CN110541032A - 一种快速检测alk基因重排探针、fish试剂盒及方法 - Google Patents

一种快速检测alk基因重排探针、fish试剂盒及方法 Download PDF

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CN110541032A CN201910868304.2A CN201910868304A CN110541032A CN 110541032 A CN110541032 A CN 110541032A CN 201910868304 A CN201910868304 A CN 201910868304A CN 110541032 A CN110541032 A CN 110541032A
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唐银
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    • C12Q1/6886Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for diseases caused by alterations of genetic material for cancer
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    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q2600/00Oligonucleotides characterized by their use
    • C12Q2600/156Polymorphic or mutational markers

Abstract

本发明公开了一种快速检测ALK基因重排探针、FISH试剂盒以及方法。本发明所获得的快速检测ALK基因重排探针,包括dcas9蛋白和sgRNA,dcas9蛋白由绿色或者红色荧光染料标记,sgRNA分为第一组sgRNA和第二组sgRNA,第一组sgRNA包括22条sgRNA,第一组sgRNA在ALK基因上的靶向位点序列如序列表SEQ ID NO.1‑SEQ ID NO.22所示,第二组sgRNA包括22条sgRNA,第二组sgRNA在ALK基因上的靶向位点序列如序列表SEQ ID NO.23‑SEQ ID NO.44所示。本发明提供的快速检测ALK基因重排FISH试剂盒采用dCas9介导的FISH技术利用CRISPR系统进行DNA快速杂交,具有检测时间短(约1小时),准确性高,特异性好、假阳性低、操作条件温和(室温和37°C,可更好地维持细胞形态和DNA结构)、操作简便灵活、成本低等优点。

Description

一种快速检测ALK基因重排探针、FISH试剂盒及方法
技术领域
本发明属于分子生物医学领域,尤其涉及一种快速检测ALK基因重排探针、FISH试剂盒及方法。
背景技术
ALK 基因编码的间变性淋巴瘤激酶 (anaplasticlymphoma kinase,ALK) ,首先发现于间变性大细胞淋巴瘤中。ALK基因位于2号染色体上(位置为2p23),长度为728kb,全长cDNA含有29个外显子,全长ALK蛋白含有1620个氨基酸,分子量为177千道尔顿(kDa),254个氨基酸激酶结构域由1123至1376位氨基酸残基组成,在此之前是一个由氨基酸组成的短跨膜区。ALK基因发生重排后多具有生物学功能,其表达产物为嵌合酪氨酸激酶,通过Coiled Coil结构域形成多聚体,引起组成性的ALK激活,ALK信号可通过激活RAS-MEK-ERK,JAK3-STAT3和 PI3K-AKT 等下游信号通路持续地促进细胞增殖,导致肿瘤的产生和转移。
临床研究表明,针对ALK基因开发的靶向药物克唑替尼,对于 ALK 基因重排阳性的 NSCLC 患者,表现出显著的治疗活性,并可延长患者的生存期。目前,克唑替尼已获得国家食品药品监督管理总局(CFDA)的批准,在中国用于治疗间变性淋巴瘤激酶(ALK)阳性的NSCLC患者。因此,与克唑替尼治疗配套的ALK基因重排检测具有明确的临床意义与检测必要性。
