CN101735644B - 一种紫甘薯花色苷的提取方法 - Google Patents

Abstract

本发明公开了一种紫甘薯花色苷的提取方法。将紫甘薯进行微波烘烤置熟后，然置于酸性电解水中反复匀浆萃取，再经过滤、分离和干燥处理，制成花色苷粉末。采用该方法提取色素的效率高，工艺简单，成本低，且绿色环保；得到的紫甘薯花色苷提取物颜色鲜艳、稳定；提取物中总黄酮、总酚、总糖和总单体花色苷等有效成份含量较高。本发明制备的紫甘薯花色苷提取物，在体外具有较强的还原力、消除自由基能力和抗脂质过氧化作用；在体内具有非常明显的抗氧化作用，能显著延缓机体的衰老。这种紫甘薯花色苷提取物可广泛应用于食品着色剂和抗衰老保健食品等领域。

Description

一种紫甘薯花色苷的提取方法

技术领域

本发明涉及一种紫甘薯花色苷的提取工艺。

背景技术

花色素(anthocyanidin，又称花青素)，是自然界中一类广泛存在于植物中的水溶性天然色素，属黄酮类化合物，是植物花和果实中的一种主要呈色物质。花色素不稳定，通常与各种糖结合形成不同的糖配体，即花色苷(anthocyanins)。与花色素成苷的糖主要有葡萄糖、半乳糖，阿拉伯糖、木糖、鼠李糖等和由这些单糖构成均匀或不均匀二糖和三糖。其中，3-单糖苷、5-双糖苷、3，5-二糖苷和3，7-二糖苷最为常见。2003年报道这种天然存在的花色素苷有400多种(Kong et al.Phytochemistry，2003，64：923-933)，更近(2006年)的报道已达到550多种。目前，用于提取花青素的主要原料有蓝莓、桑椹、葡萄皮、黑加仑、紫玉米、紫甘蓝等。而从紫甘薯中提取的花色苷具有含量高、性能比较稳定、受光照和温度影响较小等优点，已成为一种其他果品无法替代的重要的天然食用色素源。

紫甘薯是甘薯特有品种类型，在细胞液泡中存在大量的红色素((Odake et al，Phytochemistry.31(6)：2127-2130，1992)，故甘薯肉呈紫红色。80年代初我国就引进日本的“山川紫”和“玫瑰紫”等一些紫苷薯品种。90年代后期，日本又培育出紫甘薯新品种Ipomoea batatas cultivar Ayamurasaki。紫苷薯红色素的主要成分是花青素(cyanidin，或称矢车菊素)及甲基花青素(paeondin，或称芍药素)形成糖苷后的酰基化衍生物。目前有十几种紫甘薯花色苷组分已经被分离和鉴定。其中，有8种花色素糖苷的结构是属于被咖啡酸、阿魏酸和对羟基苯甲酸酰化的花青素(Yoshinaga et al.Breeding Science.50：59-64，2000)。最新研究表明，紫甘薯花色苷具有抗氧化清除自由基的作用(Kano et al，Biosci BiotechnolBiochem，69：979-88，2005)；抗突变(Yoshimoto et al，Biosci BiotechnolBiochem.65：1652-5，2001Jul；)、抗感冒病毒(Hayashi et al，Food Sci TechnolRes，9：242-4，2003)、增强记忆力(Wu et al，Neurobiology of Learning andMemory 90：19-27，2008)、提高肝功能(Han et al，Biosci Biotechnol Biochem，71(5)：1356-9，2007)、降低高血糖(Matsui et al，J Agric Food Chem.49：1948-51，2001)，抗高血压(Shindo et al，J Nutr Sci Vitaminol，53，90-3，2007)；诱导癌细胞凋亡，抑制癌生长(Hayashi et al，Food Sci Technol Res，12：22-6，2006)等功能。

紫甘薯花色苷分子中存在高度的分子共轭体系，有酸性与碱性基团，因而该色素易溶于水、甲醇、乙醇等极性溶剂和酸性溶剂。因此，目前大多采用酸性溶剂法提取紫甘薯色素，常用的酸性提取溶剂有乙酸、盐酸、硫酸、甲酸、柠檬酸、酸化乙醇、酸化水溶液等。提取紫甘薯花色苷的研究日本较早，常将紫甘薯先用热水处理使多酚氧化酶失活后，切成条状(0.4×0.4cm)用5％醋酸提取，过滤液经反相渗透膜纯化与浓缩，再用双滤法除去醋酸。利用该法制备的色素不易降解或酶解，且得率高、品质好，但提取成本也较高。

