CN109134594A - 一种酶法制备谷胱甘肽的方法 - Google Patents

一种酶法制备谷胱甘肽的方法 Download PDF

Info

Publication number
CN109134594A
CN109134594A CN201710452240.9A CN201710452240A CN109134594A CN 109134594 A CN109134594 A CN 109134594A CN 201710452240 A CN201710452240 A CN 201710452240A CN 109134594 A CN109134594 A CN 109134594A
Authority
CN
China
Prior art keywords
enzyme
gsh
atp
gshf
ion
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
CN201710452240.9A
Other languages
English (en)
Other versions
CN109134594B (zh
Inventor
刘珊珊
刘辉
周稳文
秦永发
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Anhui Gute Biotechnology Co ltd
Original Assignee
Shenzhen Gute Xinsheng Biological Technology Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Shenzhen Gute Xinsheng Biological Technology Co Ltd filed Critical Shenzhen Gute Xinsheng Biological Technology Co Ltd
Priority to CN201710452240.9A priority Critical patent/CN109134594B/zh
Priority to US16/622,852 priority patent/US11939615B2/en
Priority to PCT/CN2018/090045 priority patent/WO2018228246A1/zh
Priority to PCT/CN2018/090050 priority patent/WO2018228247A1/zh
Priority to US16/622,856 priority patent/US11788110B2/en
Publication of CN109134594A publication Critical patent/CN109134594A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN109134594B publication Critical patent/CN109134594B/zh
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K5/00Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
    • C07K5/02Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof containing at least one abnormal peptide link
    • C07K5/0215Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof containing at least one abnormal peptide link containing natural amino acids, forming a peptide bond via their side chain functional group, e.g. epsilon-Lys, gamma-Glu
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • A61K38/04Peptides having up to 20 amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
    • A61K38/06Tripeptides
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K1/00General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
    • C07K1/14Extraction; Separation; Purification
    • C07K1/30Extraction; Separation; Purification by precipitation
    • C07K1/306Extraction; Separation; Purification by precipitation by crystallization
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P21/00Preparation of peptides or proteins
    • C12P21/02Preparation of peptides or proteins having a known sequence of two or more amino acids, e.g. glutathione

Abstract

本发明公开了一种酶法制备谷胱甘肽的方法,包括以下步骤:(1)利用GshF酶、ATP再生酶和AK酶在反应器中生成谷胱甘肽;(2)在反应器中分离固定化的GshF酶、ATP再生酶和AK酶,或使用过滤设备分离游离的GshF酶;(3)将步骤(2)得到的滤出液进行分离,得粗产物GSH以及少量的ATP、ADP和AMP;(4)将步骤(3)得到的GSH通过浓缩、结晶、干燥制备成品GSH。本发明具有以下优点:使用腺苷替代ATP或AMP,为工业生产节约了大量成本;优化了GSH生产的反应条件,反应速率快;建立了稳定的酶回收体系,节能环保;副产物可直接用于循环反应,或集中收集用于生产ATP,操作简单。

