CN110627788A - 一种印乌碱砂炒产物及其制备方法和用途 - Google Patents
一种印乌碱砂炒产物及其制备方法和用途 Download PDFInfo
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Abstract
本发明提供了式I所示化合物、或其盐;其中,R1选自氢、C1~C8烷基、C1~C8烷氧基、卤素、‑OC(O)R2;R2选自C1~C8烷基。本发明从印乌碱炮制品中分离得到的化合物mithaconitine,不仅不会引起心律失常,反而还具有优异的治疗心律失常作用,可用于制备治疗心律失常的药物,可以大大降低含有印乌碱的乌头类药物的毒性,具有良好的应用前景。
Description
技术领域
本发明属于医药化学领域,具体涉及一种印乌碱砂炒产物及其制备方法和用途。
背景技术
毛茛科(Ranunculaceae)乌头属Aconitum L.植物是一类重要的药用植物,主要治疗跌打损伤痛、风湿痛、腰腿痛等疾病。全世界有300余种,分布于北半球温带地区;我国有200多种,主要分布于四川西部、云南北部以及西藏东部的高山地带,以及东北、西北和内蒙古地区,其中有40种可供药用,如川乌A.carmichaelii/Radix、北乌头A.kusnezoffiiReichb.、黄花乌头A.coreanum(H.Lév.)Rapaics、短柄乌头A.brachypodum Diels、铁棒锤A.pendulum Busch、康定乌头Aconitum tatsienense Finet&Gagnep.等。但乌头类植物含有二萜生物碱成分,具有较强的毒性,中毒表现为唇、舌、四肢麻木、心悸、心率减慢或心动过速、肌肉强直、呼吸痉挛、窒息而危及生命。因此,需要炮制后使用。
目前,中医对于乌头类药材的炮制主要采用水煮法(加水煮沸4~6小时)及蒸制法(蒸6~8小时),其炮制减毒原理为:有毒生物碱通过酯键水解反应,由双酯型生物碱依次转化为毒性较低的单酯型和醇胺型生物碱,如乌头碱转化为苯甲酰乌头原碱和乌头原碱。
与中医采用水煮法和蒸制法不同,藏、羌医通常采用砂炒法炮制乌头类药材,仅需炒制5~10分钟即可达到减毒的目的。但砂炒法的炮制原理尚未完全阐明,砂炒过程中毒性生物碱的结构如何转化,转化产物与原型生物碱相比,毒性是否降低尚未明确。并且由于砂炒法的炮制原理尚未阐明,导致砂炒品的质量仍以药材炒至“外皮焦黄,断面发黄”等主观经验来判断,缺乏定量化的质控指标。
另外有研究表明,有些二萜生物碱虽然结构相近,但毒性和功效却不相同,例如有的能够引起心律失常,具有心脏毒性,有的却有治疗心律失常的作用。因此,在比较砂炒产物与原型生物碱毒性的基础上,有必要对砂炒产物是否具有抗心律失常作用进行研究。
发明内容
本发明的目的是提供一种印乌碱砂炒产物及其制备方法和用途。
本发明提供了式I所示化合物、或其盐:
其中,
R1选自氢、C1~C8烷基、C1~C8烷氧基、卤素、-OC(O)R2;
R2选自C1~C8烷基。
进一步地,
R1选自氢、甲氧基、-OC(O)R2;
R2选自C1~C8烷基。
进一步地,所述化合物为式II所示化合物:
本发明提供了一种印乌碱炮制产物的制备方法,它包括如下步骤:取印乌碱溶于溶剂中,蒸干溶剂,油浴,即得;所述油浴为140~180℃油浴10~40min。
进一步地,所述溶剂为二氯甲烷;和/或,所述印乌碱和溶剂的质量体积比为(5~10)∶1(mg/mL);和/或,所述蒸干溶剂为用旋转薄膜蒸发仪在40℃条件下蒸干溶剂;和/或,所述油浴为140℃油浴20~40min,或160℃油浴10~40min,或180℃油浴10~30min;