常用的 ALK 基因重排检测方法分为以下三种 :荧光原位杂交 (FISH) 技术、免疫组织化学 (IHC) 和基于 PCR 的方法 ( 包括 qRT-PCR、RACE-PCR 或特异性 RT-PCR 联合测序技术 )。但上述技术尚存在一些不足,如传统荧光原位杂交FISH探针主要使用人工染色体制备,由于在人工染色体中重复序列在整个基因组中不断出现,从而导致非特异性的荧光信号,大大降低了 FISH 检测的特异性和灵敏度,同时传统FISH操作需要加热和甲酰胺处理使得双链DNA变性进行杂交,该方法需要数小时或更长时间;常规 IHC 的阳性标准判定尚未统一 ;RT-PCR 法检测 ALK融合基因虽然快速、简便易行、能同时明确 ALK 已知的融合变体的类型,但无法检测未知的融合型是其最大的不足之处。
CRISPR-Cas9是细菌和古细菌在长期演化过程中形成的一种适应性免疫防御,可用来对抗入侵的病毒及外源DNA。而CRISPR-Cas9基因编辑技术,则是对靶向基因进行特定DNA修饰的技术,这项技术也是目前用于基因编辑中前沿的方法。CRISPR-Cas9 是基因组调控技术中灵活性最强的系统之一。Cas9 的核酸酶剪切活性取决于两个结构域:RuvC和HNH。这两个结构域分别负责切割 DNA链的两条链,并且这两个结构域能够单独地被人工点突变失活。当 RuvC 和HNH 同时处于失活状态时 ( D10A&H840A; RuvC-&HNH-),Cas9 将不具有核酸酶活性,成为 dCas9(deadCas9) 。dCas9 虽然没有剪切 DNA 的能力,但仍然可以在gRNA 的引导下与特定的 DNA 序列结合。根据CRISPR-Cas9原理,将已标记的dcas9蛋白与sgRNA组装后进行特异性识别杂交染色体中目标检测片段,开发快速检测ALK基因重排探针及FISH试剂盒。
发明内容
本发明的目的在于采用最新技术dcas9蛋白介导sgRNA作用于ALK靶基因,设计出一种快速检测ALK基因重排探针,该探针具有高特异性和高准确性。
本发明获得的快速检测ALK基因重排探针,包括dcas9蛋白和sgRNA,dcas9蛋白由绿色或者红色荧光染料标记,sgRNA分为第一组sgRNA和第二组sgRNA,第一组sgRNA包括22条sgRNA,第一组sgRNA在ALK基因上的靶向位点序列如序列表SEQ ID NO.1 -SEQ ID NO.22所示,第二组sgRNA包括22条sgRNA,第二组sgRNA在ALK基因上的靶向位点序列如序列表SEQID NO.23 -SEQ ID NO.44 所示。
进一步的,第一组sgRNA针对ALK基因10号断裂点上游设计,第二组sgRNA针对ALK基因20号断裂点下游设计。
进一步的,绿色荧光染料为HaloTag ® Alexa Fluor ® 488,红色荧光染料为Janelia Fluor ®646。
进一步的,绿色荧光染料标记的dcas9蛋白与第一组sgRNA结合后组成第一组探针;红色荧光染料标记的dcas9蛋白与第二组sgRNA结合后组成第二组探针;其中dcas9蛋白与sgRNA组装的摩尔比例为1:1-1:4。
本发明的另一目的在于提供一种快速检测ALK基因重排FISH试剂盒,该试剂盒可快速检测ALK基因重排,且特异性和准确性高。
本发明快速检测ALK基因重排FISH试剂盒包括第一组探针和第二组探针,还包括Bloking/Reacting Buffer 、复染液和对照dcas9蛋白。
本发明的另一目的在于提供一种快速检测ALK基因重排的方法。
利用上述的快速检测ALK基因重排FISH试剂盒进行检测,包括以下步骤:
(1)洗涤:PBST摇晃洗涤样品5min;
(2)Bloking/Reacting Buffer 37℃孵育样品15min;
(3)将探针加入样品中,37℃孵育15min,其中对照组仅加入dcas9蛋白,sgRNA用Bloking/Reacting Buffer代替;
(4)PBST洗涤样品,3次,每次5min;
(5)DAPI复染样品,室温,5min,洗涤,封片;
(6)在荧光显微镜下观察采集图像。
本发明的有益效果在于:
本发明dcas9蛋白介导的FISH方法具有快速、经济、操作方便等优点:
(1)传统FISH操作需要加热和甲酰胺处理使得双链DNA变性进行杂交,该方法需要数小时或更长时间。本发明dCas9蛋白介导的FISH技术利用CRISPR系统进行DNA快速杂交,本方法在优化的条件下仅需要约1小时;同时本发明sgRNA-dcas9酶探针比核酸探针准确性更高,特异性更好、假阳性低等优点。
(2)本发明dcas9蛋白介导的FISH技术操作条件温和(室温37°C),因此可以更好地维持细胞形态和DNA结构。
(3)传统FISH每条探针均需要荧光标记,操作繁琐,成本高;而本发明dcas9蛋白介导的FISH技术操作简便,成本低:一个标记荧光染料的dCas9蛋白(标记染料可变)可以与ALK基因断裂两端设计未标记的多条sgRNA灵活组装。
