CN110358819A - 一种全雄乌斑杂交鳢的培育方法 - Google Patents
一种全雄乌斑杂交鳢的培育方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN110358819A CN110358819A CN201910682816.XA CN201910682816A CN110358819A CN 110358819 A CN110358819 A CN 110358819A CN 201910682816 A CN201910682816 A CN 201910682816A CN 110358819 A CN110358819 A CN 110358819A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- fish
- male
- breeding
- raun
- snakehead
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
- 241001597062 Channa argus Species 0.000 title claims abstract description 77
- 238000009395 breeding Methods 0.000 title claims abstract description 62
- 241000251468 Actinopterygii Species 0.000 claims abstract description 78
- 230000001488 breeding effect Effects 0.000 claims abstract description 44
- 238000000034 method Methods 0.000 claims abstract description 20
- 230000008771 sex reversal Effects 0.000 claims abstract description 15
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Chemical compound O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 30
- 238000002347 injection Methods 0.000 claims description 17
- 239000007924 injection Substances 0.000 claims description 17
- 239000000262 estrogen Substances 0.000 claims description 16
- 229940011871 estrogen Drugs 0.000 claims description 16
- 230000032696 parturition Effects 0.000 claims description 16
- VOXZDWNPVJITMN-ZBRFXRBCSA-N 17β-estradiol Chemical compound OC1=CC=C2[C@H]3CC[C@](C)([C@H](CC4)O)[C@@H]4[C@@H]3CCC2=C1 VOXZDWNPVJITMN-ZBRFXRBCSA-N 0.000 claims description 13
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 claims description 8
- 230000000384 rearing effect Effects 0.000 claims description 8
- 108010000912 Egg Proteins Proteins 0.000 claims description 7
- 102000002322 Egg Proteins Human genes 0.000 claims description 7
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 7
- 230000003321 amplification Effects 0.000 claims description 7
- 229960005309 estradiol Drugs 0.000 claims description 7
- 238000003199 nucleic acid amplification method Methods 0.000 claims description 7
- 210000004681 ovum Anatomy 0.000 claims description 7
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 claims description 6
- 238000000605 extraction Methods 0.000 claims description 6
- 239000008223 sterile water Substances 0.000 claims description 6
- 238000007400 DNA extraction Methods 0.000 claims description 5
- 238000012408 PCR amplification Methods 0.000 claims description 5
- 238000013461 design Methods 0.000 claims description 5
- 238000002844 melting Methods 0.000 claims description 5
- 230000008018 melting Effects 0.000 claims description 5
- 238000011880 melting curve analysis Methods 0.000 claims description 5
- 230000035479 physiological effects, processes and functions Effects 0.000 claims description 5
- 238000012360 testing method Methods 0.000 claims description 5
- 230000012447 hatching Effects 0.000 claims description 4
- 210000003205 muscle Anatomy 0.000 claims description 4
- 108010043121 Green Fluorescent Proteins Proteins 0.000 claims description 3
- 239000005662 Paraffin oil Substances 0.000 claims description 3
- 210000004690 animal fin Anatomy 0.000 claims description 3
- 239000007844 bleaching agent Substances 0.000 claims description 3
