CN111454814A

CN111454814A - 一种广东虫草酒

Info

Publication number: CN111454814A
Application number: CN202010275081.1A
Authority: CN
Inventors: 吴云; 樊美珍; 盛强; 胡建峰; 徐振栋; 沈佳奇
Original assignee: Zhejiang Panya Health Food Co ltd
Current assignee: Zhejiang Panya Health Food Co ltd
Priority date: 2019-10-10
Filing date: 2020-04-09
Publication date: 2020-07-28

Abstract

本发明涉及一种广东虫草酒，所述广东虫草酒中广东虫草与酒的重量体积比(g/ml)为1：(40～50)。本发明制备的虫草酒口味甘甜、香味浓郁，有效成分多糖含量高，具有显著的提高免疫、延缓衰老的功能。

Description

一种广东虫草酒

技术领域

本发明涉及一种广东虫草酒，属于医药保健领域。

背景技术

广东虫草(Cordyceps guangdongensis T.H.Q.Y.Lin&B.Song)于2005年在广东被发现，其子实体形态特征与日本虫草C.japonica Lloyd较为接近，但子囊壳和次生子囊孢子较小，ITS序列相似率为93.9％，定名为广东虫草并于2008年发表。广东虫草是我国特有的虫草资源。其已知自然分布范围较窄，目前仅发现于我国华南地区热带亚热带的森林中，主要分布于广东省境内多个地区，而在南岭以北的各省区还未见其自然分布的报道。野生广东虫草散生至群生于阔叶林中，生于地下生长的大团囊菌子实体上。广东虫草含有丰富营养成分和多种虫草活性成分，虫草酸优于冬虫夏草和北虫草。在最新的系统分类学位置上，广东虫草与冬虫夏草是属于线虫草科的，新缘关系比较接近。因此广东虫草在成份及功能方面与冬虫夏草更为接近。

酒素有“百药之长”之称，将强身健体的中药与酒“溶”于一体的药酒，不仅配制方便、药性稳定、安全有效，而且因为酒精是一种良好的半极性有机溶剂，药借酒力、酒助药势而充分发挥其效力，提高疗效。现代药酒多选用50-60度(％)的白酒，已利于中药材中有效成分的溶出。制作药酒时，通常是将中药材浸泡在酒中，经过一段时间后。中药材中的有效成分溶解在酒中，此时即可过滤去渣后即可饮用。

