CN111089958A - 一种基于葡聚糖信号放大的p16INK4a化学发光试剂盒 - Google Patents

一种基于葡聚糖信号放大的p16INK4a化学发光试剂盒 Download PDF

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CN111089958A CN201911363176.2A CN201911363176A CN111089958A CN 111089958 A CN111089958 A CN 111089958A CN 201911363176 A CN201911363176 A CN 201911363176A CN 111089958 A CN111089958 A CN 111089958A
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李文成
孙康俊
黄宝福
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Jiangsu Mics Medical Technology Co ltd
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Jiangsu Mics Medical Technology Co ltd
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    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/543Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals
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    • G01N21/75Systems in which material is subjected to a chemical reaction, the progress or the result of the reaction being investigated
    • G01N21/76Chemiluminescence; Bioluminescence

Abstract

本发明提供一种基于葡聚糖信号放大的p16INK4a化学发光试剂盒,所述试剂盒包括p16INK4a校准品,p16INK4a抗体磁珠,吖啶酯标记葡聚糖多聚p16INK4a抗体,缓冲液,稀释缓冲液以及洗涤液。本发明提供的试剂盒采用化学发光检测技术,结合葡聚糖的信号放大吖啶酯的化学发光体系更有利于检测细胞样本中的p16INK4a抗原含量,具有非常高的灵敏度,与现有的p16INK4a化学发光检测相比抗体使用量更少,干扰更低,具有较大的临床推广价值。

Description

一种基于葡聚糖信号放大的p16INK4a化学发光试剂盒
技术领域
本发明涉及生物化学检测领域,尤其涉及一种基于葡聚糖信号放大的p16INK4a化学发光试剂盒。
背景技术
p16INK4a基因又叫MTS(multiple tumor suppressor 1)基因,是1994年美国冷泉港实验室Kamb等发现的新抗癌基因,这是一种细胞周期中的基本基因,直接参与细胞周期的调控,负调节细胞增殖及分裂,在人类50%肿瘤细胞株纯发现有纯合子缺失,突变,认为p16INK4a是比p53更重要的一种新型抗癌基因。有人把它比作细胞周期中的刹车装置,一旦失灵则会导致细胞恶性增殖,导致恶性肿瘤发生。p16INK4a基因已经在肺癌、乳腺癌、脑肿瘤、骨肿瘤、皮肤癌、膀胱癌、肾癌、卵巢癌和淋巴瘤、黑色素瘤中发现纯合子缺失以及无义、错义及移码突变,表明p16INK4a基因以缺失、突变方式广泛参与肿瘤形成,检测p16INK4a基因有无改变对判断患者肿瘤的易感性以及预测肿瘤的预后,具有十分重要的临床意义。
化学发光免疫分析(CLIA)是将具有高灵敏度的化学发光测定技术与高特异性的免疫反应相结合,用于各种抗原、半抗原、抗体、激素、酶、脂肪酸、维生素和药物等的检测分析技术。是继放免分析、酶免分析、荧光免疫分析之后发展起来的一项免疫测定技术。
CLIA与其它传统的标记技术相比有以下优点:第一,检测过程无放射性辐射,不会对人体有危害;第二,拥有较高的灵敏度和较宽的线性范围;第三,一般采用自动化仪器进行操作,无需专业操作人员,排除人为操作干扰,稳定性好;第四,该方法学应用场景广,可检测不同分子大小的抗原、半抗原和抗体,又可以用于核酸探针的检测。目前国内大部分在使用进口厂家的试剂,如罗氏、雅培、贝克曼等。
