固体样品快速净化试剂盒净化固体样品的方法,包括步骤:
S1:称取10g第一提取试剂,溶于50mL超纯水中,得到第三提取试剂;
S2:称取2.00g烤牛肉于离心管中,加入10mL第三提取试剂A,6000rpm匀浆1min,得匀浆液;用5mL第三提取试剂B洗涤匀浆机刀头,将洗涤后所得液体与所述匀浆液合并,4000rpm离心10min,得上清液和沉淀物;取1mL所述上清液,加入10mg第二提取试剂,5000rpm漩涡震荡30s,磁力分离后弃去上清液,加入1mL甲醇,5000rpm漩涡震荡30s,磁力分离,取甲醇层,得净化样品制备液;
S3:不称取样品,其余操作同步骤S2,得到试样空白液。
取本实施例获得的净化样品制备液,进行杂环胺的测定,包括步骤:
S1:所述净化样品制备液过0.22μm的有机系微孔滤膜,然后进行高效液相色谱串联三重四级杆质谱测定;色谱条件:色谱柱:C8 2.1×100mm分析柱;流动相A:10mM乙酸铵溶液,流动相B:乙腈,梯度洗脱程序:0~0.1min:10%B,0.1~18min:10%~30%B,18~20min:30%~100%B,20~21min:100%~10%B,21~25min:10%B;流速:0.3mL/min;柱温:35℃;进样量:1μL;质谱条件:见表1;得第一色谱图。
S2:以甲醇为溶剂,配制六个不同质量体积浓度的11种杂环胺混合标准溶液,该六个标准溶液中杂环胺的质量体积浓度依次分别为:0.50ng/mL、1.00ng/mL、5.00ng/mL、50.00ng/mL、250.00ng/mL、1000.00ng/mL;将杂环胺系列混合标准溶液于附带三重四级杆质谱的高效液相色谱仪中测定;
色谱条件:色谱柱:C8 2.1×100mm分析柱;流动相A:10mM乙酸铵溶液,流动相B:乙腈,梯度洗脱程序:0~0.1min:10%B,0.1~18min:10%~30%B,18~20min:30%~100%B,20~21min:100%~10%B,21~25min:10%B;流速:0.3mL/min;柱温:35℃;进样量:1μL;
质谱条件:见表1。得第二色谱图,由该第二色谱图得到的系列标准溶液中杂环胺在该色谱条件下的出峰时间和不同浓度的峰面积。并以标准溶液质量体积浓度为横坐标,色谱峰面积为纵坐标,绘制杂环胺标准溶液的工作曲线;根据测得的样品制备液的峰面积值,从表2绘制的系列杂环胺标准溶液的工作曲线上找到峰面积值对应的杂环胺的含量,按下式计算待测固体样品中杂环胺的含量X:
式中:X表示试样(即烤牛肉)中的杂环胺含量,单位ng/g;C1表示测得的样品制备液的峰面积所对应的杂环胺的含量,单位ng/mL;C0表示试样空白液中杂环胺的含量,单位ng/mL;m表示试样质量(即2.00g),单位g;V表示步骤2中第三提取试剂的体积(即15mL),单位mL;V1表示净化样品制备液的体积(即1mL),单位mL;V2表示上清液的体积(即1mL),单位mL。
本实施例测得的结果,见表5。
表5烤牛肉中杂环胺的含量
杂环胺 | 含量(ng/g) |
2-氨基-3-甲基咪唑[4,5-f]-喹啉 | 0.42±0.04 |
2-氨基-3,4-二甲基咪唑[4,5-f]-喹啉 | 1.80±0.23 |
2-氨基-3-甲基咪唑[4,5-f]-喹喔啉 | 2.99±0.31 |
2-氨基-3,8-二甲基咪唑[4,5-f]-喹喔啉 | 33.25±2.76 |
2-氨基-3,7,8-三甲基咪唑[4,5-f]-喹喔啉 | 1.29±0.13 |
9H-吡啶并[3,4-b]吲哚 | 19.94±2.37 |
1-甲基-9H-吡啶并[3,4-b]吲哚 | 21.57±2.46 |
2-氨基-9H-吡啶并[2,3-b]吲哚 | 0.28±0.03 |
2-氨基-3-甲基-9H-吡啶并[2,3-b]吲哚 | - |
2-氨基-1,6-二甲基咪唑[4,5-b]-吡啶 | 10.16±1.48 |
2-氨基-1,5,6-三甲基咪唑[4,5-b]-吡啶 | 97.15±4.74 |
注:-未检测出
实施例4:
一种用于杂环胺分析的固体样品快速净化试剂盒,包括第一提取试剂和第二试剂,所述第一提取试剂由氯化钠、SDS、碳酸钠、醋酸铅按质量比2:5:3:3组成;所述第二提取试剂为Fe3O4@PDA;
使用所述用于杂环胺分析的固体样品快速净化试剂盒净化固体样品的方法,包括步骤:
S1:称取13.00g第一提取试剂,溶于50mL超纯水中,得到第三提取试剂;
S2:称取2.00g烤牛肉于离心管中,加入10mL第三提取试剂A,6000rpm匀浆1min,得匀浆液;用5mL第三提取试剂B洗涤匀浆机刀头,将洗涤后所得液体与所述匀浆液合并,4000rpm离心10min,得上清液和沉淀物;取1mL所述上清液,加入10mg第二提取试剂,5000rpm漩涡震荡30s,磁力分离后弃去上清液,加入1mL甲醇,5000rpm漩涡震荡30s,磁力分离,取甲醇层,得净化样品制备液;
S3:不称取样品,其余操作同步骤S2,得到试样空白液。
取本实施例获得的净化样品制备液,进行杂环胺的测定,包括步骤:
S1:所述净化样品制备液过0.22μm的有机系微孔滤膜,然后进行高效液相色谱串联三重四级杆质谱测定;色谱条件:色谱柱:C8 2.1×100mm分析柱;流动相A:10mM乙酸铵溶液,流动相B:乙腈,梯度洗脱程序:0~0.1min:10%B,0.1~18min:10%~30%B,18~20min:30%~100%B,20~21min:100%~10%B,21~25min:10%B;流速:0.3mL/min;柱温:35℃;进样量:1μL;质谱条件:见表1;得第一色谱图。
S2:以甲醇为溶剂,配制六个不同质量体积浓度的11种杂环胺混合标准溶液,该六个标准溶液中杂环胺的质量体积浓度依次分别为:0.50ng/mL、1.00ng/mL、5.00ng/mL、50.00ng/mL、250.00ng/mL、1000.00ng/mL;将杂环胺系列混合标准溶液于附带三重四级杆质谱的高效液相色谱仪中测定;
色谱条件:色谱柱:C8 2.1×100mm分析柱;流动相A:10mM乙酸铵溶液,流动相B:乙腈,梯度洗脱程序:0~0.1min:10%B,0.1~18min:10%~30%B,18~20min:30%~100%B,20~21min:100%~10%B,21~25min:10%B;流速:0.3mL/min;柱温:35℃;进样量:1μL;
质谱条件:见表1。得第二色谱图,由该第二色谱图得到的系列标准溶液中杂环胺在该色谱条件下的出峰时间和不同浓度的峰面积。并以标准溶液质量体积浓度为横坐标,色谱峰面积为纵坐标,绘制杂环胺标准溶液的工作曲线;根据测得的样品制备液的峰面积值,从表2绘制的系列杂环胺标准溶液的工作曲线上找到峰面积值对应的杂环胺的含量,按下式计算待测固体样品中杂环胺的含量X:
式中:X表示试样(即烤牛肉)中的杂环胺含量,单位ng/g;C1表示测得的样品制备液的峰面积所对应的杂环胺的含量,单位ng/mL;C0表示试样空白液中杂环胺的含量,单位ng/mL;m表示试样质量(即2.00g),单位g;V表示步骤2中第三提取试剂的体积(即15mL),单位mL;V1表示净化样品制备液的体积(即1mL),单位mL;V2表示上清液的体积(即1mL),单位mL。
本实施例测得的结果,见表6。
表6烤牛肉中杂环胺的含量
杂环胺 | 含量(ng/g) |
2-氨基-3-甲基咪唑[4,5-f]-喹啉 | 0.47±0.05 |
2-氨基-3,4-二甲基咪唑[4,5-f]-喹啉 | 2.35±0.21 |
2-氨基-3-甲基咪唑[4,5-f]-喹喔啉 | 3.23±0.28 |
2-氨基-3,8-二甲基咪唑[4,5-f]-喹喔啉 | 32.18±3.03 |
2-氨基-3,7,8-三甲基咪唑[4,5-f]-喹喔啉 | 1.48±0.09 |
9H-吡啶并[3,4-b]吲哚 | 19.56±1.82 |
1-甲基-9H-吡啶并[3,4-b]吲哚 | 22.44±2.61 |
2-氨基-9H-吡啶并[2,3-b]吲哚 | 0.32±0.03 |
2-氨基-3-甲基-9H-吡啶并[2,3-b]吲哚 | - |
2-氨基-1,6-二甲基咪唑[4,5-b]-吡啶 | 10.93±1.46 |
2-氨基-1,5,6-三甲基咪唑[4,5-b]-吡啶 | 99.26±5.28 |
注:-未检测出
实施例5:
一种用于杂环胺分析的固体样品快速净化试剂盒,包括第一提取试剂和第二试剂,所述第一提取试剂是氯化钠;所述第二提取试剂为Fe3O4@PDA;
使用所述用于杂环胺分析的固体样品快速净化试剂盒净化固体样品的方法,包括步骤:
S1:称取3.00g第一提取试剂,溶于50mL超纯水中,得到第三提取试剂;
S2:称取2.00g烤鲫鱼于离心管中,加入10mL第三提取试剂A,6000rpm匀浆1min,得匀浆液;用5mL第三提取试剂B洗涤匀浆机刀头,将洗涤后所得液体与所述匀浆液合并,4000rpm离心10min,得上清液和沉淀物;取1mL所述上清液,加入10mg第二提取试剂,5000rpm漩涡震荡30s,磁力分离后弃去上清液,加入1mL甲醇,5000rpm漩涡震荡30s,磁力分离,取甲醇层,得净化样品制备液;
S3:不称取样品,其余操作同步骤S2,得到试样空白液。
取本实施例获得的净化样品制备液,进行杂环胺的测定,包括步骤:
S1:所述净化样品制备液过0.22μm的有机系微孔滤膜,然后进行高效液相色谱串联三重四级杆质谱测定;色谱条件:色谱柱:C8 2.1×100mm分析柱;流动相A:10mM乙酸铵溶液,流动相B:乙腈,梯度洗脱程序:0~0.1min:10%B,0.1~18min:10%~30%B,18~20min:30%~100%B,20~21min:100%~10%B,21~25min:10%B;流速:0.3mL/min;柱温:35℃;进样量:1μL;质谱条件:见表1;得第一色谱图。
S2:以甲醇为溶剂,配制六个不同质量体积浓度的11种杂环胺混合标准溶液,该六个标准溶液中杂环胺的质量体积浓度依次分别为:0.50ng/mL、1.00ng/mL、5.00ng/mL、50.00ng/mL、250.00ng/mL、1000.00ng/mL;将杂环胺系列混合标准溶液于附带三重四级杆质谱的高效液相色谱仪中测定;
色谱条件:色谱柱:C8 2.1×100mm分析柱;流动相A:10mM乙酸铵溶液,流动相B:乙腈,梯度洗脱程序:0~0.1min:10%B,0.1~18min:10%~30%B,18~20min:30%~100%B,20~21min:100%~10%B,21~25min:10%B;流速:0.3mL/min;柱温:35℃;进样量:1μL;
质谱条件:见表1。得第二色谱图,由该第二色谱图得到的系列标准溶液中杂环胺在该色谱条件下的出峰时间和不同浓度的峰面积。并以标准溶液质量体积浓度为横坐标,色谱峰面积为纵坐标,绘制杂环胺标准溶液的工作曲线;根据测得的样品制备液的峰面积值,从表2绘制的系列杂环胺标准溶液的工作曲线上找到峰面积值对应的杂环胺的含量,按下式计算待测固体样品中杂环胺的含量X:
式中:X表示试样(即烤鲫鱼)中的杂环胺含量,单位ng/g;C1表示测得的样品制备液的峰面积所对应的杂环胺的含量,单位ng/mL;C0表示试样空白液中杂环胺的含量,单位ng/mL;m表示试样质量(即2.00g),单位g;V表示步骤2中第三提取试剂的体积(即15mL),单位mL;V1表示净化样品制备液的体积(即1mL),单位mL;V2表示上清液的体积(即1mL),单位mL。
本实施例测得的结果,见表7。
表7烤鲫鱼中杂环胺的含量
杂环胺 | 含量(ng/g) |
2-氨基-3-甲基咪唑[4,5-f]-喹啉 | 0.35±0.03 |
2-氨基-3,4-二甲基咪唑[4,5-f]-喹啉 | 0.27±0.03 |
2-氨基-3-甲基咪唑[4,5-f]-喹喔啉 | 2.93±0.13 |
2-氨基-3,8-二甲基咪唑[4,5-f]-喹喔啉 | 1.08±0.05 |
2-氨基-3,7,8-三甲基咪唑[4,5-f]-喹喔啉 | 0.74±0.07 |
9H-吡啶并[3,4-b]吲哚 | - |
1-甲基-9H-吡啶并[3,4-b]吲哚 | - |
2-氨基-9H-吡啶并[2,3-b]吲哚 | - |
2-氨基-3-甲基-9H-吡啶并[2,3-b]吲哚 | - |
2-氨基-1,6-二甲基咪唑[4,5-b]-吡啶 | 0.23±0.01 |
2-氨基-1,5,6-三甲基咪唑[4,5-b]-吡啶 | - |
注:-未检测出
实施例6:
一种用于杂环胺分析的固体样品快速净化试剂盒,包括第一提取试剂和第二试剂,所述第一提取试剂是氯化钠;所述第二提取试剂为Fe3O4@PDA;
使用所述用于杂环胺分析的固体样品快速净化试剂盒净化固体样品的方法,包括步骤:
S1:称取3.00g第一提取试剂,溶于50mL超纯水中,得到第三提取试剂;