在本发明作出之前，有文献(李洪民，[J]中国甘薯，1994(7))报道采用沸乙醇提取紫甘薯花色苷，但此法对色素得率和淀粉品质有一定影响。中国发明专利(公开号CN1304960A、CN1803933A和CN1834163A)公开了将粉碎的紫甘薯用0.5％柠檬酸酸化乙醇浸提2次，或者将粉碎、压榨后的薯汁用酸化乙醇浸提2次；随后过滤、浓缩、再经树脂纯化，最后喷雾干燥或真空干燥制成粉末。实际上，在此加工过程中使用了氢氧化钠中和柠檬酸，故得到的紫甘薯花色苷提取物中含有少量的柠檬酸钠盐。也有将切成小片状的紫甘薯用5％柠檬酸水溶液浸泡后经压滤机压滤后，直接干燥制成粉末(CN1460694A)或者再经超滤膜反复超滤而制备花色苷提取物(CN1807516A)。通过微生物发酵和酶催化技术使淀粉转化为酒精，再用超滤膜从发酵液中分离紫甘薯红色素(CN 101255453A)。而钱生球等用柠檬酸酸化水(pH4.0)提取，抽提液经纳米膜纯化，反渗透浓缩，再用β-环糊精吸附制成了紫红色粉末(CN101186757)。上述这些紫甘薯红色素的提取方法大都是采用紫甘薯粉碎后用柠檬酸酸化水溶液或酸化乙醇溶液浸提，然后过滤除杂质，离心沉淀收集淀粉，而离心液用膜分离的方法制备紫甘薯花色苷。这些方法缺点是紫甘薯酸化水浸提时，其水溶液中存在多酚氧化酶，在膜分离的离心液中存在多元酚，两者易发生酶促反应而引起紫甘薯色素变色、色价偏低，从而影响紫甘薯色素的质量与应用范围。在公开号为CN101235215A的中国发明专利中，公开了另一种加入多酚氧化酶抑制剂的方法，提取清液中加入CuCl₂沉淀多元酚、鞣质等，再进行膜分离，通入H₂S气体产生沉淀而除去CuCl₂，上清液浓缩和干燥后可制成色价高达200以上的紫甘薯色素。很显然，这种方法提取的色素纯度高，但成本会偏高。

另外，在文献([J]食品科学，2004，25(7)：104-108；[J]化学研究与应用，2004，16(3)：404-406)的报道中，有利用超声波辅助技术提取紫甘薯花色苷，先将紫薯粉与酸化乙醇提取剂混合，经完全冻结-融解处理后，进行超声处理提取色素。实验表明，超声波辅助提取法优于常规提取方法，而冻结-融解-超声波提取法表现出更好的提取效率。有文献报道([J]食品科学，2005，26(9)：234-239)，将60～80目紫甘薯粉与水或酸化溶液(盐酸、柠檬酸和盐酸乙醇溶液)混合，再利用微波加热方法萃取紫甘薯红色素。

