CN110699361A

CN110699361A - 水稻抗盐胁迫相关基因Os16及其编码蛋白与应用

Info

Publication number: CN110699361A
Application number: CN201911099151.6A
Authority: CN
Inventors: 陈亮; 赵立明; 崔玉超; 李燕; 郑锡军; 李秀; 郭小玲
Original assignee: Xiamen University
Current assignee: Xiamen University
Priority date: 2019-11-12
Filing date: 2019-11-12
Publication date: 2020-01-17
Anticipated expiration: 2039-11-12
Also published as: CN110699361B

Abstract

水稻抗盐胁迫相关基因Os16及其编码蛋白与应用，涉及水稻基因。提供水稻盐胁迫抗性相关基因Os16。提供水稻盐胁迫抗性相关基因Os16编码的蛋白。所述水稻盐胁迫抗性相关基因Os16可用于提高水稻对盐胁迫的抗性，培育盐胁迫抗性增强的水稻。构建水稻盐胁迫相关基因Os16的过表达载体，并将其转化到水稻，筛选获得盐胁迫抗性增强的水稻。该基因的过表达转基因植株能够显著提高水稻对盐胁迫的抗性。为培育盐胁迫抗性增强的水稻提供了一条重要途径。在农业生产上栽培盐胁迫抗性增强的水稻，对节能节水、盐碱地的利用、增加粮食产量等具有重要意义。

Description

水稻抗盐胁迫相关基因Os16及其编码蛋白与应用

技术领域

本发明涉及水稻基因，尤其是涉及水稻抗盐胁迫相关基因LOC_Os03g16460(简称为Os16)及其编码的蛋白的应用。

技术背景

水稻是世界上主要的粮食作物之一，同时也可以作为模式植物应用于植物学研究当中。研究水稻各个时期生长发育的分子生物学机理以及对逆境胁迫的调控，不仅有助于了解水稻的生长发育机制，同时对提高水稻抗逆性，保证水稻的产量具有重要的意义。

我国人口众多，粮食安全至关重要。我国虽然幅员辽阔，国土面积广大，但人均耕地面积不足，是影响我国粮食安全的重要因素之一。同时，在干旱、半干旱等地区，还存在大面积的无法利用的盐碱地。植物，尤其是粮食作物对盐胁迫的响应机制以及抗性机制的研究是农业发展过程中重要的一环。通过筛选水稻抗盐相关的基因，分析其调控机理，培育耐盐胁迫的水稻品种，可以扩大水稻的种植面积，增加粮食产量。

水稻中存在大量调控抗盐胁迫相关的基因，研究这些基因在水稻盐胁迫中的调控作用时，可以通过目的基因的过量表达，观察目的基因在盐胁迫过程中的调控作用。本发明中通过构建水稻抗盐胁迫相关基因Os16的过表达转基因植株，使其在水稻中的表达量显著提高。利用150mM NaCl模拟盐胁迫处理，观察盐胁迫后的表型，并统计成活率，最终确定Os16在水稻盐胁迫中的调控作用。

发明内容

本发明的第一目的在于提供水稻盐胁迫抗性相关基因Os16。

本发明的第二目的在于提供水稻盐胁迫抗性相关基因Os16编码的蛋白。

本发明的第三目的在于提供水稻盐胁迫抗性相关基因Os16在培育盐胁迫抗性增强的水稻中的应用。

所述水稻盐胁迫抗性相关基因Os16的核苷酸序列如序列表中的SEQ ID No：1所示。

所述水稻盐胁迫抗性相关基因Os16编码的蛋白的氨基酸序列如序列表中的SEQID No：2所示。

所述水稻盐胁迫抗性相关基因Os16可用于提高水稻对盐胁迫的抗性，培育盐胁迫抗性增强的水稻。

所述培育盐胁迫抗性增强的水稻可采用如下方法：

构建水稻盐胁迫相关基因Os16的过表达载体，并将其转化到水稻，筛选获得盐胁迫抗性增强的水稻。

所述转化可采用农杆菌介导转化法或基因枪介导转化法。

本发明中的水稻盐胁迫相关基因Os16的过表达转基因植株株系在盐胁迫处理后，成活率显著高于对照组。表明该基因的过表达转基因植株能够显著提高水稻对盐胁迫的抗性。本发明为培育盐胁迫抗性增强的水稻提供了一条重要途径。在农业生产上栽培盐胁迫抗性增强的水稻，对节能节水、盐碱地的利用、增加粮食产量等具有重要意义。

