CN111676251A - 一种咖啡酸和香兰素的制备方法及其反应催化剂的制备方法 - Google Patents

一种咖啡酸和香兰素的制备方法及其反应催化剂的制备方法 Download PDF

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徐明文
蒋丽丽
曹学松
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Abstract

本发明公开了一种咖啡酸和香兰素的生物制造方法,第一步以葡萄糖等为起始原料,通过大肠杆菌菌种,发酵生产中间体3‑脱氢莽草酸,中间体的浓度大于50g/L,糖质量转化率(A/G)为30‑40%,可达到最大的理论转化率;第二步采用酶催化过程,通过自主开发合适的酶,以发酵过程获得的3‑脱氢莽草酸为原料,生物酶催化得到中间体原儿茶酸;第三步采用酶催化过程,通过自主开发合适的酶,以前一步获得的原儿茶酸为原料,生物酶催化得到中间体咖啡酸;第四步采用酶催化过程,通过自主开发合适的酶,以前一步获得的咖啡酸为原料,生物酶催化得到产品香兰素。整个过程采用一步发酵加三步生物酶催化,合成产品香兰素。本发明的有益效果:以葡萄糖为原料,其价格实惠,来源广泛,而且整个工艺得到了简化,产物浓度高,可达到20‑80g/L,降低香兰素的生产成本且减少环境污染;本路线副反应少,后处理简便,总收率高,可达25%;反应时间短,全部过程在72‑96h内完成。

Description

一种咖啡酸和香兰素的制备方法及其反应催化剂的制备方法
技术领域
本发明涉及使用酶催化的方法来制取芳环化合物衍生物的技术,具体而言,涉及生物法生产香兰素的工艺。
背景技术
香兰素俗称香草粉、香草醛、云尼拿粉、香草精、香荚兰素等。从芸香科植物香荚兰豆中提取。白色至微黄色结晶或结晶状粉末,微甜。溶于热水、甘油和酒精,在冷水及植物油中不易溶解。香气稳定,在较高温度下不易挥发。在空气中易氧化,遇碱性物质易变色。
化学名称为3-甲氧基-4-羟基苯甲醛,具有香荚兰豆香气及浓郁的奶香,起增香和定香作用,广泛用于化妆品、烟草、糕点、糖果以及烘烤食品等行业,是全球产量最大的合成香料品种之一,工业化生产香兰素已有 100多年的历史。香兰素也可用作植物生长促进剂、杀菌剂、润滑油消泡剂等,还是合成药物和其他香料的重要中间体。除此之外,它还可在电镀工业中用作上光剂,农业中用作催熟剂,橡胶制品中用作除臭剂,塑料制品中用作抗硬化剂和作为医药中间体使用等,应用十分广泛。
目前,香兰素的生产工艺主要有两种:
化学合成法:主要路线为愈创木酚-乙醛酸合成法,见下路线,为反应式1:
Figure RE-RE-DEST_PATH_IMAGE001
愈创木酚-乙醛酸化学合成香兰素的路线
以愈创木酚和乙醛酸为原料,通过强碱为催化剂进行缩合反应,然后经过氧化和酸化水解等一系列化工过程制得产品。此工艺操作简单,但是由于强酸强碱对环境污染大、原料来源受限,原料愈创木酚(大于4万/吨)和乙醛酸(大于2万/吨)的成本较高。
生物合成天然香兰素:采用天然产物做为来源合成香兰素的方法众多,以原料来源区分主要有香兰荚、米糠等提取的阿魏酸、丁香提取的丁香酚、姜黄和玉米淀粉糖等。其中香兰荚来源制备的香兰素较贵,米糠等提取的阿魏酸制备的香兰素属于中等价位,采用后三种原料来源进行大规模生产香兰素的报道还比较少,美国国际香精香料(IFF)在2014年开始从玉米糖开始直接发酵获得香兰素,并将以“natural vanillin”的标示进入市场,但采用直接从玉米糖发酵获得的产物浓度很低,只有0.5-1g/L,其生产所用原料糖和后提取浓缩的成本都会很高。
据文献报道:欧洲(European Directive 88/388/CEE, JO No. L184, 22 June1988)和美国的法规规定微生物转化阿魏酸产生的香兰素是属于天然产品,但欧洲的法规会更严格一些,例如玉米芯采用碱水解这种化学方法获得的阿魏酸,在欧洲法规中认为不是天然的,而美国法规仍认为是天然的。所以要制备天然来源的香兰素,如要进入欧洲市场,应尽量避免化学处理过程。
以上两种香兰素的制备方法中,各有不足,化学合成法对环境污染大,难以进入欧洲市场。生物合成法利用植物资源为原料,成本较高。
发明内容
为了解决上述问题,本发明提供了一种咖啡酸和香兰素的制备方法及其反应催化剂的制备方法,具体技术方案如下:
一种邻甲基转移酶催化剂和芳香族羧酸还原酶的制备方法,具体步骤如下:
步骤一:将邻甲基转移酶(o-methyltransferase,OMT)片段或芳香族羧酸还原酶(ACAR)片段分别重组到pET21a载体上,阳性重组质粒-pET21a(+)转化表达宿主菌BL21(DE3),得到原核表达菌株pET21a(+)/ BL21(DE3);
