CN109247011B - 源自羊膜的原料的制造方法以及健康食品的制造方法 - Google Patents
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Abstract
提供一种提取物等的制造方法和混合了该提取物等的健康食品,该提取物与以往的源自胎盘的原料相比含有更多对于抗衰老效果有用的成分,所述提取物等的制造方法具有以下工序:分离前冻结工序(10),将采集的胎盘以及羊膜冻结;分离前解冻工序(11),用流水解冻胎盘以及羊膜;分离前控水工序(12),进行胎盘以及羊膜的控水;分离工序(13),分离胎盘与羊膜;羊膜水洗工序(14),对羊膜进行水洗;羊膜控水工序(15),进行羊膜的控水;羊膜切碎工序(16),切碎羊膜;羊膜冻结工序(17),冻结羊膜;羊膜解冻工序(18),解冻羊膜;提取工序(19),对羊膜进行分解并提取从而得到提取物,胎盘以及羊膜是从马采集到的。
Description
技术领域
本发明涉及将人、猪、马或者羊等哺乳动物的羊膜作为原料的源自羊膜的原料的制造方法、和混合了源自羊膜的原料的健康食品。
背景技术
一直以来,众所周知有将哺乳动物的胎盘作为来源原料的胎盘(placenta)提取物等的源自胎盘的原料的制造方法。
例如在专利文献1中,公开了如下的包含胎盘提取物的抗过敏剂的制造方法:将人、牛、猪或者羊的胎盘冻结、碎末化、融解、水洗之后,通过离心或者过滤进行脱水得到脱水胎盘,加入水、碱性蛋白酶等,通过进行加热、搅拌,从而引起酶水解反应,继续加热之后,使反应停止并在室温下静置一晚,收集上清液并过滤,利用乙醇处理滤液从而制成乙醇洗脱液,然后将洗脱液减压浓缩得到的物质冻结干燥从而制成粉末。
此外,在专利文献2中,公开了一种胎盘提取物的制造方法,具有以下工序:真空包装工序,将进行了包含除去血液、污物以及发臭部位的前处理的胎盘与相对于前处理后的胎盘重量包含0.2重量%~2重量%的蛋白酶的酶,内插至具有挠性的袋体内并进行真空包装;提取工序,在50MPa以上~不足200MPa的压力,20度~50度的范围内控制为最适合包含蛋白酶的酶的温度的状态下,将真空包装的袋体保持1天~3天;固液分离工序,从袋体内的内容物中分离出胎盘提取物原液。
此外,在专利文献3中,公开了一种胎盘提取物的制造方法,以消除酶消化过程中的繁琐为目的,使用特定的耐热性中性蛋白质分解酶对人或者猪的胎盘进行酶消化。
现有技术文献
专利文献
专利文献1:日本特开2001-39879号公报
专利文献2:日本特开2011-160742号公报
专利文献3:日本特开2004-97033号公报
发明内容
发明要解决的技术问题
由于源自胎盘的原料含有蛋白质、氨基酸、维生素、矿物质、酶、核酸以及生长因子(EGF等)等成分,因此具有促进皮肤代谢、消除活性氧、强化肝功能、抗炎症作用以及免疫激活之类的抗衰老作用,作为健康食品等的原料被活用。
但是,为了提供抗衰老效果更加优良的健康食品等,期待开发含有更多有用成分的提取物等。
因此,本发明的目的是提供一种提取物等的制造方法和混合了该提取物等的健康食品,该提取物与以往的源自胎盘的原料相比含有更多对抗衰老效果有用的成分。
用于解决上述技术问题的方案
方案1所述的本发明的源自羊膜的原料的制造方法,其特征在于,具有以下工序:分离前冻结工序,将采集的胎盘以及羊膜冻结;分离前解冻工序,在所述分离前冻结工序之后,用流水解冻所述胎盘以及所述羊膜;分离前控水工序,在所述分离前解冻工序之后,进行所述胎盘以及所述羊膜的控水;分离工序,在所述分离前控水工序之后,分离所述胎盘与所述羊膜;羊膜水洗工序,在所述分离工序之后,水洗所述羊膜;羊膜控水工序,在所述羊膜水洗工序之后,进行所述羊膜的控水;羊膜切碎工序,在所述羊膜控水工序之后,切碎所述羊膜;羊膜冻结工序,在所述羊膜切碎工序之后,冻结所述羊膜;羊膜解冻工序,在所述羊膜冻结工序之后,解冻所述羊膜;提取工序,在所述羊膜解冻工序之后,对所述羊膜进行分解并提取从而得到提取物,所述提取工序是将纯化水以及中性蛋白酶加入至所述羊膜,将提取温度设为30度以上70度以下,将提取时间设为1小时以上10小时以下的工序,所述胎盘以及所述羊膜是从马采集到的。