附图说明

图1为200mM NaCl模拟盐胁迫处理结果图。处理材料为台北309野生型水稻幼苗，时期为三叶一心期。处理时的基础培养基为1/2MS，在处理过程中，在0h、1h、3h、6h、12h、24h各取样，每个时间点三个生物学重复。提取总RNA后，qPCR检测Os16的相对表达量。图中柱形图代表盐胁迫条件下Os16的相对表达量，柱形图上的竖线代表三个生物学重复的标准差。

图2为Os16的过表达转基因植株中Os16的相对表达量检测qPCR结果图。提取三叶一心期T₀代转基因幼苗以及WT幼苗的总RNA，反转录为cDNA后，利用qPCR技术检测Os16的相对表达量，图中柱形图代表Os16在过表达转基因植株的相对表达量，WT代表野生型水稻品种台北309(TP309)，Os16^OE-2、Os16^OE-4、Os16^OE-5、Os16^OE-6、Os16^OE-7、Os16^OE-9代表T₀代过表达转基因植株。柱形图代表Os16在转基因植株以及WT中的相对表达量。柱形图上的竖线代表标准差(SD)，为生物学重复的标准差。每个生物学重复包括三个技术重复。

图3为T1代三叶一心期幼苗转基因植株以及相对应的同时期TP309盐胁迫处理情况图。处理时基础培养基为1/2MS,体积为1L的1/2MS培养基的配方为：100×MS大量母液加入5ml，1000×MS微量母液加0.5ml，200×铁盐母液加2.5ml。处理的盐浓度为150mM NaCl，在处理前拍照，处理7天后拍照，然后采用1/2MS复水20天后拍照，统计成活率。

图4为盐胁迫处理后成活率统计结果图。在盐胁迫处理7天后，复水20天统计成活率。标准差(SD值)为三次重复试验的标准差。柱形图代表盐胁迫处理后的成活率，其上竖线代表三次实验重复的标准差；“**”表示Os16过表达转基因植株与野生型植株之间的成活率存在极显著差异(P<0.01)。

具体实施方式

实施例1：抗盐胁迫相关基因Os16目的片段的获得

本发明中以TP309为材料，提取总RNA，通过反转录试剂盒将RNA反转录为cDNA。以cDNA为模板，扩增目的片段可利用高保真酶(Primerstar HS DNA Polymerase)。引物序列为：

OE-Os16 For:GTCAATTACTCCCCGAGTTTG

OE-Os16 Rev:CATGGCCGGAGATCGGCTGAG

PCR扩增的反应体系为：

PCR的扩增条件为94℃预变性3min；94℃变性30s，58℃退火30s，72℃1min 10s，循环数为35个循环；72℃延伸5min；4℃保温。

回收PCR产物，将获得PCR产物加A尾。加A尾利用Easytaq DNA Polymerase。无需加入引物，72℃保温30min即可。

过表达载体为pCXUN-Myc，载体的酶切采用限制性内切酶XcmⅠ，37℃酶切3h。酶切后进行65℃热失活。热失活后进行连接，PCR产物50ng，酶切后载体100ng，5μL SolutionⅠ连接酶，16℃连接3h。热击转化进入大肠杆菌感受态细胞DH5α，37℃倒置培养过夜。然后进行PCR鉴定。PCR鉴定阳性的菌落提取质粒测序。测序正确后，将正确的质粒转化进入农杆菌感受态EHA105，用于水稻的遗传转化。20％甘油保存菌株在-80℃。

实施例2：农杆菌转化获得转基因水稻植株

第一步：水稻愈伤组织的获得

1、选取TP309水稻种子去壳，置于50mL离心管中，用无菌水洗3次，每次1min；

2、用75％乙醇消毒种子三次，每次1min，用无菌水洗净；

3、加入10％次氯酸钠溶液，抽真空8min，再置于翻转混匀仪上30n/min，摇20min；

4、用无菌水洗净水稻种子表面的次氯酸钠溶液，将种子放置于灭菌的滤纸上吹干；

5、用镊子将种子接种于NBD培养基上，每个平皿大约接种13粒水稻种子，黑暗条件下培养21d后进行掐芽处理，掐芽时注意完全掐去胚芽鞘、根等，只留下生长状态良好的愈伤组织(一般为橘黄色)，再培养3～7d用于农杆菌侵染。