步骤二:将上述表达菌株在加有终浓度为100ug/mL氨苄青霉素的5mL LB液体培养基中于37℃、200rpm振荡培养过夜后,按1%(V/V)比例接种于含有终浓度为100ug/mL氨苄青霉素的500mL LB液体培养基中,于37℃、200rpm振荡培养。待OD600在0.8-1.0之间时,加入终浓度为0.1mM的诱导剂IPTG(异丙基-β-D-硫代半乳糖苷,IPTG),并在25℃诱导过夜;
步骤三:将步骤二所得液在8000rpm条件下离心收集,然后悬浮于50mM pH7.0 磷酸钠缓冲液中,超声破碎(200W,3s/5s,10min),4℃,8000rpm离心20min,得到邻甲基转移酶催化剂(OMT)或芳香族羧酸还原酶催化剂(ACAR)。
优选地,其特征在于:所述步骤二中的培养基包括:10g/L 胰蛋白胨(OXIOD),5g/L酵母粉(OXIOD),10g/L 氯化钠(国药试剂)。
本发明中,邻甲基转移酶来源于人源(Homo sapiens),芳香族羧酸还原酶来源于大肠杆菌(E.coli)或酵母(Yeast)。
该酶作为催化剂的形态可以是:纯酶、相应的重组菌休止细胞、粗酶液或者粗酶粉等。
一种制备咖啡酸的方法,具体步骤如下:
步骤一:将葡萄糖发酵得到3-脱氢莽草酸,进而使用3-脱氢莽草酸脱水酶催化剂(中国专利申请号:2019104520898)催化得到原儿茶酸。
步骤二:将步骤一得到的原儿茶酸溶解并加入磷酸盐,调整PH到6-11,加入权利要求1中的邻甲基转移酶催化剂和辅助因子S-腺苷甲硫氨酸(SAM);
步骤三:将步骤二中的反应体系在25-40℃下恒温搅拌,反应16-24小时,得到咖啡酸。
优选地,其特征在于:所述步骤二中加入磷酸盐至最终浓度为50mM。
咖啡酸是以原儿茶酸(PCA)为原料,使用邻甲基转移酶催化剂(OMT)进行的生物催化反应,反应方程式为:
Figure RE-DEST_PATH_IMAGE002
反应体系为:邻甲基转移酶催化剂(OMT),磷酸缓冲液,原儿茶酸,辅助因子S-腺苷甲硫氨酸(SAM),氯化钠。具体的为:酶的用量在1-10g/L,缓冲液浓度在50-200mM,缓冲液pH值在6.0-11之间,氯化钠浓度在10-100mmol之间,底物浓度在20-80g/L之间。反应后产物通过乙腈淬灭后经高效液相色谱(HPLC)验证,反应转化率可达80%,90%,或95%,或99%以上,产物的纯度值可达90%,或95%,或99%以上。
一种香兰素的制备方法,具体步骤如下:
步骤一:取权利要求1中所得的咖啡酸溶解于磷酸盐的水溶液中,调节pH到6-11;
步骤二:向步骤一的体系中加入权利要求1中的芳香族羧酸还原酶催化剂(ACAR)和辅助因子NAD;
步骤三:将步骤二中的反应体系在25-40℃下恒温搅拌,反应16-24小时,得到香兰素。
优选地,其特征在于:所述步骤一中磷酸盐浓度为50mM。
香兰素在咖啡酸的基础上,采用芳香族羧酸还原酶催化剂(ACAR)进行的生物催化反应,反应方程式为:
Figure RE-RE-DEST_PATH_IMAGE003
反应体系为:芳香族羧酸还原酶催化剂(ACAR),磷酸缓冲液,咖啡酸,NAD或者NADP之类的辅助因子。具体的为:酶的用量在1-10g/L,缓冲液浓度在50-200mM,缓冲液pH值在6.0-11之间,底物浓度在20-80g/L之间。反应后产物通过乙腈淬灭后经高效液相色谱(HPLC)验证,反应转化率可达90%,或95%,或99%以上,产物的纯度值可达90%,或95%,或99%以上。
本发明中使用以葡萄糖为原料发酵得到的3-脱氢莽草酸为底物,经过酶催化生成原儿茶酸,再经过酶催化可以得到咖啡酸,进一步酶催化得到香兰素,解决了已有方法中原料来源问题,同时显著简化工艺,减少环境污染,降低香兰素的生产成本。
附图说明
图1为实施例3/4中由3-脱氢莽草酸催化生成原儿茶酸的HPLC检测图;
图2为实施例5/6/7中原儿茶酸催化生成咖啡酸的HPLC检测图;
图3为实施例8/9/10/11中咖啡酸催化生成香兰素的HPLC检测图;
具体实施方式
为了加深对本发明的理解,下面将结合实施例对本发明做进一步详细描述,该实施例仅用于解释本发明,并不对保护范围构成限定。
实施例1 原核表达体系的构建
邻甲基转移酶(OMT)基因片段由南京金斯瑞生物科技有限公司合成,并重组到pET21a载体上。将阳性重组质粒pET21a(+)转化表达宿主菌BL21(DE3)(购自天根生化科技(北京)有限公司),得到原核表达菌株OMT-pET21a(+)/ BL21(DE3),作为后续催化反应原代菌株。
芳香族羧酸还原酶(ACAR)基因片段由南京金斯瑞生物科技有限公司合成,并重组到pET21a载体上。将阳性重组质粒pET21a(+)转化表达宿主菌BL21(DE3)(购自天根生化科技(北京)有限公司),得到原核表达菌株ACAR-pET21a(+)/ BL21(DE3),作为后续催化反应原代菌株。