方案2所述的本发明的源自羊膜的原料的制造方法,其特征在于,具有以下工序:分离前冻结工序,将采集的胎盘以及羊膜冻结;分离前解冻工序,在所述分离前冻结工序之后,用流水解冻所述胎盘以及所述羊膜;分离前控水工序,在所述分离前解冻工序之后,进行所述胎盘以及所述羊膜的控水;分离工序,在所述分离前控水工序之后,分离所述胎盘与所述羊膜;羊膜水洗工序,在所述分离工序之后,水洗所述羊膜;羊膜控水工序,在所述羊膜水洗工序之后,进行对所述羊膜的控水;羊膜切碎工序,在所述羊膜控水工序之后,切碎所述羊膜;羊膜冻结工序,在所述羊膜切碎工序之后,冻结所述羊膜;羊膜解冻工序,在所述羊膜冻结工序之后,解冻所述羊膜;提取工序,在所述羊膜解冻工序之后,对所述羊膜进行分解并提取从而得到提取物,所述提取工序是重复进行规定次数的所述羊膜的冻结与融解从而分离水溶性部分的工序,所述胎盘以及所述羊膜是从马采集到的。
方案3所述的本发明的健康食品的制造方法,其特征在于,混合了通过方案1或方案2所述的源自羊膜的原料的制造方法得到的源自羊膜的原料。
发明的效果
根据本发明,能够提供一种源自羊膜的原料的制造方法和混合了该源自羊膜的原料的健康食品,该原料与以往的源自胎盘的原料相比含有更多对于抗衰老效果有用的成分。
附图说明
图1是本实施例的源自羊膜的原料的制造工序图。
图2是示出对该源自羊膜的原料的指标成分进行定量的结果的图。
图3是示出该源自羊膜的原料的角质水分量保持数据的图。
图4是示出该源自羊膜的原料的服用测试的结果的图。
图5是示出该羊膜提取物的液体原料的细胞激活作用的图。
图6是示出该羊膜提取物的液体原料对产生来自人体成纤维细胞的胶原蛋白的促进作用的图。
具体实施方式
本发明的第1实施方式的源自羊膜的原料的制造方法,具有以下工序:分离前冻结工序,将采集的胎盘以及羊膜冻结;分离前解冻工序,在分离前冻结工序之后,用流水解冻胎盘以及羊膜;分离前控水工序,在分离前解冻工序之后,进行胎盘以及羊膜的控水;分离工序,在分离前控水工序之后,分离胎盘与羊膜;羊膜水洗工序,在分离工序之后,水洗羊膜;羊膜控水工序,在羊膜水洗工序之后,进行羊膜的控水;羊膜切碎工序,在羊膜控水工序之后,切碎羊膜;羊膜冻结工序,在羊膜切碎工序之后,冻结羊膜;羊膜解冻工序,在羊膜冻结工序之后,解冻羊膜;提取工序,在羊膜解冻工序之后,对羊膜进行分解并提取从而得到提取物,提取工序是将纯化水以及中性蛋白酶加入至羊膜,将提取温度设为30度以上70度以下,将提取时间设为1小时以上10小时以下的工序,胎盘以及羊膜是从马采集到的。
根据本实施方式,能够提供一种源自羊膜的原料,该原料与以往的源自胎盘的原料相比含有更多对于抗衰老效果有用的成分。此外,根据本实施方式,能够高效地提取羊膜提取物。
本发明的第2实施方式的源自羊膜的原料的制造方法,具有以下工序:分离前冻结工序,将采集的胎盘以及羊膜冻结;分离前解冻工序,在分离前冻结工序之后,用流水解冻胎盘以及羊膜;分离前控水工序,在分离前解冻工序之后,进行胎盘以及羊膜的控水;分离工序,在分离前控水工序之后,分离胎盘与羊膜;羊膜水洗工序,在分离工序之后,水洗羊膜;羊膜控水工序,在羊膜水洗工序之后,进行羊膜的控水;羊膜切碎工序,在羊膜控水工序之后,切碎羊膜;羊膜冻结工序,在羊膜切碎工序之后,冻结羊膜;羊膜解冻工序,在羊膜冻结工序之后,解冻羊膜;提取工序,在羊膜解冻工序之后,对羊膜进行分解并提取从而得到提取物,提取工序是重复进行规定次数的羊膜的冻结与融解从而分离水溶性部分的工序,胎盘以及羊膜是从马采集到的。