现有p16INK4a检测方法主要是免疫组织化学法,只能定性染色无法定量检测,ELISA检测试剂盒的定量分析受p16INK4a在细胞内表达水平和样本为脱落细胞的影响,对检测的灵敏度要求极高,容易出现漏检,所以亟需一种具有高灵敏度的p16INK4a检测试剂盒。
发明内容
本发明的目的在于,提供一种抗体使用量更少,干扰更低,且具有极高灵敏度的基于葡聚糖信号放大的p16INK4a化学发光试剂盒。
为了实现上述目的,本发明提供了一种基于葡聚糖信号放大的p16INK4a化学发光试剂盒,所述试剂盒包括p16INK4a校准品,p16INK4a抗体磁珠,吖啶酯标记葡聚糖多聚p16INK4a抗体,缓冲液,稀释缓冲液以及洗涤液;
所述吖啶酯标记葡聚糖多聚p16INK4a抗体的制备方法为活化后的吖啶酯与活化后的葡聚糖和p16INK4a抗体三者偶联,封闭,洗涤,保存。
具体包括:
(1)葡聚糖活化:将葡聚糖(DeX)溶于磷酸盐缓冲溶液(PBS)中,加入适量高碘酸钠(NaIO4)进行氧化,用葡聚糖基质相同磷酸盐缓冲溶液进行透析过夜;
(2)吖啶酯活化:加入N-羟基琥珀酰亚胺(NHS)旋涡混合,再加入1-(3-二甲氨基丙基)-3-乙基碳二亚胺盐酸盐(EDC)旋涡混合;摇床100-500r/min,30-37℃反应10-30min;其中NHS:EDC的质量浓度比为25:10;
(3)偶联:离心后去除上清,加入超纯水,超声复溶,重复离心复溶,加入p16INK4a单克隆抗体和活化葡聚糖,旋涡混合,摇床100-500r/min,30-37℃反应1-3h;
(4)封闭,洗涤,保存。
作为一个优选方案,所述p16INK4a抗体磁珠的制备方法为磁珠活化后与抗p16INK4a单克隆抗体偶联,封闭,洗涤,保存。
具体包括:
(1)免疫磁珠的活化:加入NHS旋涡混合,再加入EDC旋涡混合;摇床100-500r/min,30-37℃反应10-30min;其中NHS:EDC的质量浓度比为25:10;
(2)偶联:离心后去除上清,再加入超纯水,超声复溶,重复离心复溶,加入p16INK4a单克隆抗体,旋涡混合,摇床100-500r/min,30-37℃反应1-3h;磁珠与抗体的标记比例为(50-150):1;
(3)封闭,洗涤,保存。
作为一个优选方案,所述磁珠粒径为100nm-5μm,表面修饰为羧基、羟基或链霉亲和素中的一种。免疫荧光微球粒径为100nm-500nm,表面修饰为羧基、羟基或链霉亲和素中的任意一种。
作为一个优选方案,所述校准品为用缓冲液将p16抗原配制成0-100pg/mL系列浓度的校准溶液系列。
作为一个优选方案,所述缓冲液包括缓冲体系、封闭试剂、阻断剂和防腐剂;
所述缓冲体系包括PBS、Tris或CBS缓冲液中的任意一种,且浓度为10-50mmol/L,PH值为7.0-9.0;
所述封闭试剂包括牛血清白蛋白或酪蛋白中的任意一种,且质量浓度为1-15%;
所述阻断剂包括IgG蛋白,且质量浓度为0.1-1%;
所述防腐剂包括叠氮钠或Proclin 300中的任意一种,且质量浓度为0.01-0.1%。
作为一个优选方案,所述稀释缓冲液配方包括:10-50mmol/L Tris-HCl、0.1-5%酪蛋白、1--5%BSA、0.01-1%Proclin300、0.01%-1Tween 20、0.9%NaCl,缓冲液调pH至7.2-7.4。
作为一个优选方案,所述洗涤液配方包括:10-50mmol/L的Tris-HCl、0.01-1%的Tween 20和0.9%的NaCl,缓冲液调pH至7.2-7.4。
本发明通过将磁珠与p16INK4a抗体偶联且将吖啶酯标记葡聚糖多聚p16INK4a抗体,两者与样本中p16INK4a抗原在反应管中经过震荡孵育后形成免疫磁珠-p16INK4a抗原-吖啶酯葡聚糖多聚抗体复合物;用全自动化学发光仪测定其化学发光强度;对照标准品曲线以确定样品中p16INK4a抗原的量。
本发明的优点在于,本发明提供的试剂盒采用化学发光检测技术,结合葡聚糖的信号放大吖啶酯的化学发光体系更有利于检测细胞样本中的p16INK4a抗原含量,具有非常高的灵敏度,与现有的p16INK4a化学发光检测相比抗体使用量更少,干扰更低,具有较大的临床推广价值。
附图说明
图1为实施例试剂盒的线性区间测量数据图。
具体实施方式
以下,结合具体实施方式对本发明的技术进行详细描述。应当知道的是,以下具体实施方式仅用于帮助本领域技术人员理解本发明,而非对本发明的限制。
实施例1.