现有技术将虫草泡酒制备虫草酒的报导已有很多，但这些虫草酒大多注重酒的外观美感，而忽略其营养成分和保健功效。

发明内容

为解决现有技术存在的问题，本发明提供一种广东虫草酒，该酒保留有原酱香型酒的原有口感及香味，并含有虫草的有效成份，经酒的浸泡后，虫草的有效成份更好的析出。

作为本发明的一个方面，本发明提供一种广东虫草酒，所述广东虫草酒中广东虫草与酒的重量体积比(g/ml)为1：(40～50)。

优选的，所述广东虫草酒中广东虫草与酒的重量体积比(g/ml)为1：50。

优选的，所述广东虫草酒中多糖含量高于0.05％，甘露醇含量高于0.2％；进一步优选的，多糖含量高于0.1％，甘露醇含量高于0.3％。

优选的，所述广东虫草酒中鲜味氨基酸的含量高于0.02％；进一步优选的，鲜味氨基酸的含量高于0.03％。所述鲜味氨基酸为天冬氨酸、谷氨酸、甘氨酸和丙氨酸。

在具体的实施方式中，将广东虫草浸泡于白酒中，所述浸泡时间为40～80天；

优选的，所述浸泡时间为40～60天；

进一步优选的，所述浸泡时间为45～55天；

更优选的，所述浸泡时间为48～52天；

最优选的，所述浸泡时间为50天。

在具体的实施方式中，所述白酒的浓度为50-60度(％)的白酒。优选采用茅台泡酒。

作为本发明的另一个方面，本发明提供一种食用酒的制备方法，所述方法包括在酒中加入广东虫草。

优选的，在酒中加入广东虫草浸泡40～80天；

进一步优选的，浸泡40～60天；

更优选的，浸泡45～55天；

更优选的，浸泡48～52天；

最优选的，浸泡50天。

优选的，广东虫草与酒的重量体积比(g/ml)为1：(40～50)。进一步优选的，广东虫草与酒的重量体积比(g/ml)为1：50。

优选的，所述食用酒中多糖含量高于0.05％，甘露醇含量高于0.2％；进一步优选的，多糖含量高于0.1％，甘露醇含量高于0.3％。

优选的，所述食用酒中鲜味氨基酸的含量高于0.02％；进一步优选的，鲜味氨基酸的含量高于0.03％。所述鲜味氨基酸为天冬氨酸、谷氨酸、甘氨酸和丙氨酸。

优选的，所述方法还包括在浸泡后滤去广东虫草的步骤。

优选的，所述白酒的浓度为50-60度(％)的白酒。进一步优选采用茅台泡酒。

作为本发明的第三个方面，本发明提供广东虫草在提高白酒风味和口感方面的应用。

优选的，在酒中加入广东虫草浸泡40～80天；

进一步优选的，浸泡40～60天；

更优选的，浸泡45～55天；

更优选的，浸泡48～52天；

最优选的，浸泡50天。

有益效果：

本发明意外的发现，将广东虫草浸入基酒中浸泡50天左右制备得到的广东虫草酒，其风味比对照酒(基酒)和其他虫草酒更醇厚、入口更绵柔。通过对本发明广东虫草酒进行成分分析，发明人发现，浸泡50天左右广东虫草中的甘露醇会有异常的溶出，溶出率达到86.17％。发明人同时发现，采用相同工艺制备的蝉花酒和蛹虫草酒中，虽然酒中也有甘露醇溶出，但溶出率不到30％，明显低于广东虫草中甘露醇的溶出，因此其口感明显逊色于本发明制备的广东虫草酒。因此，本发明方法制备的广东虫草酒除了具有保健功效外，由于广东虫草中甘露醇的异常溶出，其口感也取得了很大提升，这一显著效果是蝉花和蛹虫草无法实现的。

附图说明

图1A为对照酒的HPLC色谱图；

图1B为广东虫草酒的HPLC色谱图。

具体实施方式

实施例1

取广东虫草子实体，每500ml白酒中添加10g虫草，浸泡50天，过滤所得。所述白酒为贵州中心酿酒集团有限公司提供的茅台镇53°酱香型白酒。

1、虫草添加量考察

每500ml白酒中加入不同量的虫草子实体，浸泡一定天数，测定酒中多糖含量，结果见表1。

表1虫草添加量考察结果

从表1中可以看出，不同添加量的广东虫草在浸酒期，酒中的多糖含量有明显的变化，总的趋势是，随着浸酒时间的加长，酒中的虫草多糖含量呈增长趋势，约到50天左右，达到高峰。后边的变化有高有低，因而将50天确定为浸酒的终至期。至于浸酒的虫草添加量，一般随着虫草时的增大，酒中的多糖含量随之提高，但是每500ml酒中浸泡10g和12g间差异不大，没有明显提高，所以确定每500ml中添加10g虫草为生产广东虫草酒的最佳添加量。

2、不同添加量的广东虫草子实体对虫草酒免疫功能的影响

对不同广东虫草子实体浸酒的高、低剂量组(高剂量为10g/500ml，低剂量为7.5g/500ml)的成品酒的免疫功能进行测定。主要选择体液免疫功能和单核巨噬细胞功能，试验方法参照抗体生成细胞检测(Jerne改良玻片法)试验，血清溶血素试验，观察广东虫草酒对体液免疫功能的影响。单核-巨噬细胞功能试验，主要通过小鼠碳廓清试验，小鼠腹腔巨噬细胞吞噬鸡红细胞试验，观察广东虫草酒对单核-巨噬细胞功能的影响。(参考中华人民共和国卫生部“保健食品检验与评价技术规范”2003年版，三、保健食品评价试验项目、试验原则及结果判定。第二部分功能学评价检验方法1、增强免疫力功能检验方法p22-34)。