实施例2 酶的发酵制备
上述构建的表达菌株OMT-pET21a(+)/ BL21(DE3)、ACAR-pET21a(+)/ BL21(DE3)在加有终浓度为100ug/mL氨苄青霉素的5mL LB液体培养基【10g/L 胰蛋白胨(OXIOD),5g/L 酵母粉(OXIOD),10g/L 氯化钠(国药试剂)】中于37℃、200rpm振荡培养过夜后,按1%(V/V)比例接种于含有终浓度为100ug/mL氨苄青霉素的500mL LB液体培养基中,于37℃、200rpm振荡培养。待OD600在0.8-1.0之间时,加入终浓度为0.1mM的诱导剂IPTG(异丙基-β-D-硫代半乳糖苷,IPTG),并在25℃诱导过夜。菌体在8000rpm条件下离心收集,然后悬浮于50mMpH7.0 磷酸钠缓冲液中,超声破碎(200W,3s/5s,10min),4℃,8000rpm离心20min,取上清备用。
实施例3
在含有50g3-脱氢莽草酸的800ml水溶液中加入磷酸盐至终浓度为50mM,溶液pH值达到7.0,待搅拌溶解后加入3-脱氢莽草酸脱水酶酶液200mL使得终体积为1L。反应液置于37℃恒温水浴锅中,机械搅拌反应。反应1h后进行HPLC检测,底物转化率>98%,见图1。
实施例4
在含有60g3-脱氢莽草酸的800ml水溶液中加入磷酸盐至终浓度为50mM,溶液pH值达到7.0,待搅拌溶解后加入3-脱氢莽草酸脱水酶酶液200mL使得终体积为1L。反应液置于37℃恒温水浴锅中,机械搅拌反应。反应1.5h后进行HPLC检测,底物转化率>98%,见图1。
实施例5
在含有50g原儿茶酸的800ml反应溶液中加入磷酸盐至终浓度为50mM,溶液pH值达到7.0,待搅拌溶解后加入邻甲基转移酶酶液200ml,辅助因子S-腺苷甲硫氨酸(SAM)0.1g,使得终体积为1L。反应液置于37℃恒温水浴锅中,搅拌反应。反应16h后进行HPLC检测,底物转化率>98%。
实施例6
在含有80g原儿茶酸的800ml反应溶液中加入磷酸盐至终浓度为50mM,溶液pH值达到7.0,待搅拌溶解后加入邻甲基转移酶酶液200ml,辅助因子S-腺苷甲硫氨酸(SAM)0.1g,使得终体积为1L。反应液置于37℃恒温水浴锅中,搅拌反应。反应16h后进行HPLC检测,底物转化率>95%。
实施例7
在含有80g原儿茶酸的800m水溶液中加入磷酸盐至终浓度为50mM,溶液pH值达到6.0,待搅拌溶解后加入邻甲基转移酶酶液200ml,辅助因子S-腺苷甲硫氨酸(SAM)0.1g,使得终体积为1L。反应液置于37℃恒温水浴锅中,搅拌反应。反应16h后进行HPLC检测,底物转化率>95%。
实施例8
将20g咖啡酸溶解于800mL磷酸盐浓度为50mM的水溶液终,调节pH至7.0,待搅拌溶解后加入芳香族羧酸还原酶酶液200ml,辅助因子NAD 0.2g,反应终体积为1L。反应液置于37℃恒温水浴锅中,搅拌反应。反应24h后进行HPLC检测,底物转化率>98%。
实施例9
将50g咖啡酸溶解于800mL磷酸盐浓度为50mM的水溶液终,调节pH至7.0,待搅拌溶解后加入芳香族羧酸还原酶酶液200ml,辅助因子NAD 0.2g,反应终体积为1L。反应液置于37℃恒温水浴锅中,机械搅拌反应。反应24h后进行HPLC检测,底物转化率>98%。
实施例10
将60g咖啡酸溶解于800mL磷酸盐浓度为50mM的水溶液终,调节pH至6.0,待搅拌溶解后加入芳香族羧酸还原酶酶液200ml,辅助因子NAD 0.2g,反应终体积为1L。反应液置于37℃恒温水浴锅中,搅拌反应。反应24h后进行HPLC检测,底物转化率>98%。
实施例11
将80g咖啡酸溶解于800mL磷酸盐浓度为50mM的水溶液终,调节pH至7.0,待搅拌溶解后加入芳香族羧酸还原酶酶液200ml,辅助因子NAD 0.2g,反应终体积为1L。反应液置于30℃恒温水浴锅中,搅拌反应。反应24h后进行HPLC检测,底物转化率>98%。
实施例12 HPLC检测方法建立
底物转化率的检测通过HPLC进行,检测的条件如下:仪器为安捷伦HPLC1100、液相柱为安捷伦Agllent 5 TC-C18(2) 250*4.6mm、流动相Buffer A为纯度大于99%的甲醇溶液、流动相Buffer B为0.1%的磷酸水溶液、A相和B相以一定梯度混合,柱温箱温度25°C、流速1mL/min、检测波长254nm、样品浓度2mg/mL、进样量10uL。检测后将产物的峰面积除以产物和底物的峰面积之和,求得转化率。
上述检测样品均采用流动相稀释到合适浓度后,用0.22μm的滤膜过滤进仪器检测。
以上实施例中,未注明具体条件的实验方法,通常按常规条件,如《分子克隆实验指南》(J.萨姆布鲁克,D.W.拉塞尔著,黄培堂,汪嘉玺,朱厚础等译,第三版,北京:科学出版社,2002)中所述的方法进行。