步骤1:
p16INK4a抗体磁珠制备步骤为:磁珠活化后与抗p16INK4a单克隆抗体偶联,封闭,洗涤,保存。
吖啶酯标记葡聚糖多聚p16INK4a抗体制备步骤为:活化后的吖啶酯与活化后的葡聚糖和p16INK4a抗体三者偶联,封闭,洗涤,保存。
免疫磁珠粒径为100nm-5μm,表面修饰为羧基、羟基或链霉亲和素中的任意一种;免疫荧光微球粒径为100nm-500nm,表面修饰为羧基、羟基或链霉亲和素中的任意一种。
免疫磁珠的活化与偶联具体操作步骤为:
活化:加入NHS旋涡混合,再加入EDC,旋涡混合;摇床100-500r/min,30-37℃反应10-30min;其中NHS:EDC的质量浓度比为25:10;
偶联:离心后去除上清,再加入超纯水,超声复溶,重复离心复溶两次,加入p16INK4a单克隆抗体,旋涡混合,摇床100-500r/min,30-37℃反应1-3h;磁珠与抗体的标记比例为(50-150):1。
吖啶酯标记葡聚糖多聚p16INK4a抗体具体操作步骤为:
葡聚糖活化:将葡聚糖(DeX)溶于PH=7.0的20mM的磷酸盐缓冲溶液(PBS)中,加入适量高碘酸钠(NaIO4)进行氧化,用DeX基质相同PBS进行透析过夜;
吖啶酯活化:加入NHS旋涡混合,再加入EDC,旋涡混合;摇床100-500r/min,30-37℃反应10-30min;其中NHS:EDC的质量浓度比为25:10;
偶联:离心后去除上清,加入超纯水,超声复溶,重复离心复溶两次,加入p16INK4a单克隆抗体和活化葡聚糖,旋涡混合,摇床100-500r/min,30-37℃反应1-3h。
稀释缓冲液配方包括:10-50mmol/L Tris-HCl、0.1-5%酪蛋白、1--5%BSA、0.01-1%Proclin300、0.01%-1Tween 20、0.9%NaCl,缓冲液调pH至7.2-7.4。
洗涤液配方包括:10-50mmol/L的Tris-HCl、0.01-1%的Tween 20和0.9%的NaCl,缓冲液调pH至7.2-7.4。
缓冲液包括缓冲体系、封闭试剂、阻断剂和防腐剂;
缓冲体系:PBS、Tris或CBS缓冲液中的任意一种,且浓度为10-50mmol/L,PH值为7.0-9.0;
封闭试剂:牛血清白蛋白或酪蛋白中的任意一种,且质量浓度为1-15%;
阻断剂:IgG蛋白,且质量浓度为0.1-1%;
防腐剂:叠氮钠或Proclin 300中的任意一种,且质量浓度为0.01-0.1%。
保存:4℃保存。
步骤2:校准品的配置
用含2%BSA及0.01%叠氮钠的50mmol/L pH7.4 PBS缓冲液,将p16INK4a抗原配制成0、10、20、50、100pg/mL系列浓度的校准溶液,备用。
步骤3:分析缓冲液的配置
在pH7.4、20mmol/L Tris-HCl中,加入5%酪蛋白、1%BSA、0.1%Proclin300、0.1%Tween 20、0.9%NaCl,搅拌并充分溶解。
步骤4:洗涤液的配置
在pH7.4、10mmol/L Tris-HCl溶液中、加入0.05%Tween 20、0.9%NaCl,搅拌并充分溶解。
步骤5:保存液的配置
在50mmol/L pH8.0 HEPES溶液中加入5%BSA、0.5%PEG、0.1%T-20和0.1%Proclin 300搅拌并充分溶解。
步骤6:封闭液的配置
在50mmol/L pH8.0 Tris溶液中加入质量浓度为10%的BSA、0.1%Tween20、0.1%Proclin 300搅拌并充分溶解。
准确度:根据《体外诊断试剂分析性能评估(准确度-回收实验)》中的方法及计算公式,用1pg/mL的校准品作为基质α,按照1∶9分别添加A来源p16INK4a抗原,检测浓度记为γ,添加浓度记为β,每个测试重复3次,求均值,按照公式:(90×β+10×α)/(100×γ)计算回收率,数据见表1所示。
实施例2.
步骤1:
所述p16INK4a抗体磁珠制备步骤为:磁珠活化后与抗p16INK4a单克隆抗体偶联,封闭,洗涤,保存。
所述吖啶酯标记葡聚糖多聚p16INK4a抗体制备步骤为:活化后的吖啶酯与活化后的葡聚糖和p16INK4a抗体三者偶联,封闭,洗涤,保存。
所述免疫磁珠粒径为100nm-5μm,表面修饰为羧基、羟基或链霉亲和素中的任意一种;所述免疫荧光微球粒径为100nm-500nm,表面修饰为羧基、羟基或链霉亲和素中的任意一种。
所述免疫磁珠的活化与偶联具体操作步骤为:
活化:加入NHS旋涡混合,再加入EDC,旋涡混合;摇床100-500r/min,30-37℃反应10-30min;其中NHS:EDC的质量浓度比为25:10;
偶联:离心后去除上清,再加入超纯水,超声复溶,重复离心复溶两次,加入p16INK4a单克隆抗体,旋涡混合,摇床100-500r/min,30-37℃反应1-3h;磁珠与抗体的标记比例为(50-150):1。
优选的,所述吖啶酯标记葡聚糖多聚p16INK4a抗体具体操作步骤为:
葡聚糖制备:将葡聚糖(DeX)溶于PH=7.0的20mM的磷酸盐缓冲溶液(PBS)中,加入适量高碘酸钠(NaIO4)进行氧化,用DeX基质相同PBS进行透析过夜;