优选地,所述印乌碱和溶剂的质量体积比为5.2∶1(mg/mL);和/或,所述油浴为160℃油浴30min。
本发明还提供了一种印乌碱炮制产物,它是由前述的制备方法制备而得。
本发明还提供了一种前述化合物、或其盐的制备方法,它包括如下步骤:
(1)取印乌碱溶于溶剂中,蒸干溶剂,油浴,得印乌碱炮制产物;
(2)将印乌碱炮制产物进行硅胶柱层析,梯度洗脱后合并具有式II所述化合物的洗脱液流分,得到组分B;
(3)将组分B过硅胶柱色谱,洗脱后,即得;
步骤(1)中,所述油浴为140℃油浴20~40min,或160℃油浴10~40min,或180℃油浴10~30min。
进一步地,
步骤(1)中,所述溶剂为二氯甲烷;
和/或,步骤(1)中,所述印乌碱和溶剂的质量体积比为(5~10):1(mg/mL);
和/或,步骤(1)中,所述蒸干溶剂为用旋转薄膜蒸发仪在40℃条件下蒸干溶剂;
和/或,步骤(1)中,所述油浴为160℃下油浴30min;
和/或,步骤(2)中,所述硅胶柱为200-300目的硅胶柱;
和/或,步骤(2)中,所述梯度洗脱的洗脱剂为石油醚-丙酮-三乙胺混合溶液,石油醚-丙酮-三乙胺的体积比依次为8∶1∶0.01,6∶1∶0.01,3∶1∶0.01;
和/或,步骤(2)中,所述梯度洗脱中,每个梯度洗脱液的用量与印乌碱炮制产物的体积质量比为(10~20)∶3(mL/mg);
和/或,步骤(3)中,所述硅胶柱为200-300目的硅胶柱;
和/或,步骤(3)中,所述洗脱的洗脱剂为石油醚-丙酮-三乙胺混合溶液,石油醚-丙酮-三乙胺的体积比为5∶1∶0.01;
优选地,
步骤(1)中,所述印乌碱和溶剂的质量体积比为5.2∶1(mg/mL);
和/或,步骤(2)中,所述梯度洗脱中,每个梯度洗脱液的用量与印乌碱炮制产物的体积质量比为10∶3(mL/mg)。
本发明还提供了前述的化合物、或其盐在制备治疗心律失常的药物中的用途。
本发明还提供了一种药物,它是由前述的化合物、或其盐为活性成分,加上药学上接受的辅助性成分或辅料制备而成的制剂。
本发明中,碳氢基团中碳原子含量的最小值和最大值通过前缀表示,例如,前缀Ca~Cb烷基表明任何含“a”至“b”个碳原子的烷基,因此,例如,C1~C6烷基是指包含1~6个碳原子的烷基。又例如,前缀Ca~Cb烷氧基表明任何含“a”至“b”个碳原子的烷氧基,因此,例如C1~C6烷氧基是指包含1~6个碳原子的烷氧基。
本发明从印乌碱炮制品中分离得到的化合物mithaconitine,不仅不会引起心律失常,反而还具有优异的治疗心律失常作用,可用于制备治疗心律失常的药物,可以大大降低含有印乌碱的乌头类药物的毒性,具有良好的应用前景。
显然,根据本发明的上述内容,按照本领域的普通技术知识和惯用手段,在不脱离本发明上述基本技术思想前提下,还可以做出其它多种形式的修改、替换或变更。
以下通过实施例形式的具体实施方式,对本发明的上述内容再作进一步的详细说明。但不应将此理解为本发明上述主题的范围仅限于以下的实例。凡基于本发明上述内容所实现的技术均属于本发明的范围。
附图说明
图1为印乌碱在不同炮制温度和时间条件下的色谱图;A:120℃;B:140℃;C:160℃;D:180℃。
图2为印乌碱在不同温度、时间条件下含量变化趋势图。
图3为化合物1(mitiaconitine)的1H-1H COSY(-),HMBC(H→C)and NOESY相关谱。
图4为SD大鼠特征心电图;A为正常心电图;B、C、D分别为室性早搏、室性心动过速、室颤心电图。
图5为Mithaconitine对SD大鼠VPB潜伏期的影响;与模型对照组比较:*P<0.05;与普罗帕酮组比较:#P<0.05;与利多卡因组相比:+P<0.05。
图6为Mithaconitine不同剂量组VT发生率;与≤0.15mg/kg剂量组比较:*P<0.05。