根据本实施方式,能够提供一种源自羊膜的原料,该原料与以往的源自胎盘的原料相比含有更多对于抗衰老效果有用的成分。此外,根据本实施方式,能够高效地提取羊膜提取物。
本发明的第3实施方式的健康食品的制造方法,混合了通过第1实施方式或第2实施方式的源自羊膜的原料的制造方法得到的源自羊膜的原料。
根据本实施方式,能够提供抗衰老效果优良的健康食品。
实施例
以下对本发明的一实施例的源自羊膜的原料的制造方法和混合了源自羊膜的原料的健康食品进行说明。
图1是本实施例的源自羊膜的原料的制造工序图。
本实施例的源自羊膜的原料(羊膜提取物)的制造方法,具有:分离前冻结工序10、分离前解冻工序11、分离前控水工序12、分离工序13、羊膜水洗工序14、羊膜控水工序15、羊膜切碎工序16、羊膜冻结工序17、羊膜解冻工序18以及提取工序19。
在分离前冻结工序10中,将刚刚分娩后采集到的胎盘以及羊膜,立即以大约-20℃进行冻结。将冻结的胎盘以及羊膜运送至规定场所并进行保管。由此,能够将采集到的胎盘以及羊膜以良好的状态进行保管。
另外,采集的胎盘以及羊膜,虽然只要是人、猪、马或者羊等的哺乳动物的就可以,在这些中优选安全性优良,并且适宜用作保健品的猪或者马的胎盘以及羊膜。
在分离前解冻工序11中,将通过分离前冻结工序10冻结的胎盘以及羊膜放入容器,通过使水在该容器中流过快速解冻胎盘以及羊膜。分离前解冻工序11在即将开始分离工序13之前进行。
此外,在胎盘以及羊膜被解冻后也持续使水流过。通过使水持续流过,接触到胎盘或羊膜的水始终保持清洁状态,被血液等污染的解冻用水不会附着于胎盘或羊膜。由此,能够防止对源自羊膜的原料对健康食品之类的最终产品的气味或颜色产生影响。
在分离前控水工序12中,将通过分离前解冻工序11解冻的胎盘以及羊膜放入滤器等的控水容器进行控水。由此,能够去除多余的水分,提高后续工序中的操作性。
在分离工序13中,将羊膜从通过分离前控水工序12控水后的胎盘以及羊膜分离。
胎盘以及羊膜的形状根据动物种类而不同,例如,人的胎盘是子宫的一部分形成为圆盘状被称作盘状胎盘的结构,猪以及马的胎盘是分散地形成在整个子宫内的被称作分散性胎盘的结构。在从胎盘分离羊膜时,人的胎盘由于是一大块所以操作明确,但是在分散性胎盘即猪以及马的胎盘的情况下并非如此,所以通过以下的步骤进行。
首先,用剪刀等切割工具剪开从胎盘分离前的羊膜并展开。接下来,使胎盘与羊膜分离。接下来,以无残留的方式小心地除去附着于分离的羊膜的胎盘以及血管。由此,能够高效地分离胎盘与羊膜,并且能够只提取未附着胎盘或血管的羊膜。使用像这样地被分离的羊膜在提取工序19中得到的羊膜提取物,成为更多地含有对于抗衰老效果有用的成分的源自羊膜的原料。此外,在混合于健康食品之类的最终产品的情况下,对最终产品的气味或颜色的影响较小。
在羊膜水洗工序14中,将通过分离工序13从胎盘分离的羊膜再次水洗。由此,能够更可靠地防止胎盘或血管残留于分离的羊膜。
在羊膜控水工序15中,将通过羊膜水洗工序14水洗的羊膜,放入到滤器等的控水容器进行控水。通过除去羊膜的水分,即进行羊膜的水分管理,能够防止羊膜的重量由于水分而参差不齐,进而使源自羊膜的原料的品质提升。
在羊膜控水工序15之后进行羊膜切碎工序16。将通过羊膜切碎工序16切碎的羊膜,再次进行控水。通过再次进行控水能够提高水分管理的精度,进而抑制羊膜的重量由于水分而参差不齐,使源自羊膜的原料的品质更进一步地提升。
在羊膜切碎工序16中,用碎末机等切碎机将在羊膜控水工序15中控水后的羊膜,切碎成例如9mm的方形。