S2:称取2.00g烤鸡肉于离心管中,加入10mL第三提取试剂A,6000rpm匀浆1min,得匀浆液;用5mL第三提取试剂B洗涤匀浆机刀头,将洗涤后所得液体与所述匀浆液合并,4000rpm离心10min,得上清液和沉淀物;取1mL所述上清液,加入10mg第二提取试剂,5000rpm漩涡震荡30s,磁力分离后弃去上清液,加入1mL甲醇,5000rpm漩涡震荡30s,磁力分离,取甲醇层,得净化样品制备液;
S3:不称取样品,其余操作同步骤S2,得到试样空白液。
取本实施例获得的净化样品制备液,进行杂环胺的测定,包括步骤:
S1:所述净化样品制备液过0.22μm的有机系微孔滤膜,然后进行高效液相色谱串联三重四级杆质谱测定;色谱条件:色谱柱:C8 2.1×100mm分析柱;流动相A:10mM乙酸铵溶液,流动相B:乙腈,梯度洗脱程序:0~0.1min:10%B,0.1~18min:10%~30%B,18~20min:30%~100%B,20~21min:100%~10%B,21~25min:10%B;流速:0.3mL/min;柱温:35℃;进样量:1μL;质谱条件:见表1;得第一色谱图。
S2:以甲醇为溶剂,配制六个不同质量体积浓度的11种杂环胺混合标准溶液,该六个标准溶液中杂环胺的质量体积浓度依次分别为:0.50ng/mL、1.00ng/mL、5.00ng/mL、50.00ng/mL、250.00ng/mL、1000.00ng/mL;将杂环胺系列混合标准溶液于附带三重四级杆质谱的高效液相色谱仪中测定;
色谱条件:色谱柱:C8 2.1×100mm分析柱;流动相A:10mM乙酸铵溶液,流动相B:乙腈,梯度洗脱程序:0~0.1min:10%B,0.1~18min:10%~30%B,18~20min:30%~100%B,20~21min:100%~10%B,21~25min:10%B;流速:0.3mL/min;柱温:35℃;进样量:1μL;
质谱条件:见表1。得第二色谱图,由该第二色谱图得到的系列标准溶液中杂环胺在该色谱条件下的出峰时间和不同浓度的峰面积。并以标准溶液质量体积浓度为横坐标,色谱峰面积为纵坐标,绘制杂环胺标准溶液的工作曲线;根据测得的样品制备液的峰面积值,从表2绘制的系列杂环胺标准溶液的工作曲线上找到峰面积值对应的杂环胺的含量,按下式计算待测固体样品中杂环胺的含量X:
式中:X表示试样(即烤鸡肉)中的杂环胺含量,单位ng/g;C1表示测得的样品制备液的峰面积所对应的杂环胺的含量,单位ng/mL;C0表示试样空白液中杂环胺的含量,单位ng/mL;m表示试样质量(即2.00g),单位g;V表示步骤2中第三提取试剂的体积(即15mL),单位mL;V1表示净化样品制备液的体积(即1mL),单位mL;V2表示上清液的体积(即1mL),单位mL。
本实施例测得的结果,见表8。
表8烤鸡肉中杂环胺的含量
杂环胺 | 含量(ng/g) |
2-氨基-3-甲基咪唑[4,5-f]-喹啉 | 0.33±0.03 |
2-氨基-3,4-二甲基咪唑[4,5-f]-喹啉 | 0.27±0.04 |
2-氨基-3-甲基咪唑[4,5-f]-喹喔啉 | 2.69±0.22 |
2-氨基-3,8-二甲基咪唑[4,5-f]-喹喔啉 | 1.51±0.13 |
2-氨基-3,7,8-三甲基咪唑[4,5-f]-喹喔啉 | 0.70±0.04 |
9H-吡啶并[3,4-b]吲哚 | 8.71±0.73 |
1-甲基-9H-吡啶并[3,4-b]吲哚 | - |
2-氨基-9H-吡啶并[2,3-b]吲哚 | - |
2-氨基-3-甲基-9H-吡啶并[2,3-b]吲哚 | - |
2-氨基-1,6-二甲基咪唑[4,5-b]-吡啶 | 0.20±0.01 |
2-氨基-1,5,6-三甲基咪唑[4,5-b]-吡啶 | - |
注:-未检测出
对比例1
参照现有的文献公开的方法对样品进行净化,所述样品是2.00g烤牛肉,得净化样品制备液;
所述文献为:
Yan Y, Zhang S, Tao G, et al. Acetonitrile extraction coupled withUHPLC-MS/MS for the accurate quantification of 17 heterocyclic aromaticamines in meat products.[J]. Journal of Chromatography B, 2017: 173-179.