Description

一种酶法制备谷胱甘肽的方法
技术领域
本发明涉及谷胱甘肽的制备方法,特别涉及一种酶法制备谷胱甘肽的方法,具体为使用腺苷代替ATP的酶法制备谷胱甘肽的方法。
背景技术
谷胱甘肽广泛存在于动植物和微生物中,是生物体内最重要的非蛋白巯基化合物之一,具有还原型谷胱甘肽(GSH)和氧化型谷胱甘肽(GSSG),生物体内大量存在并起主要作用的是GSH,广泛用于治疗肝脏疾病、肿瘤、氧中毒、衰老和内分泌疾病,并作为生物活性添加剂及抗氧化剂用于食品、化妆品领域。
GSH由谷氨酸(Glu)、半胱氨酸(Cys)和甘氨酸(Gly)经肽键缩合而成的三肽。相对分子质量为307.32,等电点为5.93,常温下为白色晶体,易溶于水、低浓度乙醇水溶液、液氨和二甲基甲酰胺等溶剂。
目前谷胱甘肽的主要制备方法有:溶剂萃取法、化学合成法、生物发酵法和酶法。萃取法从谷物胚芽中提取GSH,由于GSH得率低、成本高、有机溶剂污染严重、纯度不高,而且消耗大量粮食,现已较少使用。化学合成法合成GSH,由于活性产物不易分离,需要化学拆分,产品纯度不高,难以推广。目前国内外GSH生产基本采用发酵法,原理是将编码GSH合成酶系的基因克隆到细菌或酵母中,使用微生物发酵生产GSH。发酵法,尤其是酵母发酵法工艺较成熟,但生产周期长,产量偏低,且过多的副产物使下游工艺处理复杂,需使用铜盐法沉淀GSH,环境污染较大。
近年来酶法生产GSH技术有较大提高。新型的双功能谷胱甘肽合成酶(GshF,EC6.3.2.-)逐渐取代原有的γ-谷氨酰半胱氨酸合成酶(Gsh I,EC 6.3.2.2)和谷胱甘肽合成酶(Gsh II,EC 6.3.2.2)两种酶,用来酶法催化生产GSH,反馈抑制作用较小,非常适合应用于大规模生产。
理论上,无论使用Gsh I和Gsh II酶组合或者使用单一GshF酶合成GSH都需要三磷酸腺苷(ATP)作为能量供体,现阶段工业化生产GSH的难题是如何提高ATP利用率,降低ATP的使用量。通常生产1kg GSH至少需使用3-5kg的ATP,成本过高。专利CN201210201691.2使用酵母糖酵解再生ATP,效果稳定。但使用酵母会在反应体系中引入色素等杂质,给进一步纯化增加难度。专利CN201510762184.X与CN201610167664.6中使用酶法再生ATP,取得了很好的效果。ATP再生酶包括多聚磷酸激酶(PPK,EC 2.7.4.1)、腺苷酸激酶(ADK,EC 2.7.4.3)和多聚磷酸-腺苷酸磷酸转移酶(PAP,EC 2.7.4.-)。其中,PPK酶催化ADP与多聚磷酸或其盐反应生成ATP,ADK酶催化2分子ADP生成1分子ATP和1分子AMP,PAP酶则催化AMP与多聚磷酸或其盐反应生成ADP。PPK、ADK及PAP三种酶的合理组合均可再生ATP。但使用此方法仍需加入一定量的ATP进行酶促反应。
发明内容
本发明所要解决的技术问题是提供一种酶法制备谷胱甘肽的方法,其在原有含有GshF及ATP再生酶的反应体系中添加腺苷激酶(AK,EC 2.7.1.20),该酶可催化腺苷生成AMP,组合上述其它ATP再生酶,可不使用ATP,仅添加少量腺苷即可规模化生产GSH。
本发明所要解决的技术问题是通过以下技术方案来实现的:
一种酶法制备谷胱甘肽的方法,包括以下步骤:
(1)利用GshF酶、ATP再生酶和AK酶在反应罐中生成谷胱甘肽:
通过基因工程改造、发酵、纯化获得GshF酶、ATP再生酶和AK酶,或以自然提取等其它方式获得GshF酶、ATP再生酶和AK酶。上述所有酶可以以游离酶的形式制成酶液;也可进一步固定于固定化载体上,制得固定化酶。
在反应体系中按比例添加GshF酶、ATP再生酶和AK酶,反应生成GSH,其中,所述反应体系为含有底物谷氨酸(Glu)或其盐、半胱氨酸(Cys)或其盐、甘氨酸(Gly)或其盐、腺苷、多聚磷酸或其盐以及镁离子和锰离子的一种或两种的水溶液。
另外,反应体系中还可包含钾离子、钠离子、铵离子的一种或几种,Tris和磷酸根离子的一种或几种。
上述添加的底物、酶及各类盐可一次性加入反应体系,也可按照工业生产工艺流程分批次流加补入。
(2)在反应罐中分离固定化的GshF酶、ATP再生酶和AK酶,或使用过滤设备分离游离的GshF酶:
固定化的GshF酶、ATP再生酶和AK酶在反应罐中直接分离。上述分离可通过滤袋分离,也可在反应柱中直接分离。
游离的GshF酶、ATP再生酶和AK酶通过过滤器中超滤膜分离。其中,过滤器具有进料口、出料口和回流口,内设截留分子量不大于20kDa的超滤膜。经过过滤器的截留液为回收的酶液,滤出液为分离出酶之后含产物的反应液。
(3)通过离子交换法将步骤(2)得到的滤出液进行分离,分离得粗产物GSH以及少量的ATP、ADP和AMP:
通过离子交换法,从上述步骤(2)的滤出液中分离粗产物GSH,经离子交换后的穿出液中主要含有少量ATP、ADP、AMP。
(4)将步骤(3)得到的GSH通过浓缩、结晶、干燥制备成品GSH。
优选地,上述技术方案中,所述酶法制备谷胱甘肽的方法还包括以下步骤:
(5)所述步骤(2)中分离的GshF酶、ATP再生酶和AK酶循环利用:即将分离的GshF酶、ATP再生酶和AK酶添加至反应罐中生成GSH的连续反应;
(6)GshF、ATP再生酶和AK酶的连续分离:即连续分离固定化的GshF酶、ATP再生酶和AK酶或使用过滤设备连续分离游离的GshF酶、ATP再生酶和AK酶。
优选地,上述技术方案中,所述酶法制备谷胱甘肽的方法还包括以下步骤:
(7)产物GSH的连续分离:反应生成的GSH通过过滤和/或离子交换方法分离。
(8)ATP、ADP和AMP的连续分离:反应生成的ATP、ADP和AMP通过过滤或离子交换方法分离,分离后的产物可直接添加至反应体系或进一步分离纯化后制成纯品。
优选地,上述技术方案中,所述步骤(1)至步骤(4)可以重复至少一次;优选重复多次,例如重复2、3、4、5、6、7、8、9、10、15、20、25、30、40、50次。
优选地,上述技术方案中,所述步骤(1)中在反应罐中生成谷胱甘肽的反应条件如下:
反应温度为25-55℃,优选温度为30-50℃;
反应pH为5-10,优选pH为6-9;
反应体系为含有底物氨基酸或其盐;腺苷;多聚磷酸或其盐;镁离子或锰离子的一种或多种组合;
在反应体系中添加GshF酶、ATP再生酶和AK酶,反应生成谷胱甘肽。
优选地,上述技术方案中,所述步骤(1)中在反应罐中生成谷胱甘肽的反应体系中还包括:钠离子、钾离子或铵离子的一种或多种组合;Tris或磷酸盐的水溶液的一种或两种组合;钾离子浓度为0.01-0.5M;钠离子浓度为0.01-0.5M;铵离子浓度为0.01-0.3M;Tris浓度为0.01-0.1M;磷酸盐浓度为0.01-0.1M。
优选地,上述技术方案中,所述氨基酸或其盐为L型氨基酸或其盐,优选为谷氨酸或其盐(Glu)、半胱氨酸或其盐(Cys)、甘氨酸或其盐(Gly)。按其经济成本及反应最优条件计算,三种氨基酸添加质量比优选为Glu:Cys:Gly=(1-2.5):1:(0.5-1.5),更优选为Glu:Cys:Gly=(1.2-2):1:(0.8-1.5);半胱氨酸(Cys)添加浓度优选为1-50g/L。
