CN111227144A - 一种桦褐孔菌复合饮品及其制备方法 - Google Patents

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Abstract

本发明公开了一种桦褐孔菌复合饮品及其制备方法，属于保健食品加工技术领域。本发明以药用价值全面的桦褐孔菌、罗汉果及营养丰富的刺梨为主要原料，添加浓缩苹果汁、低聚果糖、菊粉、抗性糊精、L‑阿拉伯糖中的一种或多种其他原料，制成风味良好，具有增强免疫力、辅助降血糖功能的桦褐孔菌复合饮品。该复合饮品中总黄酮含量≥200mg/Kg，粗多糖含量≥260mg/L，维生素C含量≥100mg/L。

Description

一种桦褐孔菌复合饮品及其制备方法
技术领域
本发明属于保健食品加工技术领域，具体涉及一种桦褐孔菌复合饮品及其制备方法。
背景技术
桦褐孔菌属于多孔菌科褐卧孔菌属,主要分布于北半球45-50°的地区,在我国主要分布于黑龙江、吉林省长白山等地。生于白桦、银桦、榆树或赤杨等活立木的树皮下,或砍伐后树木的枯干上。桦褐孔菌是生长在寒带的木腐菌,可引起白桦、银桦、榆树和赤杨等的白腐。在木材中的桦褐孔菌菌丝在零下40℃也不会冻死,是极耐寒的种类(黄年来俄罗斯神秘的民间药用真菌—桦褐孔菌.中国食菌,2002.21(4):7-8)。桦褐孔菌水提物具有抗肿瘤、抗艾滋病病毒（桦褐孔菌的水提取物有抑制一型人类免疫缺陷病毒HIV-I蛋白酶的活性）、增强免疫力、降糖作用，在民间广泛应用桦褐孔菌防治胃癌、肝癌、肠癌等癌症。因此桦褐孔菌具有良好的药用开发价值。
罗汉果为葫芦科植物，是“药食同源”的天然产物之一。现代医药学研究发现罗汉果含有丰富的糖甙，是一种天然降糖减肥食品原料，动物实验发现有很好降血糖效果，可以用来辅助治疗糖尿病。其水提物有抗衰老、抗癌及益肤美容作用，有降血脂及减肥作用，可辅助治疗高脂血症，改善肥胖者的形象。其主要活性成分是天然甜味物质——罗汉果甜苷，具有爽口的甜味，甜度约为白糖的300倍，热量极低，是口感最好的天然甜味剂之一。主要分布于广西、广东、福建、江西、贵州，广西桂北地区是罗汉果的主产区,其产量占世界产量80%以上（江苏新医学院.中药大辞典[M]上海:上海科学技术出版杜,1996,1356～1357）。
刺梨是蔷薇科多年生落叶灌木缫丝花的果实，其碳水化合物含量较低，碳水化合物的总量约为占果实的13%，主要成分为纤维素；含有蛋白质及氨基酸，其中含有8种人体必需氨基酸；富含维生素及单宁类，主要有维生素C、维生素P，其中维生素C含量较高。营养学家罗登义等检测发现，每100克刺梨果肉含维生素C 2075～2725 mg，是苹果的800倍、猕猴桃的10倍，可以说是“维生素C之王”；含有 Fe、Zn、Se等10种人体必需微量元素。因此刺梨营养价值非常高，具有增强机体的免疫功能等作用。富含天然维生素C可以起到有效的降糖作用，美国塔夫兹大学研究人员发现维生素C通过提高高密度脂蛋白（HDL）降低低密度脂蛋白（LDL）控制糖尿病患者的脂蛋白代谢异常。刺梨富含维生素P，它是一种黄酮类化合物，具有抑制醛糖还原酶的作用，可以预防和缓解糖尿病病变和并发症（陈执中.天然药物抗糖尿病活性成分的研究开发进展[J].中国民族民间医药杂志，2004，66：3）。
本发明甄选药用价值全面的桦褐孔菌、罗汉果及营养全面的刺梨为主要原料，添加浓缩苹果汁、低聚果糖、菊粉、抗性糊精、L-阿拉伯糖中的一种或多种其他原料，制成风味良好，具有增强免疫力、辅助降血糖功能的桦褐孔菌复合饮品。
发明内容