取本对比例获得的净化样品制备液,进行杂环胺的测定,包括步骤:
S1:所述净化样品制备液过0.22μm的有机系微孔滤膜,然后进行高效液相色谱串联三重四级杆质谱测定;色谱条件:色谱柱:C8 2.1×100mm分析柱;流动相A:10mM乙酸铵溶液,流动相B:乙腈,梯度洗脱程序:0~0.1min:10%B,0.1~18min:10%~30%B,18~20min:30%~100%B,20~21min:100%~10%B,21~25min:10%B;流速:0.3mL/min;柱温:35℃;进样量:1μL;质谱条件:见表1;得第一色谱图。
S2:以甲醇为溶剂,配制六个不同质量体积浓度的11种杂环胺混合标准溶液,该六个标准溶液中杂环胺的质量体积浓度依次分别为:0.50ng/mL、1.00ng/mL、5.00ng/mL、50.00ng/mL、250.00ng/mL、1000.00ng/mL;将杂环胺系列混合标准溶液于附带三重四级杆质谱的高效液相色谱仪中测定;
色谱条件:色谱柱:C8 2.1×100mm分析柱;流动相A:10mM乙酸铵溶液,流动相B:乙腈,梯度洗脱程序:0~0.1min:10%B,0.1~18min:10%~30%B,18~20min:30%~100%B,20~21min:100%~10%B,21~25min:10%B;流速:0.3mL/min;柱温:35℃;进样量:1μL;
质谱条件:见表1。得第二色谱图,由该第二色谱图得到的系列标准溶液中杂环胺在该色谱条件下的出峰时间和不同浓度的峰面积。并以标准溶液质量体积浓度为横坐标,色谱峰面积为纵坐标,绘制杂环胺标准溶液的工作曲线;根据测得的样品制备液的峰面积值,从表2绘制的系列杂环胺标准溶液的工作曲线上找到峰面积值对应的杂环胺的含量,按下式计算待测固体样品中杂环胺的含量X:
式中:X表示试样(即烤牛肉)中的杂环胺含量,单位ng/g;C1表示测得的样品制备液的峰面积所对应的杂环胺的含量,单位ng/mL;C0表示试样空白液中杂环胺的含量,单位ng/mL;m表示试样质量(即2.00g),单位g;V表示净化样品制备液的体积(即0.6mL),单位mL。
本对比例的结果为在烤牛肉中未检测出杂环胺。
本发明提供了一种用于杂环胺分析的固体样品快速净化试剂盒,由第一提取试剂和第二提取试剂组成,第一提取试剂为消泡剂,第二提取试剂为Fe3O4@PDA。
第一提取试剂为消泡剂。在提取过程中,在固体样品中加入消泡剂,能够增大杂环胺的提取效率,让提取更充分。第二提取试剂为Fe3O4@PDA。Fe3O4@PDA不仅能够吸附样品中的杂环胺,而且具有磁性的吸附剂有利于实现与样品之间的快速分离。
通过本发明实施例使用用于杂环胺分析的固体样品快速净化试剂盒净化固体样品的方法与GB5009.243-2016和现有的文献公开的净化方法进行比较,突出所述用于杂环胺分析的固体样品快速净化试剂盒的优越性:
1)准确性对比:
国标GB5990.243-2016规定的方法的回收率为79.0~105.8%,现有的文献公开的方法的回收率为68.69~101.81%和71.8~119.1%。而本发明实施例1~6所述使用所述用于杂环胺分析的固体样品快速净化试剂盒净化固体样品的方法,回收率为71.06~108.49%。回收率在70~120%之间,表明方法具有良好的准确性。
所述文献为:
Yao Y, Peng Z Q, Wan K H, et al. Determination of heterocyclic aminesin braised sauce beef[J]. Food Chemistry, 2013, 141(3): 1847-1853.
Lee K, Lee G, Kim H, et al. Determination of Heterocyclic Amines andAcrylamide in Agricultural Products with Liquid Chromatography-Tandem MassSpectrometry[J]. Toxicological research, 2015, 31(3): 255-264.
2)试剂消耗量对比:
国标GB5009.243-2016规定的方法消耗试剂量为29.5mL(1g样品),现有的文献公开的方法消耗试剂量为99.5mL(2g样品)、115.5mL(5g样品)、119.5mL(4g样品)。而本发明实施例1~6所述使用所述用于杂环胺分析的固体样品快速净化试剂盒净化固体样品的方法,消耗试剂量为16mL(2g样品)。
所述文献为:
Yao Y, Peng Z Q, Wan K H, et al. Determination of heterocyclic aminesin braised sauce beef[J]. Food Chemistry, 2013, 141(3): 1847-1853.
Lee K, Lee G, Kim H, et al. Determination of Heterocyclic Amines andAcrylamide in Agricultural Products with Liquid Chromatography-Tandem MassSpectrometry[J]. Toxicological research, 2015, 31(3): 255-264.