- 239000004568 cement Substances 0.000 claims description 3
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 claims description 3
- 230000004087 circulation Effects 0.000 claims description 3
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 claims description 3
- 229960000935 dehydrated alcohol Drugs 0.000 claims description 3
- 230000004720 fertilization Effects 0.000 claims description 3
- 239000007850 fluorescent dye Substances 0.000 claims description 3
- 238000003205 genotyping method Methods 0.000 claims description 3
- 229940088597 hormone Drugs 0.000 claims description 3
- 239000005556 hormone Substances 0.000 claims description 3
- 238000011534 incubation Methods 0.000 claims description 3
- 238000002372 labelling Methods 0.000 claims description 3
- 210000001161 mammalian embryo Anatomy 0.000 claims description 3
- 239000012528 membrane Substances 0.000 claims description 3
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims description 3
- 230000017448 oviposition Effects 0.000 claims description 3
- 238000002205 phenol-chloroform extraction Methods 0.000 claims description 3
- 238000004321 preservation Methods 0.000 claims description 3
- 238000007789 sealing Methods 0.000 claims description 3
- 239000002002 slurry Substances 0.000 claims description 3
- 238000003860 storage Methods 0.000 claims description 3
- 230000008774 maternal effect Effects 0.000 claims description 2
- 230000003190 augmentative effect Effects 0.000 claims 1
- 238000009400 out breeding Methods 0.000 claims 1
- 230000000149 penetrating effect Effects 0.000 claims 1
- 239000000376 reactant Substances 0.000 claims 1
- 238000009396 hybridization Methods 0.000 abstract description 10
- 230000008901 benefit Effects 0.000 abstract description 7
- 206010027146 Melanoderma Diseases 0.000 abstract description 4
- 230000008569 process Effects 0.000 abstract description 4
- 235000019733 Fish meal Nutrition 0.000 abstract description 2
- 239000004467 fishmeal Substances 0.000 abstract description 2
- 235000019688 fish Nutrition 0.000 description 71
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 5
- 101150076489 B gene Proteins 0.000 description 4
- 238000009360 aquaculture Methods 0.000 description 4
- 244000144974 aquaculture Species 0.000 description 4
- 238000005259 measurement Methods 0.000 description 4
- 235000013372 meat Nutrition 0.000 description 3
- 239000000047 product Substances 0.000 description 3
- LYCAIKOWRPUZTN-UHFFFAOYSA-N Ethylene glycol Chemical compound OCCO LYCAIKOWRPUZTN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 241000595940 Notostraca Species 0.000 description 2
- 230000002902 bimodal effect Effects 0.000 description 2
- 238000007689 inspection Methods 0.000 description 2
- 238000011160 research Methods 0.000 description 2
- 230000001568 sexual effect Effects 0.000 description 2
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 2
- 241000694873 Paralichthyidae Species 0.000 description 1
- 241000277263 Salmo Species 0.000 description 1
- 241000376029 Tachysurus fulvidraco Species 0.000 description 1
- 230000004888 barrier function Effects 0.000 description 1
- 239000008280 blood Substances 0.000 description 1
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 description 1