发明内容

本发明的目的是提供一种新的紫甘薯花色苷的分离与提取工艺，得到的提取物颜色稳定鲜艳，具有较强的抗氧化作用和延缓衰老的功能。

实现本发明目的的技术方案是提供一种紫甘薯花色苷的提取方法，包括如下步骤：

(1)将紫甘薯在微波条件下处理至熟；

(2)将熟的紫甘薯置于pH为2.0～3.0的酸性电解水中反复匀浆萃取，得到匀浆萃取液；

(3)用80～160目的滤网对上述匀浆萃取液进行过滤处理，得到含紫甘薯花色苷的滤液；

(4)上述滤液经浓缩处理后得到紫甘薯花色苷。

步骤(4)所述的分离处理方法是将滤液进行10,000～20,000rpm的高速离心处理，收集上清液；所述的浓缩处理方法是旋转浓缩、冷冻干燥或喷雾干燥。

本发明经对紫甘薯进行微波烘烤处理，不仅将易以导致提取物红色素褐化的多酚氧化酶首先灭活，而且烤熟的紫甘薯避免了因机械切片或机械粉碎而引起淀粉或花色苷的降解。然后，将烤熟的紫甘薯置于pH≤3.0的酸性电解水反复匀浆萃取，免除了终产物中少量盐的生成和随后的脱盐处理，萃取液经过滤、离心和冷冻干燥或喷雾干燥，就可得到色价为15，色素提取率高达35％的紫甘薯花色苷提取物。体外活性分析表明，这种紫甘薯花色苷粗提物能有效清除DPPH自由基，其IC₅₀为11.5μg/mL，当浓度为1.0mg/mL时，其还原力高于同浓度微生素Vc15倍，抗以卵黄蛋白为底物的脂质过氧化能力较强，其IC₅₀为1.0mg/mL。体内抗氧化活性试验表明这种提取物能显著延缓老龄小鼠的衰老，给1年龄小鼠(老龄小鼠)灌胃提取物1个月，其体内抗衰老指标与对照组5月龄小鼠相当。所以，利用本发明的微波烘烤与电解水萃取技术制备的紫甘薯花色苷提取物，不必进一步纯化，就可以应用于食品着色剂和抗衰老保健食品等领域。

由于本技术方案的采用，与已有技术相比，本发明具有如下显著优点：

1.本发明利用微波烘烤-酸性电解水萃取的技术，高效率、成本低、高得率提取紫甘薯花色苷，提取工艺不仅简单、成本低，而且绿色、环保。

2.提取物颜色稳定鲜艳，具有较强的抗氧化作用和延缓衰老的功能，可广泛地应用于保健抗衰老食品或保健品，也可以用作食品色素添加剂等领域。

附图说明

图1是按本发明技术方案从紫甘薯中提取的花色苷的紫外-可见吸收光谱图。

具体实施方式

下面结合实施例和附图对本发明作进一步描述。

实施例1

紫甘薯品种：日本紫甘薯Ipomoea batatas cultivar Ayamurasaki，由江苏徐州甘薯研究中心提供。

紫甘薯花色苷提取物的制备方法，包括如下步骤：

先将紫甘薯清洗去污物、凉干，称取新鲜紫甘薯2347.8g(干重1007.4g)，在微波炉(微波功率1000W)中处理5～10min(处理时间及微波功率的确定以能使紫甘薯熟为限)，使紫甘薯至熟；

将熟的紫甘薯置于1～10倍量(g/mL)的pH为2.0～3.0的酸性电解水中，反复粉碎、浸提，得到匀浆萃取液；

用80～160目的尼龙网筛对上述匀浆萃取液进行过滤处理，去除皮屑等杂物，得到含紫甘薯花色苷的滤液；

滤液经10,000～20,000rpm离心处理10～30min，去除杂质和沉淀物(主要是淀粉)；

上清液(酸化水提取液)经旋转浓缩或者直接冷冻干燥或喷雾干燥制成紫甘薯花色苷粉末352.2g，即为本发明所述的紫甘薯花色苷提取物。

将本实施例提供的花色苷提取物作各种成分及性能的测试，结果如下：

1、紫甘薯花青苷提取物回收率

按本实施例技术方案干重为1007.4g紫甘薯，可制得花色苷提取物粉末352.2g，经计算可知，紫甘薯花色苷提取物的得率为34.96％。

2、色价测定

按文献报道的方法([J]江苏农业学报，2004，20(2)：111～115)测定紫甘薯花色苷提取物的色价。将紫甘薯花色苷粉末配制成质量浓度为0.025％的溶液，放入1cm厚的比色杯，在不同的波长下测其吸光度，确定最大吸收波长，在此波长下测定不同浸提条件下的提取液的吸光度A，并以此A值计算色价。其色价计算的方法按下式进行

$E_{1\mathrm{cm}}^{1\%}=A/m$

式中，A为吸光度；m为样品的质量(g)；E_1cm ^1％为色价，表示样品浓度1％，1cm比色皿，最大吸收波长下的吸光度值。

参见附图1，它是本实施例提供的紫甘薯花色苷提取物的紫外-可见吸收光谱图，在紫外光区220～255nm和269～360nm处分别都有较强的吸收带，为花色苷酰基结构的特征，表明该色素对紫外线有很强的吸收作用，在可见光区也有吸收带，其峰值都在524nm处，这表明该色素呈红色，属于花色素类色素。此时吸光度值都为0.378，由此计算该色素粗提物的色价为 $E_{1\mathrm{cm}}^{1\%}=15.12.$