本实施例中涉及一种功能性邻甲基转移酶(简写为OMT),能够进行催化原儿茶酸合成咖啡酸,其氨基酸序列衍生自,且具有附件所列的序列。本发明还涉及一种功能性芳香族羧酸还原酶(简写ACAR),能够催化咖啡酸合成香兰素,其氨基酸序列衍生自人源,且具有附件所列的序列。
综合上述实施例可知,制得酶之后,再进行构建,形成有催化效果的催化剂,可以用于生物反应中,给香兰素的制备提供了一条新的路线,以容易获得的葡萄糖为原料发酵得到的3-脱氢莽草酸为底物,经过酶催化生成原儿茶酸,再经过酶催化可以得到咖啡酸,进一步酶催化可以得到香兰素,解决了已有方法中原料来源问题,同时显著简化工艺,减少环境污染,降低香兰素生产成本。
序列表
<110> 上海仁酶生物科技有限公司
南京趣酶生物科技有限公司
<120> 一种咖啡酸和香兰素的制备方法及其反应催化剂的制备方法
<160> 3
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 220
<212> PRT
<213> 2 Ambystoma laterale x Ambystoma jeffersonianum
<400> 1
Met Gly Asp Thr Lys Glu Gln Arg Ile Leu Asn His Val Leu Gln His
1 5 10 15
Ala Glu Pro Gly Asn Ala Gln Ser Val Leu Glu Ala Ile Asp Thr Tyr
20 25 30
Cys Glu Gln Lys Glu Trp Ala Met Asn Val Gly Asp Lys Gly Lys Ile
35 40 45
Val Asp Ala Val Ile Gln Glu His Gln Pro Ser Val Leu Leu Glu Leu
50 55 60
Gly Ala Tyr Cys Gly Tyr Ser Ala Val Arg Met Ala Arg Leu Leu Ser
65 70 75 80
Pro Gly Ala Arg Leu Ile Thr Ile Glu Ile Asn Pro Asp Cys Ala Ala
85 90 95
Ile Thr Gln Arg Met Val Asp Phe Ala Gly Val Lys Asp Lys Val Thr
100 105 110
Leu Val Val Gly Ala Ser Gln Asp Ile Ile Pro Gln Leu Lys Lys Lys
115 120 125
Tyr Asp Val Asp Thr Leu Asp Met Val Phe Leu Asp His Trp Lys Asp
130 135 140
Arg Tyr Leu Pro Asp Thr Leu Leu Leu Glu Glu Cys Gly Leu Leu Arg
145 150 155 160
Lys Gly Thr Val Leu Leu Ala Asp Asn Val Ile Cys Pro Gly Ala Pro
165 170 175
Asp Phe Leu Ala His Val Arg Gly Ser Ser Cys Phe Glu Cys Thr His
180 185 190
Tyr Gln Ser Phe Leu Glu Tyr Arg Glu Val Val Asp Gly Leu Glu Lys
195 200 205
Ala Ile Tyr Lys Gly Pro Gly Ser Glu Ala Gly Pro
210 215 220
<210> 2
<211> 361
<212> PRT
<213> 2 Ambystoma laterale x Ambystoma jeffersonianum
<400> 2
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1 5 10 15
Asp Glu Ala Ala Leu Phe Ala Met Gln Leu Ala Ser Ala Ser Val Leu
20 25 30
Pro Met Ala Leu Lys Ser Ala Leu Glu Leu Asp Leu Leu Glu Ile Met
35 40 45
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50 55 60
Thr Lys Asn Pro Glu Ala Pro Val Met Leu Asp Arg Ile Leu Arg Leu
65 70 75 80
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85 90 95