吖啶酯活化:加入NHS旋涡混合,再加入EDC,旋涡混合;摇床100-500r/min,30-37℃反应10-30min;其中NHS:EDC的质量浓度比为25:10;
偶联:离心后去除上清,加入超纯水,超声复溶,重复离心复溶两次,加入p16INK4a单克隆抗体和活化葡聚糖,旋涡混合,摇床100-500r/min,30-37℃反应1-3h。
所述稀释缓冲液配方包括:10-50mmol/L Tris-HCl、0.1-5%酪蛋白、1--5%BSA、0.01-1%Proclin300、0.01%-1Tween 20、0.9%NaCl,缓冲液调pH至7.2-7.4。
所述洗涤液配方包括:10-50mmol/L的Tris-HCl、0.01-1%的Tween 20和0.9%的NaCl,缓冲液调pH至7.2-7.4。
所述缓冲液中的各成分具体如下:
所述缓冲体系:PBS、Tris或CBS缓冲液中的任意一种,且浓度为10-50mmol/L,PH值为7.0-9.0;
所述封闭试剂:牛血清白蛋白或酪蛋白中的任意一种,且质量浓度为1-15%;
所述阻断剂:IgG蛋白,且质量浓度为0.1-1%;
所述防腐剂:叠氮钠或Proclin 300中的任意一种,且质量浓度为0.01-0.1%。
保存:4℃保存。
步骤2:校准品的配置
用含2%BSA及0.01%叠氮钠的50mmol/L pH7.4 PBS缓冲液,将p16INK4a抗原配制成0、10、20、50、100pg/mL系列浓度的校准溶液,备用。
步骤3:分析缓冲液的配置
在pH7.4、20mmol/L Tris-HCl中,加入5%酪蛋白、1%BSA、0.1%Proclin300、0.1%Tween 20、0.9%NaCl,搅拌并充分溶解。
步骤4:洗涤液的配置
在pH7.4、10mmol/L Tris-HCl溶液中、加入0.05%Tween 20、0.9%NaCl,搅拌并充分溶解。
步骤5:保存液的配置
在50mmol/L pH8.0 HEPES溶液中加入5%BSA、0.5%PEG、0.1%T-20和0.1%Proclin 300搅拌并充分溶解。
步骤6:封闭液的配置
在50mmol/L pH8.0 Tris溶液中加入质量浓度为10%的BSA、0.1%Tween20、0.1%Proclin 300搅拌并充分溶解。
准确度:根据《体外诊断试剂分析性能评估(准确度-回收实验)》中的方法及计算公式,用1pg/mL的校准品作为基质α,按照1∶9分别添加B来源p16INK4a抗原,检测浓度记为γ,添加浓度记为β,每个测试重复3次,求均值,按照公式:(90×β+10×α)/(100×γ)计算回收率,数据见表1所示。
实施例3
步骤1:
所述p16INK4a抗体磁珠制备步骤为:磁珠活化后与抗p16INK4a单克隆抗体偶联,封闭,洗涤,保存。
所述吖啶酯标记葡聚糖多聚p16INK4a抗体制备步骤为:活化后的吖啶酯与活化后的葡聚糖和p16INK4a抗体三者偶联,封闭,洗涤,保存。
所述免疫磁珠粒径为100nm-5μm,表面修饰为羧基、羟基或链霉亲和素中的任意一种;所述免疫荧光微球粒径为100nm-500nm,表面修饰为羧基、羟基或链霉亲和素中的任意一种。
所述免疫磁珠的活化与偶联具体操作步骤为:
活化:加入NHS旋涡混合,再加入EDC,旋涡混合;摇床100-500r/min,30-37℃反应10-30min;其中NHS:EDC的质量浓度比为25:10;
偶联:离心后去除上清,再加入超纯水,超声复溶,重复离心复溶两次,加入p16INK4a单克隆抗体,旋涡混合,摇床100-500r/min,30-37℃反应1-3h;磁珠与抗体的标记比例为(50-150):1。
优选的,所述吖啶酯标记葡聚糖多聚p16INK4a抗体具体操作步骤为:
葡聚糖制备:将葡聚糖(DeX)溶于PH=7.0的20mM的磷酸盐缓冲溶液(PBS)中,加入适量高碘酸钠(NaIO4)进行氧化,用DeX基质相同PBS进行透析过夜;
吖啶酯活化:加入NHS旋涡混合,再加入EDC,旋涡混合;摇床100-500r/min,30-37℃反应10-30min;其中NHS:EDC的质量浓度比为25:10;
偶联:离心后去除上清,加入超纯水,超声复溶,重复离心复溶两次,加入p16INK4a单克隆抗体和活化葡聚糖,旋涡混合,摇床100-500r/min,30-37℃反应1-3h。
所述稀释缓冲液配方包括:10-50mmol/L Tris-HCl、0.1-5%酪蛋白、1--5%BSA、0.01-1%Proclin300、0.01%-1Tween 20、0.9%NaCl,缓冲液调pH至7.2-7.4。
所述洗涤液配方包括:10-50mmol/L的Tris-HCl、0.01-1%的Tween 20和0.9%的NaCl,缓冲液调pH至7.2-7.4。
所述缓冲液中的各成分具体如下:
所述缓冲体系:PBS、Tris或CBS缓冲液中的任意一种,且浓度为10-50mmol/L,PH值为7.0-9.0;
所述封闭试剂:牛血清白蛋白或酪蛋白中的任意一种,且质量浓度为1-15%;
所述阻断剂:IgG蛋白,且质量浓度为0.1-1%;