3、总黄酮含量测定

按照文献报道的方法([J]Food Chemistry，64：555-559)测定花色苷提取物的总黄酮含量。精确称取经120℃干燥恒重的芦丁标准品10.00mg，用98％乙醇，置于水浴上微热使溶解后定容至50mL，配成200μg/mL的芦丁标准溶液。准确吸取芦丁标准溶液0、10、20、30、40、50μL于孔穴中，再依次加入70％的乙醇溶液50、40、30、20、10、0μL。编号分别为0、1、2、3、4、5。各加10％亚硝酸钠溶液10μl，摇匀，静止6min后，加入20％硝酸铝溶液10μL摇匀，加2mol/L氢氧化钠溶液50μL，最后，再分别加入200μL的60％的乙醇溶液，摇匀，放置10～15min，以0号试剂作参比，于510nm处测其吸光度，得到芦丁标准溶液的工作曲线。用最小二乘法进行回归，得到吸光度值A与芦丁标准量的关系曲线。

称取样品10.00mg，用60％乙醇溶解，配制2.00mg/mL的溶液，精确吸取50μL样品液于空穴中，其余步骤同标准测定，于510nm波长测定吸光度，查标准曲线或用线性方程计算，最后算出总黄酮含量，每个样品重复测定3次，计算平均标准差，用±SD表示。经分析，以芦丁为横坐标，吸光度值为纵坐标绘制芦丁标准曲线，其回归方程为y＝0.02437x-1.12948E-5(R²＝0.99949)，得出紫甘薯花色苷提取物总黄酮含量为132.130±0.821mg/g。

4、总酚含量测定

按照文献报道的方法([J]Agric Food chem，1999，47：4847-4853)进行花青苷提取物总酚含量的测定，精确称取经120℃干燥恒重的没食子酸10.0mg，溶解后加水定容到100ml，配成100μg/ml的没食子酸标准溶液。准确吸取没食子酸标准溶液0.0、0.1、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0ml，于10ml刻度试管中，加5.0ml蒸馏水，再加0.5ml Folin-Ciocalteu试剂，摇匀1min后再加入1.5ml 20％Na₂CO₃溶液，于室温反应2h。以0号管为空白，在760mn波长处测定对照品溶液的吸光度。以没食子酸的质量(μg)为横坐标，吸光度为纵坐标，绘制标准曲线。

准确称取样品10.00mg，配成1mg/mL的水溶液，精密量取1.0mL于10ml刻度试管中，按标准曲线制备操作步骤于760nm波长处进行吸光度的测定(样液如有沉淀，应过滤后测定)。查标准曲线或用线性方程计算，最后算出总酚含量，每个样品重复测定3次，计算平均标准差用±SD表示。分析结果表明，以没食子酸质量为横坐标，吸光度值为纵坐标绘制标准曲线，所得的回归方程为y＝0.01352x-0.0487(R²＝0.9995)，求得紫甘薯花色苷提取物含量为64.524±0.791mg/g。

5、总糖含量测定

按照文献报道的方法(王文平等，食品科学，2007，28(4)：276-279)测定花色苷提取物的总糖含量。准确称取105℃干燥至恒重的无水葡萄糖对照品15.00mg，用双蒸水定容至250ml，可得浓度为0.06mg/mL的葡萄糖标准溶液。分别吸取0、0.2、0.4、0.8、1.0mL葡萄糖标准溶液，分别置于10ml畏热试管中加水至1.0mL，加入6％苯酚溶液1ml，混合后迅速加入5mL浓硫酸混匀，置沸水浴中放置5min，取出，冷却，以第一份为空白，在波长490nm处测定吸光度。以糖含量(mg)为横坐标，吸光度为纵坐标，制作标准曲线，得出线性方程和相关系数。

精密称量色素提取液100mg，置10mL容量瓶中，加水溶解并稀释至刻度，摇匀，精密量取1ml，加无水乙醇至5mL，搅拌，离心，取沉淀加热水充分溶解，转移至10mL容量瓶中，加水稀释至刻度，摇匀，精密量取1mL，按标准曲线制备操作步骤，于490nm波长处进行样品吸光度的测定。以葡萄糖含量为横坐标，吸光度值为纵坐标绘制标准曲线，所得的回归方程为y＝10.2002x+3.59248E-7(R²＝0.99802)，求得紫甘薯花色苷提取物总糖含量为61.306±0.371mg/g。

6、总单体花色苷含量测定

总单体花色苷含量用以前报道的pH差异法(Lee，Durst&Wrolstad，2005)在分光光度计上测定。样品分别用pH 1.0and 4.5柠檬酸缓冲液(50mM)配制，并在533and 700nm处分别测定其吸光度，利用公式A＝(A530-A700)pH1.0-(A530-A700)pH4.5和克分子消光系数29,600进行计算。总单体花色苷含量可有下式获得：