2.1广东虫草酒对小鼠抗体生成细胞的影响

与阴性对照组比较，广东虫草酒高剂量组能够提高小鼠的溶血空斑数(P<0.05)，结果见表2。

表2对小鼠溶血空斑数的影响

组别	溶血空斑数(空斑数/全脾细胞数)
		阴性对照组(蒸馏水)	41.3±10.2
高剂量组	54.8±12.7*
		低剂量组	48.6±13.0

与阴性对照组比较，*P<0.05

2.2广东虫草酒对小鼠血清溶血素的影响

与阴性对照组比较，广东虫草酒高剂量组可以提高抗体积数(P<0.05)，结果见表3。

表3对小鼠抗体积数的影响

与阴性对照组比较，*P<0.05

2.3广东虫草酒对小鼠碳廓清的影响

与阴性对照组比较，广东虫草酒高剂量组均能提高小鼠的吞噬指数(P<0.05)，结果见表4。

表4对小鼠碳廓清的影响

组别	吞噬指数
		阴性对照组(蒸馏水)	4.25±0.53
高剂量组	5.02±0.57**
		低剂量组	4.86±0.67

与阴性对照组比较，**P<0.01

2.4广东虫草酒对小鼠腹腔巨噬细胞吞噬鸡红细胞的影响

与阴性对照组比较，广东虫草酒高剂量组可以提高小鼠巨噬细胞吞噬鸡红细胞的能力，统计结果有差异性(P<0.05)，结果见表5。

表5对小鼠巨噬细胞吞噬鸡红细胞的吞噬能力的影响

与阴性对照组比较，*P<0.05，**P<0.01

以上试验结果说明：

体液免疫功能：抗体生成细胞检测(Jerne改良玻片法)试验中，与阴性对照组比较，广东虫草酒高剂量组与阴性对照组比较能够提高小鼠的溶血空斑数，差异有统计学意义(P<0.05)；广东虫草酒高剂量组与阴性对照组比较可以提高小鼠抗体积数，差异有统计学意义(P<0.05)。可判定体液免疫功能测定结果阳性。

单核-巨噬细胞功能：小鼠碳廓清试验中，广东虫草酒高剂量组与阴性对照组比较能够明显提高小鼠的吞噬指数，差异有统计学意义(P<0.05)；小鼠腹腔巨噬细胞吞噬鸡红细胞试验中，广东虫草酒高剂量组与阴性对照组比较可以提高小鼠巨噬细胞吞噬鸡红细胞的能力，差异有统计学意义(P<0.05)。可判定单核-巨噬细胞功能测定结果阳性。

国家规定：在细胞免疫功能(ConA诱导的小鼠的脾淋巴细胞转化，DNFB诱导小鼠DTH)、体液免疫功能(抗体生成细胞检测，血清溶血素测定)、单核-巨噬细胞功能(小鼠碳廓清，小鼠腹腔巨噬细胞吞噬鸡红细胞)、NK细胞活性四个方面任两个方面结果阳性，可判定该受试样品具有增强免疫力功能作用。根据以上试验结果：广东虫草酒高剂量组(10g/500ml)具有增强免疫力功能作用。

根据功能试验结果，因此，选定10g/500ml为浸酒的最佳浓度。

3、广东虫草酒延缓衰老作用的研究

对10g/500ml浸酒浓度的广东虫草酒的延缓衰老作用的探究。主要采用果蝇生存实验，观察广东虫草酒对果蝇寿命的影响；对果蝇体内过氧化物歧化酶(SOD)活性和丙二醛(MDA)含量进行测定，评价广东虫草酒抗氧化作用。