在羊膜冻结工序17中,测量在羊膜切碎工序16中切碎并控水过的羊膜的重量,并将羊膜放入至塑料袋等的收纳容器,抽出空气并且进行密封,迅速放入至冷冻库以大约-20℃使羊膜冻结。由此,能够以良好的状态保管切碎的羊膜。此外,如上所述,由于在羊膜控水工序15以及羊膜切碎工序16中进行了水分管理,所以能够抑制所测量的羊膜的重量由于水分而参差不齐。
另外,例如从马的胎盘,可以得到重量相对于分离前的胎盘的重量%约为15%~40%的羊膜。
在羊膜解冻工序18中将在羊膜冻结工序17中冻结的羊膜解冻。
在提取工序19中,对在羊膜解冻工序18中解冻的羊膜用酶处理、水解处理、酸处理或者冻结融解等方法进行分解提取。由此,能够得到羊膜提取物。
将在提取工序19中得到的羊膜提取物进行离心分离或者过滤,由此能够作为混合于健康食品等的羊膜提取物的液体原料。
此外,将在提取工序19中得到的羊膜提取物进行冷冻干燥或者喷雾干燥,由此能够做成混合于健康食品等的羊膜提取物的粉末原料。
以规定量混合羊膜提取物的液体原料或者粉末原料,由此能够得到混合了从胎盘分离的羊膜的提取物的健康食品。
另外,羊膜解冻工序18之后,不移至提取工序19,而对解冻的羊膜进行冷冻干燥等的干燥从而粉碎的情况下,能够得到羊膜的粉末原料。
图2是示出了将根据图1所示的工序制造的羊膜提取物的指标成分通过酶免疫测量法进行定量的结果的图(单位:pg/g)。
指标成分是指细胞因子类的表皮细胞生长因子(EGF)、酸性成纤维细胞生长因子(aFGF)、肝细胞生长因子(HGF)、生长分化因子11(GDF-11)。
图2(a)示出了对羊膜提取物的粉末原料的指标成分进行定量的结果。羊膜提取物的粉末原料是通过以下方式制造的:在羊膜切碎工序16中将羊膜切碎成碎末状后,经过羊膜冻结工序17以及羊膜解冻工序18,在提取工序19中加入纯化水和中性蛋白酶,将提取温度设为30度以上70度以下,将提取时间设为1小时以上10小时以下进行处理,并将得到的羊膜提取物进行冷冻干燥。将在来源原料中使用马的羊膜的情况作为实施例1,使用猪的羊膜的情况作为实施例2。
此外,在图2(a)中,作为比较例一并地示出对胎盘提取物的粉末原料的指标成分进行定量的结果。除了使用分离前的胎盘代替羊膜之外,与实施例1、实施例2同样的条件进行处理,由此制造胎盘提取物的粉末原料。将在来源原料中使用马的胎盘的情况作为比较例1,使用猪的胎盘的情况作为比较例2。
如图2(a)所示,可以得知实施例1、实施例2与比较例1、比较例2相比,指标成分以较高的数值被平衡良好地检测出。特别是关于GDF-11,在比较例1、比较例2中未被检测出或者即便被检测出也是较低的数值,与之相对,在实施例1、实施例2中以较高的数值被检测出。由于这些指标成分是对抗衰老效果有用的成分,所以通过混合使用了从胎盘分离的羊膜的羊膜提取物的粉末原料,与混合了将羊膜分离前的胎盘或者是使用了将羊膜分离后的胎盘的胎盘提取物的粉末原料情况相比,更能够提供抗衰老效果优良的健康食品。
此外,关于GDF-11,与实施例2相比实施例1的值更高。因此,在想要包含更多GDF-11的情况下,优选使用马的羊膜提取物的粉末原料。
图2(b)示出了对羊膜提取物的液体原料的指标成分进行定量的结果。羊膜提取物的液体原料是通过以下方式制造的:在羊膜切碎工序16中将羊膜切碎成碎末状后,经过羊膜冻结工序17以及羊膜解冻工序18,在提取工序19中,重复进行规定次数的冻结与融解并分离水溶性部分。将在来源原料中使用马的羊膜的情况作为实施例3,使用猪的羊膜的情况作为实施例4。
此外,在图2(b)中,作为比较例,一并地示出对胎盘提取物的液体原料的指标成分进行定量的结果。除了使用分离前的胎盘代替羊膜之外,与实施例3、实施例4同样的条件进行处理,由此制造胎盘提取物的液体原料。将在来源原料中使用马的胎盘的情况下作为比较例3,使用猪的胎盘情况下作为比较例4。