- 244000144987 brood Species 0.000 description 1
- 238000012258 culturing Methods 0.000 description 1
- 230000003247 decreasing effect Effects 0.000 description 1
- 238000001514 detection method Methods 0.000 description 1
- 238000010586 diagram Methods 0.000 description 1
- 238000002224 dissection Methods 0.000 description 1
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 1
- 235000013601 eggs Nutrition 0.000 description 1
- 229930182833 estradiol Natural products 0.000 description 1
- 239000013505 freshwater Substances 0.000 description 1
- 230000002068 genetic effect Effects 0.000 description 1
- 210000004907 gland Anatomy 0.000 description 1
- 210000002149 gonad Anatomy 0.000 description 1
- WGCNASOHLSPBMP-UHFFFAOYSA-N hydroxyacetaldehyde Natural products OCC=O WGCNASOHLSPBMP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 208000037805 labour Diseases 0.000 description 1
- 238000012986 modification Methods 0.000 description 1
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 1
- 239000003147 molecular marker Substances 0.000 description 1
- 235000016709 nutrition Nutrition 0.000 description 1
- 230000035764 nutrition Effects 0.000 description 1
- 230000001151 other effect Effects 0.000 description 1
- 230000008775 paternal effect Effects 0.000 description 1
- 238000011020 pilot scale process Methods 0.000 description 1
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 1
- 238000005070 sampling Methods 0.000 description 1
- 238000012216 screening Methods 0.000 description 1
- GOLXNESZZPUPJE-UHFFFAOYSA-N spiromesifen Chemical compound CC1=CC(C)=CC(C)=C1C(C(O1)=O)=C(OC(=O)CC(C)(C)C)C11CCCC1 GOLXNESZZPUPJE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000013589 supplement Substances 0.000 description 1
- 230000004083 survival effect Effects 0.000 description 1
- 230000002195 synergetic effect Effects 0.000 description 1
- 230000007704 transition Effects 0.000 description 1
- 238000003911 water pollution Methods 0.000 description 1
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01K—ANIMAL HUSBANDRY; AVICULTURE; APICULTURE; PISCICULTURE; FISHING; REARING OR BREEDING ANIMALS, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; NEW BREEDS OF ANIMALS
- A01K61/00—Culture of aquatic animals
- A01K61/10—Culture of aquatic animals of fish
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
- C12Q1/6844—Nucleic acid amplification reactions
- C12Q1/686—Polymerase chain reaction [PCR]
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
- C12Q1/6876—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes
- C12Q1/6879—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for sex determination
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q2600/00—Oligonucleotides characterized by their use
- C12Q2600/124—Animal traits, i.e. production traits, including athletic performance or the like
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q2600/00—Oligonucleotides characterized by their use
- C12Q2600/156—Polymorphic or mutational markers
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q2600/00—Oligonucleotides characterized by their use
- C12Q2600/172—Haplotypes
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02A—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