单体花色苷(mg/L)＝(A×MW×DF×1000)/(ε×1)

式中MW分子量，DF为稀释因子，ε为克分子消光系数，1是标准比色杯光径为1cm，花色素-3-葡萄糖苷的分子量(MW)和克分子消光系数(ε)分别为449.2和26900，总单体花色苷含量用花色素-3-葡萄糖苷mg/g(干重)表示。分析结果表明，紫甘薯红色素提取物中总单体花色苷含量为102.31±1.40mg/g。

7、体外抗氧化活性测定

(1)清除DPPH自由基(1，1-二苯基1-2-苦味酰基自由基)的活性测定

DPPH法是一种简单快速的自由基分析方法(Rao et al，Bioorg Med ChemLett 13：2777-2780，2003)。其测定步骤如下：吸取不同浓度的待测溶液80μL，加入0.4mmol/L DPPH·溶液80μL，摇匀，放置30min。以无水乙醇调零，测定510nm处的吸光度(A样品)。同时，测定样品溶液80μL与无水乙醇80μL混合液在510nm处的吸光度(A空白)，再测定80μL DPPH·溶液与无水乙醇80μL在510nm处的吸光度(A标准)。样品重复测定3次，计算平均值，用±SD表示。其清除率(E)按如下公式计算。

经样品分析的结果表明，紫甘薯花色苷提取物具有很强的DPPH自由基清除能力，并且在质量浓度范围内呈现出一定的剂量依赖性关系(表1)。经计算IC₅₀值为11.5μg/mL。

表1.紫甘薯花色苷提取物对DPPH·的清除作用

(2)还原力的测定

还原能力的测定参考Oyaizu M(Oyaizu et al，Japanese Journal ofNutrition，44：307-315，1986)的方法进行测定。配制一系列梯度的酸化水提取的紫甘薯色素液。取2.5mL样品于试管中，依次加人2.5ml 0.2mol/l磷酸盐缓冲液(PBS，pH＝6.66)和2.5mL 1％铁氰化钾溶液(K3Fe(CN)6)，于50℃水浴保温20min后，快速冷却，再加人2.5mL 10％冰醋酸溶液，以3000rpm的转速离心10min，取上清液2.5mL，依次加人2.5mL蒸馏水，0.5mL 0.1％三氯化铁溶液(FeCl₃)，充分混匀，静置10min后，在700nm下测定其吸光值A700(蒸馏水作参比液，调零)。吸光度越高，说明这种反应混合物的还原性越强。用10mg/L的抗氧化剂Vc作为对照，方法同上。分析结果表明，紫甘薯花色苷提取物表现出了较强的还原能力，且随着浓度的增大而原性逐渐增强，呈现一定的线性关系(表2)。浓度为1.0mg/mL的紫甘薯花色苷提取物的还原能力是同浓度Vc的15倍。

表2.紫甘薯花色苷提取物的还原能力

(3)抗以卵黄脂蛋白为底物的脂质过氧化作用

取1∶20稀释的卵黄旋液(卵黄用等体积的pH 7.45，0.1M PBS配成的卵黄旋液)1.0mL，2.0mg/mL的两种方法提取的色素液分别取100、200、400、600、800、1000μL，加0.1M PBS至2.0mL，于37℃水浴温浴2h后，依次加入10％的三氯乙酸2.0mL，0.67％硫代巴比妥酸2.0mL，混匀。沸水浴中反应15min后取出，流水冷却，4000rpm离心15min，取上清液，以0.1M PBS调零点，在532nm处测定吸光度值(A样品)，模型对照组(A标准)用0.1M PBS 1.0mL代替1.0mL色素液，样品对照组(A空白)用0.1M PBS 1.0mL代替1.0mL卵黄液。每个浓度组测定3份(Benzie et al，Anal Biochem.239，70-76，1996)。测定结果以脂质过氧化抑制率(E)表示，计算公式：

表3为紫甘薯花色苷提取物抗以卵黄脂蛋白为底物的脂质过氧化作用。酸化水粗提物抑制脂质过氧化的IC₅₀值1.0mg/mL。实验结果表明，这种粗提物具有明显的抗以卵黄脂蛋白为底物的脂质过氧化作用。

