CN110373496A - 用于i亚群血清8型禽腺病毒检测的试剂盒及检测方法 - Google Patents

用于i亚群血清8型禽腺病毒检测的试剂盒及检测方法 Download PDF

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Abstract

本发明提供一种用于I亚群血清8型禽腺病毒检测的试剂盒及检测方法,试剂盒包括PCR引物对和探针,所述PCR引物对的序列如SEQ ID NO:1和SEQ ID NO:2所示,所述探针的序列如SEQ ID NO:3所示。检测的方法包括:以待检I亚群血清8型禽腺病毒样品DNA为模板,利用上述PCR引物对和探针进行荧光定量PCR扩增,采集荧光信号。本发明最低可以检测模板浓度为10copies/μL,比常规的PCR方法高出约100倍,其他常见的家禽病毒均无特异性扩增,没有发现交叉反应,批内和批间变异系数均小于1%。

Description

用于I亚群血清8型禽腺病毒检测的试剂盒及检测方法
技术领域
本发明属于病毒核酸检测技术领域,具体涉及一种用于I亚群血清8型禽腺病毒检测的试剂盒及检测方法。
背景技术
禽腺病毒(Fowl adenovirus,FAdV)是一种可以感染各种日龄家禽的急性、高度接触传染性病原。该病毒属于腺病毒科禽腺病毒属,分为3个亚群。其中,I亚群FAdV被分成5个毒种及12个血清型。该亚群FAdV可引起不同日龄禽类发生多种疾病,包括包涵体肝炎、心包积液-肝炎综合症和肌胃糜烂症等疾病。FAdV广泛流行于世界各地,给养禽业造成了巨大的经济损失。Wang等人(Wang J,Wang S,Zou K,et al.Variant Serotypes of FowlAdenovirus Isolated from Commercial Poultry Between 2007and 2017in SomeRegions of China[J].Avian Dis.2018,62(2):171-176)对我国2007-2017年间FAdV的流行情况进行了详细分析,研究结果表明2007-2014年血清11型禽腺病毒(FAdV-11)为国内优势毒株,2014年6月至2016年血清4型禽腺病毒(FAdV-4)为国内优势毒株,而2017年上半年血清8型禽腺病毒(FAdV-8)为国内优势毒株。自FAdV-8广泛流行以来,尚无一种有效快速的诊断方法。目前主要通过接种SPF鸡胚和普通PCR扩增等传统方法检测FAdV-8感染。由于病料接种SPF鸡胚繁毒周期长且操作复杂,同时普通PCR方法很难监测到病毒含量很低的病料样品,因此急需建立一种操作简便、快速、灵敏高、特异性好的检测技术。
发明内容
有鉴于此,有必要针对现有技术存在的问题,提供一种用于I亚群血清8型禽腺病毒检测的试剂盒及检测方法。本发明的技术方案为:
第一个方面,本发明提供一种用于I亚群血清8型禽腺病毒检测的试剂盒,包括PCR引物对和探针,所述PCR引物对的序列如SEQ ID NO:1和SEQ ID NO:2所示,所述探针的序列如SEQ ID NO:3所示。
进一步的,所述探针的5’端结合有FAM,3’端结合有BHQ。
进一步的,所述试剂盒还包括含有FAdV-8hexon基因的阳性重组质粒标准品。
第二个方面,本发明还提供了上述试剂盒在制备检测或诊断I亚群血清8型禽腺病毒的制剂中的用途。
第三个方面,本发明提供一种用于I亚群血清8型禽腺病毒检测的方法,包括:以待检I亚群血清8型禽腺病毒样品DNA为模板,利用上述PCR引物对和探针进行荧光定量PCR扩增,采集荧光信号。
进一步的,在所述荧光定量PCR扩增的反应体系中,每20μL中含有如SEQ ID NO:1所示的引物6pmol,如SEQ ID NO:2所示的引物6pmol,所述探针4pmol。
在本发明的一种实施例中,所述荧光定量PCR扩增的反应体系为:2×Master Mix(Probe qPCR)10μL,Rox reference dye(50×)0.04μL,DNA模板2μL,SEQ ID NO:1引物(6pmol)0.2μL,SEQ ID NO:2引物(6pmol)0.2μL,SEQ ID NO:3探针(4pmol)0.1μL,用灭菌双蒸水补至20μL。
进一步的,所述荧光定量PCR扩增的反应条件为:95℃预变性60sec,95℃变性15sec,60℃退火/延伸40sec,共40个循环。
本发明的优势和有益效果是:
(1)本发明根据FAdV-8的hexon基因序列,在保守区域设计了特异性扩增引物和探针,建立了可用于检测FAdV-8的特异性方法。
(2)特异性试验结果表明,与其他几种家禽主要疾病(FAdV-4、H9亚型AIV、NDV、IBV和ILTV)均无交叉反应。
(3)灵敏度试验结果表明,本发明的检测方法最低可以检测模板浓度为10copies/μL,比常规的PCR方法高出约100倍,其他常见的家禽病毒均无特异性扩增,没有发现交叉反应,批内和批间变异系数均小于1%,说明本发明的检测方法具有灵敏度高、特异性强、重复性好等优点,具有广阔的应用前景。
附图说明
图1是本发明实施例1的标准质粒PCR扩增结果图,其中M:DNA分子量标准(DL2000);1-3:标准质粒;4:阳性对照;5:阴性对照。
图2是本发明实施例1的普通PCR扩增结果图,其中1-10:质粒浓度分别为1.0×109copies/μL、1.0×108copies/μL、1.0×107copies/μL、1.0×106copies/μL、1.0×105copies/μL、1.0×104copies/μL、1.0×103copies/μL、1.0×102copies/μL、1.0×101copies/μL、1.0×100copies/μL;11:阴性对照。
图3是本发明实施例1的FAdV-8TaqMan荧光定量PCR标准曲线图。