优选地,上述技术方案中,所述腺苷浓度为0.01-20g/L;多聚磷酸或其盐的浓度为0.01-0.3M;镁离子浓度为0.01-0.2M;锰离子浓度为0.005-0.15M。
优选地,上述技术方案中,所述镁离子选自于氯化镁、硫酸镁、亚硫酸镁和硝酸镁中的一种或多种;锰离子选自于氯化锰和硫酸锰中的一种或多种;钾离子选自于氯化钾、硫酸钾、硝酸钾、氢氧化钾、亚硫酸钾、碳酸钾、碳酸氢钾、醋酸钾、磷酸氢二钾、磷酸二氢钾和柠檬酸钾中的一种或多种;钠离子选自于氯化钠、硫酸钠、硝酸钠、氢氧化钠、亚硫酸钠、碳酸钠、碳酸氢钠、醋酸钠、磷酸氢二钠、磷酸二氢钠和柠檬酸钠中的一种或多种;铵离子选自于氯化铵、硫酸铵、硝酸铵、氨水、碳酸铵、碳酸氢铵、磷酸氢二铵、磷酸二氢铵和醋酸铵中的一种或多种;多聚磷酸或其盐选自于多聚磷酸钠、多聚磷酸钾和多聚磷酸铵中的一种或多种。
优选地,上述技术方案中,所述GshF酶、ATP再生酶和AK酶为游离或者固定化的酶;GshF酶浓度为0.01-10000U/L、AK酶浓度为0.01-8000U/L,其中将1μM底物在1分钟内完全转化定义为1个活性单位(U)。ATP再生酶为多聚磷酸激酶(PPK)、腺苷酸激酶(ADK)和多聚磷酸-腺苷酸磷酸转移酶(PAP)中的任意两种或三种组合,PPK酶浓度为0.01-5000U/L,ADK酶浓度为0.01-5000U/L,PAP酶浓度为0.01-5000U/L。上述的GshF酶、ATP再生酶和AK酶可来源于任何生物,或者是经过人工改造具有同样催化功能的酶。
优选地,上述技术方案中,所述固定化GshF酶、ATP再生酶和AK酶通过下列方式固定于固定化载体:吸附、交联、共价结合、包埋或其组合;固定化载体选自于高分子载体、无机载体和磁性高分子微球载体的一种或多种;其中,高分子载体选自于纤维素、葡萄糖凝胶、琼脂糖、聚丙烯酰胺、多聚氨基酸、聚苯乙烯、聚丙烯酸、海藻酸钠、壳聚糖、淀粉、聚乙烯醇、明胶、卡拉胶、尼龙和合成高聚物的一种或多种组合;无机载体选自多孔玻璃、氧化硅、活性炭、硅胶和硅藻土的一种或多种组合。
优选地,上述技术方案中,所采用的超滤膜选自于醋酸纤维素膜、聚砜膜、聚丙烯腈膜、聚氯乙烯膜、聚偏氟乙烯膜、聚酰胺膜或陶瓷膜。
与现有技术相比,本发明技术具有以下有益效果:
1)使用腺苷替代ATP或AMP,为工业生产节约了大量成本,腺苷售价仅为ATP的10%或AMP的30%左右,价格低廉,来源广泛,且其在反应中的用量还可优化降至之前ATP用量的10%以下。
2)优化了GSH生产的反应条件,使GSH生成浓度达到30-50g/L,反应速率快,效率高;
3)建立了稳定的酶回收体系,整个反应过程中无论固定化酶还是游离酶都可以循环利用,应用于大规模连续生产后成本低,节能环保;
4)少量生成的副产物ATP、ADP及AMP或直接用于循环反应,或集中收集用于生产ATP,或通过过滤、离子交换等方法进行纯化,操作简单,纯化后成品可作为附加产品,有一定的经济效益;
附图说明
图1为本发明所使用的GshF酶、ATP再生酶和AK酶的SDS-PAGE图。
图2为本发明中使用游离酶制备GSH的工艺流程图。
图3为本发明中使用固定酶制备GSH的工艺流程图。
图4为本发明实施例2的HPLC图谱。
图5为对比例1的HPLC图谱。
具体实施方式
下面结合附图对本发明的具体实施例进行详细描述,以便于进一步理解本发明。
本发明以下实施例及对比例中使用的各种物质,如无特殊说明,均可通过商业途径获得。
实施例1粗酶的制备
本发明方法中的GshF酶、ATP再生酶和AK酶可以商购获得,或者是经过人工改造具有同样催化功能的酶。
酶的制备过程如下:
根据GshF酶、PPK酶、ADK酶、PAP酶和AK酶各酶基因序列设计引物,通过PCR分别扩增出基因片段,并将其分别连接至pET22b载体(市售),经测序正确后,分别转入E.coliBL21(DE3)菌株(市售)。
将转化后的E.coli BL21(DE3)单克隆接入LB培养基,培养至对数期后,加入1mM异丙基-β-D-硫代吡喃半乳糖苷(IPTG)进行诱导,诱导5小时收集菌体,使用十二烷基磺酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)筛选高表达菌株。
将筛选出的高表达菌株在无菌条件下接入种子培养基,培养至对数生长期后扩大培养,最终接入含500L发酵培养基的发酵罐中,培养至OD600值大于20时加入1mM IPTG诱导5小时后,离心收集菌体。
其中LB培养基成分为:1%蛋白胨、0.5%酵母粉和1%NaCl;种子培养基成分为:1%蛋白胨、0.5%酵母粉和1%氯化钠;发酵培养基成分为:1%蛋白胨、0.5%酵母粉、1%氯化钠、5%磷酸氢二钠、1%磷酸二氢钠、0.01%硫酸镁和1%甘油。
图1为大肠杆菌表达的GshF酶、PPK酶、ADK酶、PAP酶和AK酶的SDS-PAGE图。如图1所示:泳道1为蛋白标志物14.4-116kDa(市售);泳道2为GshF酶,85kDa;泳道3为PPK酶,40kDa;泳道4为ADK酶,25kDa;泳道5为PAP酶,55kDa;泳道6为AK酶,40kDa。
收获的菌体经超声或高压匀浆破菌后,离心收集上清。通过沉淀和过滤方法制得粗酶。粗酶液中同时含有微量的ATP,不需要额外增加ATP即可启动反应,操作更加便捷。
实施例2使用游离酶制备GSH
图2为本发明方法使用游离酶制备GSH的工艺流程图。如图2所示:,根据本发明制备GSH的工艺流程图使用游离酶按照如下步骤制备GSH:
(1)在反应罐中生成GSH:
在反应罐中,100L的反应体系为含有底物2.5kg谷氨酸、2.5kg半胱氨酸和1.5kg甘氨酸、0.3kg腺苷,以及2.5kg六偏磷酸钠、0.2kg硫酸铵、0.3kg氯化钠、0.5kg六水氯化镁、0.1kg一水氯化锰和0.5kg磷酸氢二钠的溶液,配制时均匀搅拌防止出现沉淀。调节pH值至7.0,在反应体系中添加GshF酶800U/L、PPK酶500U/L、ADK酶500U/L、PAP酶200U/L以及AK酶600U/L开始反应,所添加酶均为粗酶液。反应期间控制pH值为7.0,温度为37℃。
图4为本发明实施例2的HPLC图谱。如图4所示,在反应5小时后,高效液相色谱(HPLC)检测谷胱甘肽的生成量为35g/L,图中未标出峰为氨基酸等物质。
HPLC检测条件为:Kromasil C18色谱柱(购于AKZO NOBEL公司)(150×4.6mm),检测波长210nm,检测温度25℃。流动相为含有6.8g/L磷酸二氢钾、2.0g/L庚烷磺酸钠和3%甲醇的水溶液,pH=3.0。
(2)在过滤器中分离酶:
通过超滤方法,将步骤(1)的反应液经过过滤器分离混合酶,过滤器内装膜包(购于Pall公司,截留分子量20kDa),滤出液为分离出酶之后的反应液。
(3)分离产物GSH和其它物质:
使用盐酸调节滤出液的pH值至3.0,在离子交换柱中通过D001大孔强酸性苯乙烯系阳离子交换树脂,溶液中的GSH、部分氨基酸及阳离子被吸附,穿出液中主要含有ATP、ADP以及AMP。收集穿出液,用以生产ATP或进一步纯化为纯品ATP、ADP及AMP。
使用0-0.8M NaCl梯度洗脱阳离子交换树脂上的GSH,GSH产量3.2kg,收率90%。
(4)反应罐中生成GSH的连续反应,即步骤(1)的连续反应:
将步骤(2)中分离出的酶经由过滤器的回流口添加至反应罐,并添加原酶量5-10%的新酶进行反应。反应液配制方法同上述步骤(1)。
在37℃、pH为7.0的条件下进行生成GSH的连续反应;5小时后,HPLC检测GSH的生成量为32g/L。
HPLC检测条件同上述步骤(1)。在该步骤中,酶被循环利用。
实施例3使用游离酶制备GSH
如图2所示,根据本发明制备GSH的工艺流程图使用游离酶按照如下步骤制备GSH:
(1)在反应罐中生成GSH:
在反应罐中,100L的反应体系为含有底物2.0kg谷氨酸、2.0kg半胱氨酸盐酸盐和2.0kg甘氨酸、0.2kg腺苷,以及1.5kg六偏磷酸钠、0.2kg氯化铵、0.2kg氯化钾、0.8kg六水氯化镁和0.3kg Tris的溶液,配制时均匀搅拌防止出现沉淀。调节pH值至7.4,在反应体系中添加GshF酶1000U/L、PPK酶300U/L、ADK酶300U/L以及AK酶500U/L开始反应,所添加酶均为粗酶液。反应期间控制pH值为7.4,温度为40℃。
反应6小时后,高效液相色谱(HPLC)检测谷胱甘肽的生成量为30g/L。HPLC检测条件同实施例2步骤(1)。
(2)在过滤器中分离酶:
通过超滤方法,将步骤(1)的反应液经过过滤器分离混合酶,过滤器内装膜包(购于Pall公司,截留分子量20kDa),滤出液为分离出酶之后的反应液。
(3)分离产物GSH和其它物质:
使用盐酸调节滤出液的pH值至3.0,在离子交换柱中通过D001大孔强酸性苯乙烯系阳离子交换树脂,溶液中的GSH、部分氨基酸及阳离子被吸附,穿出液中主要含有ATP、ADP以及AMP。
使用0-0.8M NaCl梯度洗脱阳离子交换树脂上的GSH,GSH产量2.7kg,收率90%。
(4)反应罐中生成GSH的连续反应,即步骤(1)的连续反应:
将步骤(2)中分离出的酶经由过滤器的回流口添加至反应罐,并添加原酶量5-10%的新酶进行反应。将步骤(3)中离子交换穿出液加入至反应罐配制溶液,反应液配制方法同上述步骤(1),腺苷加入量减少至0.03kg。
在40℃、pH为7.4的条件下进行生成GSH的连续反应;6小时后,HPLC检测GSH的生成量为30g/L。HPLC检测条件同实施例2步骤(1)。在该步骤中,酶被循环利用,上一循环生成的ATP等副产物被循环利用。
实施例4使用固定酶制备GSH
图3为本发明方法使用固定酶制备GSH的工艺流程图。如图3所示,根据本发明制备GSH的工艺流程图使用固定酶按照如下步骤制备GSH:
(1)酶的固定
催化用GshF酶、ADK酶、PAP酶以及AK酶以商业化的含氨基合成高聚物载体LX1000HA固定。
将上述实施例1中所述粗酶GshF酶4000U/L在恒温搅拌反应罐中加入LX1000HA湿载体2kg,在20℃条件下,150rpm搅拌12小时。过滤收集载体,用0.02M磷酸钾缓冲液(pH8.0)清洗2遍,即得固定化GshF酶。
将1000U/L ADK酶、1200U PAP酶以及3000U/L AK酶以同样方式分别固定于LX1000HA载体。
(2)在反应柱中生成谷胱甘肽GSH:
配制反应液,每100L含有底物2.5kg谷氨酸、2.5kg半胱氨酸和2.0kg甘氨酸、0.3kg腺苷,以及2.2kg多聚磷酸钠、0.3kg氯化铵、0.6kg六水氯化镁、0.1kg一水氯化锰和0.6kg磷酸二氢钾的溶液,配制时均匀搅拌防止出现沉淀。调节pH值至7.3,温度升为42-45℃。
将步骤(1)中的固定酶20kg装入反应柱设备,排尽气泡后制得酶反应柱。使用恒流泵将反应液以20L/h流速由下而上缓慢通过酶反应柱,反应期间控制温度为42-45℃。反应6小时后,收集反应液,高效液相色谱(HPLC)检测谷胱甘肽的生成量为33g/L。HPLC检测条件同实施例2步骤(1)。
(3)分离产物GSH和其它物质:
使用盐酸调节反应液的pH值至3.0,在离子交换柱中通过D001大孔强酸性苯乙烯系阳离子交换树脂,溶液中的GSH、部分氨基酸及阳离子被吸附,穿出液中主要含有ATP、ADP以及AMP。收集穿出液,用以生产ATP或进一步纯化为纯品ATP、ADP及AMP。
使用0-0.8M NaCl梯度洗脱阳离子交换树脂上的GSH,GSH产量3.0kg,收率90%。
(3)反应柱生成GSH的连续反应,即步骤(2)的连续反应:
配制步骤(2)中所述相同反应液,连续以20L/h流速由下而上缓慢通过酶反应柱,反应期间控制温度为42-45℃。
反应6小时后,HPLC检测GSH的生成量为33g/L。HPLC检测条件同实施例2步骤(1)。在该步骤中,酶被循环利用。
固定化酶循环反应20次以上或者-4℃储存时间一月以上,酶活性降低10%,需按比例补加或更换部分新酶。
实施例5使用固定酶制备GSH
如图3所示,根据本发明制备GSH的工艺流程图使用固定酶按照如下步骤制备GSH:
(1)酶的固定
催化用GshF酶、PPK酶、PAP酶以及AK酶以商业化的环氧基固定化载体LX1000EP固定。
将上述实施例1中所述粗酶GshF酶8000U/L、PPK酶2000U/L、PAP酶2000U/L和AK酶5000U/L混合配成混合酶液。在恒温搅拌反应罐中加入LX1000EP湿载体与上述酶液按照固定化载体与酶质量比为30:1混合,在20℃条件下,150rpm搅拌12小时。过滤收集载体,用0.02M磷酸钾缓冲液(pH 8.0)清洗2遍,即得固定化混合酶。
(2)在反应柱中生成谷胱甘肽GSH:
配制反应液,每100L含有底物3.5kg谷氨酸、3.2kg半胱氨酸和3.3kg甘氨酸、0.5kg腺苷,以及3.0kg六偏磷酸钠、0.3kg氯化钠、0.8kg六水氯化镁和0.6kg磷酸二氢钾的溶液,配制时均匀搅拌防止出现沉淀。调节pH值至7.5,温度升为37-40℃。
将步骤(1)中的混合固定酶20kg装入反应柱设备,排尽气泡后制得酶反应柱。使用恒流泵将反应液以20L/h流速由下而上缓慢通过酶反应柱,反应期间控制温度为37-40℃。反应6小时后,收集反应液,高效液相色谱(HPLC)检测谷胱甘肽的生成量为40g/L。HPLC检测条件同实施例2步骤(1)。
(3)分离产物GSH和其它物质:
使用盐酸调节反应液的pH值至3.0,在离子交换柱中通过D001大孔强酸性苯乙烯系阳离子交换树脂,溶液中的GSH、部分氨基酸及阳离子被吸附,穿出液中主要含有ATP、ADP以及AMP。收集穿出液,用以生产ATP或进一步纯化为纯品ATP、ADP及AMP。
使用0-0.8M NaCl梯度洗脱阳离子交换树脂上的GSH,GSH产量3.5kg,收率85%。
(3)反应柱生成GSH的连续反应,即步骤(2)的连续反应:
配制步骤(2)中所述相同反应液,连续以20L/h流速由下而上缓慢通过酶反应柱,反应期间控制温度为37-40℃。
反应6小时后,HPLC检测GSH的生成量为40g/L。HPLC检测条件同实施例2步骤(1)。在该步骤中,酶被循环利用。
固定化酶循环反应20次以上或者-4℃储存时间一月以上,酶活性降低10%,需按比例补加或更换部分新酶。
实施例6
如图2所示,根据本发明制备GSH的工艺流程图使用游离酶按照如下步骤制备GSH:
(1)在反应罐中生成GSH:
在反应罐中,100L的反应体系为含有底物0.1kg谷氨酸、0.1kg半胱氨酸和0.05kg甘氨酸、0.001kg腺苷,以及0.47kg四聚磷酸、0.066kg硫酸铵、0.074kg氯化钾、0.2kg六水氯化镁和0.12kg Tris的溶液,配制时均匀搅拌防止出现沉淀。调节pH值至10.0,在反应体系中添加GshF酶0.01U/L、PPK酶0.01U/L、ADK酶0.01U/L、PAP酶0.01U/L以及AK酶0.01U/L开始反应,所添加酶均为粗酶液。反应期间控制pH值为10.0,温度为25℃。
反应8小时后,高效液相色谱(HPLC)检测谷胱甘肽的生成量为0.6g/L。HPLC检测条件同实施例2步骤(1)。
(2)在过滤器中分离酶:
通过超滤方法,将步骤(1)的反应液经过过滤器分离混合酶,过滤器内装膜包(购于Pall公司,截留分子量20kDa),滤出液为分离出酶之后的反应液。
(3)分离产物GSH和其它物质:
使用盐酸调节滤出液的pH值至3.0,在离子交换柱中通过D001大孔强酸性苯乙烯系阳离子交换树脂,溶液中的GSH、部分氨基酸及阳离子被吸附,穿出液中主要含有ATP、ADP以及AMP。收集穿出液,用以生产ATP或进一步纯化为纯品ATP、ADP及AMP。
使用0-0.8M NaCl梯度洗脱阳离子交换树脂上的GSH,GSH产量0.05kg,收率90%。
(4)反应罐中生成GSH的连续反应,即步骤(1)的连续反应:
将步骤(2)中分离出的酶经由过滤器的回流口添加至反应罐,并添加原酶量30-50%的新酶进行反应。反应液配制方法同上述步骤(1)。
在25℃、pH为10.0的条件下进行生成GSH的连续反应;8小时后,HPLC检测GSH的生成量为0.6g/L。
HPLC检测条件同上述步骤(1)。在该步骤中,酶被循环利用。
实施例7
如图2所示,根据本发明制备GSH的工艺流程图使用游离酶按照如下步骤制备GSH:
(1)在反应罐中生成GSH:
在反应罐中,100L的反应体系为含有底物8.0kg谷氨酸、5.0kg半胱氨酸和7.5kg甘氨酸、2.0kg腺苷,以及14.1kg四聚磷酸、2.93kg氯化钠、4.07kg六水氯化镁和1.75kg磷酸氢二钾的溶液,配制时均匀搅拌防止出现沉淀。调节pH值至5.0,在反应体系中添加GshF酶5000U/L、PPK酶2500U/L、ADK酶2500U/L、PAP酶2500U/L以及AK酶4000U/L开始反应,所添加酶均为粗酶液。反应期间控制pH值为5.0,温度为50℃。
反应8小时后,高效液相色谱(HPLC)检测谷胱甘肽的生成量为29g/L。HPLC检测条件同实施例2步骤(1)。
(2)在过滤器中分离酶:
通过超滤方法,将步骤(1)的反应液经过过滤器分离混合酶,过滤器内装膜包(购于Pall公司,截留分子量20kDa),滤出液为分离出酶之后的反应液。
(3)分离产物GSH和其它物质:
使用盐酸调节滤出液的pH值至3.0,在离子交换柱中通过D001大孔强酸性苯乙烯系阳离子交换树脂,溶液中的GSH、部分氨基酸及阳离子被吸附,穿出液中主要含有ATP、ADP以及AMP。收集穿出液,用以生产ATP或进一步纯化为纯品ATP、ADP及AMP。
使用0-0.8M NaCl梯度洗脱阳离子交换树脂上的GSH,GSH产量2.6kg,收率90%。
(4)反应罐中生成GSH的连续反应,即步骤(1)的连续反应:
将步骤(2)中分离出的酶经由过滤器的回流口添加至反应罐,并添加原酶量15-30%的新酶进行反应。反应液配制方法同上述步骤(1)。
在50℃、pH为5.0的条件下进行生成GSH的连续反应;8小时后,HPLC检测GSH的生成量为29g/L。HPLC检测条件同上述步骤(1)。在该步骤中,酶被循环利用。
实施例8
如图3所示,根据本发明制备GSH的工艺流程图使用固定酶按照如下步骤制备GSH:
(1)酶的固定
催化用GshF酶、PPK酶、ADK酶、PAP酶以及AK酶以商业化的含氨基合成高聚物载体LX1000HA固定。
将上述实施例1中所述粗酶GshF酶10000U/L在恒温搅拌反应罐中加入LX1000HA湿载体2kg,在20℃条件下,150rpm搅拌12小时。过滤收集载体,用0.02M磷酸钾缓冲液(pH8.0)清洗2遍,即得固定化GshF酶。将5000U/L PPK酶、5000U/L ADK酶、5000U PAP酶以及8000U/L AK酶以同样方式分别固定于LX1000HA载体。
(2)在反应柱中生成谷胱甘肽GSH:
配制反应液,每100L含有底物5.0kg谷氨酸、2.0kg半胱氨酸和3.0kg甘氨酸、2.0kg腺苷,以及3.0kg六偏磷酸钠、3.73kg氯化钾、2.16kg一水氯化锰、和1.56kg二水磷酸二氢钠的溶液,配制时均匀搅拌防止出现沉淀。调节pH值至6.0,温度升为55℃。
将步骤(1)中的固定酶20kg装入反应柱设备,排尽气泡后制得酶反应柱。使用恒流泵将反应液以20L/h流速由下而上缓慢通过酶反应柱,反应期间控制温度为55℃。反应6小时后,收集反应液,高效液相色谱(HPLC)检测谷胱甘肽的生成量为28g/L。HPLC检测条件同实施例2步骤(1)。
(3)分离产物GSH和其它物质:
使用盐酸调节反应液的pH值至3.0,在离子交换柱中通过D001大孔强酸性苯乙烯系阳离子交换树脂,溶液中的GSH、部分氨基酸及阳离子被吸附,穿出液中主要含有ATP、ADP以及AMP。收集穿出液,用以生产ATP或进一步纯化为纯品ATP、ADP及AMP。
使用0-0.8M NaCl梯度洗脱阳离子交换树脂上的GSH,GSH产量2.6kg,收率90%。
(3)反应柱生成GSH的连续反应,即步骤(2)的连续反应:
配制步骤(2)中所述相同反应液,连续以20L/h流速由下而上缓慢通过酶反应柱,反应期间控制温度为55℃。
反应6小时后,HPLC检测GSH的生成量为28g/L。HPLC检测条件同实施例2步骤(1)。在该步骤中,酶被循环利用。
固定化酶循环反应20次以上或者-4℃储存时间一月以上,酶活性降低40%,需按比例补加或更换部分新酶。
对比例1
在反应罐中,100L的反应体系为含有底物2.5kg谷氨酸、2.5kg半胱氨酸和1.5kg甘氨酸、16.0kg ATP,以及0.2kg硫酸铵、0.3kg氯化钠、0.5kg六水氯化镁、0.1kg一水氯化锰和0.5kg磷酸氢二钠的溶液,配制时均匀搅拌防止出现沉淀。调节pH值至7.0,在反应体系中添加GshF酶800U/L开始反应,所添加酶为粗酶液。反应期间控制pH值为7.0,温度为37℃。
图5为对比例1的HPLC图谱。如图5所示,在反应5小时后,高效液相色谱(HPLC)检测谷胱甘肽的生成量为32g/L,90%左右ATP耗尽,转化为ADP及AMP。图中未标出峰为氨基酸。HPLC检测条件同实施例2步骤(1)。
从结果可以看出:对比例1中没有偶联ATP再生酶和AK酶,需使用大量ATP进行反应。且相同时间内GSH生成量降低,原料成本是本专利的百倍以上。
与对比例1比较,本专利添加ATP再生酶与AK酶,使用少量腺苷代替大量ATP作为能量供体,为工业生产节约了大量成本。反应中生成的副产物或循环利用;或分离纯化为纯品,操作简单;或用于生产ATP,均非常适于大规模连续生产。
虽然本发明已以实施例公开如上,然其并非用于限定本发明,任何本领域技术人员,在不脱离本发明的精神和范围内,均可作各种不同的选择和修改,因此本发明的保护范围由权利要求书及其等同形式所限定。