- Y02A40/00—Adaptation technologies in agriculture, forestry, livestock or agroalimentary production
- Y02A40/80—Adaptation technologies in agriculture, forestry, livestock or agroalimentary production in fisheries management
- Y02A40/81—Aquaculture, e.g. of fish
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Zoology (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Immunology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Biophysics (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Environmental Sciences (AREA)
- Animal Husbandry (AREA)
- Biodiversity & Conservation Biology (AREA)
- Marine Sciences & Fisheries (AREA)
- Farming Of Fish And Shellfish (AREA)
Abstract
本发明属于鱼类育种技术领域,公开了一种全雄乌斑杂交鳢的培育方法,进行选育系斑鳢性逆转;伪雌鱼鉴定;伪雌鱼繁殖;超雄鱼鉴定及超雄鱼扩繁。利用本发明提供的方法步骤,可以培育全雄性乌斑杂交鳢,雄性率93%以上;全雄品种在养殖过程中,养殖7个月,相比普通品种亩产增加8%以上,2斤以上高15%;养殖当年新鱼饲料系数降低0.1;养殖10个月,比普通品种增产26.6%,饲料系数降低0.175‑0.21。本发明进行杂交获得的新品种“乌斑杂交鳢”具有生长速度快、耐低温能力强的优点,可取代北方地区的乌鳢养殖,成为全国性养殖品种。
Description
技术领域
本发明属于鱼类育种技术领域,尤其涉及一种全雄乌斑杂交鳢的培育方法。
背景技术
目前,最接近的现有技术:
鳢是我国重要的淡水优质经济鱼类,具有骨刺少、肉鲜嫩、营养丰富的特点,有去瘀生新,滋补调养等功效,深受消费者喜爱,易于加工,是重要水产品之一。
目前江南及华南地区主要养殖品种为以斑鳢为母本、乌鳢为父本杂交获得的斑乌杂交鳢,黄河及以北主要养殖乌鳢。由于乌鳢只能摄食冰鲜鱼或活饵料,水质污染严重,已被很多地区限制或禁止养殖。斑乌杂交鳢不耐寒,不能推广到北方地区。
本单位以通过连续选育4代的斑鳢为父本和选育2代的乌鳢为母本,进行杂交获得乌斑杂交鳢新品种,生长速度快、耐寒能力强,可以推广到全国大部分地区养殖,取得良好社会和经济效益。
然而,鳢科鱼类中存在显著的生长雌雄差异,雌性规格达到500g以上性腺加快发育,生长减慢,饲料系数提高,商品鱼养成后雄性个体规格是雌性的2倍以上。大规格个体在定价方面比小规格每公斤高2~4元以上,经济效益差异明显。所以在生产中,养殖户一般养殖至当年年底将存塘1斤及以下规格鱼挑出低价出售,这部分鱼90%以上为雌鱼,剩余的鱼(雄鱼占约90%)继续养殖至次年3-4月份养殖到2斤以上出售,以获得较高的价格。养殖全雄性鳢可避免分拣,所有鱼都可养成到商品规格,将提高整体生长速度达20%,市场需求迫切。
综上所述,现有技术存在的问题是:
(1)现有技术中,通过连续选育4代的斑鳢和选育2代的乌鳢为良种品系亲本,进行杂交获得的新品种,仅解决了抗寒和生长速度问题,没有解决鳢雌雄差异大的问题,其中雌性个体小,性成熟后怀卵造成饲料系数增加,加大了养殖成本。
(2)鳢商品鱼以规格定价,1kg以上个体比1kg以下个体市场价格高50%以上,雌性小个体比例提高,降低了整体价格,严重影响渔民收入。
(3)渔民为了减少雌性个体带来的影响,每年都要在雌性性腺开始发育时对整塘鱼进行挑选,将250g以下个体提前以较低的价格卖出,留下大个体的雄鱼继续养殖,以期获得更高的价格。这耗费了大量的劳动力,增加了支出。
(4)已有技术利用雌核发育的方法生产和扩繁YY超雄乌鳢,伪雌鱼的鉴定需要用后代的性别推测亲本的基因型,而且雌核发育后代成活率非常低,亲本制备效率很低。
解决上述技术问题的难度:鱼类中雌雄差异大、有单性育种需求的鱼类很多。但目前,实现单性育种的鱼类仅全雌大西洋鲑、全雌牙鲆、全雄黄颡鱼几种,大部分鱼类还未实现单性育种技术的突破。主要技术障碍在于伪雌鱼和超雄分子鉴定、伪雌鱼或超雄鱼不能繁殖等问题。
解决上述技术问题的意义:本发明提供全雄乌斑杂交鳢育种中几个关键技术,包括性逆转、伪雌鱼分子鉴定、伪雌鱼繁殖、超雄鱼分子鉴定。利用这些技术可以实现鳢的性别控制,可以以超雄斑鳢生产全雄、超雄斑鳢和乌斑杂交鳢,从而创制新种质和养殖品种。目前全雄品种开展实现小试和中试,取得良好效果。全雄养殖品种的培育,可以大幅提高鳢养殖经济效益,节本增效。同时,也为其他鱼类的性别控制提供技术参考。
发明内容
针对现有技术存在的问题,本发明提供了一种全雄乌斑杂交鳢的培育方法。本发明利用性别特异分子标记同时鉴定伪雌鱼和超雄鱼,效率大大提高。
本发明是这样实现的,一种全雄乌斑杂交鳢的培育方法,所述全雄乌斑杂交鳢的培育方法包括以下步骤:
步骤一,选育系斑鳢性逆转;将斑鳢鱼苗在水中进行浸泡,投喂浮游动物,适时增补雌激素,驯化人工饲料后投喂雌激素,不再在水中添加雌激素,培育鱼苗,直至性成熟。
步骤二,伪雌鱼鉴定。进行DNA提取、引物设计、PCR扩增和高分辨率熔解曲线分析。确定样品基因型,根据基因型鉴定性别。
步骤三,伪雌鱼繁殖。将鉴定基因型为雄性、生理性别为雌性的伪雌鱼与良种品系的雄鱼进行繁殖。
步骤四,超雄鱼鉴定。将伪雌鱼的后代剪取少量鳍条,提取DNA,利用鉴定伪雌鱼的分子标记进行鉴定。出现不同于步骤二中基因型的新的纯合子基因型的个体即为超雄鱼。
步骤五,超雄鱼扩繁。
进一步,步骤一选育系斑鳢性逆转中,首先将孵化出苗的良种品系斑鳢鱼苗在含有浓度为1mg/m3β-雌二醇的水中进行浸泡,同时正常投喂浮游动物,换水后根据换水量增补雌激素。
待鱼苗生长到1.5cm时,开始驯化添加人工饲料,人工配合饲料中添加50mg/kgβ-雌二醇。
添加时,β-雌二醇首先溶于无水乙醇中,均匀喷洒于饲料表面同时搅拌,喷洒完后在阴凉的地方晾干,使酒精挥发。拌喂雌激素后,水体中不再添加雌激素。
投喂添加雌激素的饲料40天后停止添加激素,转为正常鱼苗培育,直至性成熟。
进一步,步骤二伪雌鱼鉴定中,具体包括:
1)DNA提取,在上述经过性逆转的性成熟斑鳢中挑选雌鱼,对每条鱼进行电子射频标签标记后取鳍条提取DNA。DNA提取采用本领域的常规技术手段提取,包括酚-氯仿法和各种DNA提取试剂盒。提取总DNA后用无菌水稀释至20ng/ul。
2)引物设计,提取的DNA利用引物进行基因分型,所用引物序列为:
SEQ ID NO:1、SEQ ID NO:2。扩增序列为:SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:4。
3)PCR扩增和高分辨率熔解曲线分析,将样品DNA模板、Primer F、Primer R、PCRpremix、LC green荧光染料混合形成PCR反应体系,再将反应板在PCR仪上进行扩增,扩增后在light scanner分析系统中进行熔解曲线收集,利用仪器自带软件进行分析,确定样品基因型,根据基因型鉴定性别。
进一步,步骤3)中,PCR反应体系为20ul,包括:
2×PCR premix 10ul,primer F 0.6ul,primer R 0.6ul,DNA模板1ul,无菌水6.8ul,LC green 1ul。反应在仪器专用PCR 96孔板中进行,石蜡油覆盖密封。
扩增和检测条件:
按上述反应体系配制好试剂后,将反应板置于普通PCR仪中,设置以下程序:95℃10min。然后进行40个循环,包括95℃15s,62℃30S,72℃40S。然后72℃延伸10min,4℃保存10min后结束。
PCR结束后,将反应板加载到light scanner分析系统中,利用默认设置进行熔解曲线收集和分析。
进一步,步骤三伪雌鱼繁殖中,催产方法为:
(1)亲本催产,首先将亲本暂养池水温调至28℃并维持温度恒定。伪雌鱼母本催产采用两针注射法,第一针每千克鱼体重使用4μg/kg LRH-A2背部肌肉注射。第一针注射后12小时后进行第二针注射,每千克鱼体重使用700IU/kg HCG和10μg/kg LRH-A2,第二针注射后即将母本放入泡沫箱中,箱中水温调节到28℃,水位为2/3高度。
伪雌鱼催产约5-6小时后,挑选1kg左右规格的普通雄鱼进行催产,催产时背部肌肉注射HCG的剂量为120IU/kg。注射后即与母本在泡沫箱中1:1配对自然产卵。
(2)受精卵孵化,产卵后,将亲鱼捞出,鱼卵在原泡沫箱中孵化。孵化24h后将变白坏卵去除,出现黑色环状胚胎的受精卵收集进入孵化池中孵化。
(3)苗种培育,将孵化出膜后能够下沉聚集在一起游动的鱼苗移至水泥池培育,并用丰年虫投喂。待鱼苗生长到3cm,用鱼浆拌饲料进行驯化,逐步过渡
到全部用饲料投喂。培育至5~8cm规格后移至池塘养殖至性成熟。
进一步,步骤五超雄鱼扩繁包括:超雄鱼培育性成熟后,与伪雌鱼繁殖生产超雄鱼,或与乌鳢母本繁殖生产全雄乌斑杂交鳢。
综上所述,本发明的优点及积极效果为:
利用本发明提供的方法步骤,可以在生长速度快、耐低温能力强的“乌斑杂交鳢”新品种的基础上培育全雄品种,雄性率93%以上。全雄品种在养殖过程中不需要人工剔除雌鱼,养殖7个月,相比普通品种亩产增加8%以上,2斤以上比例比人工筛选过的群体高15%以上。养殖当年新鱼饲料系数降低0.1。养殖10个月,比普通品种增产26.6%,饲料系数降低0.175-0.21。新的品种可完全取代北方地区的乌鳢养殖,成为全国性养殖品种,具有非常广阔的市场前景、巨大产业价值和科学价值。
附图说明
图1是本发明实施例提供的全雄乌斑杂交鳢的培育方法流程图。
图2是本发明实施例提供的伪雌鱼的分子鉴定图。
图中:将性逆转后发育成熟为雌性的个体进行基因型鉴定,其中A基因型为伪雌鱼,B基因型为正常雌鱼。
图3是本发明实施例提供的伪雌鱼与普通雄鱼后代中超雄鱼分子鉴定图。
图中:A基因型为XY雄鱼。B基因型为XX雌鱼。C基因型为YY超雄鱼。
图4是本发明实施例提供的超雄鱼与伪雌鱼后代中超雄鱼的分子鉴定图。
图中:基因型A为普通雄鱼。基因型B为超雄鱼。
图5是本发明实施例提供的全雄乌斑杂交鳢与普通杂交鳢生长速度对比图。
图中:每个点为每月分别测量全雄组和普通组生长情况获得的平均体重。养殖到120天全雄鱼平均体重即超过普通组(对照)30%以上。
具体实施方式
为了使本发明的目的、技术方案及优点更加清楚明白,以下结合实施例,对本发明进行进一步详细说明。应当理解,此处所描述的具体实施例仅仅用以解释本发明,并不用于限定本发明。
现有技术中,通过连续选育4代的斑鳢和选育2代的乌鳢为良种品系亲本,进行杂交获得的新品种解决了生长速度和抗寒的问题,但其中的雌鱼生长速度慢、个体小、饲料系数高、商品价值低,造成商品鱼饲料系数增加、价格低,加大了养殖成本,降低养殖效益。
针对现有技术存在的问题,本发明提供了一种全雄乌斑杂交鳢的培育方法,下面结合附图对本发明作详细的描述。
如图1所示,本发明实施例提供的全雄乌斑杂交鳢的培育方法包括:
S101,选育系斑鳢性逆转。
S102,伪雌鱼鉴定。
S103,伪雌鱼繁殖。
S104,超雄鱼鉴定。
S105,超雄鱼扩繁。
步骤S101选育系斑鳢性逆转中,首先将孵化出苗的良种品系斑鳢鱼苗在含有浓度为1mg/m3β-雌二醇的水中进行浸泡,同时正常投喂浮游动物,换水后根据换水量增补雌激素。待鱼苗生长到1.5cm左右时,开始驯化添加人工饲料,人工配合饲料中添加50mg/kgβ-雌二醇。添加时,β-雌二醇首先溶于无水乙醇中,均匀喷洒于饲料表面同时搅拌,喷洒完后在阴凉的地方晾干,使酒精挥发。拌喂雌激素后,水体中不再添加雌激素。投喂添加雌激素的饲料40天后停止添加激素,转为正常鱼苗培育,直至性成熟。
步骤S102伪雌鱼鉴定中,具体包括:
1)DNA提取,在上述经过性逆转的性成熟斑鳢中挑选雌鱼,对每条鱼进行电子射频标签标记后取鳍条提取DNA。DNA提取可以采用本领域的常规技术手段提取,包括酚-氯仿法和各种DNA提取试剂盒。提取总DNA后用无菌水稀释至20ng/ul。
2)引物设计,提取的DNA利用引物进行基因分型,所用引物序列为:
Primer F:5'AACATGACCCAAGAAGAGAATAAT 3'SEQ ID NO:1。
Primer R:5'GGCTGTGATTTTCATCCAACTGAGTT 3'SEQ ID NO:2。
扩增序列(不含引物)为:
序列1:GAATGGAAAGATTCGAAGCATGGTTAGCGGAACATGTCTCAGAATGCATTTGGGGGC SEQID NO:3。
序列2:GAATGGAAAGAGGGGC SEQ ID NO:4。
其中序列2中间缺失41bp序列。当扩增的碱基序列仅为序列1时,样品为遗传雌性,当样品为序列1和2时,样品为遗传雄性。
3)PCR扩增和高分辨率熔解曲线分析,将样品DNA模板、Primer F、Primer R、PCRpremix、LC green荧光染料混合形成PCR反应体系,再将反应板在PCR仪上进行扩增,扩增后在light scanner分析系统中进行熔解曲线收集,利用仪器自带软件进行分析,确定样品基因型,根据基因型鉴定性别。
其中PCR反应体系为20ul,包括:
2×PCR premix 10ul,primer F 0.6ul,primer R 0.6ul,DNA模板1ul,无菌水6.8ul,LC green 1ul。反应在仪器专用PCR 96孔板中进行,石蜡油覆盖密封。
扩增和检测条件:
按上述反应体系配制好试剂后,将反应板置于普通PCR仪中,设置以下程序:95℃10min。然后进行40个循环,包括95℃15s,62℃30S,72℃40S。然后72℃延伸10min,4℃保存10min后结束。
PCR结束后,将反应板加载到light scanner分析系统中,利用默认设置进行熔解曲线收集和分析。
结果判定:收集熔解曲线后,样品的基因型可根据曲线峰即可鉴别。如下图中,熔解曲线为双峰的样品基因型为雄性,仅有1个与双峰右侧峰相同的峰的样品为雌性。基因型为雄性,而生理为雌性的个体为伪雌鱼。
如图2所示,伪雌鱼的分子鉴定(将性逆转后发育成熟为雌性的个体进行基因型鉴定,其中A基因型为伪雌鱼,B基因型为正常雌鱼)图。
步骤S103伪雌鱼繁殖中,将上述鉴定基因型为雄性、生理性别为雌性的伪雌鱼与良种品系的雄鱼进行繁殖。催产方法为:
(1)亲本催产,首先将亲本暂养池水温调至28℃并维持温度恒定。伪雌鱼母本催产采用两针注射法,第一针每千克鱼体重使用4μg/kg LRH-A2背部肌肉注射。第一针注射后12小时后进行第二针注射,每千克鱼体重使用700IU/kg HCG和10μg/kg LRH-A2,第二针注射后即将母本放入泡沫箱中,箱中水温调节到28℃,水位为2/3高度。
伪雌鱼催产约5-6小时后,挑选1kg左右规格的普通雄鱼进行催产,催产时背部肌肉注射HCG的剂量为120IU/kg。注射后即与母本在泡沫箱中1:1配对自然产卵。