3)实验耗时对比:
国标GB5009.243-2016规定的方法和现有的文献公开的方法中对杂环胺的样品前处理的提取过程都需要经过预处理小柱等一系列的操作,操作耗时25~40min。而用本发明实施例1~6所述使用所述用于杂环胺分析的固体样品快速净化试剂盒净化固体样品的方法,耗时13min。
所述文献为:
Yao Y, Peng Z Q, Wan K H, et al. Determination of heterocyclic aminesin braised sauce beef[J]. Food Chemistry, 2013, 141(3): 1847-1853.
Lee K, Lee G, Kim H, et al. Determination of Heterocyclic Amines andAcrylamide in Agricultural Products with Liquid Chromatography-Tandem MassSpectrometry[J]. Toxicological research, 2015, 31(3): 255-264.
4)操作过程对比:
国标GB5009.243-2016规定的方法和现有的文献公开的方法中都需要使用预处理小柱对样品进行分离净化,预处理小柱需要活化、平衡、上样、淋洗、洗脱等一系列操作,操作过程复杂繁琐。而本发明所述用于杂环胺分析的固体样品快速净化试剂盒采用磁性吸附材料对样品进行吸附,通过磁力进行材料与样品的分离,操作简单快速。
所述文献为:
Yao Y, Peng Z Q, Wan K H, et al. Determination of heterocyclic aminesin braised sauce beef[J]. Food Chemistry, 2013, 141(3): 1847-1853.
Lee K, Lee G, Kim H, et al. Determination of Heterocyclic Amines andAcrylamide in Agricultural Products with Liquid Chromatography-Tandem MassSpectrometry[J]. Toxicological research, 2015, 31(3): 255-264.
5)净化效果比较
对比例1使用现有的文献公开的方法测定烤牛肉中杂环胺,未检测到杂环胺。而使用本发明所述用于杂环胺分析的固体样品快速净化试剂盒净化固体样品的方法检测烤牛肉中杂环胺,能检测到十种杂环胺。因此,本发明所述用于杂环胺分析的固体样品快速净化试剂盒净化效果良好。
所述文献为:
Yan Y, Zhang S, Tao G, et al. Acetonitrile extraction coupled withUHPLC-MS/MS for the accurate quantification of 17 heterocyclic aromaticamines in meat products.[J]. Journal of Chromatography B, 2017: 173-179.
以上所述,仅为本发明较佳的具体实施方式,但本发明的保护范围并不局限于此,任何熟悉本技术领域的技术人员在本发明披露的技术范围内,根据本发明的技术方案及其发明构思加以等同替换或改变,都应涵盖在本发明的保护范围之内。
Claims (4)
1.一种用于检测固体样品中杂环胺的方法,其特征在于,准备固体样品快速净化试剂盒,所述试剂盒包括第一提取试剂和第二提取试剂,所述第一提取试剂由氯化钠、SDS、碳酸钠、醋酸铅中的一种或多种组成;所述第二提取试剂为Fe3O4@PDA;
所述Fe3O4@PDA的制备方法,包括步骤:
Sa1:取三羟甲基氨基甲烷,溶于超纯水中,用盐酸调至pH为8.5,得到Tris-HCl溶液;所述三羟甲基氨基甲烷和超纯水的质量体积比是(1~10):2g/L;
Sa2:取多巴胺,溶于步骤Sa1所述Tris-HCl溶液中,得到PDA-Tris-HCl溶液;所述多巴胺与Tris-HCl溶液的质量体积比是(1~10):2g/L;
Sa3:取四氧化三铁,置于PDA-Tris-HCl溶液中,超声使四氧化三铁在溶液中分散均匀,得到Fe3O4@PDA制备液,震荡;所述四氧化三铁与PDA-Tris-HCl溶液的质量体积比是(1~10):2g/L;所述震荡参数为:100~300rpm,室温震荡2~12h;
Sa4:用磁铁将震荡后的Fe3O4@PDA制备液中的固液分离,弃去液体;依次加入醇和去离子水多次清洗固体,磁力分离,弃去液体;干燥,得到Fe3O4@PDA;所述醇是甲醇或乙醇;
按如下步骤应用:
Sb1:取第一提取试剂,溶于超纯水中,得到第三提取试剂;所述第一提取试剂和超纯水的质量体积比是(2~20):50g/mL;
Sb2:取待净化样品,加入第三提取试剂A,匀浆,得匀浆液;用第三提取试剂B洗涤匀浆机刀头,将洗涤后所得液体与所述匀浆液混合,离心取上清液;取所述上清液,加入第二提取试剂,漩涡震荡,磁力分离取固体后弃去上清液,将所得固体加入甲醇,漩涡震荡,磁力分离固体,取甲醇层,得净化样品制备液;
其中,所述待净化样品是固体样品;所述待净化样品和所述第三提取试剂A的质量体积比为(1~5):10g/mL;所述上清液和所述第二提取试剂的体积质量比为(0.5~5):(5~100)mL/mg;所述甲醇的添加量为0.5~5mL;
Sb3:不取待净化取样品,其余操作同步骤Sb2,得到试样空白液;
此后,按下述方法,以试样空白液为对照,对净化样品制备液中的杂环胺进行测定,再通过公式计算待净化样品中的杂环胺含量:
Sc1:所述净化样品制备液过0.22μm的有机系微孔滤膜,然后进行高效液相色谱串联三重四级杆质谱测定;色谱条件:色谱柱:C8 2.1×100mm分析柱;流动相A:10mM乙酸铵溶液,流动相B:乙腈,梯度洗脱程序:0~0.1min:10%B,0.1~18min:10%~30%B,18~20min:30%~100%B,20~21min:100%~10%B,21~25min:10%B;流速:0.3mL/min;柱温:35℃;进样量:1μL;得到第一色谱图;所述杂环胺的质谱条件如下:
Sc2:以甲醇为溶剂,配制六个不同质量体积浓度的杂环胺混合标准溶液,该六个标准溶液中杂环胺的质量体积浓度依次分别为:0.50ng/mL、1.00ng/mL、5.00ng/mL、50.00ng/mL、250.00ng/mL、1000.00ng/mL;将杂环胺系列混合标准溶液于附带三重四级杆质谱的高效液相色谱仪中测定,得第二色谱图,由第二色谱图得到系列标准溶液中杂环胺在该色谱条件下的出峰时间和不同浓度的峰面积;并以标准溶液质量体积浓度为横坐标,色谱峰面积为纵坐标,绘制杂环胺标准溶液的工作曲线;
Sc3:根据步骤Sc1测得的净化样品制备液的峰面积值,从步骤Sc2绘制的系列杂环胺标准溶液的工作曲线上找到峰面积值对应的杂环胺的含量,按下式计算待测固体样品中杂环胺的含量X:
式中:X表示试样,即待净化样品中的杂环胺含量,单位ng/g;C1表示步骤Sc1测得的样品制备液的峰面积所对应的杂环胺的含量,单位ng/mL;C0表示试样空白液中杂环胺的含量,单位ng/mL;m表示试样质量,即所述待净化样品的质量,单位g;V表示第三提取试剂的体积,即第三提取试剂A和第三提取试剂B的体积之和,单位mL;V1表示净化样品制备液的体积,单位mL;V2表示上清液的体积,单位mL;
其中,所述待净化样品为牛肉、鸡肉或鲫鱼。
2.根据权利要求1所述用于检测固体样品中杂环胺的方法,其特征在于,步骤Sb2所述匀浆的参数为:4000~8000rpm匀浆1~3min。
3.根据权利要求1所述用于检测固体样品中杂环胺的方法,其特征在于,步骤Sb2所述离心的转速为3000~10000rpm、时间5~20min。
4.据权利要求1所述用于检测固体样品中杂环胺的方法,其特征在于,步骤Sb2所述第三提取试剂B和第三提取试剂A的体积比是(0.2~1):1。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN202010638832.1A CN111679021B (zh) | 2020-07-06 | 2020-07-06 | 一种用于检测固体样品中杂环胺的方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN202010638832.1A CN111679021B (zh) | 2020-07-06 | 2020-07-06 | 一种用于检测固体样品中杂环胺的方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN111679021A CN111679021A (zh) | 2020-09-18 |
CN111679021B true CN111679021B (zh) | 2023-09-01 |
Family
ID=72437797
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN202010638832.1A Active CN111679021B (zh) | 2020-07-06 | 2020-07-06 | 一种用于检测固体样品中杂环胺的方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN111679021B (zh) |
Citations (7)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN103343116A (zh) * | 2013-06-17 | 2013-10-09 | 安徽师范大学 | 酶基磁性纳米粒及制备方法、应用和葡萄糖的检测方法 |
CN105327354A (zh) * | 2015-10-23 | 2016-02-17 | 中国科学院理化技术研究所 | 一种表面功能化的烟草花叶病毒纳米线复合材料的制备方法 |
CN109297777A (zh) * | 2018-09-29 | 2019-02-01 | 浙江省农业科学院 | 一种葡萄农药残留检测的前处理方法及其所用的净化吸附材料和应用 |
CN110118833A (zh) * | 2019-05-15 | 2019-08-13 | 东北农业大学 | 一种同步检测烟熏肉制品中12种杂环胺的方法 |
CN110142035A (zh) * | 2019-05-24 | 2019-08-20 | 云南大学 | 一种聚多巴胺修饰的磁性纳米颗粒的制备方法及应用 |
CN110618217A (zh) * | 2019-10-29 | 2019-12-27 | 河南工业大学 | 一种检测油脂中杂环胺类物质的方法 |
CN111068621A (zh) * | 2019-12-10 | 2020-04-28 | 大连工业大学 | 一种Fe3O4@DA/GO磁性纳米粒子的制备方法与应用 |
Family Cites Families (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20030190671A1 (en) * | 2001-02-28 | 2003-10-09 | Mcgill University | Use of metabolic phenotyping in individualized treatment with amonafide |
EP2607358A4 (en) * | 2010-08-19 | 2014-01-29 | Univ Tokyo | NEW ANTI-INFLAMMATORY METABOLITE DERIVED FROM OMEGA-3 TYPE FATTY ACID |
-
2020
- 2020-07-06 CN CN202010638832.1A patent/CN111679021B/zh active Active
Patent Citations (7)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN103343116A (zh) * | 2013-06-17 | 2013-10-09 | 安徽师范大学 | 酶基磁性纳米粒及制备方法、应用和葡萄糖的检测方法 |