Claims (10)

1.一种酶法制备谷胱甘肽的方法,其特征在于,包括以下步骤:
(1)利用GshF酶、ATP再生酶和AK酶在反应罐中生成谷胱甘肽;
(2)在反应罐中分离固定化的GshF酶、ATP再生酶和AK酶,或使用过滤设备分离游离的GshF酶;
(3)通过离子交换法将步骤(2)得到的滤出液进行分离,得粗产物GSH以及少量的ATP、ADP和AMP;以及
(4)将步骤(3)得到的GSH通过浓缩、结晶、干燥制备成品GSH。
2.根据权利要求1所述的一种酶法制备谷胱甘肽的方法,其特征在于,所述酶法制备谷胱甘肽的方法还包括以下步骤:
(5)所述步骤(2)中分离的GshF酶、ATP再生酶和AK酶循环利用:即将分离的GshF酶、ATP再生酶和AK酶添加至反应罐中生成GSH的连续反应;
(6)GshF酶、ATP再生酶和AK酶的连续分离:即连续分离固定化的GshF酶、ATP再生酶和AK酶或使用过滤设备连续分离游离的GshF酶、ATP再生酶和AK酶;
(7)产物GSH的连续分离:反应生成的GSH通过过滤和/或离子交换方法分离;
(8)ATP、ADP和AMP的连续分离:反应生成的ATP、ADP和AMP通过过滤或离子交换方法分离,分离后的产物可直接添加至反应体系或进一步分离纯化后制成纯品。
3.根据权利要求1所述的一种酶法制备谷胱甘肽的方法,其特征在于,所述步骤(1)至步骤(4)可以重复至少一次;优选重复多次,例如重复2、3、4、5、6、7、8、9、10、15、20、25、30、40、50次。
4.根据权利要求1所述的一种酶法制备谷胱甘肽的方法,其特征在于,所述步骤(1)中在反应罐中生成谷胱甘肽的反应条件如下:
反应温度为25-55℃,优选温度为30-50℃;
反应pH为5-10,优选pH为6-9;
反应体系为含有底物氨基酸或其盐;腺苷;多聚磷酸或其盐;以及镁离子或锰离子的一种或多种组合。
在反应体系中添加GshF酶、ATP再生酶和AK酶,反应生成谷胱甘肽。
5.根据权利要求1所述的一种酶法制备谷胱甘肽的方法,其特征在于,所述步骤(1)中在反应罐中生成谷胱甘肽的反应体系中还包括:
钠离子、钾离子或铵离子的一种或多种组合;Tris或磷酸盐的水溶液的一种或两种组合;其中,钠离子浓度为0.01-0.5M;钾离子浓度为0.01-0.5M;铵离子浓度为0.01-0.3M;Tris浓度为0.01-0.1M;磷酸盐浓度为0.01-0.1M。
6.根据权利要求4所述的一种酶法制备谷胱甘肽的方法,其特征在于,所述氨基酸或其盐为L型氨基酸或其盐,优选为谷氨酸或其盐(Glu)、半胱氨酸或其盐(Cys)、甘氨酸或其盐(Gly),三种氨基酸添加质量比优选为Glu:Cys:Gly=(1-2.5):1:(0.5-1.5),更优选的质量比为Glu:Cys:Gly=(1.2-2):1:(0.8-1.5);半胱氨酸(Cys)添加浓度优选为1-50g/L。
7.根据权利要求4所述的一种酶法制备谷胱甘肽的方法,其特征在于,所述GshF酶、ATP再生酶和AK酶为游离或者固定化的酶;GshF酶浓度为0.01-10000U/L,AK酶浓度为0.01-8000U/L;ATP再生酶为多聚磷酸激酶(PPK)、腺苷酸激酶(ADK)和多聚磷酸-腺苷酸磷酸转移酶(PAP)中的任意两种或三种组合,PPK酶浓度为0.01-5000U/L,ADK酶浓度为0.01-5000U/L,PAP酶浓度为0.01-5000U/L。
8.根据权利要求4所述的一种酶法制备谷胱甘肽的方法,其特征在于,所述腺苷浓度为0.01-20g/L;多聚磷酸或其盐的浓度为0.01-0.3M;镁离子浓度为0.01-0.2M;锰离子浓度为0.005-0.15M。
9.根据权利要求4所述的一种酶法制备谷胱甘肽的方法,其特征在于,所述镁离子选自于氯化镁、硫酸镁、亚硫酸镁和硝酸镁中的一种或多种;锰离子选自于氯化锰和硫酸锰中的一种或多种;钾离子选自于氯化钾、硫酸钾、硝酸钾、氢氧化钾、亚硫酸钾、碳酸钾、碳酸氢钾、醋酸钾、磷酸氢二钾、磷酸二氢钾和柠檬酸钾中的一种或多种;钠离子选自于氯化钠、硫酸钠、硝酸钠、氢氧化钠、亚硫酸钠、碳酸钠、碳酸氢钠、醋酸钠、磷酸氢二钠、磷酸二氢钠和柠檬酸钠中的一种或多种;铵离子选自于氯化铵、硫酸铵、硝酸铵、氨水、碳酸铵、碳酸氢铵、磷酸氢二铵、磷酸二氢铵和醋酸铵中的一种或多种;多聚磷酸或其盐选自于多聚磷酸钠、多聚磷酸钾和多聚磷酸铵中的一种或多种。
10.根据权利要求1所述的方法,其特征在于,所述步骤(2)中固定化GshF酶、ATP再生酶和AK酶通过下列方式固定于固定化载体:吸附、交联、共价结合、包埋或其组合;固定化载体选自于高分子载体、无机载体和磁性高分子微球载体的一种或多种;其中,高分子载体选自于纤维素、葡萄糖凝胶、琼脂糖、聚丙烯酰胺、多聚氨基酸、聚苯乙烯、聚丙烯酸、海藻酸钠、壳聚糖、淀粉、聚乙烯醇、明胶、卡拉胶、尼龙和合成高聚物的一种或多种组合;无机载体选自多孔玻璃、氧化硅、活性炭、硅胶和硅藻土的一种或多种组合。
CN201710452240.9A 2017-06-15 2017-06-15 一种酶法制备谷胱甘肽的方法 Active CN109134594B (zh)