图4是本发明实施例1的FAdV-8TaqMan荧光定量PCR动力学曲线图,其中1-9:标准质粒浓度分别为1.0×108copies/μL、1.0×107copies/μL、1.0×106copies/μL、1.0×105copies/μL、1.0×104copies/μL、1.0×103copies/μL、1.0×102copies/μL、1.0×101copies/μL、1.0×100copies/μL。
图5是本发明实施例2的FAdV-8TaqMan荧光定量PCR方法的特异性扩增曲线图。
图6是本发明实施例3的FAdV-8攻毒后试验鸡排毒情况结果图。
图7是本发明实施例3的FAdV-8攻毒后试验鸡各组织病毒载量结果图。
具体实施方式
在本发明的描述中,需要说明的是,实施例中未注明具体条件者,按照常规条件或制造商建议的条件进行。所用试剂或仪器未注明生产厂商者,均为可以通过市售购买获得的常规产品。
下面结合附图和具体的实施例对本发明做进一步详细说明,所述是对本发明的解释而不是限定。
实施例1
FAdV-8TaqMan荧光定量PCR检测方法的建立
1.材料
1.1毒株
血清8型禽腺病毒(FAdV-8)、血清4型禽腺病毒(FAdV-4)、H9亚型禽流感病毒(AIVH9)、新城疫病毒(NDV)、马立克氏病病毒(MDV)、传染性支气管炎病毒(IBV)、传染性喉气管炎病毒(ILTV)均通过市售途径获得。
1.2主要试剂和仪器
体液病毒DNA/RNA提取试剂盒购自Magen公司, Probe qPCRMix购自TOYOBO公司,Applied Biosystems 7500型荧光定量PCR仪购自ABI公司,RNA反转录试剂盒PrimeScriptTM RT-PCR试剂盒和pMD-19T载体购自Takara公司。
2.方法
2.1引物设计与合成
经大量比对GenBank中Ⅰ亚群血清8型禽腺病毒hexon基因的DNA序列,筛选出FAdV-8hexon基因高度保守的特异性区域,设计检测FAdV-8hexon基因的特异性引物对和TaqMan探针。特异性引物对分别命名为FAdV-8-F(SEQ ID NO:1)、FAdV-8-R(SEQ ID NO:2),探针命名为Probe(SEQ ID NO:3)。所设计的引物对和探针序列如下:
FAdV-8-F(SEQ ID NO:1):5'-CTACCCTAATCCCAACTC-3'
FAdV-8-R(SEQ ID NO:2):5'-TGTCCATGACGTAGTAAG-3'
Probe(SEQ ID NO:3):5'-FAM-ACTGAGAGCCGTCGTTCTTCA-BHQ-3'
2.2样品的核酸提取
对组织样品研磨液(参见实施例4)和病毒液进行核酸提取,提取方法参照Magen生物公司体液病毒DNA/RNA核酸提取试剂盒说明书。具体实验步骤包括:向1.5mL无菌离心管中加入200μL组织匀浆离心后的上清液和20μL蛋白酶K,旋涡震荡10sec;再加入500μLBuffer GRP涡旋震荡20sec,室温静置10min以便充分裂解组织;把柱子装入收集管中,将混合溶液转入到柱子内,12,000rpm离心1min,弃去收集管内的液体;将500μL Buffer GW1加到柱子内,12,000rpm离心1min,弃去收集管内液体;接着将650μL Buffer RW2加到柱子内,12,000rpm离心1min,弃去收集管内液体;然后把柱子装回到收集管中,12,000rpm离心2min,甩干柱子,弃去收集管,将柱子转入到一个全新的1.5mL无菌离心管中;最后加入35μLNuclease-free水,至柱子的膜中央,室温静置约2min,12,000rpm离心1min;弃去柱子后,将核酸样品保存于-20℃冰箱备用。
2.3反转录
将提取得到的RNA样品按照PrimeScriptTM RT-PCR试剂盒进行反转录得到cDNA。取4μL RNA模板、0.5μL dNTP Mixture及0.5μL Random 6mers加入PCR管内,65℃作用5min,4℃保存在PCR仪上进行变性、退火反应;之后在上述反应液中依次加入2μL 5×PrimeScriptBuffer、0.25μL RNase Inhibitor、0.25μL PrimeScript RTase、2.5μL RNase Free dH2O,接着于PCR仪上,按照如下反应程序:30℃10min,42℃1h,95℃5min,4℃保存。
2.4标准质粒构建
筛选FAdV-8hexon基因的保守区域,设计FAdV-8hexon基因的标准质粒引物对,分别命名为hexon-F(SEQ ID NO.4)和hexon-R(SEQ ID NO.5)。所设计的标准质粒引物序列如下:
hexon-F(SEQ ID NO.4):5'-CCTCGCGAAGCCTTCTTTAACAACT-3'
hexon-R(SEQ ID NO.5):5'-TTCATCACCCCGGTATTGACCGTTC-3'
提取FAdV-8毒株DNA,经PCR扩增片段大小为472bp(图1),回收阳性扩增产物,将阳性扩增产物克隆入pMD-19T载体中,筛选阳性重组质粒送金维智生物公司测序鉴定。测序正确阳性重组质粒命名为pMD-19T-hexon,使用紫外分光光度仪测定pMD-19T-hexon的OD260/OD 280比值为1.86,核酸浓度为1.0×109copies/uL。将其进行10倍倍比稀释,共稀释8个梯度(10-1-10-8),然后以FAdV-8-F(SEQ ID NO:1)和FAdV-8-R(SEQ ID NO:2)为引物进行PCR扩增。参考质粒DNA拷贝数计算方法,计算pMD-19T-hexon质粒DNA溶液的浓度。
2.5qPCR反应体系和条件
FAdV-8TaqMan荧光定量PCR扩增反应体系为:2×Master Mix(Probe qPCR)10μL,Rox reference dye(50×)0.04μL,DNA模板2μL,SEQ ID NO:1引物(6pmol)0.2μL,SEQ IDNO:2引物(6pmol)0.2μL,SEQ ID NO:3探针(4pmol)0.1μL以及用灭菌双蒸水补至20μL。优化后的反应条件为:95℃预变性60sec;95℃变性15sec,60℃退火/延伸40sec,共40个循环。