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100 105 110
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115 120 125
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130 135 140
Leu Asp Gly Gly Ile Pro Phe Asn Lys Ala Tyr Gly Met Ser Ala Phe
145 150 155 160
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165 170 175
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180 185 190
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195 200 205
Gly Ala Thr Leu Lys Met Ile Val Ser Lys Tyr Pro Asn Leu Lys Gly
210 215 220
Ile Asn Phe Asp Leu Pro His Val Ile Glu Asp Ala Pro Ser His Pro
225 230 235 240
Gly Ile Glu His Val Gly Gly Asp Met Phe Val Ser Val Pro Lys Gly
245 250 255
Asp Ala Ile Phe Met Lys Trp Ile Cys His Asp Trp Ser Asp Glu His
260 265 270
Cys Val Lys Phe Leu Lys Asn Cys Tyr Glu Ser Leu Pro Glu Asp Gly
275 280 285
Lys Val Ile Leu Ala Glu Cys Leu Pro Glu Thr Pro Asp Ser Ser Leu
290 295 300
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<212> PRT
<213> 2 Ambystoma laterale x Ambystoma jeffersonianum
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1 5 10 15
Leu Phe Ala Glu Asp Glu Gln Val Lys Ala Ala Arg Pro Leu Glu Ala
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Val Ser Ala Ala Val Ser Ala Pro Gly Met Arg Leu Ala Gln Ile Ala
35 40 45
Ala Thr Val Met Ala Gly Tyr Ala Asp Arg Pro Ala Ala Gly Gln Arg
50 55 60
Ala Phe Glu Leu Asn Thr Asp Asp Ala Thr Gly Arg Thr Ser Leu Arg
65 70 75 80
Leu Leu Pro Arg Phe Glu Thr Ile Thr Tyr Arg Glu Leu Trp Gln Arg
85 90 95
Val Gly Glu Val Ala Ala Ala Trp His His Asp Pro Glu Asn Pro Leu
100 105 110
Arg Ala Gly Asp Phe Val Ala Leu Leu Gly Phe Thr Ser Ile Asp Tyr
115 120 125
Ala Thr Leu Asp Leu Ala Asp Ile His Leu Gly Ala Val Thr Val Pro
130 135 140
Leu Gln Ala Ser Ala Ala Val Ser Gln Leu Ile Ala Ile Leu Thr Glu
145 150 155 160
Thr Ser Pro Arg Leu Leu Ala Ser Thr Pro Glu His Leu Asp Ala Ala
165 170 175
Val Glu Cys Leu Leu Ala Gly Thr Thr Pro Glu Arg Leu Val Val Phe
180 185 190
Asp Tyr His Pro Glu Asp Asp Asp Gln Arg Ala Ala Phe Glu Ser Ala
195 200 205
