CN111607618A - 一种利用突变体使MGP Variant 1对乳腺癌细胞EMT的促进功能丧失的方法 - Google Patents
一种利用突变体使MGP Variant 1对乳腺癌细胞EMT的促进功能丧失的方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN111607618A CN111607618A CN202010492610.3A CN202010492610A CN111607618A CN 111607618 A CN111607618 A CN 111607618A CN 202010492610 A CN202010492610 A CN 202010492610A CN 111607618 A CN111607618 A CN 111607618A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- cells
- solution
- cell
- membrane
- shaking
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Images
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
- C12N15/79—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
- C12N15/85—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for animal cells
- C12N15/86—Viral vectors
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
- G01N33/574—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for cancer
- G01N33/57407—Specifically defined cancers
- G01N33/57415—Specifically defined cancers of breast
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
- G01N33/574—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for cancer
- G01N33/57484—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for cancer involving compounds serving as markers for tumor, cancer, neoplasia, e.g. cellular determinants, receptors, heat shock/stress proteins, A-protein, oligosaccharides, metabolites
- G01N33/57496—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for cancer involving compounds serving as markers for tumor, cancer, neoplasia, e.g. cellular determinants, receptors, heat shock/stress proteins, A-protein, oligosaccharides, metabolites involving intracellular compounds
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2740/00—Reverse transcribing RNA viruses
- C12N2740/00011—Details
- C12N2740/10011—Retroviridae
- C12N2740/15011—Lentivirus, not HIV, e.g. FIV, SIV
- C12N2740/15041—Use of virus, viral particle or viral elements as a vector
- C12N2740/15043—Use of virus, viral particle or viral elements as a vector viral genome or elements thereof as genetic vector
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Immunology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Urology & Nephrology (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Hematology (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Microbiology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Pathology (AREA)
- Hospice & Palliative Care (AREA)