(2)受精卵孵化
产卵后,将亲鱼捞出,鱼卵在原泡沫箱中孵化。孵化24h后将变白坏卵去除,出现黑色环状胚胎的受精卵收集进入孵化池中孵化。
(3)苗种培育
将孵化出膜后能够下沉聚集在一起游动的鱼苗移至水泥池培育,并用丰年虫投喂。待鱼苗生长到3cm规格,用鱼浆拌饲料进行驯化,逐步过渡到全部用饲料投喂。培育至5~8cm规格后移至池塘养殖至性成熟。
步骤S104超雄鱼鉴定包括:
伪雌鱼后代理论上有三种基因型,分别为XX雌性、XY雄性和YY雄性。利用上述鉴定伪雌鱼的分子标记进行鉴定,鉴定标记、仪器和PCR程序同步骤S102。如图3伪雌鱼与普通雄鱼后代中超雄鱼分子鉴定,其中A基因型为XY雄鱼,B基因型为XX雌鱼,C基因型为YY超雄鱼。
步骤S105超雄鱼扩繁包括:上述利用伪雌鱼与普通雄鱼繁殖的后代中25%为超雄鱼,为提高超雄鱼生产效率,将伪雌鱼与超雄鱼进行繁殖,其后代中有50%为超雄鱼。伪雌鱼与超雄鱼后代全部为雄性,其基因型鉴定如图4超雄鱼与伪雌鱼后代中超雄鱼的分子鉴定所示,其中基因型A为普通雄鱼,基因型B为超雄鱼。
上述超雄鱼培育性成熟后,可与伪雌鱼繁殖生产超雄鱼,也可与乌鳢母本繁殖生产全雄乌斑杂交鳢。繁殖方法与伪雌鱼繁殖相同。
本发明通过将斑鳢雄性性逆转为雌性,将伪雌鱼与普通雄鱼繁殖产生超雄鱼,再利用超雄鱼与伪雌鱼生产超雄鱼,并利用分子标记鉴定伪雌鱼和超雄鱼,避免了测交鉴定的繁琐过程,加快了新品种培育效率。
下面结合具体实施例对本发明作进一步描述。
应用实例1:
2015年,利用上述方法,性逆转斑鳢苗种2万尾。至2016年养殖至性成熟后,挑选272尾生理雌鱼进行分子鉴定,经鉴定其中121尾为伪雌鱼。利用这121尾伪雌鱼与普通雄鱼配对繁殖,最终仅2尾伪雌鱼成功产受精卵,并孵化出苗种500余尾。鱼苗培育至2017年性成熟后,检查共获得288尾,均为雄鱼。经基因型鉴定,其中YY鱼为54尾。利用上述YY超雄鱼中5尾与乌鳢母本配对繁殖,生产2万余尾全雄乌斑杂交鳢,经过5个月养殖,解剖鉴定生理性别,雄性率为100%,而对照组雄性率仅为38%。利用其中10尾与斑鳢伪雌鱼配对繁殖,产生5000尾后代,培育至2018年,获得性成熟亲鱼684尾,经鉴定含有超雄鱼348尾。利用上述超雄鱼与乌鳢母本生产全雄乌斑杂交鳢苗种300万尾,在中山、珠海、佛山进行试验养殖。
养殖实例2:
珠海斗门某养殖场同时养殖全雄乌斑杂交鳢和普通杂交鳢,两口相邻池塘面积均为6亩,分别于2018年5月22日放塘体长8厘米(体重约5.5克)规格普通杂交鳢鱼种6.5万尾,6月12日放塘相同规格全雄杂交鳢6.9万尾,全雄组养殖密度略高于普通组,全雄苗放塘时,普通杂交鳢组已生长至15克左右,养殖管理和投喂饲料均相同,7月12日开始每月进行对比测量。
对比测量结果如下:
初始规格 | 30天 | 62天 | 90天 | 120天 | |
全雄组 | 5.0 | 59.3 | 179.7 | 338.5 | 775.2 |
对照组 | 15.0 | 96.7 | 207.5 | 316.8 | 580.1 |
全雄杂交鳢组在初始规格显著小于普通杂交鳢组的情况下,养殖90天后达到相同规格,养殖到120天平均体重即超过普通组30%以上。经抽样检查,全雄组雄性率97%,对照普通杂交鳢雄性率46%。如图5所示。
养殖实例3:
2018年12月,珠海市养殖全雄和普通杂交鳢的两个5亩池塘出鱼,其中养殖全雄的塘苗种为5月25日生产,12月5日出塘,普通苗种为5月21日生产,12月28日出塘。全雄组养殖194天,出鱼69023斤。普通组养殖221天,出鱼63826斤。经抽样测量,全雄组平均重1.8斤,2斤上69%,饲料系数1.02。普通组均重1.6斤,2斤上54%,饲料系数1.12。全雄组养殖时间少27天的情况下,平均规格更大,饲料系数降低0.1。
2019年3月1日,中山三角某全雄杂交鳢养殖池塘出塘,经加工厂抽样检测,雄性率93%,1千克以上规格占比94.6%,1千克以下规格4.6%。经测算,全雄杂交鳢养殖池塘的饲料系数1.15,而同场其他池塘普通杂交鳢均经过12月份挑鱼,将250克以下小规格雌鱼挑出上市后剩下约90%为雄性的大规格鱼继续养殖,至同期,挑选后的鱼塘1千克以上规格占89-91%,饲料系数为1.32~1.36。全雄杂交鳢养殖不用在越冬前挑雌鱼,一直养殖至上市,饲料系数降低0.17-0.21,大规格占比更高,养殖优势非常显著。
以上所述仅为本发明的较佳实施例而已,并不用以限制本发明,凡在本发明的精神和原则之内所作的任何修改、等同替换和改进等,均应包含在本发明的保护范围之内。
序列表
<110> 中国水产科学研究院珠江水产研究所
佛山市南海百容水产良种有限公司
<120> 一种全雄乌斑杂交鳢的培育方法
<160> 4
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 24
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 1
aacatgaccc aagaagagaa taat 24
<210> 2
<211> 26
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 2
ggctgtgatt ttcatccaac tgagtt 26
<210> 3
<211> 57
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 3
gaatggaaag attcgaagca tggttagcgg aacatgtctc agaatgcatt tgggggc 57
<210> 4
<211> 16
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 4
gaatggaaag aggggc 16
Claims (7)
1.一种全雄乌斑杂交鳢的培育方法,其特征在于,所述全雄乌斑杂交鳢的培育方法包括:
伪雌鱼鉴定,进行DNA提取、引物设计、PCR扩增和高分辨率熔解曲线分析;确定样品基因型,根据基因型鉴定性别;
伪雌鱼繁殖,将鉴定基因型为雄性、生理性别为雌性的伪雌鱼与良种品系的雄鱼进行繁殖;
超雄鱼鉴定,利用鉴定伪雌鱼的分子标记进行鉴定。
2.如权利要求1所述的全雄乌斑杂交鳢的培育方法,其特征在于,伪雌鱼鉴定中,具体包括:
1)DNA提取,在上述经过性逆转的性成熟斑鳢中挑选雌鱼,对每条鱼进行电子射频标签标记后取鳍条提取DNA;DNA提取采用本领域的常规技术手段提取,包括酚-氯仿法和各种DNA提取试剂盒;提取总DNA后用无菌水稀释至20ng/ul;
2)引物设计,提取的DNA利用引物进行基因分型,所用引物序列为:
SEQ ID NO:1、SEQ ID NO:2;扩增序列为:SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:4;
3)PCR扩增和高分辨率熔解曲线分析,将样品DNA模板、Primer F、Primer R、PCRpremix、LC green荧光染料混合形成PCR反应体系,再将反应板在PCR仪上进行扩增,扩增后在light scanner分析系统中进行熔解曲线收集,利用仪器自带软件进行分析,确定样品基因型,根据基因型鉴定性别。
3.如权利要求2所述的全雄乌斑杂交鳢的培育方法,其特征在于,步骤3)中,PCR反应体系为20ul,包括:
2×PCR premix10ul,primer F0.6ul,primer R0.6ul,DNA模板1ul,无菌水6.8ul,LCgreen1ul;反应在仪器专用PCR96孔板中进行,石蜡油覆盖密封;
扩增和检测条件:
按上述反应体系配制好试剂后,将反应板置于普通PCR仪中,设置以下程序:95℃10min;然后进行40个循环,包括95℃15s,62℃30S,72℃40S;然后72℃延伸10min,4℃保存10min后结束;
PCR结束后,将反应板加载到light scanner分析系统中,利用默认设置进行熔解曲线收集和分析。
4.如权利要求1所述的全雄乌斑杂交鳢的培育方法,其特征在于,伪雌鱼繁殖中,催产方法为:
(1)亲本催产,首先将亲本暂养池水温调至28℃并维持温度恒定;伪雌鱼母本催产采用两针注射法,第一针每千克鱼体重使用4μg/kg LRH-A2背部肌肉注射。第一针注射后12小时后进行第二针注射,每千克鱼体重使用700 IU/kg HCG和10μg/kg LRH-A2,第二针注射后即将母本放入泡沫箱中,箱中水温调节到28℃,水位为2/3高度;
伪雌鱼催产约5-6小时后,挑选1kg左右规格的普通雄鱼进行催产,催产时背部肌肉注射HCG的剂量为120 IU/kg。注射后即与母本在泡沫箱中1:1配对自然产卵;
(2)受精卵孵化,产卵后,将亲鱼捞出,鱼卵在原泡沫箱中孵化;孵化24h后将变白坏卵去除,出现黑色环状胚胎的受精卵收集进入孵化池中孵化。
(3)苗种培育,将孵化出膜后能够下沉聚集在一起游动的鱼苗移至水泥池培育,并用丰年虫投喂;待鱼苗生长到3cm,用鱼浆拌饲料进行驯化,逐步过渡到全部用饲料投喂;培育至5~8cm规格后移至池塘养殖至性成熟。
5.如权利要求1所述的全雄乌斑杂交鳢的培育方法,其特征在于,伪雌鱼鉴定前需进行:
选育系斑鳢性逆转;将斑鳢鱼苗在水中进行浸泡,投喂浮游动物,增补雌激素,驯化人工饲料后投喂雌激素,培育鱼苗,直至性成熟。
6.如权利要5所述的全雄乌斑杂交鳢的培育方法,其特征在于,选育系斑鳢性逆转中,首先将孵化出苗的良种品系斑鳢鱼苗在含有浓度为1mg/m3β-雌二醇的水中进行浸泡,同时正常投喂浮游动物,换水后根据换水量增补雌激素;
待鱼苗生长到1.5cm时,开始驯化添加人工饲料,人工配合饲料中添加50mg/kgβ-雌二醇;
添加时,β-雌二醇首先溶于无水乙醇中,均匀喷洒于饲料表面同时搅拌,喷洒完后在阴凉的地方晾干,使酒精挥发;拌喂雌激素后,水体中不再添加雌激素;
投喂添加雌激素的饲料40天后停止添加激素,转为正常鱼苗培育,直至性成熟。
7.如权利要求1所述的全雄乌斑杂交鳢的培育方法,其特征在于,超雄鱼鉴定后还需进行超雄鱼扩繁;
所述超雄鱼扩繁包括:超雄鱼培育性成熟后,与伪雌鱼繁殖生产超雄鱼,或与乌鳢母本繁殖生产全雄乌斑杂交鳢。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201910682816.XA CN110358819B (zh) | 2019-07-26 | 2019-07-26 | 一种全雄乌斑杂交鳢的培育方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201910682816.XA CN110358819B (zh) | 2019-07-26 | 2019-07-26 | 一种全雄乌斑杂交鳢的培育方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN110358819A true CN110358819A (zh) | 2019-10-22 |
CN110358819B CN110358819B (zh) | 2021-01-26 |
Family
ID=68222512
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201910682816.XA Active CN110358819B (zh) | 2019-07-26 | 2019-07-26 | 一种全雄乌斑杂交鳢的培育方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN110358819B (zh) |
Cited By (7)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN111165401A (zh) * | 2020-02-27 | 2020-05-19 | 广西壮族自治区水产引育种中心 | 一种罗非鱼快速高效选育方法 |
CN111727934A (zh) * | 2020-07-17 | 2020-10-02 | 安徽农业大学 | 一种短周期高效全雄中华鳖苗种的繁育方法 |
CN112746111A (zh) * | 2021-01-20 | 2021-05-04 | 广东梁氏水产种业有限公司 | 斑鳢雄性分子标记引物及其应用 |
CN113303250A (zh) * | 2021-04-08 | 2021-08-27 | 江苏农林职业技术学院 | 一种全雄乌鳢的培育方法 |
CN113475433A (zh) * | 2021-08-12 | 2021-10-08 | 江苏省淡水水产研究所 | 一种斑点叉尾鮰伪雌鱼培育方法 |
CN116732157A (zh) * | 2023-03-28 | 2023-09-12 | 中国海洋大学 | 一种用于乌鳢、斑鳢、杂交鳢性别和品种鉴定的通用分子标记 |
CN118160655A (zh) * | 2024-03-08 | 2024-06-11 | 广东渔都会水产有限公司 | 一种全雄乌斑杂交鳢的规模化培育方法 |
Citations (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
KR0139567B1 (ko) * | 1995-03-29 | 1998-06-01 | 김동수 | 틸라피아 초암컷을 이용한 전수컷 집단의 생산방법 |
CN104587463A (zh) * | 2014-12-27 | 2015-05-06 | 浙江大学 | 鱼类nkef-a重组蛋白对适应性体液免疫的活化效应及其应用 |
CN106011300A (zh) * | 2016-08-04 | 2016-10-12 | 淮阴师范学院 | 乌苏里拟鲿遗传性别鉴定用pcr引物对及快速鉴定方法 |
CN106614139A (zh) * | 2016-12-22 | 2017-05-10 | 中国水产科学研究院珠江水产研究所 | 一种杂交鳢的高效催产方法 |
EP3241909A4 (en) * | 2014-12-30 | 2018-06-20 | Universidad De Chile | Pcr-rflp-based method for identifying, and determining the purity of piscirickettsia salmonis |
CN109169415A (zh) * | 2018-07-24 | 2019-01-11 | 武汉百瑞生物技术有限公司 | 一种全雄乌鳢的生产方法 |
-
2019
- 2019-07-26 CN CN201910682816.XA patent/CN110358819B/zh active Active
Patent Citations (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
KR0139567B1 (ko) * | 1995-03-29 | 1998-06-01 | 김동수 | 틸라피아 초암컷을 이용한 전수컷 집단의 생산방법 |
CN104587463A (zh) * | 2014-12-27 | 2015-05-06 | 浙江大学 | 鱼类nkef-a重组蛋白对适应性体液免疫的活化效应及其应用 |