如图2(b)所示,可以得知实施例3、实施例4与比较例3、比较例4相比,指标成分以较高的数值被平衡良好地检测出。特别是关于GDF-11,在比较例3、比较例4中未被检测出或者即便被检测出也是较低的数值,与之相对,在实施例3、实施例4中以较高的数值被检测出。由于这些指标成分是对抗衰老效果有用的成分,所以通过混合使用了从胎盘分离的羊膜的羊膜提取物的液体原料,与混合了将羊膜分离前的胎盘或者是使用了将羊膜分离后的胎盘的胎盘提取物的液体原料的情况相比,更能够提供抗衰老效果优良的健康食品。
此外,关于GDF-11,与实施例4相比实施例3的值更高。因此,在想要包含更多GDF-11的情况下,优选使用马的羊膜提取物的液体原料。
图3是示出根据图1所示的工序制造的羊膜提取物的角质水分量保持数据的图。横轴表示经过时间(mi n),纵轴表示角质水分量(μs)。
图中的“▲”是通过以下方式制造的羊膜提取物的数据:在羊膜切碎工序16中将马的羊膜切碎成碎末状后,经过羊膜冻结工序17以及羊膜解冻工序18,在提取工序19中加入纯化水和中性蛋白酶,将提取温度设为30度以上70度以下,将提取时间设为1小时以上10小时以下进行处理,并进行0.2μm的过滤(实施例5)。
此外,图中的“■”以及“◆”是比较例的数据。“■”示出了对马的胎盘进行处理从而得到的胎盘提取物的数据(比较例5),“◆”示出了既不含有羊膜提取物也不含有胎盘提取物的无添加的对照组(水)的数据(比较例6)。另外,除了使用胎盘代替羊膜以外,以与实施例5同样的条件进行处理,由此制造比较例5的胎盘提取物。
如图3所示,可知从涂布实施例5的羊膜提取物起90分钟以后,与涂布了比较例5的胎盘提取物的情况相比,角质水分量较高,与比较例5的胎盘提取物相比更具有持续的保湿力。
图4是示出根据图1的工序制造的羊膜提取物的服用测试的结果的图。
对将马的羊膜提取物的粉末原料填充到硬质胶囊的健康食品(实施例6)和将马的胎盘提取物的粉末原料填充到硬质胶囊的健康食品(比较例7),以10名被观察的人作为对象,进行总计10天的服用测试,得到有关“易服用度”、“气味”、“身体状况的有益变化”、“皮肤滋润度”、“皮肤的紧致、弹力”以及“皮肤的肌理”各项目的评价。
用于服用测试的羊膜提取物的粉末原料,通过以下方式制造:将马的羊膜作为来源原料,在羊膜切碎工序16中将羊膜切碎成碎末状后,经过羊膜冻结工序17以及羊膜解冻工序18,在提取工序19中加入纯化水和中性蛋白酶,将提取温度设为30度以上70度以下,将提取时间设为1小时以上10小时以下进行处理,将得到的羊膜进行冻结干燥。此外,除了使用胎盘代替羊膜以外,以与实施例6同样的条件进行处理,由此制造胎盘提取物的粉末原料。
服用测试通过以下的方法进行,由被观察的人就各项目来选择实施例6与比较例7哪一个更为优良。
第1小组(被观察的人5名):(1)服用5天实施例8的健康食品→(2)服用5天比较例8的健康食品(在总计1个月内重复进行(1)和(2))
第2小组(被观察的人5名):(1)服用5天比较例8的健康食品→(2)服用5天实施例8的健康食品(在总1个月内重复进行(1)和(2))
如图4所示,可以确认,实施例6的羊膜提取物在“易服用度”、“气味”以及“皮肤的滋润度”的项目上,得到了与比较例7的胎盘提取物同等的体感,在“身体状况的有益变化”、“皮肤的紧致、弹力”以及“皮肤的肌理”方面,体感的提升效果优于比较例7的胎盘提取物。
图5是示出羊膜提取物的液体原料的细胞激活作用的图,图5(a)示出了关于表皮细胞的结果,图5(b)示出了关于真皮成纤维细胞的结果。横轴表示羊膜提取物浓度(%),纵轴表示细胞活性化率(%)。未添加羊膜提取物的对照组的数据作为比较例分别示出在图5(a)以及图5(b)的左端。