Arg Arg Arg Leu Ala Asp Ala Gly Ser Leu Val Ile Val Glu Thr Leu
210 215 220
Asp Ala Val Arg Ala Arg Gly Arg Asp Leu Pro Ala Ala Pro Leu Phe
225 230 235 240
Val Pro Asp Thr Asp Asp Asp Pro Leu Ala Leu Leu Ile Tyr Thr Ser
245 250 255
Gly Ser Thr Gly Thr Pro Lys Gly Ala Met Tyr Thr Asn Arg Leu Ala
260 265 270
Ala Thr Met Trp Gln Gly Asn Ser Met Leu Gln Gly Asn Ser Gln Arg
275 280 285
Val Gly Ile Asn Leu Asn Tyr Met Pro Met Ser His Ile Ala Gly Arg
290 295 300
Ile Ser Leu Phe Gly Val Leu Ala Arg Gly Gly Thr Ala Tyr Phe Ala
305 310 315 320
Ala Lys Ser Asp Met Ser Thr Leu Phe Glu Asp Ile Gly Leu Val Arg
325 330 335
Pro Thr Glu Ile Phe Phe Val Pro Arg Val Cys Asp Met Val Phe Gln
340 345 350
Arg Tyr Gln Ser Glu Leu Asp Arg Arg Ser Val Ala Gly Ala Asp Leu
355 360 365
Asp Thr Leu Asp Arg Glu Val Lys Ala Asp Leu Arg Gln Asn Tyr Leu
370 375 380
Gly Gly Arg Phe Leu Val Ala Val Val Gly Ser Ala Pro Leu Ala Ala
385 390 395 400
Glu Met Lys Thr Phe Met Glu Ser Val Leu Asp Leu Pro Leu His Asp
405 410 415
Gly Tyr Gly Ser Thr Glu Ala Gly Ala Ser Val Leu Leu Asp Asn Gln
420 425 430
Ile Gln Arg Pro Pro Val Leu Asp Tyr Lys Leu Val Asp Val Pro Glu
435 440 445
Leu Gly Tyr Phe Arg Thr Asp Arg Pro His Pro Arg Gly Glu Leu Leu
450 455 460
Leu Lys Ala Glu Thr Thr Ile Pro Gly Tyr Tyr Lys Arg Pro Glu Val
465 470 475 480
Thr Ala Glu Ile Phe Asp Glu Asp Gly Phe Tyr Lys Thr Gly Asp Ile
485 490 495
Val Ala Glu Leu Glu His Asp Arg Leu Val Tyr Val Asp Arg Arg Asn
500 505 510
Asn Val Leu Lys Leu Ser Gln Gly Glu Phe Val Thr Val Ala His Leu
515 520 525
Glu Ala Val Phe Ala Ser Ser Pro Leu Ile Arg Gln Ile Phe Ile Tyr
530 535 540
Gly Ser Ser Glu Arg Ser Tyr Leu Leu Ala Val Ile Val Pro Thr Asp
545 550 555 560
Asp Ala Leu Arg Gly Arg Asp Thr Ala Thr Leu Lys Ser Ala Leu Ala
565 570 575
Glu Ser Ile Gln Arg Ile Ala Lys Asp Ala Asn Leu Gln Pro Tyr Glu
580 585 590
Ile Pro Arg Asp Phe Leu Ile Glu Thr Glu Pro Phe Thr Ile Ala Asn
595 600 605
Gly Leu Leu Ser Gly Ile Ala Lys Leu Leu Arg Pro Asn Leu Lys Glu
610 615 620
Arg Tyr Gly Ala Gln Leu Glu Gln Met Tyr Thr Asp Leu Ala Thr Gly
625 630 635 640