- Oncology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- General Physics & Mathematics (AREA)
- Food Science & Technology (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Zoology (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Plant Pathology (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Virology (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
本发明涉及利用MGP Variant1构建的慢病毒转染突变体,使原本MGP Variant1对乳腺癌细胞EMT进程的促进功能丧失的方法。包括以下步骤:步骤A、细胞培养;步骤B、细胞转染;步骤C、免疫印迹试验;构建MGP的不同转录本的过表达质粒,通过制备慢病毒并转染进乳腺癌细胞MDA‑MB‑231和T47D里,筛选的到稳定上调Variant1或Variant2表达量的细胞株,并对EMT重要标志物进行Western blot及RT‑qPCR检测,通过免疫荧光发现Variant1对伪足的促进作用,通过MTT发现Variant1对增殖的促进作用,验证了Variant1在乳腺癌E MT进程中的作用。
Description
技术领域
本发明涉及医疗领域,具体的说是一种利用突变体使MGP Variant 1对乳腺癌细胞 EMT的促进功能丧失的方法。
背景技术
女性乳腺是由皮肤、纤维组织、乳腺腺体和脂肪组成的,乳腺癌是发生在乳腺腺上皮组织的恶性肿瘤。乳腺癌中99%发生在女性,男性仅占1%。乳腺并不是维持人体生命活动的重要器官,原位乳腺癌并不致命;但由于乳腺癌细胞丧失了正常细胞的特性,细胞之间连接松散,容易脱落。癌细胞一旦脱落,游离的癌细胞可以随血液或淋巴液播散全身,形成转移,危及生命。目前乳腺癌已成为威胁女性身心健康的常见肿瘤。
MGP是一种13~15kd左右的依赖维生素K的基质GLA蛋白,拥有5个γ-羧基谷氨酸残基,在GLA的序列结构域中的谷氨酸(Glu)残基都是潜在的羧基化位点,这类蛋白拥有一个对羧化酶的底物识别很重要的保守的gla-x(3)-gla-x-cys基序。
在乳腺癌中,出现高水平的MGP表达量与预后不良有关。人类细胞内已完全分离出两种MGP转录本编码的蛋白。Variant1,长度387bp,有128个氨基酸残基,拥有5个外显子。Variant2,长度312bp,有103个氨基酸残基,共有4个外显子。研究发现对乳腺癌 EMT来说,MGP Variant 1在促进EMT过程中发挥更重要的作用。因此,针对上述问题提出一种利用可稳定转染的突变体使MGP Variant1促进乳腺癌细胞EMT进程丧失的方法。
发明内容
针对现有技术中的问题,本发明提供了一种利用突变体使MGP Variant 1对乳腺癌细胞EMT的促进功能丧失的方法,本发明提供的突变体,使原本MGP Variant1对乳腺癌细胞EMT进程的促进功能丧失。构建MGP Variant 1可稳定转染的突变体质粒,将MGP Variant1作为对照及构建的突变体转染进乳腺癌细胞里,做Western blot,使MGP Variant1突变体消除MGP Variant 1在乳腺癌EMT进程中的促进作用。
本发明解决其技术问题所采用的技术方案是:一种利用突变体使MGP Variant 1对乳腺癌细胞EMT的促进功能丧失的方法,包括以下步骤:
S1、细胞培养;使用DMEM培养液培养细胞;具体的包括以下步骤:
a、将-80℃冰箱或液氮罐里的HEK293FT细胞,最快速度放入37℃的恒温水浴锅中,尽可能在2min内迅速晃动融化;然后将1ml新鲜的DMEM细胞培养液与冻存管中的细胞,用枪头混匀在离心管中;随后放入1000rpm的离心机中3min进行离心;用枪头小心吸净上层的冻存液废液,加入1ml新鲜DMEM细胞培养液,悬浮细胞;向细胞培养皿中加入4ml新鲜DMEM培养液,将悬浮细胞打入细胞培养皿中,置于细胞培养箱中进行培养;
b、用酒精将所有拿进去的物品消毒后放进生物安全柜;吸去废液,随即用枪头吸取 5mlPBS,沿培养皿壁缓慢加入,摇匀后吸去废液;加入适量胰酶,摇匀后放回培养箱中;根据不同细胞调整胰酶反应的时间,进行消化反应,时间为3-5min,消化不完全的适当增加消化时间;消化完全后,将1ml新鲜的DMEM培养液沿培养皿壁打入,冲洗几遍,胰酶消化反应停止,并将细胞充分冲下,放入1000rpm的离心机中离心3min;吸去上清,向离心管中添加1ml新鲜的DMEM培养液,重新悬浮细胞,换到新的细胞培养皿中培养。
c、移出上清,加入适量的10%DMSO+90%DMEM细胞培养液组成的细胞冻存液,温和地将细胞沉淀吹打均匀;随即将细胞悬浮液进行分装,用枪头吸取1ml细胞悬浮液打入1.5ml冻存管;冻存管放入泡沫盒里,胶带封好放入-80℃冰箱,48h后,再放入液氮罐中进行长期冻存;
S2、细胞转染:包括瞬时转染,制备慢病毒,慢病毒转染;
S3、免疫印迹试验:提取细胞的总蛋白,对提取的总蛋白进行蛋白质浓度测定,然后进行电泳,电泳完成之后进行转膜、封闭、一抗孵育、二抗孵育,最后进行曝光检测,验证构建的突变体使MGPVariant1对乳腺癌细胞EMT上进程的促进功能丧失。