本发明的目的在于一种桦褐孔菌复合饮品及其制备方法。本发明以药用价值全面的桦褐孔菌、罗汉果及营养丰富的刺梨为主要原料，添加浓缩苹果汁、低聚果糖、菊粉、抗性糊精、L-阿拉伯糖中的一种或多种其他原料，制成风味良好，具有增强免疫力、辅助降血糖功能的桦褐孔菌复合饮品。
为实现上述目的，本发明采用如下技术方案：
一种桦褐孔菌复合饮品的制备方法，包括以下步骤：
（1）原料预处理：挑选罗汉果成熟果干果、桦褐孔菌菌块洗去浮土杂质后使用，称取桦褐孔菌3～5份，罗汉果干果2～10份，原料按比例进行破碎；
（2）原料萃取：将破碎完成的桦褐孔菌罗汉果粉末混合物，按粉末混合物和软化水质量比1：10～25萃取，控制萃取温度50～95℃，开启萃取搅拌装置，控制萃取时间20～40min/次，每锅萃取次数1～3次，粗过滤、冷却至缓存罐合并料液；
（3）离心、过滤：将萃取液从缓存罐打到离心机进行离心，离心速率为6000 r/min～7000r/min，离心完成后，将离心料液打到膜分离系统储罐，选择0.05～1μm的膜组件进行过滤；
（4）低温浓缩、灭菌：将滤液进行低温浓缩，控制浓缩温度≤50℃，浓缩至Brix:10～30%；将浓缩液通过杀菌设备，控制灭菌温度：100～140℃、时间：15S～8min，杀菌后灌装或灌装后灭菌；
（5）浓缩液调配及灭菌灌装：步骤（4）灭菌后的浓缩液10份～40份与刺梨果汁0.1份～5份及其他原料进行浓缩液调配制成饮料浓浆，控制调配完成的饮料浓浆Brix：40～60%，控制灭菌温度：121～140℃、保温时间：15-30S，灭菌后灌装于复合无菌袋中，常温存储及运输；
（6）饮料浓浆稀释：对饮料浓浆进行产品的稀释调配，控制稀释液的Brix：3～5.0%；
（7）饮品灭菌、灌装：将饮料浓浆稀释液进行终端产品灭菌，控制灭菌温度：110-125℃，保温时间：15-30S，然后灌装成品；
（8）成品检测：成品饮品中总黄酮、多糖、维生素C含量的检测。
上述步骤（5）中所述其他原料为浓缩苹果汁25份～60份、低聚果糖10份～45份、菊粉10份～40份、抗性糊精10份～45份、L-阿拉伯糖10份～40份中的一种或多种。
本发明与现有技术相比具有以下优点：
（1）采用相对低温的萃取方式，保留更多的黄酮类及多糖类，终端饮品总黄酮含量≥200mg/Kg,粗多糖含量≥260mg/L，维生素C含量≥100mg/L。含有桦褐孔菌、罗汉果及刺梨的黄酮、粗多糖及维生素C等营养素，产品具有一定的辅助降血糖及增强免疫力的保健作用；
（2）本发明的桦褐孔菌复合饮品使用的桦褐孔菌罗汉果浓缩液经过灭菌保温之后，产生一种良好的感官风味，使得产品不添加白砂糖、香精色素、食品添加剂，具备较好的口感，本产品是一款低糖饮品（总糖＜5%），更符合绿色天然健康的要求。
（3）本发明的桦褐孔菌复合饮品其制备方法在成品灌装生产过程中简便快捷、工艺稳定、不易出错、成本节约。
附图说明：
图1芦丁标准曲线。
图2葡萄糖标准曲线。
图3维生素C标准曲线。
具体实施方式
为了使本发明所述的内容更加便于理解，下面结合具体实施方式对本发明所述的技术方案做进一步的说明，但是下述的实例仅仅是本发明其中的例子而已，并不代表本发明所限定的权利保护范围，本发明的权利保护范围以权利要求书为准。
1、总黄酮测定采用紫外可见分光光度计法：
1）原理：在弱碱性条件下，溶于乙醇或甲醇的黄酮类化合物与三价铝离子结合生成红色络合物，可在510nm波长附近产生最大吸收。在一定浓度范围内，其浓度与吸收度符合朗伯比尔定律。
2）试剂:芦丁（C27H30O16）标准品；其他试剂均为分析纯。
3）芦丁标准曲线：回归方程为Y=0.01371x-0.03249，相关系数为r=0.9957，【图1】。
4）试验结果计算：试样中总黄酮含量（以芦丁计）按式①计算：