第二步：农杆菌浸染液制备

1、小量YEP培养基活化农杆菌，28℃200rpm(加入Kan 50mg/L、Rif 50mg/L)放4℃备用；

2、取活化菌液按1︰700接种到100ml YEP培养基(加入Kan 50mg/L、Rif 50mg/L)中。28℃200rpm震荡培养，每次间隔1h测定一次OD₆₀₀值。待OD₆₀₀为0.3～0.8时即可用于侵染；

3、将活化的农杆菌分装到50ml离心管中，4000rpm室温(～25℃)离心8min，弃上清，收集菌体；

4、用适量AAM-As培养基重悬菌体(1:1000加入100μM As)，最终使菌液OD₆₀₀为0.5左右，颠倒混匀即可。

第三步：愈伤组织的浸染、分化、生根

1、挑选生长状况良好、结构紧密的愈伤组织置于农杆菌侵染液中，充分颠倒混匀后，室温静置浸染30min；

2、倒掉农杆菌侵染液，将浸染过后的愈伤组织转移至装有灭菌滤纸的平皿中充分吹干(以愈伤组织表面没有明显水渍为宜)，转移至NBD-As共培养培养基中，26℃黑暗条件下培养3d；

3、愈伤洗涤。将共培养3d后的愈伤组织移至三角瓶，用灭菌水充分洗净，再用加有125mg/L Cef和125mg/L Carb的无菌抽真空5min，28℃200rpm振荡20min；

4、将洗净的愈伤组织置于灭菌滤纸上充分吹干后移至筛选培养基，26℃黑暗条件下培养。

5、每隔20d后继代到新的筛选培养基，待浸染后的愈伤在筛选培养基中长出新的阳性愈伤，将阳性愈伤移至分化培养基；

6、待分化出新的水稻植株后，将水稻转基因苗移至生根培养基；

7、在生根培养基中生长一段时间后，移到水中驯化培养后，移栽到土中。置于自然条件下培养。

第四步：转基因苗鉴定

1、PCR鉴定。取三叶一心期幼苗叶片，CTAB法提取叶片DNA，然后通过PCR扩增，由于过表达载体中采用玉米Ubiquitin启动子，所以本发明中设计该启动子上的特异性引物UbiFor引物用于转基因植株的鉴定。反向引物采用扩增目的片段的反向引物。引物序列为：

Ubi For：TTTTAGCCCTGCCTTCATACGC

OE-Os16 Rev:CATGGCCGGAGATCGGCTGAG

以TP309为阴性对照，以过表达载体为阳性对照。PCR鉴定时与阳性对照条带一致的为阳性转基因植株，与阴性对照一致的假阳性转基因植株。

2、qPCR检测Os16在过表达转基因植株中的表达量。首先提取过表达转基因植株的总RNA，每个株系取3个生物学重复，每个生物学重复取3个技术重复，以水稻actin为内参基因。

qPCR引物序列为：

qPCR Os16 For:GCACTATCCTCCTTGATTCG

qPCR Os16 Rev:CAGTGCTTTCCTCTGAAACC

Actin For:TGTATGCCAGTGGTCGTACCA

Actin Rev:CCAGCAAGGTCGAGACGAA

qPCR程序为：95℃30s预变性，95℃5s变性，60℃30s退火及延伸，循环数为40个。在每个循环60℃延伸最后5s进行荧光信号采集。扩增完成后，从60℃开始升温，每隔0.3℃采集一次信号，直至升高到95℃。程序完成后导出数据进行分析。数据分析时采用2^-ΔΔCT相对定量的方法对目的基因相对表达量进行分析。qPCR结果如图2所示：相对于TP309，除3#过表达株系表达量提高20倍左右外，其他5个过表达株系的相对表达量都在40～50倍之间。因此，在过表达转基因植株中Os16表达量均显著高于WT。