具体的,所述S2中的瞬时转染为:在六孔板中种293T细胞,每孔3×105个细胞,分散均匀后培养,细胞长至约50%;转染试剂阳离子Exfect2000与无血清的DMEM培养液充分混匀,放置5min;目的质粒与无血清的DMEM培养液充分混匀,放置5min;将目的质粒与无血清的DMEM培养液混匀的培养液加入转染试剂阳离子Exfect2000与无血清的 DMEM培养液的培养液中,涡旋震荡10s,简单离心,室温孵育10min;将孵育中的阳离子复合物转圈滴加进六孔板中,6h后吸去培养液换新鲜DMEM细胞培养液;转染2-4天后收集蛋白。
具体的,所述S2中的制备慢病毒为:六孔板中,每孔添加1μl polylysine(多聚赖氨酸)及1ml PBS,进行包板,使HEK293FT细胞更易贴壁。显微镜观察,HEK293FT在对数期生长时。种细胞,大致每孔细胞数为8×105个细胞。添加新鲜的DMEM培养液,六孔板每孔培养液不超过2ml,把六孔板放置于细胞培养箱中过夜培养。12h后,HEK293FT 约75%左右细胞密度至时开始制备慢病毒。将100微升无血清DMEM加入8微升慢病毒转染试剂,轻轻混合。以每孔为例,将无血清DMEM吸于管中,将1μg vsvg、1μg plp1、 1μg plp2,、3μg目的质粒打入其中,振荡混匀,静置5min。以每孔为例,将无血清DMEM 先逐个吸于管中,加入转染试剂Exfect2000,静置5min。将(6)加入(7)中混合,上下颠倒混匀,室温放置10min,用枪头转圈均匀滴加混合液进入六孔板中每个孔中。摇匀放入细胞培养箱中培养。6h后贴六孔板的板壁缓慢地换液,操作时轻拿轻放。换液48h后收一次病毒,先在管子上标记好病毒名称,将上清液吸至灭菌后的EP管中,移至4℃冰箱中存放(长时间放在4℃会降低慢病毒的感染效率),-80℃冰箱中可长期存储。
具体的,所述S2中的慢病毒转染为:将细胞,按传代方法,将其消化离心收集后重新悬浮细胞。血细胞计数板计数。于-80℃冰箱取出制备好的慢病毒,使用0.45μm的滤膜滤除将细胞碎片,再吸出1ml的慢病毒均匀打入到六孔板中。将1ml病毒和1×105细胞悬液混匀后,添加新鲜的DMEM细胞培养液,补至2ml,再添加2μl polybrene以增强病毒的感染效率。72h换液,再添加2μl的2mg/ml的puromycin,筛选细胞,缓速混匀后。加入puromycin 48h后观察细胞存活率和细胞密度,等六孔板中细胞密度至75%,把细胞扩大培养,留种冻存。
具体的,所述S3中的免疫印迹试验具体的为:
(1)将细胞密度达到80%-90%的细胞取出放置在冰上,用冰箱拿出的1×PBS沿皿壁冲洗细胞3次,缓慢地注意不要将细胞冲起;向培养皿中总共加入300μl-500μl冰箱里预冷的NP40裂解液,分两次加入,将细胞放置于冰上1-2min等待裂解,刮刀或者枪头刮下,吸到1.5ml的EP管中;在4℃冷库中剧烈的振荡,振荡时间分别为5min,10min,20min,用旋转混合器进行旋转促进细胞充分裂解,在此过程中通过将基因组DNA打断;20min 时的震荡后,换入新的EP管中,将其放入提前预冷的4℃离心机中,12000rpm,离心30min;留上清到新的EP管中;
(2)将牛血清白蛋白稀释为1μg/μl;配BCA蛋白浓度测定试剂混匀,避光放置;所有蛋白待测液均设定3个重复组,每孔10μl蛋白待测液;在96孔板第一排中滴加10 μl1μg/μl的牛血清白蛋白和100μlAB显色液,第二排添加10μlNP40蛋白裂解液和100 μlAB显色液,做空白对照;96孔板中第三排开始加入蛋白待测液,10μl样品加100μlAB 混合液,37℃放置1个小时;OD570测定蛋白样品的浓度;计算蛋白待测液浓度。随后以 1:4添加5×SDS-PAGELoadingBuffer,在沸水中,插在漂子上煮3min,随后将其保存在-20℃冰箱中;
(3)所用的SDS-PAGE 8%、10%和15%分离胶与浓缩胶的配方见表一和表二,制胶完成后,放入电泳槽,并将电泳液倒进电泳槽,蛋白质样品置于沸水中,插在漂子上煮 2-3min,去梳子,点上蛋白Marker,每个空的上样量及点样体积需要保持一致;恒压80V 至跑入分离胶,转恒压100V电泳,观察marker位置,及时结束电泳;电泳停止之后,剥离胶,把分离胶放入盛有预冷的TransferBuffer(TB)的托盘中;
(4)裁一张和分离胶差不多的NC膜(或PVDF膜)和4张滤纸,膜太大容易形成气泡;把NC膜(用甲醇提前浸泡PVDF膜)、滤纸、海绵垫和分离胶置于盛有预冷 TransferBuffer托盘中充分浸泡,玻璃棒先赶海绵垫里的气泡;按照顺序依次是:转印板红面(阳极)和海绵垫、2层滤纸、膜、凝胶、2层滤纸、海绵垫、转印板黑面(阴极),此过程应用玻璃棒缓慢赶去气泡;添加预冷的TB缓冲液至转膜槽中,加入转子,放入冰盒,放在磁力搅拌器上,保证不会局部温度高;通电后,在转膜槽周围放入大量碎冰;恒流300mA转膜1-3h;转膜结束后,小心地取出NC膜(或PVDF膜);
(5)封闭:将NC膜(或PVDF膜)加入封闭液(50mlTBST+5%脱脂牛奶)放置摇床摇摆,常温3h摇晃封闭或者4℃过夜缓慢摇晃封闭;
(6)一抗孵育:1:1000稀释一抗(5%脱脂牛奶+1×TBST),膜浸泡其中;把NC膜(或PVDF膜)放在4℃冷库,置于摇床上缓慢摇晃,过夜;取出NC膜(或PVDF膜),用WashingBuffer摇晃清洗3次,以便洗去残留抗体,每次10min。
(7)二抗孵育:用5%脱脂奶粉溶于WashingBuffer来稀释1:10000二抗;摇床常温孵育1h;取出NC膜(或PVDF膜),用WashingBuffer摇晃清洗3次,以便洗去残留抗体,每次10min;
(8)曝光检测:把NC膜(或PVDF膜)放置干净保鲜膜上,按Tanon说明书配置显色液,A液、B液等比例混合(避光放置),均匀的滴加在NC膜上(或PVDF膜)静置2min后,曝光检测。
本发明的有益效果:
本发明一种利用突变体使MGP Variant 1对乳腺癌细胞EMT的促进功能丧失的方法,使原本MGP Variant1对乳腺癌细胞EMT进程的促进功能丧失;MGP Variant1,通过瞬时转染或慢病毒转染进入乳腺癌细胞里,收集细胞株并提取总蛋白,对EMT重要标志物进行Western blot检测,发现Variant1对EMT进程有显著的促进作用。本发明构建的可稳定转染的突变体,可以消除MGP Variant1对乳腺癌细胞EMT上进程的促进功能,适合推广使用。
附图说明
下面结合附图和实施例对本发明进一步说明。
图1为本发明提供的一种利用突变体使MGP Variant 1对乳腺癌细胞EMT的促进功能丧失的方法的流程图;
图2为本发明的前期数据支持MGP Variant1对EMT进程有明显促进作用
图3为本发明的前期数据支持MGP Variant1对伪足有明显促进作用;
图4为本发明的前期数据支持MGP Variant1对细胞增殖促进作用;
图5为本发明的MGP Variant1突变体使MGP Variant1对乳腺癌EMT的促进作用丧失。
具体实施方式
为了使本发明实现的技术手段、创作特征、达成目的与功效易于明白了解,下面结合具体实施方式,进一步阐述本发明。
如图1所示,本发明的一种利用突变体使MGP Variant 1对乳腺癌细胞EMT的促进功能丧失的方法,包括以下步骤:
S1、细胞培养;使用DMEM培养液培养细胞;具体的包括以下步骤:
a、将-80℃冰箱或液氮罐里的HEK293FT细胞,最快速度放入37℃的恒温水浴锅中,尽可能在2min内迅速晃动融化;然后将1ml新鲜的DMEM细胞培养液与冻存管中的细胞,用枪头混匀在离心管中;随后放入1000rpm的离心机中3min进行离心;用枪头小心吸净上层的冻存液废液,加入1ml新鲜DMEM细胞培养液,悬浮细胞;向细胞培养皿中加入4ml新鲜DMEM培养液,将悬浮细胞打入细胞培养皿中,置于细胞培养箱中进行培养;
b、用酒精将所有拿进去的物品消毒后放进生物安全柜;吸去废液,随即用枪头吸取 5mlPBS,沿培养皿壁缓慢加入,摇匀后吸去废液;加入适量胰酶,摇匀后放回培养箱中;根据不同细胞调整胰酶反应的时间,进行消化反应,时间为3-5min,消化不完全的适当增加消化时间;消化完全后,将1ml新鲜的DMEM培养液沿培养皿壁打入,冲洗几遍,胰酶消化反应停止,并将细胞充分冲下,放入1000rpm的离心机中离心3min;吸去上清,向离心管中添加1ml新鲜的DMEM培养液,重新悬浮细胞,换到新的细胞培养皿中培养。
c、移出上清,加入适量的10%DMSO+90%DMEM细胞培养液组成的细胞冻存液,温和地将细胞沉淀吹打均匀;随即将细胞悬浮液进行分装,用枪头吸取1ml细胞悬浮液打入1.5ml冻存管;冻存管放入泡沫盒里,胶带封好放入-80℃冰箱,48h后,再放入液氮罐中进行长期冻存;
S2、细胞瞬时转染;
S3、免疫印迹试验:提取细胞的总蛋白,对提取的总蛋白进行蛋白质浓度测定,然后进行电泳,电泳完成之后进行转膜、封闭、一抗孵育、二抗孵育,最后进行曝光检测,使构建的突变体,消除MGPVariant1对乳腺癌细胞EMT上进程的促进功能。
具体的,所述S2中的瞬时转染为:在六孔板中种293T细胞,每孔3×105个细胞,分散均匀后培养,细胞长至约50%;转染试剂阳离子Exfect2000与无血清的DMEM培养液充分混匀,放置5min;目的质粒与无血清的DMEM培养液充分混匀,放置5min;将目的质粒与无血清的DMEM培养液混匀的培养液加入转染试剂阳离子Exfect2000与无血清的 DMEM培养液的培养液中,涡旋震荡10s,简单离心,室温孵育10min;将孵育中的阳离子复合物转圈滴加进六孔板中,6h后吸去培养液换新鲜DMEM细胞培养液;转染2-4天后收集细胞。
具体的,所述S2中的制备慢病毒为:六孔板中,每孔添加1μl polylysine(多聚赖氨酸)及1ml PBS,进行包板,使HEK293FT细胞更易贴壁。显微镜观察,HEK293FT在对数期生长时。种细胞,大致每孔细胞数为8×105个细胞。添加新鲜的DMEM培养液,六孔板每孔培养液不超过2ml,把六孔板放置于细胞培养箱中过夜培养。12h后,HEK293FT 约75%左右细胞密度至时开始制备慢病毒。将100微升无血清DMEM加入8微升慢病毒转染试剂,轻轻混合。以每孔为例,将无血清DMEM吸于管中,将1μg vsvg、1μg plp1、 1μg plp2,、3μg目的质粒打入其中,振荡混匀,静置5min。以每孔为例,将无血清DMEM 先逐个吸于管中,加入转染试剂Exfect2000,静置5min。将(6)加入(7)中混合,上下颠倒混匀,室温放置10min,用枪头转圈均匀滴加混合液进入六孔板中每个孔中。摇匀放入细胞培养箱中培养。6h后贴六孔板的板壁缓慢地换液,操作时轻拿轻放。换液48h后收一次病毒,先在管子上标记好病毒名称,将上清液吸至灭菌后的EP管中,移至4℃冰箱中存放(长时间放在4℃会降低慢病毒的感染效率),-80℃冰箱中可长期存储。
具体的,所述S2中的慢病毒转染为:将细胞,按传代方法,将其消化离心收集后重新悬浮细胞。血细胞计数板计数。于-80℃冰箱取出制备好的慢病毒,使用0.45μm的滤膜滤除将细胞碎片,再吸出1ml的慢病毒均匀打入到六孔板中。将1ml病毒和1×105细胞悬液混匀后,添加新鲜的DMEM细胞培养液,补至2ml,再添加2μl polybrene以增强病毒的感染效率。72h换液,再添加2μl的2mg/ml的puromycin,筛选细胞,缓速混匀后。加入puromycin 48h后观察细胞存活率和细胞密度,等六孔板中细胞密度至75%,把细胞扩大培养,留种冻存。
具体的,所述S3中的免疫印迹试验具体的为:
(1)将细胞密度达到80%-90%的细胞取出放置在冰上,用冰箱拿出的1×PBS沿皿壁冲洗细胞3次,缓慢地注意不要将细胞冲起;向培养皿中总共加入300μl-500μl冰箱里预冷的NP40裂解液,分两次加入,将细胞放置于冰上1-2min等待裂解,刮刀或者枪头刮下,吸到1.5ml的EP管中;在4℃冷库中剧烈的振荡,振荡时间分别为5min,10min,20min,用旋转混合器进行旋转促进细胞充分裂解,在此过程中通过将基因组DNA打断;20min 时的震荡后,换入新的EP管中,将其放入提前预冷的4℃离心机中,12000rpm,离心30min;留上清到新的EP管中;
(2)将牛血清白蛋白稀释为1μg/μl;配BCA蛋白浓度测定试剂混匀,避光放置;所有蛋白待测液均设定3个重复组,每孔10μl蛋白待测液;在96孔板第一排中滴加10μl1μg/μl的牛血清白蛋白和100μlAB显色液,第二排添加10μlNP40蛋白裂解液和100μlAB显色液,做空白对照;96孔板中第三排开始加入蛋白待测液,10μl样品加100μlAB混合液,37℃放置1个小时;OD570测定蛋白样品的浓度;计算蛋白待测液浓度。随后以1:4添加 5×SDS-PAGELoadingBuffer,在沸水中,插在漂子上煮3min,随后将其保存在-20℃冰箱中;
(3)所用的SDS-PAGE 8%、10%和15%分离胶与浓缩胶的配方见表一和表二,制胶完成后,放入电泳槽,并将电泳液倒进电泳槽,蛋白质样品置于沸水中,插在漂子上煮2-3min,去梳子,点上蛋白Marker,每个空的上样量及点样体积需要保持一致;恒压80V 至跑入分离胶,转恒压100V电泳,观察marker位置,及时结束电泳;电泳停止之后,剥离胶,把分离胶放入盛有预冷的TransferBuffer(TB)的托盘中;
(4)裁一张和分离胶差不多的NC膜(或PVDF膜)和4张滤纸,膜太大容易形成气泡;把NC膜(用甲醇提前浸泡PVDF膜)、滤纸、海绵垫和分离胶置于盛有预冷 TransferBuffer托盘中充分浸泡,玻璃棒先赶海绵垫里的气泡;按照顺序依次是:转印板红面(阳极)和海绵垫、2层滤纸、膜、凝胶、2层滤纸、海绵垫、转印板黑面(阴极),此过程应用玻璃棒缓慢赶去气泡;添加预冷的TB缓冲液至转膜槽中,加入转子,放入冰盒,放在磁力搅拌器上,保证不会局部温度高;通电后,在转膜槽周围放入大量碎冰;恒流300mA转膜1-3h;转膜结束后,小心地取出NC膜(或PVDF膜);
(5)封闭:将NC膜(或PVDF膜)加入封闭液(50mlTBST+5%脱脂牛奶)放置摇床摇摆,常温3h摇晃封闭或者4℃过夜缓慢摇晃封闭;
(6)一抗孵育:1:1000稀释一抗(5%脱脂牛奶+1×TBST),膜浸泡其中;把NC膜 (或PVDF膜)放在4℃冷库,置于摇床上缓慢摇晃,过夜;取出NC膜(或PVDF膜),用WashingBuffer摇晃清洗3次,以便洗去残留抗体,每次10min。
(7)二抗孵育:用5%脱脂奶粉溶于WashingBuffer来稀释1:10000二抗;摇床常温孵育1h;取出NC膜(或PVDF膜),用WashingBuffer摇晃清洗3次,以便洗去残留抗体,每次10min;
(8)曝光检测:把NC膜(或PVDF膜)放置干净保鲜膜上,按Tanon说明书配置显色液,A液、B液等比例混合(避光放置),均匀的滴加在NC膜上(或PVDF膜)静置2min后,曝光检测。
表一
表二
免疫荧光实验为:
(1)在实验前两天,在6孔板中放入灭过菌的24mm×24mm的盖玻片,随即加入 1ml灭过菌的1×PBS,再加入1μl polybrene,包板,使细胞贴壁更牢固。
(2)将所需要的的细胞进行传代,每孔加入2×10 4个细胞,待到细胞贴壁且形态良好时,处理细胞。
(3)弃培养基,快速的用提前放在37℃的预温1×PBS洗两遍。
(4)每孔使用1ml的37℃的4%的多聚甲醛,30min常温固定,低速摇晃。
(5)吸走多聚甲醛,用PBS低速摇晃洗3乘10min。
(6)弃PBS,每孔加1ml 0.5%的Triton X-100,覆盖细胞,常温20min,低速摇晃。
(7)弃Triton X-100,PBS洗2遍,每次10min,
(8)弃PBS,每孔加1ml 100mM的甘氨酸,室温15min。
(9)PBS洗2次,每次5min。
(10)3%BSA封闭1h,常温静置。
(11)在载玻片上滴加200μl的罗丹明标记的鬼笔环肽(终浓度为200nM),防止滴落,常温避光静置30min。
(12)PBS洗3次,每次5min。
(13)加入200μl的DAPI溶液(终浓度100nM),染细胞核,常温避光静置1 h。
(14)PBS洗3次,每次5min。
(15)将一滴透明的抗荧光猝灭剂添加至载玻片,并将盖玻片相继扣在载玻片上。
指甲油永久封片,并避光保持在摄氏4度。
(16)激光共聚焦观察。
MTT试验为:
(1)准备实验所用的70-90%细胞密度的MDA-MB-231和T47D,移去培养液并洗涤,废液打入废液缸。
(2)按分细胞的步骤消化收集细胞。
(3)弃尽废液,添加5ml培养液用枪头缓缓地吹打匀细胞使其混匀。
(4)细胞计数。
(5)计算MDA-MB-231和T47D相关细胞浓度。
(6)调整细胞浓度使24孔板中每孔含5×10 3个细胞,设置3个同样实验组,再添加新鲜的DMEM使得24孔板总体系为600μl,重复铺种5个板,摇匀后置于细胞培养箱中培养。
(7)种板后,连续5天每天取出一个24孔板,添加2mg/ml的MTT 100μl溶液后,黑暗培养箱培养4h。取出后,避光换液并添加200μl的DMSO,常温避光摇床孵育30min,用酶标仪检测OD 490值。
(8)重板时应多加一个96孔板,6h后,贴壁后立即加MTT,后加DMSO,测 OD 490值作为标准。