3.结果
3.1pMD-19T-hexon标准质粒的构建及PCR结果
图1提供了pMD-19T-hexon标准质粒PCR扩增结果图,可以看出经PCR扩增片段大小为472bp。普通PCR扩增结果如图2所示,PCR最低能检测到1.0×103copies/μL。普通PCR是以FAdV-8-F(SEQ ID NO:1)和FAdV-8-R(SEQ ID NO:2)为引物,标准质粒10倍比稀释为模板,检测普通PCR扩增最低检测浓度,从侧面可以突出定量PCR具有高灵敏性。
3.2qPCR标准曲线
将标准质粒pMD-19T-hexon按照10倍比例进行倍比稀释,共稀释8个梯度(10-1-10-8),用梯度稀释后的质粒做模板绘制qPCR标准曲线(图3)。结果显示:y=-4.1181x+43.385(R2=0.998),qPCR扩增结果显示不同梯度对数值与Ct值之间呈现良好的线性关系。
实施例2
灵敏度与重复性检测
用梯度稀释后的标准质粒pMD-19T-hexon为模板,按照1.0×108~1.0×100copies/uL分别进行荧光定量PCR扩增,Ct值大于38视为阴性。绘制不同浓度的qPCR标准曲线。结果如图4所示,该方法具有很高的灵敏度,可检测到的最低模板浓度为1.0×101copies/μL,比普通PCR灵敏度高100倍。
以1.0×105copies/μL和1.0×106copies/μL两个浓度的标准质粒pMD-19T-hexon作为模板,对这两个稀释度在不同时间段进行3次重复实验测定,每次对同一模板同时进行3次重复测定,并设置3个重复孔,按照实施例1的扩增体系和条件进行实时荧光定量PCR。结果表明,批内和批间变异系数均小于1%,说明建立的FAdV-8TaqMan荧光定量PCR方法具有较好的重复性,结果稳定可靠(表1)。
表1 FAdV-8TaqMan荧光定量PCR方法的重复性结果
实施例3
FAdV-8 TaqMan荧光定量PCR检测方法的特异性实验
收集实验室引起家禽患病的常见病毒包括血清4型禽腺病毒(FAdV-4)、H9亚型禽流感病毒(AIV H9)、新城疫病毒(NDV)、马立克氏病病毒(MDV)、传染性支气管炎病毒(IBV)、传染性喉气管炎病毒(ILTV),用于检测本发明血清8型禽腺病毒实时荧光定量PCR方法的特异性,反应体系和扩增反应条件参考实施例1进行扩增。结果如图5所示,FAdV-4、MDV、AIVH9、NDV、IBV、ILTV和无菌双蒸水均无扩增曲线,为阴性,只有FAdV-8样品能扩增阳性曲线。说明该荧光定量PCR方法具有很高的特异性。
实施例4
采用本发明建立的FAdV-8 TaqMan荧光定量PCR方法进行临床样品检测
血清8型禽腺病毒稀释成2×106 TCID 50/0.1mL,以肌肉注射方式感染10只3日龄SPF鸡。于攻毒前和攻毒后每隔2天采集试验鸡的腔拭子,添加1mL无菌PBS震荡混匀后离心收集上清液。另外于攻毒后第4天采集3只试验鸡的心、肝、脾、肺、肾、法氏囊、胰腺、小肠、腺胃和肌胃等组织样品,制备组织研磨液。参考体液病毒核酸提取试剂盒提取DNA,利用建立的FAdV-8TaqMan实时荧光定量PCR方法检测FAdV-8在鸡体内增殖以及排毒情况。
结果表明FAdV-8感染后的试验鸡存在排毒现象,说明生产上粪口传播是FAdV-8重要的传播方式(图6)。同时对采集各组织脏器进行病毒含量的检测发现,病毒在试验鸡各组织脏器中均能够复制增殖,其中肝脏中病毒含量最高,其次为胰腺和肌胃,心脏中病毒含量最低(图7)。
综上,本发明根据FAdV-8的hexon基因序列,在保守区域设计了特异性扩增引物和探针,建立了可用于检测FAdV-8的特异性方法,并且本发明的检测方法对于I亚群血清8型禽腺病毒具有灵敏度高、特异性强、重复性好等优点,最低可以检测模板浓度为10copies/μL,比常规的PCR方法高出约100倍,其他常见的家禽病毒均无特异性扩增,没有发现交叉反应,批内和批间变异系数均小于1%。
以上所述实施例仅表达了本发明的几种实施方式,其描述较为具体和详细,但并不能因此而理解为对本发明专利范围的限制。应当指出的是,对于本领域的普通技术人员来说,在不脱离本发明构思的前提下,还可以做出若干变形和改进,这些都属于本发明的保护范围。因此,本发明专利的保护范围应以所附权利要求为准。
序列表
<110> 温氏食品集团股份有限公司
<120> 用于I亚群血清8型禽腺病毒检测的试剂盒及检测方法
<160> 5
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 18
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 1
ctaccctaat cccaactc 18
<210> 2
<211> 18
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 2
tgtccatgac gtagtaag 18
<210> 3
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 3
actgagagcc gtcgttcttc a 21
<210> 4
<211> 25
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 4
cctcgcgaag ccttctttaa caact 25
<210> 5
<211> 25
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 5
ttcatcaccc cggtattgac cgttc 25

