CN109055588A - 一对检测伯杰氏菌属的特异性引物、试剂盒及pcr检测方法 - Google Patents
一对检测伯杰氏菌属的特异性引物、试剂盒及pcr检测方法 Download PDFInfo
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Abstract
本发明公开了一对检测伯杰氏菌属的特异性引物、试剂盒及PCR检测方法,该引物包括上游引物Bergeyella‑F:5’‑TTGAAAGCTCCGGCGGATAG‑3’和下游引物Bergeyella‑R:5’‑ACCCTCACGAGAGTAGGTTT‑3’。本发明从GenBank数据库中下载链球菌、猪丹毒杆菌、多杀性巴氏杆菌、沙门氏菌、副猪嗜血杆菌、传染性胸膜肺炎放线杆菌、嗜麦芽窄食单胞菌、猪伯杰氏菌、动物溃疡伯杰氏菌16S rRNA基因序列,通过MEGA 5.05软件进行序列比对,寻找伯杰氏菌16S rRNA特异性序列,然后利用Primer‑BLAST设计仅能扩增伯杰氏菌一对特异性引物,建立一种伯杰氏菌属PCR快速检测方法,能够鉴定伯杰氏菌。本发明的方法具有快速、简便、灵敏度高、特异性强的优点。
Description
技术领域
本发明涉及一种细菌的检测方法,具体涉及一对检测伯杰氏菌属的特异性引物、试剂盒及PCR检测方法。
背景技术
伯杰氏菌属(Bergeyella)是一种革兰氏阴性、不形成芽孢、氧化酶阳性的非发酵细菌,于1994年由Vandamme提议设立。目前伯杰氏菌属(Bergeyella)包括两个种,即动物溃疡伯杰氏菌(Bergeyella zoohelcum)和猪伯杰氏菌(Bergeyella porcorum)。
动物溃疡伯杰氏菌主要存在于猫、狗或者其他哺乳动物口腔或者鼻腔微生物菌群中。2002年,A.DECOSTERE等,第一次报道动物溃疡伯杰氏菌与猫呼吸道病有关。在被狗或者猫咬伤后,动物溃疡伯杰氏菌可能会引发稀少而严重的人类临床病,例如导致蜂窝组织、腿脓肿、败血症等。
2016年,西班牙学者L.Zamoraa等人,从3头病猪的肺脏组织和1头健康猪的扁桃体中,分离出4株革兰氏阴性,接触酶和氧化酶试验均为阳性的杆状细菌。通过形态学和生化试验鉴定,判定分离的4株细菌归属为伯杰氏菌属。通过16S rRNA基因同源性比较、主要脂肪酸测定、DNA中G+C含量测定,表明新分离的4株细菌与先前的动物溃疡伯杰氏菌不属于同一个种,认定其是伯杰氏菌属中一个新种,命名为猪伯杰氏菌(Bergeyella porcorum)。
2018年,M.Lorenzo de Arriba等报道从8个商业化猪场和一个野猪场,采集鼻拭子接种巧克力琼脂,分离出29株伯杰氏菌,共鉴定为11个基因类型。研究表明这些伯杰氏菌具有血清补体耐受性和抗吞噬作用,表明来自鼻腔伯杰氏菌分离株在体外具有某些致病性特征。药敏试验表明,在11个基因型中有9个基因型具有多重耐药性,其中包括一个分离自从来没有使用过抗菌药物的野猪场的基因型。
目前,针对伯杰氏菌属鉴定主要是通过染色镜检、生化试验、16S rRNA基因测序和比对等鉴定,十分繁琐与费时,成本昂贵,因此急需建立一种快速、简便的诊断方法。
发明内容
针对现有技术的不足,本发明的目的是提供一对检测伯杰氏菌属的特异性引物、试剂盒及PCR检测方法,该方法具有快速、灵敏度高、特异性强等优点。