由Western blotting结果可知,MGP Variant1对乳腺癌细胞EMT的促进作用更明显。
由免疫荧光结果观察可知:在转染了pCDH-MGP-V1-HA、pCDH-MGP-V2-HA的 MDA-MB-231、T47D之后,细胞的骨架发生了不一样的改变。过表达Variant1的细胞中伪足的数量、宽度及亮度均有更明显的促进作用。
由MTT分析对乳腺癌细胞增殖能力的影响:通过MTT实验,Variant1转录本在增殖中发挥着主要作用。
以上显示和描述了本发明的基本原理、主要特征和优点。本行业的技术人员应该了解,本发明不受上述实施例的限制,上述实施方式和说明书中的描述的只是说明本发明的原理,在不脱离本发明精神和范围的前提下,本发明还会有各种变化和改进,这些变化和改进都落入本发明要求保护的范围内。本发明要求保护范围由所附的权利要求书及其等效物界定。
Claims (5)
1.一种利用突变体使MGP Variant 1对乳腺癌细胞EMT的促进功能丧失的方法,其特征在于:包括以下步骤:
S1、细胞培养;使用DMEM培养液培养细胞;具体的包括以下步骤:
a、将-80℃冰箱或液氮罐里的HEK293FT细胞,最快速度放入37℃的恒温水浴锅中,尽可能在2min内迅速晃动融化;然后将1ml新鲜的DMEM细胞培养液与冻存管中的细胞,用枪头混匀在离心管中;随后放入1000rpm的离心机中3min进行离心;用枪头小心吸净上层的冻存液废液,加入1ml新鲜DMEM细胞培养液,悬浮细胞;向细胞培养皿中加入4ml新鲜DMEM培养液,将悬浮细胞打入细胞培养皿中,置于细胞培养箱中进行培养;
b、用酒精将所有拿进去的物品消毒后放进生物安全柜;吸去废液,随即用枪头吸取5mlPBS,沿培养皿壁缓慢加入,摇匀后吸去废液;加入适量胰酶,摇匀后放回培养箱中;根据不同细胞调整胰酶反应的时间,进行消化反应,时间为3-5min,消化不完全的适当增加消化时间;消化完全后,将1ml新鲜的DMEM培养液沿培养皿壁打入,冲洗几遍,胰酶消化反应停止,并将细胞充分冲下,放入1000rpm的离心机中离心3min;吸去上清,向离心管中添加1ml新鲜的DMEM培养液,重新悬浮细胞,换到新的细胞培养皿中培养;
c、移出上清,加入适量的10%DMSO+90%DMEM细胞培养液组成的细胞冻存液,温和地将细胞沉淀吹打均匀;随即将细胞悬浮液进行分装,用枪头吸取1ml细胞悬浮液打入1.5ml冻存管;冻存管放入泡沫盒里,胶带封好放入-80℃冰箱,48h后,再放入液氮罐中进行长期冻存;
S2、细胞瞬时转染,制备慢病毒,慢病毒转染;
S3、免疫印迹试验:提取细胞的总蛋白,对提取的总蛋白进行蛋白质浓度测定,然后进行电泳,电泳完成之后进行转膜、封闭、一抗孵育、二抗孵育,最后进行曝光检测,以MGPVariant 1为对照,确认构建的突变体可以消除MGP Variant1对乳腺癌细胞EMT进程的促进功能。
2.根据权利要求1所述的一种利用突变体使MGP Variant 1对乳腺癌细胞EMT的促进功能丧失的方法,其特征在于:所述S2中的瞬时转染为:在六孔板中种293T细胞,每孔3×105个细胞,分散均匀后培养,细胞长至约50%;转染试剂阳离子Exfect2000与无血清的DMEM培养液充分混匀,放置5min;目的质粒与无血清的DMEM培养液充分混匀,放置5min;将目的质粒与无血清的DMEM培养液混匀的培养液加入转染试剂阳离子Exfect2000与无血清的DMEM培养液的培养液中,涡旋震荡10s,简单离心,室温孵育10min;将孵育中的阳离子复合物转圈滴加进六孔板中,6h后吸去培养液换新鲜DMEM细胞培养液;转染2-4天后收集细胞。
3.根据权利要求1所述的一种利用突变体使MGP Variant 1对乳腺癌细胞EMT的促进功能丧失的方法,其特征在于:所述S2中的制备慢病毒为:六孔板中,每孔添加1μlpolylysine(多聚赖氨酸)及1ml PBS,进行包板,使HEK293FT细胞更易贴壁;显微镜观察,HEK293FT在对数期生长时;种细胞,大致每孔细胞数为8×105个细胞;添加新鲜的DMEM培养液,六孔板每孔培养液不超过2ml,把六孔板放置于细胞培养箱中过夜培养;12h后,HEK293FT约75%左右细胞密度至时开始制备慢病毒;将100微升无血清DMEM加入8微升慢病毒转染试剂,轻轻混合;以每孔为例,将无血清DMEM吸于管中,将1μg vsvg、1μg plp1、1μgplp2,、3μg目的质粒打入其中,振荡混匀,静置5min;以每孔为例,将无血清DMEM先逐个吸于管中,加入转染试剂Exfect2000,静置5min;将加入质粒的无血清DMEM与加入转染试剂Exfect2000的无血清DMEM混合,上下颠倒混匀,室温放置10min,用枪头转圈均匀滴加混合液进入六孔板中每个孔中;摇匀放入细胞培养箱中培养;6h后贴六孔板的板壁缓慢地换液,操作时轻拿轻放;换液48h后收一次病毒,先在管子上标记好病毒名称,将上清液吸至灭菌后的EP管中,移至4℃冰箱中存放,-80℃冰箱中可长期存储。
4.根据权利要求1所述的一种利用突变体使MGP Variant 1对乳腺癌细胞EMT的促进功能丧失的方法,其特征在于:所述S2中的慢病毒转染为:将细胞,按传代方法,将其消化离心收集后重新悬浮细胞;血细胞计数板计数;于-80℃冰箱取出制备好的慢病毒,使用0.45μm的滤膜滤除将细胞碎片,再吸出1ml的慢病毒均匀打入到六孔板中;将1ml病毒和1×105细胞悬液混匀后,添加新鲜的DMEM细胞培养液,补至2ml,再添加2μl polybrene以增强病毒的感染效率;72h换液,再添加2μl的2mg/ml的puromycin,筛选细胞,缓速混匀后;加入puromycin 48h后观察细胞存活率和细胞密度,等六孔板中细胞密度至75%,把细胞扩大培养,留种冻存。