EP3241909A4 (en) * | 2014-12-30 | 2018-06-20 | Universidad De Chile | Pcr-rflp-based method for identifying, and determining the purity of piscirickettsia salmonis |
CN106011300A (zh) * | 2016-08-04 | 2016-10-12 | 淮阴师范学院 | 乌苏里拟鲿遗传性别鉴定用pcr引物对及快速鉴定方法 |
CN106614139A (zh) * | 2016-12-22 | 2017-05-10 | 中国水产科学研究院珠江水产研究所 | 一种杂交鳢的高效催产方法 |
CN109169415A (zh) * | 2018-07-24 | 2019-01-11 | 武汉百瑞生物技术有限公司 | 一种全雄乌鳢的生产方法 |
Non-Patent Citations (4)
Title |
---|
CHENG YANG ET AL.: "A rapid method of sex-specific marker discovery based on NGS and determination of the XX/XY sex-determination system in Channa maculata", 《AQUACULTURE》 * |
LE WANG ET AL.: "Constructing High-Density Genetic Maps and Developing Sexing Markers in Northern Snakehead (Channa argus)", 《MARINE BIOTECHNOLOGY》 * |
MOUYAN JIANG ET AL.: "Production of YY Supermale and XY Physiological Female Common Carp for Potential Eradication of this Invasive Species", 《JOURNAL OF THE WORLD AQUACULTURE SOCIETY》 * |
陈昆慈等: "乌斑杂交鳢", 《中国水产》 * |
Cited By (10)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN111165401A (zh) * | 2020-02-27 | 2020-05-19 | 广西壮族自治区水产引育种中心 | 一种罗非鱼快速高效选育方法 |
CN111165401B (zh) * | 2020-02-27 | 2023-04-25 | 广西壮族自治区水产引育种中心 | 一种罗非鱼快速高效选育方法 |
CN111727934A (zh) * | 2020-07-17 | 2020-10-02 | 安徽农业大学 | 一种短周期高效全雄中华鳖苗种的繁育方法 |
CN112746111A (zh) * | 2021-01-20 | 2021-05-04 | 广东梁氏水产种业有限公司 | 斑鳢雄性分子标记引物及其应用 |
CN113303250A (zh) * | 2021-04-08 | 2021-08-27 | 江苏农林职业技术学院 | 一种全雄乌鳢的培育方法 |
CN113475433A (zh) * | 2021-08-12 | 2021-10-08 | 江苏省淡水水产研究所 | 一种斑点叉尾鮰伪雌鱼培育方法 |
CN113475433B (zh) * | 2021-08-12 | 2024-02-27 | 江苏省淡水水产研究所 | 一种斑点叉尾鮰伪雌鱼培育方法 |
CN116732157A (zh) * | 2023-03-28 | 2023-09-12 | 中国海洋大学 | 一种用于乌鳢、斑鳢、杂交鳢性别和品种鉴定的通用分子标记 |
CN118160655A (zh) * | 2024-03-08 | 2024-06-11 | 广东渔都会水产有限公司 | 一种全雄乌斑杂交鳢的规模化培育方法 |
CN118160655B (zh) * | 2024-03-08 | 2024-08-27 | 广东渔都会水产有限公司 | 一种全雄乌斑杂交鳢的规模化培育方法 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN110358819B (zh) | 2021-01-26 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN110358819A (zh) | 一种全雄乌斑杂交鳢的培育方法 | |
CN102047851B (zh) | 养殖草鱼家系的构建和良种选育方法 | |
CN102318571B (zh) | 海紫杂交扇贝新品种的培育方法 | |
KR101632842B1 (ko) | 황복과 자주복간의 교잡종 및 생산 방법 | |
CN109819914B (zh) | 一种卵形鲳鲹和布氏鲳鲹的人工杂交育种方法 | |
CN101133725A (zh) | 白色虾夷扇贝新品系的培育方法 | |
CN109964858B (zh) | 诱导黄颡鱼兼性鱼产生超雄鱼和全雌配套系的育种方法 | |
CN103798169A (zh) | 一种快速建立yy超雄黄颡鱼改良繁育系的方法 | |
CN101416613A (zh) | Wz♀-zz♂型奥利亚罗非鱼zz合子的雌性化方法 | |
CN106818552A (zh) | 一种异源精子诱导翘嘴鳜人工雌核发育的方法 | |
CN109329122B (zh) | 一种改良日本白鲫的选育方法及其品系的建立方法 | |
CN106069895B (zh) | 一种异源杂交鲌品系的构建方法及其苗种培育方法 | |
CN108925472A (zh) | 一种鳡与团头鲂杂交育种方法 | |
CN105918184B (zh) | 一种杂交选育全雄黄颡鱼优良品种的方法 | |
CN102487860B (zh) | 一种筛选团头鲂群体杂交优势组合的方法 | |
CN114467808A (zh) | 源于远缘杂交天然雌核发育鳙鱼的规模化制备方法 | |
CN102630616B (zh) | 提高半滑舌鳎养殖苗种雌鱼比例的方法 | |
CN107155959B (zh) | 一种改良黄颡鱼生长性状的复合育种方法 | |
CN106489799B (zh) | 选育纯系黄颡鱼全雌鱼及超雄鱼大规模生产全雄鱼的方法 | |
CN108849650B (zh) | 一种适宜于不同养殖模式的鲤鱼高效选育方法 | |
CN114375912B (zh) | 一种全雄青虾规模化繁育的方法 | |
CN100512639C (zh) | 一种香鱼的人工繁殖方法 | |
CN107926770B (zh) | 赤点石斑鱼与鞍带石斑鱼远缘杂交育种方法 | |
CN111700007B (zh) | 锦鲤与鳙鱼亚科间远缘杂交的方法和四倍体锦鳙的应用 | |
CN118160655B (zh) | 一种全雄乌斑杂交鳢的规模化培育方法 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
PB01 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
GR01 | Patent grant | ||
GR01 | Patent grant |