附图说明
图1 ALK基因sgRNA设计示意图
图2 ALK基因重排检测
具体实施方式
为了充分了解本发明的目的、特征及功效,下面结合附图、实施例进一步阐明本发明的内容,但本发明的保护范围不局限于下面的实施例。
实施例 1
一、探针准备
1、 dcas9蛋白的表达和纯化
将质粒pET302-6His-dCas9-Halo(addgene,72269)转化入E. coli BL21 (DE3),进行原核表达并纯化蛋白。其中His tag利于蛋白纯化;Halo tag用于荧光对蛋白的标记,具体操作如下:
(1)质粒转化BL21(DE3)感受态细胞,涂板后37℃倒置培养过夜;
(2)选取单克隆于5ML LB培养液37℃培养过夜;
(3) 次日1:50接种到新LB培养基扩大培养至1L,至菌体OD600为0.6-0.8,加入IPTG至终浓度为1 mM,16°C培养16h后离心,收集菌体;
(4)根据Takara NI his标签纯化柱protocol洗脱并收集蛋白;
(5)将洗脱蛋白透析至Buffer[50 mM Hepes (pH 7.5), 100 mM KCl, 1 mM TCEP]中,并用50,000-MWCO超滤管(Millipore)超滤后收集纯化蛋白;
(6)将已纯化蛋白加入甘油(含量20%),-80°C储存,备用。
、dcas9蛋白荧光标记
将染料(HaloTag ® Alexa Fluor ® 488和Janelia Fluor ®646,promega)按照以下步骤将1中备用dcas9蛋白进行标记:
(1)染料:蛋白样品按照如下体系混匀后室温孵育30min,随后4°C孵育过夜,体系为Lysate 20ul,Ligand(50uM) 1ul,1×50mM HEPES(pH7.5)9ul,共30ul;
(2) 50,000-MWCO超滤管(Millipore)超滤除去未结合的染料;
(3)用Buffer[50 mM Hepes (pH 7.5), 100 mM KCl, 1 mM TCEP,10%甘油]洗脱蛋白,分装,-80°C储存,备用。
、 sgRNA合成
3.1 sgRNA设计
ALK 基因位于2号染色体上(位置为2p23),ALK基因重排的断裂点常见于 19,20 号外显子,少量见于10号外显子,根据 ALK 基因的特点,利用麻省理工大学张锋教授实验室提供的在线网站(http : //crispr.mit.edu /)分析可能的 sgRNA位点(PAM 序列为NGG),分别设计两组sgRNA (图1):针对10号断裂点上游设计22条sgRNA,即第一组sgRNA,其在ALK基因上的靶向位点序列为SEQ ID NO.1 -SEQ ID NO.22(表1);针对20号断裂点下游设计22条sgRNA,即第二组sgRNA,其在ALK基因上的靶向位点序列为SEQ ID NO.23-SEQ ID NO.44(表1)。第一组sgRNA与HaloTag ® Alexa Fluor ® 488标记的dcas9蛋白结合后组成第一组探针,第二组sgRNA与Janelia Fluor ®646标记的dcas9蛋白结合后组成第二组探针。根据CRISPR-Cas9原理,将已标记的dcas9蛋白与sgRNA组装后进行特异性识别杂交染色体中ALK目标检测片段。
表1
SEQ ID NO. 序列
1 CAGTCCACCTGGTACATGCC
2 TCAGGTCCCAACTAAGTGTC
3 CAGTCCCTTGGTAGTCTACC
4 GGTAGACCACTCTGGGACTA
5 ATGGGACTGAGGGAAAGTTC
6 GGAAAGTTCTGGCATGTACC
7 GTGGTAGAACTCCAGACCTG
8 TCACTCTCCAGAGTCAGCTA
9 CTTCTGGGGGACTCACGGAA
10 AGCCTTTCCCATCTCCAGCA
11 GGTGAAGAAGAGGTTGCTTC
12 TCAGGTAAAGACACACAACC
13 TCAGGTTTCCCTACTTTCGA
14 CCTGATGCCCACTCTGTCTC
15 CAGAAAAGAGCCTCCTAGAT
16 CCACAGACCCCATTCCTAGA
17 GGACAAAGGTGAGCTGCTGA
18 GGCTGCAGGGAAGGGACAGT
19 CATGGGGGAGGGTTGGCCCA
20 GGGTGGCCCCGGGTGGACAG
21 CGCAGAGCACTTTAGAAACT
22 GAAACCATTCCAGCCTCAGC