为了实现上述目的,本发明所采用的技术方案是:
一对检测伯杰氏菌属的特异性引物,包括上游引物Bergeyella-F:5’-TTGAAAGCTCCGGCGGATAG-3’和下游引物Bergeyella-R:5’-ACCCTCACGAGAGTAGGTTT-3’。
伯杰氏菌属包括猪伯杰氏菌、动物溃疡伯杰氏菌。
一种伯杰氏菌属的PCR检测试剂盒,包括上游引物Bergeyella-F:5’-TTGAAAGCTCCGGCGGATAG-3’和下游引物Bergeyella-R:5’-ACCCTCACGAGAGTAGGTTT-3’。
一种伯杰氏菌属的PCR检测试剂盒,还包括2×Taq PCR Master mix、去离子水。
一种伯杰氏菌属的PCR检测试剂盒在检测伯杰氏菌属中的应用。
一种伯杰氏菌属的PCR检测方法,包括以下步骤:提取待测菌种样品的DNA,作为模板;以提取的DNA为模板,利用引物进行PCR扩增,并将扩增产物进行凝胶电泳,根据条带分析结果。
PCR体系组成为:2×Taq PCR Master mix 10.0μL,10μM上、下游引物各0.5μL,DNA模板1.0μL,去离子水8μL。
PCR反应程序为:94℃预变性4min;94℃变性45s,52℃退火30s,72℃延伸30s,30个循环;最后72℃延伸10min。
当PCR扩增产物条带为266bp时,则检测样品为伯杰氏菌。
本发明从GenBank数据库中下载链球菌、猪丹毒杆菌、多杀性巴氏杆菌、沙门氏菌、副猪嗜血杆菌、传染性胸膜肺炎放线杆菌、嗜麦芽窄食单胞菌、猪伯杰氏菌、动物溃疡伯杰氏菌16S rRNA基因序列,通过MEGA 5.05软件进行序列比对,经反复比较和观察,寻找伯杰氏菌16S rRNA特异性序列,然后以GenBank数据库中伯杰菌D658菌株16SrRNA基因部分序列(登录号NR_104718.1)作为参考序列,选择该基因片段170bp-201bp位点序列作为上游引物设计选择序列和419bp-450bp位点序列作为下游引物设计选择序列,利用Primer-BLAST设计仅能扩增伯杰氏菌一对特异性引物,建立一种伯杰氏菌属PCR快速检测方法,能够鉴定伯杰氏菌。
与现有技术相比,本发明具有以下优点:
(1)快速、简便:相比染色镜检、生化鉴定以及16S rRNA基因测序和同源性比对,伯杰氏菌属PCR检测方法鉴定伯杰氏菌更加快速,这个鉴定过程不超过4h。如果仅仅采用染色镜检形态学鉴定伯杰氏菌,耗时而且还不准确。如果采用生化试验鉴定,一般需要耗时1~2d,除了耗时,操作繁琐,劳动力量大,要求购买试剂多,成本昂贵。16S rRNA基因测序和同源性比对,同样需要专业公司帮助测序,期间耗时大约2~5d,测序数据分析需要专业人员。
(2)灵敏度高:利用紫外线,测定提取细菌DNA模板。将测定动物溃疡伯杰氏菌和猪伯杰氏菌DNA模板浓度分别为53.2μg/mL和89.6μg/mL,使用去离子水,按照10倍稀释倍数进行稀释,稀释度分别为10-1,10-2,10-3,10-4,10-5,10-6,10-7,10-8,10-9,10-10,10-11,10-12。然后,将上述各稀释度的DNA溶液分别取一定量作为PCR反应模板,检测最低检测下限。通过实验,结果表明动物溃疡伯杰氏菌和猪伯杰氏菌DNA模板最低检测浓度分别为5.32×10-3pg/μL和8.96×10-1pg/μL,即最低检测DNA量分别为5.32×10-3pg和0.896pg。