Figure DEST_PATH_IMAGE001
X——试样中总黄酮（以芦丁计），单位为毫克每克（mg/g）；
M=试样的质量，单位为克（g）；
C=回归方程求出的供试样中总黄酮的物质浓度，单位为微克每毫升（ug/mL）；
V1=试样经处理后定容的体积，单位为毫升（mL）；
V2=样品供试液总体积，单位为毫升（mL）；
V3=测定时使用的样品液，单位为毫升（mL）。
终端产品在回归方程中的浓度C带入公式①中，测得终端产品总黄酮含量（以芦丁计）。
2、多糖含量的测定：紫外-可见光分光光度计法
1）实验原理：多糖在浓硫酸作用下，先水解成单糖，并迅速脱水生成糖醛衍生物，与苯酚反应生成橙黄色溶液，在490nm处有特征吸收，与标准系列比较定量。
2）实验试剂：浓硫酸（H2SO4）,ρ=1.84g/ml等试剂均为分析纯。
3）葡萄糖标准曲线：葡萄糖标品与吸光度呈现良好的线性关系，得到回归方程为Y=5.2442x-0.0793，相关系数为r=0.9932，【图2】。
4）多糖含量计算公式：
Figure DEST_PATH_IMAGE002
式中：P——样品粗多糖含量，（mg/mL）；
M——从标准曲线上查得样品测定液中含糖量，单位为毫克（mg）；
V1——样品定容体积，单位为毫升（mL）；
V2——比色测定时所移取样品测定液的体积，单位为毫升（mL）；
V3——样品醇沉时吸取体积，单位为毫升（mL）；
0.9——为葡萄糖转化为粗多糖的系数。
5）测定结果：终端产品在标准曲线上查得样品测定液中含糖量M带入公式，计算得到终端产品粗多糖（以葡萄糖计）含量。
3、维生素C含量的测定：高效液相色谱法：
1）检测方法及步骤：参照GB 5009.86 食品中抗坏血酸的测定第一法；
2）L-抗坏血酸标准曲线：L-抗坏血酸标品浓度与峰面积呈现良好的线性关系，得到回归方程为Y=75.712x+8.5578，相关系数为r=0.9991，【图3】；
3）测定结果：根据被测定试验峰面积，带入回归方程，计算得到终端产品维生素C（以L-抗坏血酸计）含量。
实施例1
一种桦褐孔菌复合饮品的制备方法：
（1）原料预处理：挑选罗汉果成熟果干果、桦褐孔菌菌块洗去浮土杂质后使用，称取桦褐孔菌5份，罗汉果干果7份，原料按比例进行破碎；
（2）原料萃取：将破碎完成的桦褐孔菌罗汉果粉末混合物按粉末和软化水质量比1：15萃取，控制萃取温度70℃，开启萃取搅拌装置，控制萃取时间20min/次，萃取2次，粗过滤、冷却至缓存罐合并料液；
（3）离心、过滤：将萃取液从缓存罐打到离心机进行离心，离心速率为6000 r/min，离心完成后，将离心料液打到膜分离系统储罐，选择0.05μm的膜组件进行过滤，过膜后的滤液无肉眼可见外来杂质；
（4）低温浓缩、灭菌保温：将滤液进行低温浓缩，控制浓缩温度50℃，将浓缩液浓缩至Brix:10±1.0%，将浓缩液灌装后通过杀菌设备（杀菌温度：115℃时间：5min）灭菌保温；
（5）浓缩液调配及灭菌灌装：步骤（4）灭菌后的浓缩液40份，刺梨果汁2.0份，浓缩苹果汁60份进行浓缩液调配制成饮料浓浆。控制调配完成的饮料浓浆Brix：50±1.0%，控制灭菌条件为温度：138℃，保温时间：30S，然后灌装到无菌袋中，常温存储及运输；
（6）饮料浓浆稀释：对饮料浓浆进行产品的稀释调配，控制稀释液的Brix：4.8%；
（7）饮品灭菌、灌装：将饮料浓浆稀释液进行终端产品灭菌，控制灭菌温度：121℃，保温时间：15S，然后灌装成品；
（8）成品检测：成品饮品中总黄酮、多糖、维生素C含量的检测。
实施例2
一种桦褐孔菌复合饮品的制备方法，包括以下步骤：
（1）原料预处理：挑选罗汉果成熟果干果、桦褐孔菌菌块洗去浮土杂质后使用，称取桦褐孔菌4份，罗汉果干果8份，原料按比例进行破碎；