3.1材料

3.1.1供试材料

广东虫草酒：取广东虫草子实体，每500ml白酒中添加10g虫草，浸泡50天，过滤所得。所述白酒为贵州中心酿酒集团有限公司提供的53°酱香型。

黑腹果蝇(Drosophila melanogaster)由中国科学院上海植物生理生态研究所提供。

3.1.2仪器与试剂

H1650-W高速离心机：湖南湘仪离心机仪器有限公司；ME204电子天平:梅特勒-托利多国际贸易有限公司；721型分光光度计：上海佑科仪器仪表有限公司；HPX-300BSH-3恒温恒湿培养箱：上海新苗医疗器械制造有限公司。

冰醋酸、无水乙醚：上海凌峰化学试剂有限公司；SOD试剂盒、MDA试剂盒、TP试剂盒：南京建成生物工程公司。

3.2方法

3.2.1果蝇培养基的配置

基础培养基配方：玉米粉108.5g、琼脂8.2g、蔗糖81.5g、酵母粉9.2g、冰醋酸6ml、水1000ml。

配置方法：将琼脂8.2g，蔗糖81.5g，放入锅中，加入100ml热水，搅拌溶解，然后加入108.5g玉米粉，再加800ml热水，充分搅拌，加热成糊状，关火；再加冰醋酸5ml以及溶于100ml凉水的9.2g酵母粉，搅拌均匀，然后立即悬空装入培养管中，每管培养基高约2cm(大约10ml)，盖上瓶塞，报纸封口，121℃灭菌20min，置于超净台自然冷却48h，制成基础培养基。灭菌后在培养基未凝固前加入特定量的样品，制成实验培养基。

3.2.2不同含量广东虫草酒对果蝇寿命影响的测定

以在基础培养基中分别添加0.5％，1％，5％的广东虫草酒样品饲养的果蝇为实验组，以在基础培养基中分别添加0.5％，1％，5％的基酒样品饲养的果蝇为对照组，以仅用基础培养基饲养的果蝇为空白对照组。选取8小时内羽化成虫的果蝇，用乙醚麻醉后挑选出雌雄果蝇，每支培养管内饲养10只果蝇，每组雌雄果蝇各设置3个重复，25℃恒温培养，每日观察并记录果蝇存活情况，统计果蝇平均寿命，半数死亡时间及最高寿命。

3.2.3不同含量广东虫草酒对果蝇体内SOD活性及MDA含量的影响

果蝇组织匀浆的制备：以在基础培养基中分别添加0.5％，1％，5％的广东虫草酒样品饲养的果蝇为实验组，以在基础培养基中分别添加0.5％，1％，5％的基酒样品饲养的果蝇为对照组，以仅用基础培养基饲养的果蝇为空白对照组。选取8小时内羽化成虫的果蝇，用乙醚麻醉后挑选出雌雄果蝇，每支培养管内饲养10只果蝇，每组雌雄果蝇各设置3个重复，25℃恒温培养30天后准确称量每组果蝇的质量，用0.15mol/L的生理盐水充分研磨配制成1％(w/V)的果蝇组织匀浆，并于4000r/min离心15min，取上清液备用。