(3)特异性强:利用建立的伯杰氏菌PCR检测方法,对从猪内分离10株动物溃疡伯杰氏菌和1株猪伯杰氏菌进行PCR扩增,全部检测为阳性,阴性对照无扩增条带。对大肠杆菌、沙门氏菌、变形杆菌、副猪嗜血杆菌、嗜麦芽窄食单胞菌、巴氏杆菌、链球菌、猪丹毒杆菌、传染性胸膜肺炎放线杆菌、气单胞菌进行检测,均为阴性。研究结果表明,建立的伯杰氏菌PCR检测方法仅能扩增出伯杰氏菌,而不能扩增其他细菌,具有较强的特异性。
附图说明
图1为本发明的伯杰氏菌PCR检测方法对分离鉴定、保存的11株伯杰氏菌的检测结果。图中,1为分子DNA Maerker2000;2-12分别为YLD7,SQT1,DC-10,DJ-5,DY-10,DY-8,SQT6,JS2-4,XCSF,ZWSF,FqWF2;13为去离子水作阴性对照。
图2为本发明的伯杰氏菌PCR检测方法的特异性检测结果。图中,1为分子DNAMaerker2000;2-11分别为大肠杆菌、沙门氏菌、变形杆菌、副猪嗜血杆菌、嗜麦芽窄食单胞菌、巴氏杆菌、链球菌、猪丹毒杆菌、传染性胸膜肺炎放线杆菌、气单胞菌,12为伯杰氏菌;13为去离子水作阴性对照。
图3为本发明的动物溃疡伯杰氏菌PCR检测方法的灵敏度检测结果。图中,1为分子DNA Maerker2000;2-13分别为DNA稀释度10-1,10-2,10-3,10-4,10-5,10-6,10-7,10-8,10-9,10-10,10-11,10-12;14为去离子水作阴性对照。
图4为本发明的猪伯杰氏菌PCR检测方法的灵敏度检测结果。图中,1为分子DNAMaerker2000;2-13分别为DNA稀释度10-1,10-2,10-3,10-4,10-5,10-6,10-7,10-8,10-9,10-10,10-11,10-12;14为去离子水作阴性对照。
具体实施方式
以下结合实施例对本发明的具体实施方式作进一步详细说明。
实施例1、伯杰氏菌属的PCR检测方法建立
1.1 引物设计
本发明从GenBank数据库中下载链球菌、猪丹毒杆菌、多杀性巴氏杆菌、沙门氏菌、副猪嗜血杆菌、传染性胸膜肺炎放线杆菌、嗜麦芽窄食单胞菌、猪伯杰氏菌、动物溃疡伯杰氏菌的16S rRNA基因序列,通过MEGA5.05软件进行序列比对,寻找伯杰氏菌16S rRNA特异性序列,然后以GenBank数据库中伯杰菌D658菌株16SrRNA基因部分序列(登录号NR_104718.1)作为参考序列,选择该基因片段170bp-201bp位点序列作为上游引物设计选择序列和419bp-450bp位点序列作为下游引物设计选择序列,利用Primer-BLAST设计仅能扩增伯杰氏菌一对特异性引物,具体如下:
上游引物Bergeyella-F:5’-TTGAAAGCTCCGGCGGATAG-3’(SEQ ID NO.1)
下游引物Bergeyella-R:5’-ACCCTCACGAGAGTAGGTTT-3’(SEQ ID NO.2)
1.2 DNA模板提取
DNA模板提取为常规方法,本发明采取煮沸法提取。具体步骤,首先挑取分离培养的单菌落,接种于胰蛋白胨大豆琼脂肉汤(含有体积浓度5%的犊牛血清和浓度10μg/mL的烟酰胺腺嘌呤二核苷酸(NAD)),37℃培养18h~24h,取1mL培养物,加入1.5mL灭菌EP管中,12000rpm离心1min,弃去上清后,加入去离子水,涡旋30s,封口胶密封后,水浴煮沸10min,放入-20℃冰箱5min,12000rpm离心2.5min,取上清作为PCR扩增模板。