Priority Applications (5)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201710452240.9A CN109134594B (zh) 2017-06-15 2017-06-15 一种酶法制备谷胱甘肽的方法
US16/622,852 US11939615B2 (en) 2017-06-15 2018-06-06 Production method of enzymatic reaction using adenosine instead of ATP
PCT/CN2018/090045 WO2018228246A1 (zh) 2017-06-15 2018-06-06 一种酶法制备谷胱甘肽的方法
PCT/CN2018/090050 WO2018228247A1 (zh) 2017-06-15 2018-06-06 一种利用腺苷代替atp进行酶促反应的生产方法
US16/622,856 US11788110B2 (en) 2017-06-15 2018-06-06 Method for enzymatic preparation of glutathione

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201710452240.9A CN109134594B (zh) 2017-06-15 2017-06-15 一种酶法制备谷胱甘肽的方法

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN109134594A true CN109134594A (zh) 2019-01-04
CN109134594B CN109134594B (zh) 2022-06-17

Family

ID=64660233

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201710452240.9A Active CN109134594B (zh) 2017-06-15 2017-06-15 一种酶法制备谷胱甘肽的方法

Country Status (3)

Country Link
US (1) US11788110B2 (zh)
CN (1) CN109134594B (zh)
WO (1) WO2018228246A1 (zh)

Cited By (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN110643587A (zh) * 2019-10-29 2020-01-03 杭州唯泰生物药业有限公司 一种酶法制备烟酰胺腺嘌呤二核苷酸磷酸的方法
CN111662358A (zh) * 2019-03-07 2020-09-15 华东理工大学 一种无细胞自组装体系高效合成谷胱甘肽的方法
CN111979206A (zh) * 2019-05-24 2020-11-24 深圳瑞德林生物技术有限公司 固定化融合酶及用其制备谷胱甘肽的方法
CN112646738A (zh) * 2021-01-06 2021-04-13 江南大学 一种高产谷胱甘肽毕赤酵母菌株g3-sa及其应用
CN112779173A (zh) * 2021-01-06 2021-05-11 江南大学 一种高产谷胱甘肽毕赤酵母菌株g3-sf及其应用
CN115594731A (zh) * 2022-10-31 2023-01-13 南通紫琅生物医药科技有限公司(Cn) 一种谷胱甘肽脱色加工处理工艺
CN116621920A (zh) * 2023-07-24 2023-08-22 山东睿鹰制药集团有限公司 一种还原型谷胱甘肽的制备方法

Families Citing this family (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP1286735A1 (en) * 1999-09-24 2003-03-05 Dennis Jay Dupray Geographically constrained network services
WO2018228247A1 (zh) 2017-06-15 2018-12-20 安徽古特生物科技有限公司 一种利用腺苷代替atp进行酶促反应的生产方法
CN112063669A (zh) * 2019-06-11 2020-12-11 百瑞全球有限公司 酶法反应组合物、增加酶法反应中三磷酸腺苷(atp)量的方法及其应用
CN112390851A (zh) * 2019-08-13 2021-02-23 百瑞全球有限公司 生化反应液的纯化方法、纯化的生化反应产物及其制备方法
CN113025602A (zh) * 2021-03-18 2021-06-25 绵阳晟氏健康科技有限公司 固定化精氨酸消旋酶及其制备方法、应用
CN114317647A (zh) * 2021-12-30 2022-04-12 无锡福祈制药有限公司 一种利用基因工程大肠杆菌生产谷胱甘肽的方法
WO2023196276A1 (en) * 2022-04-04 2023-10-12 Children's National Medical Center Preparation of gamma l-glutamyl l-cysteine and bis gamma l-glutamyl cycstine