Gln Ala Asp Glu Leu Leu Ala Leu Arg Arg Glu Ala Ala Asp Leu Pro
645 650 655
Val Leu Glu Thr Val Ser Arg Ala Ala Lys Ala Met Leu Gly Val Ala
660 665 670
Ser Ala Asp Met Arg Pro Asp Ala His Phe Thr Asp Leu Gly Gly Asp
675 680 685
Ser Leu Ser Ala Leu Ser Phe Ser Asn Leu Leu His Glu Ile Phe Gly
690 695 700
Val Glu Val Pro Val Gly Val Val Val Ser Pro Ala Asn Glu Leu Arg
705 710 715 720
Asp Leu Ala Asn Tyr Ile Glu Ala Glu Arg Asn Ser Gly Ala Lys Arg
725 730 735
Pro Thr Phe Thr Ser Val His Gly Gly Gly Ser Glu Ile Arg Ala Ala
740 745 750
Asp Leu Thr Leu Asp Lys Phe Ile Asp Ala Arg Thr Leu Ala Ala Ala
755 760 765
Asp Ser Ile Pro His Ala Pro Val Pro Ala Gln Thr Val Leu Leu Thr
770 775 780
Gly Ala Asn Gly Tyr Leu Gly Arg Phe Leu Cys Leu Glu Trp Leu Glu
785 790 795 800
Arg Leu Asp Lys Thr Gly Gly Thr Leu Ile Cys Val Val Arg Gly Ser
805 810 815
Asp Ala Ala Ala Ala Arg Lys Arg Leu Asp Ser Ala Phe Asp Ser Gly
820 825 830
Asp Pro Gly Leu Leu Glu His Tyr Gln Gln Leu Ala Ala Arg Thr Leu
835 840 845
Glu Val Leu Ala Gly Asp Ile Gly Asp Pro Asn Leu Gly Leu Asp Asp
850 855 860
Ala Thr Trp Gln Arg Leu Ala Glu Thr Val Asp Leu Ile Val His Pro
865 870 875 880
Ala Ala Leu Val Asn His Val Leu Pro Tyr Thr Gln Leu Phe Gly Pro
885 890 895
Asn Val Val Gly Thr Ala Glu Ile Val Arg Leu Ala Ile Thr Ala Arg
900 905 910
Arg Lys Pro Val Thr Tyr Leu Ser Thr Val Gly Val Ala Asp Gln Val
915 920 925
Asp Pro Ala Glu Tyr Gln Glu Asp Ser Asp Val Arg Glu Met Ser Ala
930 935 940
Val Arg Val Val Arg Glu Ser Tyr Ala Asn Gly Tyr Gly Asn Ser Lys
945 950 955 960
Trp Ala Gly Glu Val Leu Leu Arg Glu Ala His Asp Leu Cys Gly Leu
965 970 975
Pro Val Ala Val Phe Arg Ser Asp Met Ile Leu Ala His Ser Arg Tyr
980 985 990
Ala Gly Gln Leu Asn Val Gln Asp Val Phe Thr Arg Leu Ile Leu Ser
995 1000 1005
Leu Val Ala Thr Gly Ile Ala Pro Tyr Ser Phe Tyr Arg Thr Asp Ala
1010 1015 1020
Asp Gly Asn Arg Gln Arg Ala His Tyr Asp Gly Leu Pro Ala Asp Phe
1025 1030 1035 1040
Thr Ala Ala Ala Ile Thr Ala Leu Gly Ile Gln Ala Thr Glu Gly Phe
1045 1050 1055
Arg Thr Tyr Asp Val Leu Asn Pro Tyr Asp Asp Gly Ile Ser Leu Asp