（2）原料萃取：将破碎完成的桦褐孔菌罗汉果粉末混合物按粉末和软化水质量比1：25萃取，控制萃取温度80℃，开启萃取搅拌装置，控制萃取时间30min/次，每锅萃取次数1次，粗过滤、冷却至缓存罐缓存；
（3）离心、过滤：将萃取液从缓存罐打到离心机进行离心，离心速率为7000r/min，离心完成后，将离心料液打到膜分离系统储罐，选择0.1μm的膜组件进行过滤，过膜后的滤液无肉眼可见外来杂质；
（4）低温浓缩、灭菌保温：将滤液进行低温浓缩，控制浓缩温度35℃,将浓缩液浓缩至Brix:20±1.0%，将浓缩液通过杀菌设备（杀菌温度：138℃时间：30S）后灌装于无菌袋中，可将浓缩液制成原料备用；
（5）浓缩液调配及灭菌灌装：步骤（4）灭菌后的浓缩液30份，刺梨果汁5份，低聚果糖45份进行浓缩液调配制成饮料浓浆；控制调配完成的饮料浓浆Brix：60±1.0%，控制灭菌条件为温度：130℃，保温时间：30S，然后灌装到无菌袋中，常温存储及运输；
（6）饮料浓浆稀释：对饮料浓浆进行产品的稀释调配，控制稀释液的Brix：4.6%；
（7）饮品灭菌、灌装：将饮料浓浆稀释液进行终端产品灭菌，控制灭菌温度：115℃，保温时间：30S，然后灌装成品；
（8）成品检测：成品饮品中总黄酮、多糖、维生素C含量的检测。
实施例3
一种桦褐孔菌复合饮品的制备方法，包括以下步骤：
（1）原料预处理：挑选罗汉果成熟果干果、桦褐孔菌菌块洗去浮土杂质后使用，称取桦褐孔菌3份，罗汉果干果5.5份，原料按比例进行破碎；
（2）原料萃取：将破碎完成的桦褐孔菌罗汉果粉末混合物按粉末和软化水质量比1：10萃取，控制萃取温度50℃，开启萃取搅拌装置，控制萃取时间30min/次，萃取3次，粗过滤、冷却后至缓存罐合并料液；
（3）离心、过滤：将萃取液从缓存罐打到离心机进行离心，离心速率为6500 r/min，离心完成后，将离心料液打到膜分离系统储罐，选择1μm的膜组件进行过滤，过膜后的滤液无肉眼可见外来杂质；
（4）低温浓缩、灭菌：将滤液进行低温浓缩，控制浓缩温度40℃，将浓缩液浓缩至Brix:30±1.0%，将浓缩液通过杀菌设备（杀菌温度：130℃时间：15S）后灌装于无菌袋中，可将浓缩液制成原料备用；
（5）浓缩液调配及灭菌灌装：步骤（4）灭菌后的浓缩液20份，刺梨果汁3份，低聚果糖10份、菊粉10份、抗性糊精10份、L-阿拉伯糖10份进行浓缩液调配，制成饮料浓浆；控制调配完成的饮料浓浆Brix：40±1.0%，控制灭菌条件为：温度130℃，保温时间15S，然后灌装到无菌袋中，常温存储及运输；
（6）饮料浓浆稀释：对饮料浓浆进行稀释调配，控制稀释液的Brix：5.0%；
（7）饮品灭菌、灌装：将饮料浓浆稀释液进行终端产品灭菌，控制灭菌温度：110℃，保温时间：30S，然后灌装成品；
（8）成品检测：成品饮品中总黄酮、多糖、维生素C含量的检测。
将实施例3制得的桦孔菌复合饮品进行辅助降血糖功能动物试验，各试验结果如下：
1 材料和方法
1.1样品：桦褐孔菌复合饮品，人体口服推荐剂量为每日250g（可溶性固形物含量计12.5g），以每人60Kg体重计算，折合剂量0.208g/Kg.bw。
实验动物：SPF级昆明种雄性小鼠90只，体重为24-28g,其中70只动物制造高血糖模型，用于测定样品对高血糖模型动物血糖的影响，20只动物用于样品对正常动物血糖影响实验。饲料由供应动物单位提供。
实验环境条件：为屏障环境，实验期间温度23-24℃，湿度52-56%。