实施例3：过表达转基因植株抗盐胁迫能力分析

首先利用TP309进行盐胁迫处理分析Os16的响应情况。具体过程如下：将脱壳的TP309水稻种子，利用上述的方法进行消毒之后，播种在固体1/2MS培养基中。待幼苗发芽后，长出主根后移出组培瓶，转移到黑色培养盒，在1/2MS培养基中进行水培培养。在水稻幼苗长至21d时，挑选生长状态一致的幼苗进行处理，处理时采用液体1/2MS(含有200mMNaCl)培养进行水培。在处理之前即处理0h时取样作为对照组，然后分别在1h、3h、6h、12h、24h取样，每个时间点的取样重复为三个生物学重复。放入液氮中速冻。然后转移至-80℃冰箱备用。提取总RNA后反转录为cDNA，以cDNA为模板进行qPCR分析Os16的表达情况。结果如图1所示：在盐胁迫处理时，随着处理时间的延长，Os16的表达量随之增加，在处理12h时，表达量达到最大。因此，Os16对水稻抗盐胁迫起正向调控作用。接着对Os16过表达转基因植株和TP309进行盐胁迫处理，处理后观察胁迫表型(图3)，并统计成活率。统计结果如图4所示：在150mM NaCl处理后，TP309的成活率为25％，而Os16过表达植株的成活率为75％，Os16过表达植株的成活率显著高于TP309。说明Os16可以提高水稻对盐胁迫的耐受性。