所述防腐剂:叠氮钠或Proclin 300中的任意一种,且质量浓度为0.01-0.1%。
保存:4℃保存。
步骤2:校准品的配置
用含2%BSA及0.01%叠氮钠的50mmol/L pH7.4 PBS缓冲液,将p16INK4a抗原配制成0、10、20、50、100pg/mL系列浓度的校准溶液,备用。
步骤3:分析缓冲液的配置
在pH7.4、20mmol/L Tris-HCl中,加入5%酪蛋白、1%BSA、0.1%Proclin300、0.1%Tween 20、0.9%NaCl,搅拌并充分溶解。
步骤4:洗涤液的配置
在pH7.4、10mmol/L Tris-HCl溶液中、加入0.05%Tween 20、0.9%NaCl,搅拌并充分溶解。
步骤5:保存液的配置
在50mmol/L pH8.0 HEPES溶液中加入5%BSA、0.5%PEG、0.1%T-20和0.1%Proclin 300搅拌并充分溶解。
步骤6:封闭液的配置
在50mmol/L pH8.0 Tris溶液中加入质量浓度为10%的BSA、0.1%Tween20、0.1%Proclin 300搅拌并充分溶解。
准确度:根据《体外诊断试剂分析性能评估(准确度-回收实验)》中的方法及计算公式,用1pg/mL的校准品作为基质α,按照1∶9分别添加C来源p16INK4a抗原,检测浓度记为γ,添加浓度记为β,每个测试重复3次,求均值,按照公式:(90×β+10×α)/(100×γ)计算回收率,数据见表1所示。
实施例4
步骤1:
所述p16INK4a抗体磁珠制备步骤为:磁珠活化后与抗p16INK4a单克隆抗体偶联,封闭,洗涤,保存。
所述吖啶酯标记葡聚糖多聚p16INK4a抗体制备步骤为:活化后的吖啶酯与活化后的葡聚糖和p16INK4a抗体三者偶联,封闭,洗涤,保存。
所述免疫磁珠粒径为100nm-5μm,表面修饰为羧基、羟基或链霉亲和素中的任意一种;所述免疫荧光微球粒径为100nm-500nm,表面修饰为羧基、羟基或链霉亲和素中的任意一种。
所述免疫磁珠的活化与偶联具体操作步骤为:
活化:加入NHS旋涡混合,再加入EDC,旋涡混合;摇床100-500r/min,30-37℃反应10-30min;其中NHS:EDC的质量浓度比为25:10;
偶联:离心后去除上清,再加入超纯水,超声复溶,重复离心复溶两次,加入p16INK4a单克隆抗体,旋涡混合,摇床100-500r/min,30-37℃反应1-3h;磁珠与抗体的标记比例为(50-150):1。
优选的,所述吖啶酯标记葡聚糖多聚p16INK4a抗体具体操作步骤为:
葡聚糖制备:将葡聚糖(DeX)溶于PH=7.0的20mM的磷酸盐缓冲溶液(PBS)中,加入适量高碘酸钠(NaIO4)进行氧化,用DeX基质相同PBS进行透析过夜;
吖啶酯活化:加入NHS旋涡混合,再加入EDC,旋涡混合;摇床100-500r/min,30-37℃反应10-30min;其中NHS:EDC的质量浓度比为25:10;
偶联:离心后去除上清,加入超纯水,超声复溶,重复离心复溶两次,加入p16INK4a单克隆抗体和活化葡聚糖,旋涡混合,摇床100-500r/min,30-37℃反应1-3h。
所述稀释缓冲液配方包括:10-50mmol/L Tris-HCl、0.1-5%酪蛋白、1--5%BSA、0.01-1%Proclin300、0.01%-1Tween 20、0.9%NaCl,缓冲液调pH至7.2-7.4。
所述洗涤液配方包括:10-50mmol/L的Tris-HCl、0.01-1%的Tween 20和0.9%的NaCl,缓冲液调pH至7.2-7.4。
所述缓冲液中的各成分具体如下:
所述缓冲体系:PBS、Tris或CBS缓冲液中的任意一种,且浓度为10-50mmol/L,PH值为7.0-9.0;
所述封闭试剂:牛血清白蛋白或酪蛋白中的任意一种,且质量浓度为1-15%;
所述阻断剂:IgG蛋白,且质量浓度为0.1-1%;
所述防腐剂:叠氮钠或Proclin 300中的任意一种,且质量浓度为0.01-0.1%。
保存:4℃保存。
步骤2:校准品的配置
用含2%BSA及0.01%叠氮钠的50mmol/L pH7.4 PBS缓冲液,将p16INK4a抗原配制成0、10、20、50、100pg/mL系列浓度的校准溶液,备用。
步骤3:分析缓冲液的配置
在pH7.4、20mmol/L Tris-HCl中,加入5%酪蛋白、1%BSA、0.1%Proclin300、0.1%Tween 20、0.9%NaCl,搅拌并充分溶解。
步骤4:洗涤液的配置
在pH7.4、10mmol/L Tris-HCl溶液中、加入0.05%Tween 20、0.9%NaCl,搅拌并充分溶解。
步骤5:保存液的配置
在50mmol/L pH8.0 HEPES溶液中加入5%BSA、0.5%PEG、0.1%T-20和0.1%Proclin 300搅拌并充分溶解。
步骤6:封闭液的配置
在50mmol/L pH8.0 Tris溶液中加入质量浓度为10%的BSA、0.1%Tween20、0.1%Proclin 300搅拌并充分溶解。