表3.紫甘薯花色苷提取物抗以卵黄蛋白为底物的的脂质抗氧化抑制率

8、体内抗氧化活性测定

本试验主要是利用总抗氧化能力(T-AOC)试剂盒研究紫甘薯花色苷提取物对老龄小鼠的抗氧化作用，利用超氧化物歧化酶(SOD)试剂盒、谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)试剂盒和丙二醛(MDA)试剂盒对老龄小鼠抗衰老作用进行了测定，本实验所用的试剂均为南京建成生物工程研究所出品。实验方法如下：每日对每组10只12月龄的老龄小鼠连续灌胃不同剂量紫甘薯色素提取物(100、500、1000mg/kg)，测定30天时血清总抗氧化能力；测定30天时脂质过氧化物丙二醛含量、超氧化物歧化酶和谷胱甘肽过氧化物酶活力，而且与维生素C或E为阳性对照组、5月龄小鼠和空白对照组进行比较。

试验结果表明，紫甘薯花色苷提取物非常显著改善老龄小鼠血清T-AOC。12月龄的老龄小鼠连续灌胃花色苷提取物一个月后，与生理盐水对照组相比，提取物显著增强老龄小鼠血清的总抗氧化能力，且随灌胃剂量增大而增强，低剂量灌服的效果可与同浓度VC相媲美；当灌服高剂量(1000mg/kg)时，老龄小鼠血清总抗氧化能力大大提高，是对照组2倍。表4还表明这种提取物非常显著地抑制老龄小鼠血清中MDA的生成和提高血清中SOD和全血GSH-Px的活性；每天灌服低剂量(100mg/kg)的作用效果相当于等量维生素E，当浓度达到500mg/Kg剂量时，血清中总SOD和GSH-PX活力分别提高了23.94％和28.34％，而丙二醛量降低了20.64％。当浓度达到1000mg/Kg剂量时，大大延缓了老龄小鼠的衰老，12月龄的老龄小鼠的二种酶的活力和抑制MDA生成能力相当于5月龄的小鼠。这些结果证明：紫甘薯花色苷提取物具有显著的抗生物氧化作用，可延缓衰老。

表4.紫甘薯花色苷提取物对老龄小鼠抗氧化和抗衰老能力的影响

注：实验组小鼠为12月龄的昆明种小鼠，雄性，灌胃30天。眼球取血。年龄对照组为5月龄的昆明种小鼠，雄性，灌胃30天。眼球取血。T-AOC试验用的阳性对照组为Vc，其余为VE。

综上所述，利用本发明微波烘烤和酸性电解水萃取的方法，紫甘薯花色苷提取物的得率高达35％，色价15，颜色鲜艳、稳定。这种花色苷提取物中总黄酮、总酚、总糖和总单体花青素含量分别为132.13、64.52、61.31和102.31mg/g。体外分析结果表明，紫甘薯花色苷提取物具有很强的DPPH自由基清除能力，其IC₅₀值为11.5μg/mL；当浓度为1.0mg/mL，紫甘薯花色苷提取物的还原能力是同浓度维生素C的15倍；这种提取物还具有明显的抗以卵黄脂蛋白为底物的脂质过氧化作用，其IC₅₀值1.0mg/mL。体内分析表明，连续灌胃花色苷提取物一个月后，老龄小鼠血清的总抗氧化能力较对照组高2倍；12月龄的老龄小鼠的SOD和GSH-Px的活力和抑制MDA生成能力相当于5月龄的小鼠。这些结果证明紫甘薯花色苷提取物具有显著的抗生物氧化作用，可延缓衰老。

Claims (3)

1.一种紫甘薯花色苷的提取方法，其特征在于包括如下步骤：

(1)将紫甘薯在微波条件下处理至熟；

(2)将熟的紫甘薯置于pH为2.0～3.0的酸性电解水中反复匀浆萃取，得到匀浆萃取液；

(3)用80～160目的滤网对上述匀浆萃取液进行过滤处理，得到含紫甘薯花色苷的滤液；

(4)上述滤液经分离、浓缩处理后得到紫甘薯花色苷。

2.根据权利要求1所述的一种紫甘薯花色苷的提取方法，其特征在于：步骤(4)所述的分离处理方法是将滤液进行10,000～20,000rpm的高速离心处理，收集上清液。

3.根据权利要求1所述的一种紫甘薯花色苷的提取方法，其特征在于：步骤(4)所述的浓缩处理方法是旋转浓缩、冷冻干燥或喷雾干燥。