图7为各受试药物组心律失常完全抑制率;与≤0.15mg/kg剂量组比较:*P<0.05。
具体实施方式
1、仪器与试药
Agilent 1260型高效液相色谱仪,Agilent Chemastation色谱工作站;BL-420F多功能生理记录仪(成都泰盟软件有限公司);CPA2250电子分析天平(德国Sartorius公司);ULUP-I-10T优普超纯水机(成都超纯科技有限公司);HH-SJ集热式磁力搅拌器(金坛市城东新瑞仪器厂);XT-4显微熔点仪(上海精密科学仪器有限公司);Perkin-Elmer341polarimeter旋光仪;Bruker Avance 600spectrometer核磁共振仪,TMS为内标;BrukermicrO-TOF-Q-II mass spectrometer质谱仪;薄层色谱硅胶G和柱色谱硅胶(200-300目)(青岛海洋化工厂);印乌碱(T-043-161216,纯度>98%,陕西昊辰生物科技有限公司);乌头碱(WTZ10013,纯度99%,陕西昊辰生物科技有限公司);盐酸普罗帕酮(101190-201702,纯度99.8%,中国食品药品检定研究院);盐酸利多卡因(100341-201403,纯度93.4%,中国食品药品检定研究院);乌拉坦(2017090501,成都市科龙化工试剂厂);生理盐水(L218090910,四川科伦药业股份有限公司);色谱所用石油醚沸点60-90℃,展开比例为V/V;显色剂为改良碘化铋钾试剂;乙腈为色谱纯(美国Fisher公司);水为超纯水;其余试剂均为分析纯。
2、实验动物
SPF级健康成年SD大鼠,雌雄兼用,体重(200±20)g均由成都达硕实验动物有限公司提供,生产许可证号:SCXK(川)-2015-030。
实施例1、印乌碱炮制工艺参数的筛选
1、色谱条件
色谱柱:COSMOSIL PAK 5C18-MS-II(4.6mm×250mm,5μm);流动相:乙腈-0.03mol/L碳酸氢铵溶液(浓氨水调pH 9.5)(43:57)等度洗脱;柱温:35℃;流速:1.0mL/min;检测波长:230nm。
2、对照品溶液的制备
取印乌碱对照品46mg,精密称定,置100mL量瓶中,加二氯甲烷制成浓度为0.4626mg/mL的反应储备液。取4mL该反应储备液,置10mL量瓶中,挥干溶剂,加0.1%盐酸-甲醇定容,制成0.185mg/mL的对照品溶液,摇匀,过微孔滤膜(0.45μm),取续滤液,即得对照品溶液。
3、炮制品供试溶液的制备
取圆底烧瓶20个,分为120℃、140℃、160℃、180℃四个温度组,每个温度下设置五个时间点(1、10、20、30、40min),分别加入“2、对照品溶液的制备”中的反应储备液4mL,挥干溶剂后,按照设置的温度、时间进行加热,反应结束后,放冷,加0.1%盐酸-甲醇溶解,并转移至10mL量瓶中,加0.1%盐酸-甲醇定容至刻度,作为炮制品供试溶液,摇匀,过微孔滤膜(0.45μm),取续滤液,即得。
4、方法学考察
4.1线性关系、检测限和定量限考察
取印乌碱对照品适量,加0.1%盐酸-甲醇制成浓度为2mg/mL的储备液,精密吸取该储备液0.025、0.1、0.2、0.4、0.8、1.0、2.0、3.0mL置10mL量瓶中,加0.1%盐酸-甲醇定容至刻度,制成浓度为5μg/mL、20μg/mL、40μg/mL、80μg/mL、160μg/mL、200μg/mL、400μg/mL、600μg/mL的溶液,摇匀,过微孔滤膜(0.45μm),取续滤液,即得。