Claims (7)

1.一种用于I亚群血清8型禽腺病毒检测的试剂盒,其特征在于:包括PCR引物对和探针,所述PCR引物对的序列如SEQ ID NO:1和SEQ ID NO:2所示,所述探针的序列如SEQ IDNO:3所示。
2.根据权利要求1所述的一种用于I亚群血清8型禽腺病毒检测的试剂盒,其特征在于:所述探针的5’端结合有FAM,3’端结合有BHQ。
3.根据权利要求1或2所述的一种用于I亚群血清8型禽腺病毒检测的试剂盒,其特征在于:所述试剂盒还包括含有FAdV-8hexon基因的阳性重组质粒标准品。
4.一种用于I亚群血清8型禽腺病毒检测的方法,其特征在于:以待检I亚群血清8型禽腺病毒样品DNA为模板,利用权利要求1~3任意一项权利要求所述的PCR引物对和探针进行荧光定量PCR扩增,采集荧光信号。
5.根据权利要求4所述的一种用于I亚群血清8型禽腺病毒检测的方法,其特征在于:在所述荧光定量PCR扩增的反应体系中,每20μL中含有如SEQ ID NO:1所示的引物6pmol,如SEQ ID NO:2所示的引物6pmol,所述探针4pmol。
6.根据权利要求4或5所述的一种用于I亚群血清8型禽腺病毒检测的方法,其特征在于:所述荧光定量PCR扩增的反应条件为:95℃预变性60sec,95℃变性15sec,60℃退火/延伸40sec,共40个循环。
7.权利要求1~3任意一项权利要求所述的一种用于I亚群血清8型禽腺病毒检测的试剂盒在制备检测或诊断I亚群血清8型禽腺病毒的制剂中的用途。
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