5.根据权利要求1所述的一种利用突变体使MGP Variant 1对乳腺癌细胞EMT的促进功能丧失的方法,其特征在于:所述S3中的免疫印迹试验具体的为:
(1)将细胞密度达到80%-90%的细胞取出放置在冰上,用冰箱拿出的1×PBS沿皿壁冲洗细胞3次,缓慢地注意不要将细胞冲起;向培养皿中总共加入300μl-500μl冰箱里预冷的NP40裂解液,分两次加入,将细胞放置于冰上1-2min等待裂解,刮刀或者枪头刮下,吸到1.5ml的EP管中;在4℃冷库中剧烈的振荡,振荡时间分别为5min,10min,20min,用旋转混合器进行旋转促进细胞充分裂解,在此过程中通过将基因组DNA打断;20min时的震荡后,换入新的EP管中,将其放入提前预冷的4℃离心机中,12000rpm,离心30min;留上清到新的EP管中;
(2)将牛血清白蛋白稀释为1μg/μl;配BCA蛋白浓度测定试剂混匀,避光放置;所有蛋白待测液均设定3个重复组,每孔10μl蛋白待测液;在96孔板第一排中滴加10μl1μg/μl的牛血清白蛋白和100μlAB显色液,第二排添加10μlNP40蛋白裂解液和100μlAB显色液,做空白对照;96孔板中第三排开始加入蛋白待测液,10μl样品加100μlAB混合液,37℃放置1个小时;OD570测定蛋白样品的浓度;计算蛋白待测液浓度;随后以1:4添加5×SDS-PAGELoadingBuffer,在沸水中,插在漂子上煮3min,随后将其保存在-20℃冰箱中;
(3)所用的SDS-PAGE 8%、10%和15%分离胶与浓缩胶的配方见表一和表二,制胶完成后,放入电泳槽,并将电泳液倒进电泳槽,蛋白质样品置于沸水中,插在漂子上煮2-3min,去梳子,点上蛋白Marker,每个空的上样量及点样体积需要保持一致;恒压80V至跑入分离胶,转恒压100V电泳,观察marker位置,及时结束电泳;电泳停止之后,剥离胶,把分离胶放入盛有预冷的TransferBuffer(TB)的托盘中;
(4)裁一张和分离胶差不多的NC膜(或PVDF膜)和4张滤纸,膜太大容易形成气泡;把NC膜(用甲醇提前浸泡PVDF膜)、滤纸、海绵垫和分离胶置于盛有预冷TransferBuffer托盘中充分浸泡,玻璃棒先赶海绵垫里的气泡;按照顺序依次是:转印板红面(阳极)和海绵垫、2层滤纸、膜、凝胶、2层滤纸、海绵垫、转印板黑面(阴极),此过程应用玻璃棒缓慢赶去气泡;添加预冷的TB缓冲液至转膜槽中,加入转子,放入冰盒,放在磁力搅拌器上,保证不会局部温度高;通电后,在转膜槽周围放入大量碎冰;恒流300mA转膜1-3h;转膜结束后,小心地取出NC膜(或PVDF膜);
(5)封闭:将NC膜(或PVDF膜)加入封闭液(50mlTBST+5%脱脂牛奶)放置摇床摇摆,常温3h摇晃封闭或者4℃过夜缓慢摇晃封闭;
(6)一抗孵育:1:1000稀释一抗(5%脱脂牛奶+1×TBST),膜浸泡其中;把NC膜(或PVDF膜)放在4℃冷库,置于摇床上缓慢摇晃,过夜;取出NC膜(或PVDF膜),用WashingBuffer摇晃清洗3次,以便洗去残留抗体,每次10min;
(7)二抗孵育:用5%脱脂奶粉溶于WashingBuffer来稀释1:10000二抗;摇床常温孵育1h;取出NC膜(或PVDF膜),用WashingBuffer摇晃清洗3次,以便洗去残留抗体,每次10min;
(8)曝光检测:把NC膜(或PVDF膜)放置干净保鲜膜上,按Tanon说明书配置显色液,A液、B液等比例混合(避光放置),均匀的滴加在NC膜上(或PVDF膜)静置2min后,曝光检测。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN202010492610.3A CN111607618A (zh) | 2020-06-03 | 2020-06-03 | 一种利用突变体使MGP Variant 1对乳腺癌细胞EMT的促进功能丧失的方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN202010492610.3A CN111607618A (zh) | 2020-06-03 | 2020-06-03 | 一种利用突变体使MGP Variant 1对乳腺癌细胞EMT的促进功能丧失的方法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN111607618A true CN111607618A (zh) | 2020-09-01 |
Family
ID=72194405
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN202010492610.3A Pending CN111607618A (zh) | 2020-06-03 | 2020-06-03 | 一种利用突变体使MGP Variant 1对乳腺癌细胞EMT的促进功能丧失的方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN111607618A (zh) |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20040197830A1 (en) * | 1999-07-04 | 2004-10-07 | Vitak Bv | Diagnostic assay for human matrix Gla-protein and its use as a biomarker |
CN106701886A (zh) * | 2016-12-16 | 2017-05-24 | 管晓翔 | 一种三阴性乳腺癌细胞上皮间质转换过程中对内皮细胞分泌功能影响的检测方法 |