准确度:根据《体外诊断试剂分析性能评估(准确度-回收实验)》中的方法及计算公式,用1pg/mL的校准品作为基质α,按照1∶9分别添加D来源p16INK4a抗原,检测浓度记为γ,添加浓度记为β,每个测试重复3次,求均值,按照公式:(90×β+10×α)/(100×γ)计算回收率,数据见表1所示。
表1:4种不同来源的p16INK4a抗原添加浓度得到的回收率数据
Figure BDA0002337731130000111
Figure BDA0002337731130000121
由以上数据可见,本发明提供的试剂盒能够有效的对p16INK4a抗原进行测定,且实施例1中的数据显示了该试剂盒的准确度可以达到较高的水平。
将实施例1-4中制备得到的试剂盒分析性能进行全面评估:
可测量范围和线性区间的评估
用含2%BSA及0.01%叠氮钠的50mmol/L pH7.4 PBS缓冲液,将p16INK4a抗原配制成0、1、5、10、50、100、200、300、400pg/mL系列浓度的校准溶液。每个浓度重复测试3次,15min时,使用全自动化学发光测试仪读取数值;如图1所示,实施例1中得到的试剂盒的可测量范围在(0-300pg/mL);实施例2中得到的试剂盒的可测量范围在(0-300pg/mL);实施例3中得到的试剂盒的可测量范围在(0-300pg/mL);实施例4中得到的试剂盒的可测量范围在(0-300pg/mL);由以上测量数据可得出,本发明试剂盒可测量范围在0-400pg/mL;
实施例1中得到的试剂盒的线性区间在(0-300pg/mL);实施例2中得到的试剂盒的线性区间在(0-300pg/mL);实施例3中得到的试剂盒的线性区间在(0-300pg/mL);实施例4中得到的试剂盒的线性区间在(0-300pg/mL);由以上测量数据可得出,本发明试剂盒线性区间在0-300pg/mL。数据参见图1所示。
重复性的评估
对实施例1-4得出的试剂盒分别在5、10、100pg/mL浓度下的校准品各重复测定15次,计算其均值(M)、标准差(s)和变异系数(CV),数据如表2所示;计算公式为:CV=s/M×100%;
式中:CV:变异系数;s:15次测定结果的标准差;M:15次测定结果的平均值。
表2:不同浓度校准品测定多次后得出的均值(M)、标准差(s)和变异系数(CV)
Figure BDA0002337731130000122
Figure BDA0002337731130000131
正常值范围值的评估
用本发明实施例1对108例健康查体者(女108例,年龄26~60岁)宫颈上皮的p16INK4a蛋白表达的水平检测表明,最低值为0pg/mL,最高值为101pg/mL,平均浓度为5ng/mL,如下表3所示,最适CUTOFF值为>10pg/mL(灵敏度87.56%,特异性100%);
用本发明实施例2对110例健康查体者(女110例,年龄26~60岁)宫颈上皮的p16INK4a蛋白表达水平检测表明,最低值为0pg/mL,最高值为81pg/mL,平均浓度为(5)ng/mL,如下表3所示,最适CUTOFF值为>10pg/mL(灵敏度86.33%,特异性100%);
用本发明实施例3对130例健康查体者(女130例,年龄26~60岁)宫颈上皮的p16INK4a蛋白表达水平检测表明,最低值为0ng/mL,最高值为7pg/mL,平均浓度为(5)ng/mL,如下表3所示,最适CUTOFF值为>10pg/mL(灵敏度82.51%,特异性100%);
用本发明实施例4对98例健康查体者(女98例,年龄26~60岁)宫颈上皮的p16INK4a蛋白表达水平检测表明,最低值为2pg/mL,最高值为88pg/mL,平均浓度为(5)ng/mL,如下表3所示,最适CUTOFF值为>10pg/mL(灵敏度86.12%,特异性100%),建议采用本试剂检测时,宫颈上皮的正常参考值范围应定为0-0.5ng/mL。
表3:本发明实施例1试剂盒CUTOFF值的确定数据
Figure BDA0002337731130000132
Figure BDA0002337731130000141
以上所述仅是本发明的优选实施方式,应当指出,对于本技术领域的普通技术人员,在不脱离本发明原理的前提下,还可以做出若干改进和润饰,这些改进和润饰也应视为本发明的保护范围。

Claims (7)

1.一种基于葡聚糖信号放大的p16INK4a化学发光试剂盒,其特征在于,所述试剂盒包括p16INK4a校准品,p16INK4a抗体磁珠,吖啶酯标记葡聚糖多聚p16INK4a抗体,缓冲液,稀释缓冲液以及洗涤液;
所述吖啶酯标记葡聚糖多聚p16INK4a抗体的制备方法为:
(1)葡聚糖活化:将葡聚糖溶于磷酸盐缓冲溶液中,加入适量高碘酸钠进行氧化,用葡聚糖基质相同磷酸盐缓冲溶液进行透析过夜;
(2)吖啶酯活化:加入NHS旋涡混合,再加入EDC旋涡混合;摇床100-500r/min,30-37℃反应10-30min;其中NHS:EDC的质量浓度比为25:10;
(3)偶联:离心后去除上清,加入超纯水,超声复溶,重复离心复溶,加入p16INK4a单克隆抗体和活化葡聚糖,旋涡混合,摇床100-500r/min,30-37℃反应1-3h;
(4)封闭,洗涤,保存。