1060 1065 1070
Glu Phe Val Asp Trp Leu Val Glu Ser Gly His Pro Ile Gln Arg Ile
1075 1080 1085
Thr Asp Tyr Ser Asp Trp Phe His Arg Phe Glu Thr Ala Ile Arg Ala
1090 1095 1100
Leu Pro Glu Lys Gln Arg Gln Ala Ser Val Leu Pro Leu Leu Asp Ala
1105 1110 1115 1120
Tyr Arg Asn Pro Cys Pro Ala Val Arg Gly Ala Ile Leu Pro Ala Lys
1125 1130 1135
Glu Phe Gln Ala Ala Val Gln Thr Ala Lys Ile Gly Pro Glu Gln Asp
1140 1145 1150
Ile Pro His Leu Ser Ala Pro Leu Ile Asp Lys Tyr Val Ser Asp Leu
1155 1160 1165
Glu Leu Leu Gln Leu Leu
1170

Claims (5)

1.一种制备咖啡酸的方法,具体步骤如下:
步骤一:通过发酵方法获得3-脱氢莽草酸原料的方法,即采用天然来源糖进行微生物合成该原料的过程;
步骤二:将葡萄糖发酵得到3-脱氢莽草酸,进而使用3-脱氢莽草酸脱水酶催化剂催化得到原儿茶酸;
步骤三:将步骤二得到的原儿茶酸溶解并加入磷酸盐,调整pH到6-11,加入邻甲基转移酶催化剂(OMT)和辅助因子S-腺苷甲硫氨酸(SAM);
步骤四:将步骤三中的反应体系在25-40℃下恒温搅拌,反应16-24小时,得到咖啡酸。
2.一种香兰素的制备方法,具体步骤如下:
步骤一:通过发酵方法获得3-脱氢莽草酸原料的方法,即采用天然来源糖进行微生物合成该原料的过程;
步骤二:将葡萄糖发酵得到3-脱氢莽草酸,进而使用3-脱氢莽草酸脱水酶催化剂催化得到原儿茶酸;
步骤三:向步骤二的反应体系中加入邻甲基转移酶催化剂(OMT)和辅助因子SAMS-腺苷甲硫氨酸,催化得到咖啡酸体系液;
步骤四:将步骤三的反应体系中加入芳香族羧酸还原酶催化剂(ACAR)和辅助因子NAD,在25-40℃下恒温搅拌,反应16-24小时,催化得到香兰素。
3.权利要求1中邻甲基转移酶催化剂的制备方法,具体步骤如下:
步骤一:将邻甲基转移酶(o-methyltransferase,OMT)片段重组到pET21a载体上,阳性重组质粒-pET21a(+)转化表达宿主菌BL21(DE3),得到原核表达菌株pET21a(+)/ BL21(DE3);
步骤二:将上述表达菌株在加有终浓度为100ug/mL氨苄青霉素的5mL LB液体培养基中于37℃、200rpm振荡培养过夜后,按1%(V/V)比例接种于含有终浓度为100ug/mL氨苄青霉素的500mL LB液体培养基中,于37℃、200rpm振荡培养,待OD600在0.8-1.0之间时,加入终浓度为0.1mM的诱导剂IPTG(异丙基-β-D-硫代半乳糖苷,IPTG),并在25℃诱导过夜;
步骤三:将步骤二所得液在8000rpm条件下离心收集,然后悬浮于50mM pH7.0 磷酸钠缓冲液中,超声破碎(200W,3s/5s,10min),4℃,8000rpm离心20min,得到邻甲基转移酶催化剂(OMT)。
4.根据权利要求3所述的邻甲基转移酶催化剂的制备方法,其特征在于:所述步骤二中的培养基包括:10g/L 胰蛋白胨(OXIOD),5g/L 酵母粉(OXIOD),10g/L 氯化钠(国药试剂)。
5.权利要求2中芳香族羧酸还原酶催化剂(ACAR)的制备方法,具体步骤如下:
步骤一:将芳香族羧酸还原酶(ACAR)分别重组到pET21a载体上,阳性重组质粒-pET21a(+)转化表达宿主菌BL21(DE3),得到原核表达菌株pET21a(+)/ BL21(DE3);
步骤二:将上述表达菌株在加有终浓度为100ug/mL氨苄青霉素的5mL LB液体培养基中于37℃、200rpm振荡培养过夜后,按1%(V/V)比例接种于含有终浓度为100ug/mL氨苄青霉素的500mL LB液体培养基中,于37℃、200rpm振荡培养,待OD600在0.8-1.0之间时,加入终浓度为0.1mM的诱导剂IPTG(异丙基-β-D-硫代半乳糖苷,IPTG),并在25℃诱导过夜;
步骤三:将步骤二所得液在8000rpm条件下离心收集,然后悬浮于50mM pH7.0 磷酸钠缓冲液中,超声破碎(200W,3s/5s,10min),4℃,8000rpm离心20min,得到芳香族羧酸还原酶催化剂(ACAR)。
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