剂量选择及样品配制：据人体口服推荐量，设桦褐孔菌复合饮品低、中、高剂量分别为1.04g/kg.bw、2.08g/kg.bw、6.24g/kg.bw（分别相当于人体推荐剂量的5、10、30倍，以可溶性固形物含量计）。分别取实施例3中桦褐孔菌复合饮品冻干样品10.4g、20.8g、62.4g分别定容至200mL,配制成低、中、高所需浓度。每天灌胃一次，灌胃体积为0.2mL/10g.bw,对照组给予等体积的剂量，连续30天后进行指标测定。
主要仪器、器材和试剂：动物称重天平、稳豪型血糖仪，由美国强生集团理康公司生产，试纸由同一产家提供。
实验方法：
1.6.1降低空腹血糖实验
1.6.1.1高血糖模型动物
小鼠禁食24小时候，尾静脉注射四氧嘧啶（46mg/kg.bw），5天后禁食5小时，测血糖值，血糖值10-25mmol/L为高血糖模型成功动物。选高血糖成功动物40只，随机分为一个模型对照组和三个剂量组（组间差不大于1.1mmol/L）。剂量组给予不同浓度受试液，模型对照组给予溶剂，连续30天，禁食5小时测空腹血糖值，比较各组动物血糖值及血糖下降百分率。
血糖下降百分率=（实验前血糖值-实验后血糖值）/实验前血糖值×100%。
正常动物
20只小鼠按进食5小时的血糖水平分组，随机分为1个对照组和1个受试样品组（高剂量组），高剂量组给予受试液，对照组给予溶剂，连续30天，禁食5小时测空腹血糖值，比较各组动物血糖值及血糖下降百分率。
血糖下降百分率=（实验前血糖值-实验后血糖值）/实验前血糖值×100%。
糖耐量实验
高血糖模型成功动物禁食5小时，剂量组给予不同浓度受试液，模型对照组给予同体积溶剂，15-20分钟后经口给予葡萄糖2.0g/kg.bw,测定给葡萄糖0、0.5、2小时后的血糖值，观察模型对照组与受试样品组给葡萄糖后各时点血糖曲线下面积的变化。
血糖曲线下面积=0.25×（0小时血糖值+4×0.5小时血糖值+3×2小时血糖值）
1.7实验数据处理
用Excel、Spss软件进行数据转化和统计分析。用Spss软件统计比较时，先对数据进行方差齐性检验，若方差齐，采用单因素方差分析进行总体比较，再用Dunnett法进行多个剂量组与一个对照组均数间的两两比较。若方差不齐，则对原始数据进行进行适当的变量转换，满足方差齐性检验后，用转换后的数据进行统计，若变量转换后仍未达到方差齐的目的，改用秩和检验进行统计，发现总体比较有差异，则采用不要求方差齐性的Tamhane’sT2检验进行两两比较。
结果判定
空腹血糖和糖耐量二项指标中一项指标阳性，且对正常动物空腹血糖无影响，即可判定该受试样品辅助降血糖功能动物试验结果阳性。
结果
2.1桦褐孔菌复合饮品对正常小鼠的高血糖模型小鼠体重的影响
见表1-表2。高剂量对正常小鼠、各剂量对高血糖模型小鼠各时点体重无显著影响（P＞0.05）
表1桦褐孔菌复合饮品对正常小鼠体重的影响
Figure DEST_PATH_IMAGE003
Figure DEST_PATH_IMAGE004
表2 桦褐孔菌复合饮品对高血糖模型小鼠体重的影响（±s，g）
Figure DEST_PATH_IMAGE005
2.2桦褐孔菌复合饮品对正常小鼠空腹血糖的影响
见表3。经口给予小鼠高剂量的桦褐孔菌复合饮品30天，对正常动物空腹血糖值、血糖下降百分率无明显影响（P＞0.05）
表3桦褐孔菌复合饮品对正常小鼠空腹血糖的影响
Figure DEST_PATH_IMAGE006
Figure DEST_PATH_IMAGE007
2.3桦褐孔菌复合饮品对高血糖模型动物空腹血糖的影响
见表4。经口给予小鼠不同剂量的桦褐孔菌复合饮品30天，各剂量组小鼠空腹血糖实测值与对照组比较无显著性差异（P＞0.05）。各剂量组小鼠血糖下降百分率与对照组比较有增高趋势，高剂量组与对照组比较，差异具有显著性（P＜0.05）。