23 TGACCATTGTCATGAGTCCC
24 AATCCTTCTTACCAGTTTTC
25 TGCATAGCAAAGCCATGTTG
26 GTCCACTAAATGTGACGCCC
27 CCCCAGCTGCCTCATTATTG
28 TCTTGTCTTCTCCTTTGCAC
29 GGGCCATGGCGCCTTTGGGG
30 CGACCCAAGCCCCCTGCAAG
31 CTCACTCTTGAGCCTGCCCT
32 AGAAGGGGAGGGTGGGGAGG
33 TCCTGTTCAGAGCACACTTC
34 GTGGCTTTACCTGATGATCA
35 CCCTCTGCCCCCAAAGAACC
36 TAACAGATCGATATCTCCAA
37 CATGTCCCCTTTTCTCCAGT
38 CTAGACACTTCTTACCAGAA
39 TGTTTCTGAAACAACCATCA
40 GTATCCCTGCTGTTATCCAC
41 CCATTTCTTAAGAAAAAGTG
42 CATATTAGAAGCACAATTAC
43 ATCCTAGGCTCCCATCAGCA
44 TGGCTGCACCTTTTGACTTG
3.2 sgRNA序列合成
(1)通用生物合成sgRNA序列,sgRNA序列连入pUC57-simple质粒;
(2)模板制备:将带有目标序列的质粒PCR后获得模板;
操作如下:
上游引物:TAATACGACTCACTATAGG(SEQ ID NO.45)
下游引物:GCACCGACTCGGTGCC(SEQ ID NO.46)
反应体系如下:
质粒模板 1ul
上游引物 1ul
下游引物 1ul
2xPCRmix 25
H2O to 50ul
每个sgRNA序列反应5管,每管50ul,共计250ul。充分混匀放置PCR进行反应,设计程序如下:95℃ 5min;95℃ 30sec,56℃ 30sec,72℃ 30sec,共进行35个循环。
3.3 T7体外转录
操作过程中采用无RNA酶的吸头及离心管操作,并注意避免RNA酶污染。
3.3.1模板纯化
(1)将250μl扩增产物收集到1个1.5ml微量离心管。加入250μl酚氯仿异戊醇,混匀。静置3-5min;
(2)4℃ 12000rpm 离心5min;
(3)小心吸取_上层液体到新管,加入3M NaAc25μl,冰乙醇500μl。混匀,冰上放置5-10min;
(4)4℃ 12000rpm离心10min;
(5)弃上清,加入1ml 70%乙醇,震荡洗涤沉淀;
(6)4℃ 12000rpm离心5min;
(7)用移液器尽量吸净液滴,室温放置2-3min,挥发残留乙醇;
(8)加入10μl无RNA酶水,轻弹管壁溶解沉淀;
(9)定量DNA,冻存到-20℃备用。
3.3.2 体外转录试剂盒T7 Transcription Kit(Thermo Fisher,AM1322)体外转录
(1)配制体系为:5×TranscriptAid Reaction Buffer 4ul,ATP/CTP/GTP/UTP mix*8ul,Template DNA 1ug**,TranscriptAid Enzyme Mix 2ul,DEPC-treated water to20ul;共20ul;
(2)充分混匀,37℃反应4h。
3.4转录产物纯化
3.4.1去除模板DNA
操作如下:
(1)添加2 u DNaseI(RNase-free)混匀后37°C孵育15min;
(2)然后加入2µl 0.5M EDTA( pH值8.0)混匀后65°C孵育10min终止反应。
3.4.2 RNA纯化
(1)向反应混合物中加入115 ul DEPC水,15 ul 3 M醋酸钠溶液(pH 5.2)。充分混匀;
(2)取等量苯酚(pH 4.7)/氯仿混合物(1:1体积配制),充分混匀,12000rpm离心收集上层液体,并转移到新的EP管中。再按等量氯仿以相同方法萃取两次;
(3)加入2倍体积的无水乙醇沉淀RNA。-20℃孵育30分钟,4℃,12000rpm离心10min,收集沉淀;
(4)用500 ul 70%的预冷乙醇充分震荡洗涤沉淀1min,4℃,12000rpm离心5min,尽量吸尽乙醇,打开管盖,室温放置2-3min挥发残留乙醇;
(5)加入30ul DEPC水溶解沉淀,定量;
(6)将纯化的RNA储存于-20℃或-80℃。
二、探针组装