精密吸取上述对照品溶液10μL注入液相色谱仪,按“1、色谱条件”的参数,测定峰面积,并以进样量为横坐标(X),以峰面积为纵坐标(Y),进行线性回归,得回归方程为Y=11.913X+1.3739,r=0.9992,表明在5~600μg/mL范围内线性关系良好。
根据3倍和10倍信噪比所对应的印乌碱的浓度,确定方法的检测限(LOD)为1.075μg/mL;定量限(LOQ)为3.44μg/mL。
4.2精密度试验
精密吸取印乌碱对照品溶液10μL,按“1、色谱条件”,连续进样6次,得印乌碱峰面积的RSD为1.06%,表明精密度良好。
4.3稳定性试验
精密吸取印乌碱对照品溶液于O、1、2、4、8、12h,按“1、色谱条件”进行测定,进样量10μL。测得印乌碱峰面积的RSD为1.30%,表明对照品溶液在12h内稳定性良好。
5、试验结果
分别吸取对照品与炮制品供试溶液注入高效液相色谱仪,按“1、色谱条件”进行测定,得到不同温度、时间条件下色谱图。通过测定印乌碱峰面积并比较不同加热温度、时间的供试品中有无新的色谱峰出现,能够直观地反映出印乌碱在不同温度、时间条件下的转化过程,结果见图1、图2、表1。
表1不同炮制品中印乌碱含量测定结果(μg/mL)
炮制前印乌碱含量为185.04μg/mL,在160℃加热炮制10min后,含量降为74.82μg/mL,炮制20min后含量降为38.47μg/mL,180℃炮制10min后,含量降为8.65μg/mL,20min时,含量降为0μg/mL。观察图1-C、图1-D发现,160℃-10~30min及180℃-10~20min色谱图中,在保留时间8min、15min和43min左右处,出现了三个新的色谱峰,提示在这两个温度及相应时间条件下,印乌碱有三个转化产物。
实施例2、印乌碱炮制转化成分的分离和结构鉴定
1、柱色谱分离样品的制备
取印乌碱520mg,置250ml圆底烧瓶中,加二氯甲烷100ml溶解,用旋转薄膜蒸发仪在40℃条件下蒸干溶剂,使印乌碱均匀地附着在圆底烧瓶内壁,并于160℃下油浴30min,取出,放凉,得到印乌碱炮制产物(450mg),供上柱用。
2、分离纯化
将印乌碱炮制产物进行硅胶柱层析(200-300目,120g),石油醚-丙酮-三乙胺(8∶1∶0.01,6∶1∶0.01,3∶1∶0.01)梯度洗脱,每个梯度1.5L,薄层板检视,合并含有化合物1的流分,得到组分B。组分B(260mg)进一步采用硅胶柱色谱(200-300目,120g),洗脱剂为石油醚-丙酮-三乙胺(5∶1∶0.01),得到化合物1(90mg)。
化合物1结构式的解析过程如下:
化合物1:白色晶体,mp:109~111℃,(c=1.05,CH3OH),C32H43NO8。HR-ESI-MS:m/z 570.3060[M+H]+(calcd.570.2989),从NMR谱(表2)可以看出,化合物1属于乌头碱型二萜生物碱,具有一个-N-CH2-CH3(δH 1.09,3H,t,J=7.3Hz;δH 2.56,2.65,each1H,m;δC 13.6q,49.8t),四个甲氧基(δH 3.24,3.27,3.39,3.32,each 3H,s;δC 56.4q,58.1q,59.3q,57.2q),以及一个苯甲酰基(δH 7.42,2H,t,J=7.7Hz;7.53,1H,t,J=7.7Hz;8.05,2H,d,J=7.7Hz;δc 168.1s,130.4d,129.9d(2C),128.2d(2C),132.9d);δH 4.96(1H,d,J=3.7Hz)归属于H-14β,表明苯甲酰基连接于C-14位;HMBC远程相关谱表明:1-OCH3(δH3.24,s),6-OCH3(δH 3.27,s),16-OCH3(δH 3.39,s)18-OCH3(δH 3.32,s)分别与C-1(δC83.2,d),C-6(δC 