表4 桦褐孔菌复合饮品对高血糖模型动物空腹血糖的影响
Figure DEST_PATH_IMAGE008
Figure DEST_PATH_IMAGE009
2.4桦褐孔菌复合饮品对高血糖模型动物糖耐量的影响
见表5。经口给予小鼠不同剂量的桦褐孔菌复合饮品30天，各剂量组小鼠血糖曲线下面积与对照组比较无显著性差异（P＞0.05）。
表5 桦褐孔菌复合饮品对高血糖模型动物耐糖量的影响
Figure DEST_PATH_IMAGE010
Figure DEST_PATH_IMAGE011
3 小结
经口给予小鼠1.04g/kg.bw、2.08g/kg.bw、6.24g/kg.bw剂量（以可溶性固形物含量计）的桦褐孔菌复合饮品30天，6.24g/kg.bw剂量组高血糖模型小鼠血糖下降百分率与对照组比较有增高，差异具有显著性（P＜0.05）；对高糖模型小鼠空腹血糖实测值、血糖曲线下面积无明显影响（P＞0.05）；对正常小鼠空腹血糖无明显影响（P＞0.05）。因此该饮品对动物具有辅助降血糖作用。
实施例1-3制备所得桦褐孔菌复合饮品终端产品的检测结果见表6。由表6的结果知：本发明的方法制备所得桦褐孔菌复合饮品中总黄酮含量≥200mg/Kg，多糖含量≥260mg/L，维生素C含量≥100mg/L，重金属及微生物检测均在可控范围。
表6
Figure DEST_PATH_IMAGE012
以上所述仅为本发明的较佳实施例，凡依本发明申请专利范围所做的均等变化与修饰，皆应属本发明的涵盖范围。

Claims (3)

1.一种桦褐孔菌复合饮品的制备方法，其特征在于，包括以下步骤：
（1）原料预处理：挑选罗汉果成熟果干果、桦褐孔菌菌块洗去浮土杂质后使用，称取桦褐孔菌3～5份，罗汉果干果2～10份，原料按比例进行破碎；
（2）原料萃取：将破碎完成的桦褐孔菌罗汉果粉末混合物，按粉末混合物和软化水质量比1：10～25萃取，控制萃取温度50～95℃，开启萃取搅拌装置，控制萃取时间20～40min/次，每锅萃取次数1～3次，粗过滤、冷却至缓存罐合并料液；
（3）离心、过滤：将萃取液从缓存罐打到离心机进行离心，离心速率为6000 r/min～7000r/min，离心完成后，将离心料液打到膜分离系统储罐，选择0.05～1μm的膜组件进行过滤；
（4）低温浓缩、灭菌：将滤液进行低温浓缩，控制浓缩温度≤50℃，浓缩至Brix:10～30%；将浓缩液通过杀菌设备，控制灭菌温度：100～140℃，时间：15S～8min杀菌后灌装或灌装后灭菌；
（5）浓缩液调配及灭菌灌装：步骤（4）灭菌后的浓缩液10份～40份与刺梨果汁0.1份～5份及其他原料进行浓缩液调配制成饮料浓浆，控制调配完成的饮料浓浆Brix：40～60%，控制灭菌温度：121～140℃，保温时间：15-30S灭菌后灌装于复合无菌袋中，常温存储及运输；
（6）饮料浓浆稀释：对饮料浓浆进行产品的稀释调配，控制稀释液的Brix：3～5.0%；
（7）饮品灭菌、灌装：将饮料浓浆稀释液进行终端产品灭菌，控制灭菌温度：110-125℃，保温时间：15-30S，然后灌装成品；
（8）成品检测：成品饮品中总黄酮、多糖、维生素C含量的检测。
2.根据权利要求1所述的一种桦褐孔菌复合饮品的制备方法，其特征在于：步骤（5）中所述其他原料为浓缩苹果汁25份～60份、低聚果糖10份～45份、菊粉10份～40份、抗性糊精10份～45份、L-阿拉伯糖10份～40份中的一种或多种。
3.一种如权利要求1-2所述方法制备所得的桦褐孔菌复合饮品。
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