CN105327354A (zh) * | 2015-10-23 | 2016-02-17 | 中国科学院理化技术研究所 | 一种表面功能化的烟草花叶病毒纳米线复合材料的制备方法 |
CN109297777A (zh) * | 2018-09-29 | 2019-02-01 | 浙江省农业科学院 | 一种葡萄农药残留检测的前处理方法及其所用的净化吸附材料和应用 |
CN110118833A (zh) * | 2019-05-15 | 2019-08-13 | 东北农业大学 | 一种同步检测烟熏肉制品中12种杂环胺的方法 |
CN110142035A (zh) * | 2019-05-24 | 2019-08-20 | 云南大学 | 一种聚多巴胺修饰的磁性纳米颗粒的制备方法及应用 |
CN110618217A (zh) * | 2019-10-29 | 2019-12-27 | 河南工业大学 | 一种检测油脂中杂环胺类物质的方法 |
CN111068621A (zh) * | 2019-12-10 | 2020-04-28 | 大连工业大学 | 一种Fe3O4@DA/GO磁性纳米粒子的制备方法与应用 |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
聚多巴胺涂层的伪模板分子印迹聚合物用于分离白头翁皂苷B4;张育珍等;《化工科技》;20200625;第28卷(第3期);1-7 * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN111679021A (zh) | 2020-09-18 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN109738565B (zh) | 一种测定保健食品中非法添加化合物的方法 | |
Hirata et al. | Determination of trace metals in seawater by on-line column preconcentration inductively coupled plasma mass spectrometry using metal alkoxide glass immobilized 8-quinolinol | |
CN111443152B (zh) | 检测喹诺酮类化合物含量的方法和试剂盒 | |
CN111983068A (zh) | 一种沉积物中磷系阻燃剂及其降解产物的检测方法 | |
CN109580806B (zh) | 一种用于水产品中利福平药物残留的测定方法 | |
CN111679021B (zh) | 一种用于检测固体样品中杂环胺的方法 | |
CN109541062B (zh) | 同时测定地表水或污水中个人护理用品浓度的方法 | |
CN108693288B (zh) | 一种利用dpx枪头式分散固相微萃取柱萃取及分析喹诺酮类药物的方法 | |
Amiri et al. | Multivariate optimization, preconcentration and determination of mercury ions with (1-(p-acetyl phenyl)-3-(o-methyl benzoate)) triazene in aqueous samples using ICP-AES | |
CN110702816B (zh) | 一种检测动物性水产干制品中酸性偶氮类着色剂的液质联用检测方法 | |
CN109908879B (zh) | 一种检测四环素类抗生素的方法 | |
Liu et al. | Determination of trace indium in urine after preconcentration with a chelating‐resin‐packed minicolumn | |
CN114814054B (zh) | 一种检测海洋沉积物中10种卤代咔唑类化合物的方法 | |
Yan et al. | Study on the determination of trace lead and cadmium by ICP-MS after preconcentration and separation on carbon nanofibers loaded with 8-Hydroxyquinoline | |
CN112903836B (zh) | 体外培育熊胆粉中异丙基-β-D-硫代吡喃半乳糖苷的测定方法 | |
CN113189231A (zh) | 一种测定食品中14种杂环胺含量的方法 | |
CN109001333A (zh) | 液相色谱串联质谱测定贝类中3种短裸甲藻毒素的方法 | |
CN110426471B (zh) | 一种婴幼儿食品中生物素含量的测定方法 | |
CN114487189B (zh) | 一种基于分散萃取技术测定食品中黄曲霉毒素b1的方法 | |
CN110749691A (zh) | 一种测定婴幼儿辅助食品中黄曲霉毒素及其同系物的hplc-ms/ms方法 | |
CN114720570B (zh) | 一种检测鱼肉中8种雌激素的方法 | |
CN108519454A (zh) | 一种测定茶叶中多种农药残留的前处理方法及其检测方法 | |
CN115902051B (zh) | 一种检测冷鲜肉中九种卤乙酸含量的方法及其应用 | |
CN111443147B (zh) | 一种检测食品中沙丁胺醇的方法 | |
CN111272912B (zh) | 固相萃取-高效液相色谱测定婴幼儿米粉中烟酸、烟酰胺的方法 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
PB01 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
GR01 | Patent grant | ||
GR01 | Patent grant |