序列表

<110> 厦门大学

<120> 水稻抗盐胁迫相关基因Os16及其编码蛋白与应用

<130> 1

<160> 8

<170> SIPOSequenceListing 1.0

<210> 1

<211> 3787

<212> DNA

<213> Oryza sativa

<400> 1

ccggtgcagc acgagaagaa gaaggggaga gaaaaatatc tcgcgcttca cacgcaacgc 60

aagaactcga cgaggcgagc gagcgatcga gcggacaccg gcggcatcgt gggaacggga 120

aggcgtgggg gagggaggag ggcgacggta ggggatggcc ggagatcggc tgagctggtc 180

ggggctgctg aaatggagcc tctcctacgc cgacgggacg cggccgtctc gcgccatcag 240

gtgaggagga tttggcttgc ggagggttga ttgctgttgg ggaaattgga atgtggcggg 300

ttcttttttt ccgtttcttt tcttttcttt cttcttgttt gcttgagttg tgtggctgat 360

ggtggagagt tggttggggg tgtgtgggtg gtggtgcgcg gcagcgagga ggagcggagg 420

tggttggcgg aggcggtgga gcgtcacatg atggtggacg tggtgagccg catgagggag 480

atcgcgctgc tcatgagcac cccgctctcc gtcctggagg cgcacggcat cacccccgac 540

gacatcgaag gtatgtttcg gttgggttgt cagtacagac cagcggttgt ggttgatttg 600

aaggattaag catgaatttg agcgatcaat ttgcgattcg gatgatgaac taggaatgat 660

ggatattcgg gaactaggaa tatggattct tgactctctt ttcttttcgg ttggcgattt 720

ggatgatgaa ctagggatga tggattttcg ggaactagga atatggattc ttgactctct 780

ttttttaggt cggccgcgga gaagggttct tgtctactga attctttgta aaattcgtgc 840

tatggtgtta ccaacttgga agtgccgggc gtaacatatg gtactcggga aatgttctca 900

gcaaattgaa aattttatat catctaaaag ttacttacgg ttttcgcaat ccgtgcctac 960

ttttgagatt ggcaaggatt cgtttttccg ttgttctgaa atttcccggg aaggcgttat 1020

tagagtgcgt ctgcatgatt gcatctcttt gcaagttcat gatattccct ctgttcttct 1080

gctgaaactg actggagtgg atttgaatat tgcaggttta ctggctgagt tgcaggtaca 1140

tgtcgagtct attgacatgg caaacggtac gtctagccgt ggtcctctag actctagagc 1200

atcaccattt tgttccatgc tttactactg ttgttcatca tgcttcatct gtgttgtatg 1260

ttcatcattc gaaagctatg atgcataatc acatatctac cattctatat tagcataacc 1320

acaaaagaac tgaggagcct tcacattcac acaattcaag ctagggtctg gtccttgaac 1380

accattttac aaaatgtaca tcccaaacag cactagccgt ccaatatatg tgcgcctttg 1440

ttagaactct ccaccaccat gagtttgtac tctttgcata atctatgttt cttactattg 1500

tattgctgag ttgctatata tgtgatctca aatccattcc ttaagttaaa tctacaattc 1560

catctgtagg aaacaaatgt agcacttgga ggcatacatt actggtgtca aaatgagtac 1620

tttcataaca ttggatgatt caaaggcatt tgtagttact gttgaggtgg ctaaacaaat 1680

gggcggaggc aaccatagtg ttttttgcaa taaaacattg tttttcaggt gaattctcag 1740

cttccccttc caatacagca ctaatacaac ttccaagggg agctgacaga tagttgtcgg 1800

attcctagac tcacttcaca aaccaattca ataagacaaa aaaaaagttt gaaatctgga 1860

aacaaggagc atgtgacagt taacaaccaa atgttaacat attgtcggtg tgaattgttt 1920

catatgtttg taactttgta tgcatcatct gttgacctat tttgtttttc tttagatctt 1980

cattctgttg gtggcttggt tccggttatc aagtacctca gaaattctaa tgctcgtatc 2040

cgagccagag cagctgatgt ggtaactaca gttgttcaaa acaatccaac tagtcagcag 2100

ctggtcatgg aagccagtgg ctttgatccc cttttatcta attttacgtc agatcctgat 2160

ctcactgccc gcataaaagc tcttggtgca ctatcctgta agtatgttgt ctatcttttt 2220

cagatggtga caataataat aataccttga tgttcccctc attgacattg ttcccatttc 2280

atgttcagcc ttgattcgga acaacaaacc aggtgtttct gcttttcgtc tagccaatgg 2340

atatgcagga ctaagagatg cattgacttc agaaagtgca aggtttcaga ggtactttag 2400

tatagttgat ctgacctgag ccatcttatt tagtatttgg caacattgac ttcagataag 2460

tgaggagtat ttggcaatgc ttatgtgctt ttgactgaca cgcatgctgt ctcttccagg 2520

aaagcactga acctcacgaa ttatctgctt agtgaaagcc attccggttg ctcggtgttt 2580

gcacagctag gtttcccgcg gcttatgatg catttggtgt ccagtgatga cttgggtgtt 2640

cgagaagctg cattaggagg actgcttgag cttgcaaggg acacgacact gggaagtagg 2700

agtctactag cagatcatga caggcttcga cggcttctcc aggcacgtat agagagaata 2760

aggatgatgg ctccagaaga ccttgatgct gcacgcgagg agaggcaact cgtagattca 2820

ctgtggatta cgtgctacca tgaaccgtcc acacttcatg tggaaggtct tcttgttttg 2880

cctggggagg aatgtttcga acaacctcct gacgtggctg gtagattctt cgagcctctg 2940

cggcgaagtt cggcaaggag agcaccttct aatgagagat cagatccagg agatggaact 3000