2.根据权利要求1所述一种基于葡聚糖信号放大的p16INK4a化学发光试剂盒,其特征在于,所述p16INK4a抗体磁珠的制备方法为:
(1)免疫磁珠的活化:加入NHS旋涡混合,再加入EDC旋涡混合;摇床100-500r/min,30-37℃反应10-30min;其中NHS:EDC的质量浓度比为25:10;
(2)偶联:离心后去除上清,再加入超纯水,超声复溶,重复离心复溶,加入p16INK4a单克隆抗体,旋涡混合,摇床100-500r/min,30-37℃反应1-3h;磁珠与抗体的标记比例为(50-150):1;
(3)封闭,洗涤,保存。
3.根据权利要求2所述的一种基于葡聚糖信号放大的p16INK4a化学发光试剂盒,其特征在于,所述磁珠粒径为100nm-5μm,表面修饰为羧基、羟基或链霉亲和素中的一种。
4.根据权利要求1所述的一种基于葡聚糖信号放大的p16INK4a化学发光试剂盒,其特征在于,所述校准品为用缓冲液将p16抗原配制成0-100pg/mL系列浓度的校准溶液系列。
5.根据权利要求1所述的一种基于葡聚糖信号放大的p16INK4a化学发光试剂盒,其特征在于,所述缓冲液包括缓冲体系、封闭试剂、阻断剂和防腐剂;
所述缓冲体系包括PBS、Tris或CBS缓冲液中的任意一种,且浓度为10-50mmol/L,PH值为7.0-9.0;
所述封闭试剂包括牛血清白蛋白或酪蛋白中的任意一种,且质量浓度为1-15%;
所述阻断剂包括IgG蛋白,且质量浓度为0.1-1%;
所述防腐剂包括叠氮钠或Proclin 300中的任意一种,且质量浓度为0.01-0.1%。
6.根据权利要求1所述的一种基于葡聚糖信号放大的p16INK4a化学发光试剂盒,其特征在于,所述稀释缓冲液配方包括:10-50mmol/L Tris-HCl、0.1-5%酪蛋白、1--5%BSA、0.01-1%Proclin300、0.01%-1Tween 20、0.9%NaCl,缓冲液调pH至7.2-7.4。
7.根据权利要求1所述的一种基于葡聚糖信号放大的p16INK4a化学发光试剂盒,其特征在于,所述洗涤液配方包括:10-50mmol/L的Tris-HCl、0.01-1%的Tween 20和0.9%的NaCl,缓冲液调pH至7.2-7.4。
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Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN112114145A (zh) * 2020-09-21 2020-12-22 中山大学附属第一医院 一种检测hpv病毒感染致宫颈癌的试剂盒
CN112433048A (zh) * 2020-11-17 2021-03-02 深圳上泰生物工程有限公司 一种用于化学发光免疫法的试剂盒及其制备方法和应用
CN112595845A (zh) * 2020-12-09 2021-04-02 深圳普门科技股份有限公司 透明质酸检测试剂盒及检测系统
CN114778817A (zh) * 2022-06-17 2022-07-22 山东中鸿特检生物科技有限公司 一种检测血清和血浆中干扰素的试剂盒及检测方法与应用

Citations (15)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20070037138A1 (en) * 2003-02-27 2007-02-15 Lars Winther Standard for immunohistochemistry, immunocytochemistry and molecular cytogenetics
CN101419234A (zh) * 2008-10-17 2009-04-29 杭州博日科技有限公司 基于微粒子的化学发光检测试剂盒
CN101446591A (zh) * 2008-11-15 2009-06-03 邹先进 P16INK4a双抗体夹心酶联免疫吸附检测试剂盒
CN101825628A (zh) * 2010-05-04 2010-09-08 武汉伊艾博科技有限公司 抗体单价化多聚标记法生产的竞争免疫检测试剂盒及其使用方法和应用
CN102565405A (zh) * 2011-08-24 2012-07-11 苏州长光华医生物试剂有限公司 一种用吖啶酯标记技术结合通用型磁颗粒进行免疫学检测的方法
CN102901828A (zh) * 2012-08-21 2013-01-30 江建华 一种检测急性心梗的试纸、试纸制备及应用方法
CN103235116A (zh) * 2013-04-13 2013-08-07 福州大学 一种抗体标记信号或核酸探针标记信号放大的方法
CN103792346A (zh) * 2014-02-14 2014-05-14 赫利森(厦门)生物科技有限公司 多聚化学发光标记试剂及其制备方法与应用
CN105259163A (zh) * 2015-10-26 2016-01-20 深圳华迈兴微医疗科技有限公司 用于全血样品检测的磁微粒直接化学发光微流控芯片