探针组装:绿色荧光染料标记的dcas9蛋白与第一组22条sgRNA结合后组成第一组探针,红色荧光染料标记的dcas9蛋白与第二组22条sgRNA结合后组成第二组探针;其中dcas9蛋白:sgRNA摩尔比例为1:1-1:4,在Bloking/Reacting Buffer中室温孵育10min后置于冰上。
实施例2 ALK基因重排检测
对人肺癌细胞(A549)ALK基因重排进行检测,首先制备A549爬片,并按照以下步骤进行检测:
(1)洗涤:PBST摇晃洗涤样品5min;
(2)Bloking/Reacting Buffer 37℃孵育样品15min;
(3)将探针加入样品中,37℃孵育15min,其中对照组仅加入dcas9蛋白,sgRNA用Bloking/Reacting Buffer代替;
(4)PBST洗涤样品,3次,每次5min;
(5)DAPI复染样品,室温,5min,洗涤,封片;
(6)在荧光显微镜下观察采集图像(图2)。
实验结果:结果见图2,图2D中三角形所指为融合信号,箭头所指为断裂信号;而阴性对照组则没有特异性的标记点(图2d)。结果表明:本发明探针准确性高,特异性好;同时本发明快速检测ALK基因重排FISH试剂盒,可快速检测ALK基因重排,且特异性和准确性高。
序列表
<110> 重庆威斯腾生物医药科技有限责任公司
<120> 一种快速检测ALK基因重排探针、FISH试剂盒及方法
<160> 46
<170> SIPOSequenceListing 1.0
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<212> DNA
<213> 2 Ambystoma laterale x Ambystoma jeffersonianum
<400> 27
ccccagctgc ctcattattg 20
<210> 28
<211> 20
<212> DNA
<213> 2 Ambystoma laterale x Ambystoma jeffersonianum
<400> 28
tcttgtcttc tcctttgcac 20
<210> 29
<211> 20
<212> DNA
<213> 2 Ambystoma laterale x Ambystoma jeffersonianum
<400> 29
gggccatggc gcctttgggg 20
<210> 30
<211> 20
<212> DNA
<213> 2 Ambystoma laterale x Ambystoma jeffersonianum
<400> 30
cgacccaagc cccctgcaag 20
<210> 31
<211> 20
<212> DNA
<213> 2 Ambystoma laterale x Ambystoma jeffersonianum
<400> 31
ctcactcttg agcctgccct 20
<210> 32
<211> 20
<212> DNA
<213> 2 Ambystoma laterale x Ambystoma jeffersonianum
<400> 32
agaaggggag ggtggggagg 20
<210> 33
<211> 20
<212> DNA
<213> 2 Ambystoma laterale x Ambystoma jeffersonianum
<400> 33
tcctgttcag agcacacttc 20
<210> 34
<211> 20
<212> DNA
<213> 2 Ambystoma laterale x Ambystoma jeffersonianum
<400> 34
gtggctttac ctgatgatca 20
<210> 35
<211> 20
<212> DNA
<213> 2 Ambystoma laterale x Ambystoma jeffersonianum
<400> 35
ccctctgccc ccaaagaacc 20
<210> 36
<211> 20
<212> DNA
<213> 2 Ambystoma laterale x Ambystoma jeffersonianum
<400> 36
taacagatcg atatctccaa 20
<210> 37
<211> 20
<212> DNA
<213> 2 Ambystoma laterale x Ambystoma jeffersonianum
<400> 37
catgtcccct tttctccagt 20
<210> 38
<211> 20
<212> DNA
<213> 2 Ambystoma laterale x Ambystoma jeffersonianum