果蝇组织中可溶性蛋白含量测定：按照试剂盒说明书进行操作，取1％果蝇组织匀浆50ul测定蛋白含量，每组设3个重复。按照下列公式计算样本蛋白浓度。

果蝇体内SOD活力的测定：按照试剂盒说明书进行操作，取50ul果蝇组织匀浆测定SOD活力，每组3个重复。按照下列公式计算SOD活力。

果蝇体内MDA含量的测定：按试剂盒说明书操作，取100ul果蝇组织匀浆测定MDA含量，每组3个重复。按照下列公式计算MDA含量。

3.2.4数据统计分析

实验数据使用SPSS Statistics 17.0数据处理软件进行分析，实验结果用平均值±标准差来表示。

3.3实验结果

3.3.1广东虫草酒对果蝇寿命的影响

广东虫草酒对雌果蝇寿命影响结果见表6。从表6的结果来看，对于雌果蝇来说，培养基中加入的基酒越多，果蝇的寿命越短，甚而低于空白对照组；而加入虫草后，其能抵消基酒带来的寿命下降，果蝇寿命普遍有所提高，其中0.5％和5％虫草酒的两组相比于同添加量基酒组对果蝇平均寿命和半数死亡时间有显著提高(p＜0.05)。而1％虫草酒组与1％基酒组相比，对果蝇平均寿命和半数死亡时间的提升不够显著，但其对果蝇最高寿命的提升具有显著性(p＜0.05)。

与空白对照组比较，当虫草酒添加量为0.5％时，果蝇平均寿命、半数死亡时间、最高寿命均有显著性提升(p＜0.05)，分别提高了18.36％、10.6％、8.46％，对雌果蝇寿命增加作用最强。

表6不同处理对雌果蝇寿命的影响

广东虫草酒对雄果蝇寿命影响结果见表7。从表7来看对于雄果蝇来说，培养基中加入基酒越多，果蝇的寿命越长。而加入虫草酒后，果蝇寿命有所提高，加入量越多，果蝇寿命越长。相同添加量的虫草酒组和基酒组相比，1％，5％添加量的虫草酒组与基酒组相比对最高寿命有显著提升(p＜0.05)。在供试范围内，当虫草酒添加量为5％时，果蝇平均寿命、半数死亡时间和最高寿命均最高，且与空白对照组比较有显著性差异(p＜0.05)，分别提高了16.38％、10.05％和10.8％，对雄果蝇寿命增加作用最强。

表7不同处理对雄果蝇寿命的影响

综上来看，广东虫草酒对果蝇寿命有提升作用。对于雌果蝇，加入0.5％的虫草酒时其寿命提升最高，对于雄果蝇，加入5％的虫草酒时其寿命提升最高。3.3.2广东虫草酒对果蝇过氧化物歧化酶(SOD)活性的影响

结果见表8。与空白对照相比，广东虫草酒组对雌雄果蝇的SOD活力均有提升，当虫草酒添加量为0.5％时对雌果蝇效果显著(P＜0.05)，当添加量为5％时对雄果蝇效果显著(P＜0.05)。

表8不同处理对果蝇SOD活力的影响

3.3.3广东虫草酒对果蝇体内丙二醛(MDA)含量的影响

结果见表9。与空白对照相比，广东虫草酒组对雌雄果蝇的MDA含量均有降低，当虫草酒添加量为0.5％时对雌果蝇降低效果显著(P＜0.05)，当添加量为5％时对雄果蝇降低效果显著(P＜0.05)。

表9不同处理对果蝇MDA含量的影响

在对果蝇寿命影响方面，0.5％添加量的广东虫草酒显著提高了雌果蝇的平均寿命、半数死亡时间和最高寿命(P＜0.05)，分别比空白对照组提高了18.36％、10.6％、8.46％；5％添加量的广东虫草酒显著提高了雄果蝇的平均寿命、半数死亡时间和最高寿命，分别比空白对照组提高了16.38％、10.05％和10.8％。果蝇生存实验结果阳性。

在抗氧化作用方面，0.5％添加量的广东虫草酒显著提高了雌果蝇体内SOD活力，显著降低了雌果蝇体内MDA含量，与空白对照相比分别提升和降低了11.35％和10.44％；5％添加量的广东虫草酒显著提高了雄果蝇体内SOD活力，降低了雄果蝇体内MDA含量，与空白对照比较分别提升和降低了11.78％和20.72％。SOD活性和MDA含量指标为阳性。