CN108570453A (zh) * | 2018-05-12 | 2018-09-25 | 江西中医药大学第二附属医院 | 一种慢病毒过表达载体介导的e6-ap促进结肠癌细胞生长和转移的实验方法 |
-
2020
- 2020-06-03 CN CN202010492610.3A patent/CN111607618A/zh active Pending
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20040197830A1 (en) * | 1999-07-04 | 2004-10-07 | Vitak Bv | Diagnostic assay for human matrix Gla-protein and its use as a biomarker |
CN106701886A (zh) * | 2016-12-16 | 2017-05-24 | 管晓翔 | 一种三阴性乳腺癌细胞上皮间质转换过程中对内皮细胞分泌功能影响的检测方法 |
CN108570453A (zh) * | 2018-05-12 | 2018-09-25 | 江西中医药大学第二附属医院 | 一种慢病毒过表达载体介导的e6-ap促进结肠癌细胞生长和转移的实验方法 |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
李蒙等: "E-钙黏蛋白、N-钙黏蛋白及波形蛋白在肿瘤转移中应用的研究进展", 《肿瘤研究与临床》 * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN109136174B (zh) | 一种延缓衰老的干细胞来源外泌体制剂 | |
US20220154139A1 (en) | YAP1 Gene-Modified Mesenchymal Stem Cell and Preparation Method Thereof | |
Lorenzo et al. | Generation of mouse and human induced pluripotent stem cells (iPSC) from primary somatic cells | |
WO2021031884A1 (zh) | 一种尿源性肾干细胞的培养方法及其应用 | |
CN105886458B (zh) | 一种机械法提取鸡胚成肌细胞 | |
CN106867968A (zh) | Ybx1稳定表达的smcc-7721细胞系及构建方法 | |
CN115029351A (zh) | 一种shRNA或BACH1缺失巨噬细胞来源的EVs在制备治疗高血压的药物中的应用 | |
CN109706181B (zh) | 一种构建永生化猪肝星状细胞系的方法、永生化猪肝星状细胞系和应用 | |
CN111454990B (zh) | 人颈静脉球副神经节瘤永生化细胞株及其应用 | |
CN111607618A (zh) | 一种利用突变体使MGP Variant 1对乳腺癌细胞EMT的促进功能丧失的方法 | |
WO2013186264A1 (en) | Immortalized mesenchymal stem cells that can be killed through an inducible apoptosis system | |
CN116004822B (zh) | 一种用于乳腺癌诊断的pcr试剂盒 | |
CN108660108A (zh) | 一种可增强脐带间充质干细胞免疫调节能力的方法 | |
JP5401669B2 (ja) | 心筋細胞分化誘導促進方法及び分化誘導方法 | |
CN102676516B (zh) | microRNA 145的新用途 | |
CN112941020B (zh) | 一种鸡环状rna在促进成肌细胞的增殖的应用 | |
CN104862316A (zh) | 具有显著促进牛前脂肪细胞增殖生物功能的miRNA-2400 | |
CN112391386B (zh) | 一种间充质干细胞迁移促进剂 | |
CN114134145A (zh) | Hoxc10在胃癌发病机制中的作用 | |
CN111269940A (zh) | 一种使用转录因子foxo1直接转分化间充质干细胞为精子的方法 | |
CN104561101A (zh) | MicroRNA 221-3p在制备表皮细胞中的方法及应用 | |
CN117417964A (zh) | 一种绵羊乳腺上皮细胞系及其构建方法、用途 | |
CN114099711B (zh) | vps26a基因在制备促成骨药物中的应用 | |
CN116574675A (zh) | 一种乳腺癌来源的间充质前体细胞及其分离方法和促进乳腺癌细胞增殖的方法 | |
CN114480390B (zh) | 靶向抑制ZNF22基因表达的siRNA、siRNA质粒、慢病毒及其构建方法和应用 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
PB01 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
WD01 | Invention patent application deemed withdrawn after publication |
Application publication date: 20200901 |
|
WD01 | Invention patent application deemed withdrawn after publication |