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN102220400A (zh) * 2011-05-12 2011-10-19 北京化工大学 一种体外合成谷胱甘肽的方法
CN105219823A (zh) * 2015-11-10 2016-01-06 深圳市古特新生生物科技有限公司 一种酶法制备谷胱甘肽的方法
CN106191170A (zh) * 2016-08-09 2016-12-07 深圳市古特新生生物科技有限公司 一种酶法制备三磷酸腺苷的方法

Family Cites Families (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2016017631A1 (ja) * 2014-07-29 2016-02-04 株式会社カネカ γ-グルタミルシステイン及びグルタチオンの製造方法
CN105603028B (zh) * 2016-03-22 2019-04-16 深圳市古特新生生物科技有限公司 酶法同时制备谷胱甘肽和腺苷酸的方法
CN106220708B (zh) * 2016-07-26 2020-04-10 上海青平药业有限公司 一种从GSCu沉淀中提取分离谷胱甘肽的方法
CN106086126B (zh) * 2016-08-29 2019-12-13 开平牵牛生化制药有限公司 一种酶催化合成谷胱甘肽的方法

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN102220400A (zh) * 2011-05-12 2011-10-19 北京化工大学 一种体外合成谷胱甘肽的方法
CN105219823A (zh) * 2015-11-10 2016-01-06 深圳市古特新生生物科技有限公司 一种酶法制备谷胱甘肽的方法
CN106191170A (zh) * 2016-08-09 2016-12-07 深圳市古特新生生物科技有限公司 一种酶法制备三磷酸腺苷的方法

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Y. JIANG等: "Enzymatic Production of Glutathione by Bifunctional γ-Glutamylcysteine Synthetase/Glutathione Synthetase Coupled with In Vitro Acetate Kinase-Based ATP Generation", 《APPL BIOCHEM BIOTECHNOL》 *

Cited By (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN111662358A (zh) * 2019-03-07 2020-09-15 华东理工大学 一种无细胞自组装体系高效合成谷胱甘肽的方法
CN111979206A (zh) * 2019-05-24 2020-11-24 深圳瑞德林生物技术有限公司 固定化融合酶及用其制备谷胱甘肽的方法
CN110643587A (zh) * 2019-10-29 2020-01-03 杭州唯泰生物药业有限公司 一种酶法制备烟酰胺腺嘌呤二核苷酸磷酸的方法
CN112646738A (zh) * 2021-01-06 2021-04-13 江南大学 一种高产谷胱甘肽毕赤酵母菌株g3-sa及其应用
CN112779173A (zh) * 2021-01-06 2021-05-11 江南大学 一种高产谷胱甘肽毕赤酵母菌株g3-sf及其应用
CN115594731A (zh) * 2022-10-31 2023-01-13 南通紫琅生物医药科技有限公司(Cn) 一种谷胱甘肽脱色加工处理工艺
CN115594731B (zh) * 2022-10-31 2023-09-08 南通紫琅生物医药科技有限公司 一种谷胱甘肽脱色加工处理工艺
CN116621920A (zh) * 2023-07-24 2023-08-22 山东睿鹰制药集团有限公司 一种还原型谷胱甘肽的制备方法
CN116621920B (zh) * 2023-07-24 2023-09-29 山东睿鹰制药集团有限公司 一种还原型谷胱甘肽的制备方法

Also Published As

Publication number Publication date
US20200199641A1 (en) 2020-06-25
CN109134594B (zh) 2022-06-17
US11788110B2 (en) 2023-10-17
WO2018228246A1 (zh) 2018-12-20

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN109134594A (zh) 一种酶法制备谷胱甘肽的方法
CN106191170B (zh) 一种酶法制备三磷酸腺苷的方法
CN105603028B (zh) 酶法同时制备谷胱甘肽和腺苷酸的方法
CN105647996B (zh) 固定化酶法制备三磷酸腺苷的方法
CN105219823B (zh) 一种酶法制备谷胱甘肽的方法
CN109136309B (zh) 一种利用腺苷代替atp进行酶促反应的生产方法
CN102978267B (zh) 酶法制备谷胱甘肽的方法
CN109750009A (zh) 一种草铵膦脱氢酶突变体及其应用
CN106086126B (zh) 一种酶催化合成谷胱甘肽的方法
CN110724675B (zh) 转氨酶催化剂和酶法合成(r)-1-叔丁氧羰基-3-氨基哌啶的方法
CN109735559B (zh) 一种γ-氨基丁酸的生物制备方法
CN109280680A (zh) 一种酶促联产的方法
CN108690854A (zh) 一种利用化学-酶法生产l-草铵膦的方法
CN105483105A (zh) 一种青霉素g酰化酶突变体
CN103555683B (zh) 一种沙格列汀手性中间体的合成方法
CN106995808A (zh) 一种重组转氨酶及其应用
CN106222231A (zh) 一种快速生产高光学纯度d‑赖氨酸的方法
CN109136311B (zh) 一种酶法制备s-腺苷甲硫氨酸的方法
CN106191151A (zh) 一种生物转化联产d‑赖氨酸和5‑氨基戊酸的方法
CN111979206B (zh) 固定化融合酶及用其制备谷胱甘肽的方法
CN108034646A (zh) 一种催化活性和对映归一性提高的PvEH3突变体
CN104846025B (zh) 一种制备(2s,3r)-2-苯甲酰氨甲基-3-羟基丁酸甲酯的方法
CN106191089A (zh) 一种加速5‑氨基戊酸生物法生产的方法
CN101671716A (zh) 生物酶不对称转化生产d-苯丙氨酸的方法
CN103757068B (zh) 一种苯甲酸衍生物的制备方法

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
TA01 Transfer of patent application right

Effective date of registration: 20220511

Address after: 246004 No. 5, Weiyi Road, high tech Zone, Anqing City, Anhui Province

Applicant after: Anhui Gute Biotechnology Co.,Ltd.

Address before: 518103 xinguobang logistics park, No. 87, Yongfu Road, Fuyong street, Bao'an District, Shenzhen, Guangdong Province

Applicant before: SHENZHEN GSH BIO-TECH CO.,LTD.

TA01 Transfer of patent application right
GR01 Patent grant
GR01 Patent grant