综合SOD活力和MDA含量的结果来看，广东虫草酒能提升SOD活力并降低MDA含量，表明广东虫草酒具有抗氧化作用。其中0.5％添加量的广东虫草酒对雌果蝇具有较高的抗氧化作用；而对于雄果蝇，5％添加量的广东虫草酒抗氧化作用更显著。

以上试验结果说明：广东虫草酒具有延缓衰老、抗氧化的作用。

0.5％，1％，5％的虫草酒添加量对应的人体每日推荐量(以体重60kg计)分别为15ml，30ml，150ml。根据该试验结果，推荐女性每日饮用约15ml，男性每天饮用约150ml。

4、广东虫草酒成分研究

4.1材料和方法

4.1.1材料：

对照酒为同种的白酒。

4.2方法

4.2.1气质联用分析条件

样品处理方法：准确量取5mL虫草药酒样品至20mL顶空样品瓶中，使用顶空瓶盖将其密封。然后将顶空瓶放入60℃水浴中，用固相微萃取SPME纤维头吸附20min，最后在230℃进样口解析5min进行气质联用分析。对照酒同样处理。

仪器分析条件：采用Agilent公司GC7890B-MS7000C进行样品检测分析，GC进样口温度230℃，10:1分流模式，载气为高纯氦气。柱温箱升温程序：起始温度40℃保持2min，以8℃/min速率升温至120℃；然后以6℃/min速率升温至150℃，保持2min；再10℃/min速率升温至230℃，保持8min。样品运行时间35min。

质谱条件

MS条件：EI电离源，离子源温度：230℃；四级杆温度为150℃；AUX-2温度为280℃。

4.2.2液相分析条件

样品处理：取对照酒和广东虫草酒分别用0.22μm微孔滤膜过滤，滤液置于进样瓶中，备用。

色谱条件：Agilent 1260II液相色谱仪配示差折光检测器(RID)；色谱柱：安捷伦ZORBAX Carbohydrate，5.0μm，4.6×150mm。

流动相：70％乙腈；流速：1.0mL/min；柱温：30℃；检测器温度：30℃；进样量：10μL。

4.3检测结果

4.3.1气质联用检测挥发性成分结果

结果见表10。

表10广东虫草酒(实验组酒)与基酒(茅台酒)主要挥发性成分比较

结果表明，本发明广东虫草酒含有多种酯类物质，特别是含有甲氧基四乙酸甘露醇酯、油酸乙酯和亚油酸乙酯等低挥发性酯类，这些成分都是基酒中所不含有的。低挥发性酯类在入口后，由于体温的加热作用逐渐挥发出来，因此香味更绵长柔和。

4.3.2液相色谱检测非挥发性成分结果

结果见图1(图1A为对照酒的色谱图，图1B为广东虫草酒的色谱图)和表11。

表11广东虫草酒(实验组酒)与基酒(茅台)主要非挥发性成分比较

结果分析；

(一)广东虫草酒与对照酒相比，其HPLC-RID指纹谱图发生了明显的变化；在相同的分析条件下，广东虫草酒HPLC-RID指纹谱图中的色谱峰的数量和面积明显增加。其中最为明显的是3.780min出现了较大的色谱峰，经与标准品对出，该色谱峰与甘露醇的出峰时间最为接近。甘露醇又称D-甘露糖醇，它具有令人愉快的甜味，甜度为蔗糖的0.55-0.65倍，且热量低、无毒副作用，在人体生理代谢中与胰岛素无关，不提高血糖值，因此可用作糖尿病人、肥胖病人的甜味剂。

本发明采用的广东虫草中甘露醇含量为20.89％，浸泡50天时广东虫草中的甘露醇会有异常的溶出，此时酒中甘露醇含量为0.36％，溶出率达到86.17％。而采用相同工艺制备的蝉花酒和蛹虫草酒中，虽然酒中也有甘露醇溶出，但溶出率不到30％，明显低于广东虫草中甘露醇的溶出，因此其口感明显逊色于本发明制备的广东虫草酒。