83.6,d),C-16(δC 83.5,d),C-18(δC 76.7,t)相连(图3);从13C-NMR谱中可以看出化合物1具有七个含氧碳信号,因此,除了苯甲酰基和四个甲氧基外,化合物1还具两个羟基,HMBC谱也表明C-3(δC 72.0,d)与H-2(δH 2.18,2.26),H-5(δH 2.10),H-18(δH 2.69,3.79)相关;C-13(δC 77.6,s)与H-9(δH 3.06),H-10(δH 2.22),H-12(δH 2.25,2.00),H-14(δH 4.96),H-16(δH 3.47)相关,证实这两个羟基分别位于C-3位和C-13位(表2)。
化合物1与印乌碱的NMR图谱相似,区别在于:(1)印乌碱的C-8位有一个乙酰氧基,而化合物1在C-8位没有乙酰氧基;(2)13C-NMR中,印乌碱的C-8、C-15的化学位移分别为85.3和39.4,而化合物1的C-8、C-15的化学位移分别向低场迁移到146.6和116.3。因此,1H-NMR中,δH 5.57(1H,d,J=6.2Hz)归属为H-15,表明C-8和C-15之间形成了双键。根据1H-NMR,13C-NMR及2D-NMR(HMBC,1H-1H COSY,NOESY)数据(表2),可以确定化合物1的结构为mithaconitine。
化合物1结构式如下所示:
表2化合物1(mithaconitine)的NMR数据
以下通过具体的试验例证明本发明的有益效果。
试验例1、印乌碱及其砂炒产物mithaconitine的心脏毒性试验
1、试验方法
取SD大鼠20只,雌雄各半,随机分为2组(n=10),即印乌碱组和mithaconitine(实施例2制备的化合物1)组,通过前期预实验,确定0.06mg/kg的印乌碱,即可引起大鼠室性心律失常,如室性早搏(Ventricular premature beat,VPB)和室性心动过速(Ventriculartachyrhythmia,VT);通过观察相同剂量下其砂炒产物mithaconitine是否引起心律失常,可直观反映出经过炮制后,印乌碱结构上的改变是否引起其毒性的降低。
数据采用SPSS统计软件处理,VPB潜伏期实验结果以表示,组间比较采用单因素方差分析;VT发生率及心律失常完全抑制率组间比较采用卡方分析,均以P<0.05表示差异具有统计学意义。
2、试验结果
在0.06mg/kg剂量下,印乌碱可引起大鼠室性心律失常(包括VPB和VT),胸部伴随出现规律的抽搐现象;在相同剂量下,mithaconitine组大鼠,未出现心律失常反应(包括心电图变化和大鼠的行为反应)。因此,与印乌碱相比,其砂炒产物mithaconitine的毒性降低,如表3、图4所示。
表3印乌碱及砂炒产物的毒性比较
“-”表示在给药30min内,未出现VPB。
试验例2、Mithaconitine的抗心律失常活性研究
1、试验方法
取125只SD大鼠,雌雄各半,随机分为9组,即溶剂对照组(4ml 1%盐酸乙醇,加生理盐水定容至100ml)、模型对照组(乌头碱,0.03mg/kg)、普罗帕酮组(3.20mg/kg)、利多卡因组(5.00mg/kg)及不同剂量mithaconitine组(0.05mg/kg、0.10mg/kg、0.15mg/kg、0.30mg/kg、0.40mg/kg)。各组SD大鼠,乌拉坦1.2g/kg腹腔注射麻醉后,仰位固定,针型电极插入四肢皮下,静置观察并记录II导联心电图(Electrocardiogram,ECG);20min后,mithaconitine各剂量组分别经股静脉快速推注不同剂量的mithaconitine,两个阳性药对照组分别注射相应剂量的普罗帕酮和利多卡因,模型对照组给等量生理盐水,溶剂对照组给对应剂量的溶剂。观察大鼠反应并记录II导联ECG;10min后,各组(除溶剂对照组外)再经股静脉快速推注乌头碱(0.03mg/kg),分别记录出现VPB、VT等心律失常现象的时间(即潜伏期)并观察静注完乌头碱30min内是否有未出现心律失常的情况发生。