<400> 38
ctagacactt cttaccagaa 20
<210> 39
<211> 20
<212> DNA
<213> 2 Ambystoma laterale x Ambystoma jeffersonianum
<400> 39
tgtttctgaa acaaccatca 20
<210> 40
<211> 20
<212> DNA
<213> 2 Ambystoma laterale x Ambystoma jeffersonianum
<400> 40
gtatccctgc tgttatccac 20
<210> 41
<211> 20
<212> DNA
<213> 2 Ambystoma laterale x Ambystoma jeffersonianum
<400> 41
ccatttctta agaaaaagtg 20
<210> 42
<211> 20
<212> DNA
<213> 2 Ambystoma laterale x Ambystoma jeffersonianum
<400> 42
catattagaa gcacaattac 20
<210> 43
<211> 20
<212> DNA
<213> 2 Ambystoma laterale x Ambystoma jeffersonianum
<400> 43
atcctaggct cccatcagca 20
<210> 44
<211> 20
<212> DNA
<213> 2 Ambystoma laterale x Ambystoma jeffersonianum
<400> 44
tggctgcacc ttttgacttg 20
<210> 45
<211> 19
<212> DNA
<213> 2 Ambystoma laterale x Ambystoma jeffersonianum
<400> 45
taatacgact cactatagg 19
<210> 47
<211> 16
<212> DNA
<213> 2 Ambystoma laterale x Ambystoma jeffersonianum
<400> 47
gcaccgactc ggtgcc 16

Claims (7)

1.一种快速检测ALK基因重排探针,包括dcas9蛋白和sgRNA,所述dcas9蛋白由绿色或者红色荧光染料标记,所述sgRNA分为第一组sgRNA和第二组sgRNA,所述第一组sgRNA包括22条sgRNA,所述第一组sgRNA在ALK基因上的靶向位点序列如序列表SEQ ID NO.1 -SEQ IDNO.22 所示,所述第二组sgRNA包括22条sgRNA,所述第二组sgRNA在ALK基因上的靶向位点序列如序列表SEQ ID NO.23 -SEQ ID NO.44 所示。
2.如权利要求1所述的探针,其特征在于,所述第一组sgRNA针对ALK基因10号断裂点上游设计,所述第二组sgRNA针对ALK基因20号断裂点下游设计。
3.如权利要求2所述的探针,其特征在于,所述绿色荧光染料为HaloTag ® AlexaFluor ® 488,所述红色荧光染料为Janelia Fluor ®646。
4.如权利要求3所述的探针,其特征在于,所述绿色荧光染料标记的dcas9蛋白与所述第一组sgRNA结合后组成第一组探针;所述红色荧光染料标记的dcas9蛋白与所述第二组sgRNA结合后组成第二组探针;其中dcas9蛋白与sgRNA组装的摩尔比例为1:1-1:4。
5.一种快速检测ALK基因重排FISH试剂盒,其特征在于,包括权利要求4所述的第一组探针和第二组探针。
6.如权利要求5所述的试剂盒,其特征在于,所述试剂盒还包括:Bloking/ReactingBuffer、复染液和对照dcas9蛋白。
7.一种快速检测ALK基因重排方法,其特征在于,利用权利要求6所述的快速检测ALK基因重排FISH试剂盒进行检测,包括以下步骤:
(1)洗涤:PBST摇晃洗涤样品5min;
(2)Bloking/Reacting Buffer 37℃孵育样品15min;
(3)将探针加入样品中,37℃孵育15min,其中对照组仅加入dcas9蛋白,sgRNA用Bloking/Reacting Buffer代替;
(4)PBST洗涤样品,3次,每次5min;
(5)DAPI复染样品,室温,5min,洗涤,封片;
(6)在荧光显微镜下观察采集图像。
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