羊膜提取物的液体原料是通过以下方式制造的:在羊膜切碎工序16中将羊膜切碎成碎末状后,经过羊膜冻结工序17以及羊膜解冻工序18,在提取工序19中,重复进行规定次数的冻结与融解从而分离水溶性部分。使用马的羊膜作为来源原料。
如图5所示,可以得知,根据本实施例的制造方法得到的羊膜提取物对于表皮细胞以及真皮成纤维细胞具有细胞激活作用。
图6是示出羊膜提取物的液体原料对于来自人体成纤维细胞的胶原蛋白产生的促进作用的图。横轴表示羊膜提取物浓度(%),纵轴表示胶原蛋白产生率(%)。未添加羊膜提取物的对照组的数据作为比较例在左端示出。
羊膜提取物的液体原料是通过以下方式制造的:在羊膜切碎工序16中将羊膜切碎成碎末状后,经过羊膜冻结工序17以及羊膜解冻工序18,在提取工序19中,重复进行规定次数的冻结与融解从而分离水溶性部分。使用马的羊膜作为来源原料。
如图6所示,可以得知根据本实施例的制造方法得到的羊膜提取物对于来自成纤维细胞的胶原蛋白的产生具有促进作用。
工业实用性
根据本发明的源自羊膜的原料的制造方法,能够提供一种源自羊膜的原料,该原料与以往的源自胎盘的原料相比更多地含有对于抗衰老效果有用的成分。此外,能够提供混合有该源自羊膜的原料的健康食品等。
附图标记说明
10 分离前冻结工序
11 分离前解冻工序
12 分离前控水工序
13 分离工序
14 羊膜水洗工序
15 羊膜控水工序
16 羊膜切碎工序
17 羊膜冻结工序
18 羊膜解冻工序
19 提取工序
Claims (2)
1.一种健康食品的制造方法,该健康食品混合了源自羊膜的原料,其特征在于,具有以下工序:
分离前冻结工序,将采集的胎盘以及羊膜冻结;
分离前解冻工序,在所述分离前冻结工序之后,用流水解冻所述胎盘以及所述羊膜;
分离前控水工序,在所述分离前解冻工序之后,进行所述胎盘以及所述羊膜的控水;
分离工序,在所述分离前控水工序之后,分离所述胎盘与所述羊膜;
羊膜水洗工序,在所述分离工序之后,水洗所述羊膜;
羊膜控水工序,在所述羊膜水洗工序之后,进行所述羊膜的控水;
羊膜切碎工序,在所述羊膜控水工序之后,切碎所述羊膜,将切碎的所述羊膜再次控水;
羊膜冻结工序,在所述羊膜切碎工序之后,冻结所述羊膜;
羊膜解冻工序,在所述羊膜冻结工序之后,解冻所述羊膜;
提取工序,在所述羊膜解冻工序之后,对所述羊膜进行分解并提取从而得到提取物,
所述提取工序,是将纯化水以及中性蛋白酶加入所述羊膜中,将提取温度设为30度以上70度以下,将提取时间设为1小时以上10小时以下的工序,
所述胎盘以及所述羊膜是从马采集到的。
2.一种健康食品的制造方法,该健康食品混合了源自羊膜的原料,其特征在于,具有以下工序:
分离前冻结工序,将采集的胎盘以及羊膜冻结;
分离前解冻工序,在所述分离前冻结工序之后,用流水解冻所述胎盘以及所述羊膜;
分离前控水工序,在所述分离前解冻工序之后,进行所述胎盘以及所述羊膜的控水;
分离工序,在所述分离前控水工序之后,分离所述胎盘与所述羊膜;
羊膜水洗工序,在所述分离工序之后,水洗所述羊膜;
羊膜控水工序,在所述羊膜水洗工序之后,进行所述羊膜的控水;
羊膜切碎工序,在所述羊膜控水工序之后,切碎所述羊膜,将切碎的所述羊膜再次控水;
羊膜冻结工序,在所述羊膜切碎工序之后,冻结所述羊膜;
羊膜解冻工序,在所述羊膜冻结工序之后,解冻所述羊膜;
提取工序,在所述羊膜解冻工序之后,对所述羊膜进行分解并提取从而得到提取物,
所述提取工序是重复进行规定次数的所述羊膜的冻结与融解从而分离水溶性部分的工序,
所述胎盘以及所述羊膜是从马采集到的。
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