数据采用SPSS统计软件处理,VPB潜伏期实验结果以表示,组间比较采用单因素方差分析;VT发生率及心律失常完全抑制率组间比较采用卡方分析,均以P<0.05表示差异具有统计学意义。
2、试验结果
(1)Mithaconitine对乌头碱诱发大鼠VPB潜伏期的影响
VPB是心律失常发生初期的表现,与正常心电图相比,主要表现为QRS波提前出现,形态异常,T波与QRS主波方向相反,且P波消失。VPB潜伏期是指注射乌头碱后,至VPB出现的时间,该时间段越长,表明受试化合物的抗心律失常作用越强。
乌头碱致心律失常模型对照组中,SD大鼠VPB潜伏期为(97.7±23.7)s;普罗帕酮组(Pro)为(142.3±17.5)s,利多卡因组(Lid)为(180.9±51.0)s;与模型对照组相比,两种阳性药均有显著性差异(P<0.05)。Mithaconitine不同剂量组(0.05mg/kg、0.10mg/kg、0.15mg/kg、0.30mg/kg、0.40mg/kg)的VPB潜伏期分别为:(237.0±129.8)s,(245.2±124.1)s,(256.6±45.1)s,(527.6±208.6)s,(583.4±219.7)s;与模型对照组相比,除了0.05mg/kg组外,其他剂量组均有显著性差异(P<0.05);与普罗帕酮组相比,0.15mg/kg、0.30mg/kg及0.40mg/kg组均有显著性差异(P<0.05);与利多卡因组相比,0.30mg/kg和0.40mg/kg组有显著性差异(P<0.05),如图5所示。
(2)Mithaconitine对大鼠VT发生率的影响
VT是VPB进一步发展的结果,其心电图特点为:连续出现3次或3次以上的室性期前收缩,QRS波群宽大畸形,无恒定的P波。因此,VT发生率可以评价受试药物是否能够控制心律失常的进一步发展。
为了探究mithaconitine不同剂量组出现心动过速的情况,将mithaconitine分为3个组:≤0.15mg/kg、0.30mg/kg和0.40mg/kg组。卡方检验结果显示:这3个剂量组的VT发生率有差异(P<0.05),如表4所示;两两比较结果显示:与≤0.15mg/kg组相比,0.30mg/kg及0.40mg/kg剂量组的VT发生率均显著降低(P<0.05),见表5、图6。
表4 Mithaconitine不同剂量组VT发生率分析
注:P<0.05有统计学意义。
表5 Mithaconitine不同剂量组VT发生率两两比较分析
注:P<0.05有统计学意义。
(3)Mithaconitine对大鼠心律失常完全抑制率的影响
心律失常总发生率是指大鼠预先注射受试药物,并用乌头碱建立心律失常模型后,30min内出现心律失常的比例(包括早搏、心动过速或室颤)。心律失常完全抑制率=100%-心律失常总发生率,即30min内未出现心律失常的比例,可以评价受试药物是否能够完全拮抗乌头碱的致心律失常作用。
本研究比较了mithaconitine不同剂量组(≤0.15mg/kg、0.30mg/kg、0.40mg/kg)及阳性药利多卡因(Lid)对大鼠的心律失常完全抑制率,卡方检验结果显示:4个剂量组的心律失常完全抑制率有差异(P<0.05)(表6)。两两比较结果显示,与≤0.15mg/kg组相比,mithaconitine的0.30mg/kg、0.40mg/kg剂量组以及阳性药组的心律失常完全抑制率均显著升高(P<0.05);如图7、表7所示。