因此，本发明方法制备的广东虫草酒除了具有保健功效外，由于广东虫草中甘露醇的异常溶出，其口感也取得了很大提升，这一显著效果是蝉花和蛹虫草无法实现的。

(二)氨基酸是人体必须的营养成分，具报道在酱香型白酒中最高可达0.018g/L。本发明广东虫草酒中的氨基酸含量达到0.077％，是酱香型白酒中最高值的42.7倍。其中鲜味氨基酸(天冬氨酸、谷氨酸、甘氨酸、丙氨酸)的含量达0.0375％。在好酒中一般精氨酸多丙氨酸少，广东虫草酒正符合了这一规律。广东虫草酒含有特有的糖类和氨基酸等非挥发性成分(见图1、表11)。这些物质都是食品中重要风味物质，它们不仅给广东虫草酒增加了风味，而且调和了酒精的刺激性，使酒变的更绵柔更回甘。

实施例2

取广东虫草子实体，每500ml白酒中添加12g虫草，浸泡50天，过滤即得；所述白酒为贵州中心酿酒集团有限公司提供的茅台镇53°酱香型白酒。

实施例3

取广东虫草子实体，每500ml白酒中添加10g虫草，浸泡40天，过滤即得；所述白酒为贵州中心酿酒集团有限公司提供的茅台镇53°酱香型白酒。

实施例4

取广东虫草子实体，每500ml白酒中添加10g虫草，浸泡60天，过滤即得；所述白酒为贵州中心酿酒集团有限公司提供的茅台镇53°酱香型白酒。

实施例5

取广东虫草子实体，每500ml白酒中添加10g虫草，浸泡80天，过滤即得；所述白酒为贵州中心酿酒集团有限公司提供的茅台镇53°酱香型白酒。

实施例6

取广东虫草子实体，每500ml白酒中添加12g虫草，浸泡40天，过滤即得；所述白酒为贵州中心酿酒集团有限公司提供的茅台镇53°酱香型白酒。

实施例7

取广东虫草子实体，每500ml白酒中添加12g虫草，浸泡60天，过滤即得；所述白酒为贵州中心酿酒集团有限公司提供的茅台镇53°酱香型白酒。

实施例8

取广东虫草子实体，每500ml白酒中添加12g虫草，浸泡80天，过滤即得；所述白酒为贵州中心酿酒集团有限公司提供的茅台镇53°酱香型白酒。

Claims

1.一种广东虫草酒，其特征在于，所述广东虫草酒中广东虫草与基酒的重量体积比(g/ml)为1：(40～50)。

2.如权利要求1所述的广东虫草酒，其特征在于，广东虫草与基酒的重量体积比(g/ml)为1：50。

3.如权利要求1所述的广东虫草酒，其特征在于，所述广东虫草酒中多糖含量高于0.05％，甘露醇含量高于0.2％。

4.如权利要求3所述的广东虫草酒，其特征在于，所述广东虫草酒中多糖含量高于0.1％，甘露醇含量高于0.3％。

5.如权利要求1所述的广东虫草酒，其特征在于，所述广东虫草酒中鲜味氨基酸的含量高于0.02％。

6.如权利要求5所述的广东虫草酒，其特征在于，所述广东虫草酒中鲜味氨基酸的含量高于0.03％。

7.如权利要求1所述的广东虫草酒，其特征在于，将广东虫草浸泡于酒中，所述浸泡时间为40～80天。

8.一种食用酒的制备方法，其特征在于，所述方法包括在酒中加入广东虫草。

9.如权利要求8的制备方法，其特征在于，在酒中加入广东虫草浸泡40～80天；优选的，浸泡40～60天；更优选的，浸泡45～55天；更优选的，浸泡48～52天；最优选的，浸泡50天。

10.广东虫草在提高白酒风味和/或口感方面的应用。