gggggaggaa tgatgctgct tttaggtcca tccccaggca gtagatcaaa ctcggggagt 3060

aattgatcac tctgggatgt gaattacatg gaaaaggaga ctgggagtct gctgtcctct 3120

tatgtacatt gtgcagggct agtgctatag agtgttgctg ttaaggggct agtaaaaagt 3180

aaataaataa tttcccagtt tcgaagaaat gtaagtggaa aatatgtgtg atgttcagca 3240

gtgtataata tgtctgatgt ttagcagtgt gtagtctcat tatacaatag aaatgcgaaa 3300

tacttttgtg taagagacct aaacgatggt ggggtgatag tatgaaatgt aaatgtagcg 3360

cccaaaatag aagtcaccct gtacatgtta tgttgtatgt ggaaggagaa tacaggctga 3420

aattatctct gcatcacatg ttaaaaagat gttgaatcaa ttaacctggg ggtgaataga 3480

tcatttcctc cgactattct gcatttctgc gttaccccca acctacaaac cttcttgttt 3540

ctgctcgtct ctggctgatc atccccatta caaagaagtc tccacccaac tatagctatc 3600

aagcttcttc agacgccgtc tcttcaccaa cctcttgatc ttgaagacat catcctgctt 3660

gccagcgttc gccagcgcac tcgagagcag gaggcagctc gccgcattgt ctggctcgac 3720

tgcaagcagg cgcgacgccg caagctccgc gagctcgatg tttccatggc ttcggcacgc 3780

tcccagc 3787

<210> 2

<211> 384

<212> PRT

<213> Oryza sativa

<400> 2

Met Ala Gly Asp Arg Leu Ser Trp Ser Gly Leu Leu Lys Trp Ser Leu

1 5 10 15

Ser Tyr Ala Asp Gly Thr Arg Pro Ser Arg Ala Ile Ser Glu Glu Glu

20 25 30

Arg Arg Trp Leu Ala Glu Ala Val Glu Arg His Met Met Val Asp Val

35 40 45

Val Ser Arg Met Arg Glu Ile Ala Leu Leu Met Ser Thr Pro Leu Ser

50 55 60

Val Leu Glu Ala His Gly Ile Thr Pro Asp Asp Ile Glu Gly Leu Leu

65 70 75 80

Ala Glu Leu Gln Val His Val Glu Ser Ile Asp Met Ala Asn Asp Leu

85 90 95

His Ser Val Gly Gly Leu Val Pro Val Ile Lys Tyr Leu Arg Asn Ser

100 105 110

Asn Ala Arg Ile Arg Ala Arg Ala Ala Asp Val Val Thr Thr Val Val

115 120 125

Gln Asn Asn Pro Thr Ser Gln Gln Leu Val Met Glu Ala Ser Gly Phe

130 135 140

Asp Pro Leu Leu Ser Asn Phe Thr Ser Asp Pro Asp Leu Thr Ala Arg

145 150 155 160

Ile Lys Ala Leu Gly Ala Leu Ser Ser Leu Ile Arg Asn Asn Lys Pro

165 170 175

Gly Val Ser Ala Phe Arg Leu Ala Asn Gly Tyr Ala Gly Leu Arg Asp

180 185 190

Ala Leu Thr Ser Glu Ser Ala Arg Phe Gln Arg Lys Ala Leu Asn Leu

195 200 205

Thr Asn Tyr Leu Leu Ser Glu Ser His Ser Gly Cys Ser Val Phe Ala

210 215 220

Gln Leu Gly Phe Pro Arg Leu Met Met His Leu Val Ser Ser Asp Asp

225 230 235 240

Leu Gly Val Arg Glu Ala Ala Leu Gly Gly Leu Leu Glu Leu Ala Arg

245 250 255

Asp Thr Thr Leu Gly Ser Arg Ser Leu Leu Ala Asp His Asp Arg Leu

260 265 270

Arg Arg Leu Leu Gln Ala Arg Ile Glu Arg Ile Arg Met Met Ala Pro

275 280 285

Glu Asp Leu Asp Ala Ala Arg Glu Glu Arg Gln Leu Val Asp Ser Leu

290 295 300

Trp Ile Thr Cys Tyr His Glu Pro Ser Thr Leu His Val Glu Gly Leu

305 310 315 320

Leu Val Leu Pro Gly Glu Glu Cys Phe Glu Gln Pro Pro Asp Val Ala

325 330 335

Gly Arg Phe Phe Glu Pro Leu Arg Arg Ser Ser Ala Arg Arg Ala Pro

340 345 350

Ser Asn Glu Arg Ser Asp Pro Gly Asp Gly Thr Gly Gly Gly Met Met

355 360 365

Leu Leu Leu Gly Pro Ser Pro Gly Ser Arg Ser Asn Ser Gly Ser Asn

370 375 380

<210> 3

<211> 21

<212> DNA

<213> Oryza sativa

<400> 3

gtcaattact ccccgagttt g 21

<210> 4

<211> 21

<212> DNA

<213> Oryza sativa

<400> 4

catggccgga gatcggctga g 21

<210> 5

<211> 20

<212> DNA

<213> Oryza sativa

<400> 5

gcactatcct ccttgattcg 20

<210> 6

<211> 20

<212> DNA

<213> Oryza sativa

<400> 6

cagtgctttc ctctgaaacc 20

<210> 7

<211> 21

<212> DNA

<213> Oryza sativa

<400> 7

tgtatgccag tggtcgtacc a 21

<210> 8

<211> 19

<212> DNA

<213> Oryza sativa

<400> 8

ccagcaaggt cgagacgaa 19

Claims

1.水稻盐胁迫抗性相关基因Os16，其特征在于其核苷酸序列如序列表中的SEQ ID No：1所示。

2.如权利要求1所述水稻盐胁迫抗性相关基因Os16编码的蛋白，其特征在于其氨基酸序列如序列表中的SEQ ID No：2所示。

3.如权利要求1所述水稻盐胁迫抗性相关基因Os16在提高水稻对盐胁迫的抗性，培育盐胁迫抗性增强的水稻中的应用。

4.如权利要求3所述应用，其特征在于具体方法为：构建水稻盐胁迫相关基因Os16的过表达载体，并将其转化到水稻，筛选获得盐胁迫抗性增强的水稻。

5.如权利要求4所述应用，其特征在于所述转化采用农杆菌介导转化法或基因枪介导转化法。