表6心律失常完全抑制率分析
注:P<0.05有统计学意义。
表7心律失常完全抑制率两两比较分析
注:P<0.05有统计学意义。
综上,本发明从印乌碱炮制品中分离得到的化合物mithaconitine,不仅不会引起心律失常,反而还具有优异的治疗心律失常作用,可用于制备治疗心律失常的药物,可以大大降低含有印乌碱的乌头类药物的毒性,具有良好的应用前景。
Claims (10)
1.式I所示化合物、或其盐:
其中,
R1选自氢、C1~C8烷基、C1~C8烷氧基、卤素、-OC(O)R2;
R2选自C1~C8烷基。
2.根据权利要求1所述的化合物、或其盐,其特征在于:
R1选自氢、甲氧基、-OC(O)R2;
R2选自C1~C8烷基。
3.根据权利要求1或2所述的化合物、或其盐,其特征在于:所述化合物为式II所示化合物:
4.一种印乌碱炮制产物的制备方法,其特征在于:它包括如下步骤:取印乌碱溶于溶剂中,蒸干溶剂,油浴,即得;所述油浴为140~180℃油浴10~40min。
5.根据权利要求4所述的制备方法,其特征在于:所述溶剂为二氯甲烷;和/或,所述印乌碱和溶剂的质量体积比为(5~10)∶1(mg/mL);和/或,所述蒸干溶剂为用旋转薄膜蒸发仪在40℃条件下蒸干溶剂;和/或,所述油浴为140℃油浴20~40min,或160℃油浴10~40min,或180℃油浴10~30min;
优选地,所述印乌碱和溶剂的质量体积比为5.2∶1(mg/mL);和/或,所述油浴为160℃油浴30min。
6.一种印乌碱炮制产物,其特征在于:它是由权利要求4或5所述的制备方法制备而得。
7.一种权利要求3所述化合物、或其盐的制备方法,其特征在于:它包括如下步骤:
(1)取印乌碱溶于溶剂中,蒸干溶剂,油浴,得印乌碱炮制产物;
(2)将印乌碱炮制产物进行硅胶柱层析,梯度洗脱后合并具有式II所述化合物的洗脱液流分,得到组分B;
(3)将组分B过硅胶柱色谱,洗脱后,即得;
步骤(1)中,所述油浴为140℃油浴20~40min,或160℃油浴10~40min,或180℃油浴10~30min。
8.根据权利要求7所述的制备方法,其特征在于:
步骤(1)中,所述溶剂为二氯甲烷;
和/或,步骤(1)中,所述印乌碱和溶剂的质量体积比为(5~10)∶1(mg/mL);
和/或,步骤(1)中,所述蒸干溶剂为用旋转薄膜蒸发仪在40℃条件下蒸干溶剂;
和/或,步骤(1)中,所述油浴为160℃下油浴30min;
和/或,步骤(2)中,所述硅胶柱为200-300目的硅胶柱;
和/或,步骤(2)中,所述梯度洗脱的洗脱剂为石油醚-丙酮-三乙胺混合溶液,石油醚-丙酮-三乙胺的体积比依次为8∶1∶0.01,6∶1∶0.01,3∶1∶0.01;
和/或,步骤(2)中,所述梯度洗脱中,每个梯度洗脱液的用量与印乌碱炮制产物的体积质量比为(10~20)∶3(mL/mg);
和/或,步骤(3)中,所述硅胶柱为200-300目的硅胶柱;
和/或,步骤(3)中,所述洗脱的洗脱剂为石油醚-丙酮-三乙胺混合溶液,石油醚-丙酮-三乙胺的体积比为5∶1∶0.01;
优选地,
步骤(1)中,所述印乌碱和溶剂的质量体积比为5.2∶1(mg/mL);
和/或,步骤(2)中,所述梯度洗脱中,每个梯度洗脱液的用量与印乌碱炮制产物的体积质量比为10∶3(mL/mg)。
9.权利要求1~3任一项所述的化合物、或其盐在制备治疗心律失常的药物中的用途。
10.一种药物,它是由权利要求1~3任一项所述的化合物、或其盐为活性成分,加上药学上接受的辅助性成分或辅料制备而成的制剂。
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