CN105759061A (zh) * 2016-02-26 2016-07-13 厦门大学附属中山医院 基于微粒子化学发光免疫分析的人血清脂联素检测试剂盒
CN107340386A (zh) * 2017-06-09 2017-11-10 厦门大学附属中山医院 基于微粒子化学发光免疫分析的sST2检测试剂盒
CN107449898A (zh) * 2017-07-11 2017-12-08 中检国研(北京)科技有限公司 一种卡那霉素残留荧光免疫层析试纸及其制备方法
WO2018006269A1 (zh) * 2016-07-05 2018-01-11 深圳市亚辉龙生物科技股份有限公司 吖啶标记结合物及其制备方法、化学发光免疫检测试剂盒
CN108318680A (zh) * 2018-02-01 2018-07-24 北京新艾进生物科技有限公司 一种抗药抗体的检测方法及检测试剂盒
CN110487779A (zh) * 2019-09-20 2019-11-22 江苏美克医学技术有限公司 一种化学发光法定量检测阴道毛滴虫的试剂盒及其检测方法

Patent Citations (15)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20070037138A1 (en) * 2003-02-27 2007-02-15 Lars Winther Standard for immunohistochemistry, immunocytochemistry and molecular cytogenetics
CN101419234A (zh) * 2008-10-17 2009-04-29 杭州博日科技有限公司 基于微粒子的化学发光检测试剂盒
CN101446591A (zh) * 2008-11-15 2009-06-03 邹先进 P16INK4a双抗体夹心酶联免疫吸附检测试剂盒
CN101825628A (zh) * 2010-05-04 2010-09-08 武汉伊艾博科技有限公司 抗体单价化多聚标记法生产的竞争免疫检测试剂盒及其使用方法和应用
CN102565405A (zh) * 2011-08-24 2012-07-11 苏州长光华医生物试剂有限公司 一种用吖啶酯标记技术结合通用型磁颗粒进行免疫学检测的方法
CN102901828A (zh) * 2012-08-21 2013-01-30 江建华 一种检测急性心梗的试纸、试纸制备及应用方法
CN103235116A (zh) * 2013-04-13 2013-08-07 福州大学 一种抗体标记信号或核酸探针标记信号放大的方法
CN103792346A (zh) * 2014-02-14 2014-05-14 赫利森(厦门)生物科技有限公司 多聚化学发光标记试剂及其制备方法与应用
CN105259163A (zh) * 2015-10-26 2016-01-20 深圳华迈兴微医疗科技有限公司 用于全血样品检测的磁微粒直接化学发光微流控芯片
CN105759061A (zh) * 2016-02-26 2016-07-13 厦门大学附属中山医院 基于微粒子化学发光免疫分析的人血清脂联素检测试剂盒
WO2018006269A1 (zh) * 2016-07-05 2018-01-11 深圳市亚辉龙生物科技股份有限公司 吖啶标记结合物及其制备方法、化学发光免疫检测试剂盒
CN107340386A (zh) * 2017-06-09 2017-11-10 厦门大学附属中山医院 基于微粒子化学发光免疫分析的sST2检测试剂盒
CN107449898A (zh) * 2017-07-11 2017-12-08 中检国研(北京)科技有限公司 一种卡那霉素残留荧光免疫层析试纸及其制备方法
CN108318680A (zh) * 2018-02-01 2018-07-24 北京新艾进生物科技有限公司 一种抗药抗体的检测方法及检测试剂盒
CN110487779A (zh) * 2019-09-20 2019-11-22 江苏美克医学技术有限公司 一种化学发光法定量检测阴道毛滴虫的试剂盒及其检测方法

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN112114145A (zh) * 2020-09-21 2020-12-22 中山大学附属第一医院 一种检测hpv病毒感染致宫颈癌的试剂盒
CN112433048A (zh) * 2020-11-17 2021-03-02 深圳上泰生物工程有限公司 一种用于化学发光免疫法的试剂盒及其制备方法和应用
CN112595845A (zh) * 2020-12-09 2021-04-02 深圳普门科技股份有限公司 透明质酸检测试剂盒及检测系统
CN114778817A (zh) * 2022-06-17 2022-07-22 山东中鸿特检生物科技有限公司 一种检测血清和血浆中干扰素的试剂盒及检测方法与应用

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