同时设置去离子水作为阴性模板。
1.3 PCR扩增
PCR体系组成为:2×Taq PCR Master mix 10.0μL,10μM上、下游引物各0.5μL,DNA模板1.0μL,去离子水8μL。
PCR反应程序为:94℃预变性4min;94℃变性45s,52℃退火30s,72℃延伸30s,30个循环;最后72℃延伸10min。
1.4 电泳分析
琼脂糖凝胶板制备,按照1.5%的比例配制琼脂糖凝胶。用分析天平称取0.5g琼脂糖,加入到50mL1×TAE稀释液中摇匀,微波炉加热90s使其完全溶解,将5μL核酸染料加入溶液后混匀,放置大制胶板于胶槽中,插入适当齿数梳子,倒入溶液于胶槽中,室温冷却静置20min,待凝固后,两边同时拔掉梳子,除去边缘多于凝胶,制备即完成。
电泳及鉴定检测,将制备好的琼脂糖凝胶板放入电泳槽中,加入1×TAE稀释液使其覆盖于胶板上。开始加样,先加DL2000DNAMarker 5μL,之后依次加入待检样品扩增产物6μL,最后加入阴性对照扩增产物6μL。接下来电泳,按照一定恒定电压进行核酸电泳,电泳时间一般为30~60min即可停止。通过凝胶成像系统,观察各待测样品扩增条带,分析鉴定结果。
根据样品PCR扩增产物结果,做出诊断判定。当去离子水作为阴性模板,无扩增条带,待检样品扩增目的条带为266bp,判定为阳性;当去离子水作为阴性模板,待检样品无扩增条带,判定为阴性;当去离子水作为阴性模板,有扩增条带(无论条带大小),待检样品是否出现目的条带,均需要重做。
本发明伯杰氏菌属的PCR检测试剂盒包括:上游引物Bergeyella-F、下游引物Bergeyella-R、2×Taq PCR Master mix、去离子水。
实施例2、检测方法验证
利用建立伯杰氏菌PCR检测方法,对发明人分离鉴定、保存的11株伯杰氏菌(其菌株分别命名为YLD7,SQT1,DC-10,DJ-5,DY-10,DY-8,SQT6,JS2-4,XCSF,ZWSF,FqWF2)进行检测,其中FqWF2为猪伯杰氏菌,其他为动物溃疡伯杰氏菌。结果表明,11株伯杰氏菌PCR扩增条带均为266bp大小,即扩增结果为阳性(图1)。进一步说明所建立伯杰氏菌PCR检测方法能够对分离保存的伯杰氏菌进行检测。
实施例3、特异性检测
以动物溃疡伯杰氏菌以及10种常见细菌为检测样品,对所建立伯杰氏菌PCR检测方法进行特异性检测。10种细菌分别为大肠杆菌、沙门氏菌、变形杆菌、副猪嗜血杆菌、嗜麦芽窄食单胞菌、巴氏杆菌、链球菌、猪丹毒杆菌、传染性胸膜肺炎放线杆菌、气单胞菌。结果表明,所建立伯杰氏菌PCR检测方法,检测动物溃疡伯杰氏菌为阳性,其他10种常见细菌均为阴性(图2)。进一步说明,所建立的伯杰氏菌PCR检测方法,特异性强,仅伯杰氏菌检测为阳性,其他非伯杰氏菌检测为阴性。
实施例4、灵敏度检测
所建立的伯杰氏菌灵敏度检测时,首先测定所提取动物溃疡伯杰氏菌和猪伯杰氏菌DNA浓度分别为53.2μg/mL、89.6μg/mL,然后分别按照10倍梯度依次稀释,稀释度均分别为10-1,10-2,10-3,10-4,10-5,10-6,10-7,10-8,10-9,10-10,10-11,10-12,将上述稀释好的伯杰氏菌DNA分别作为PCR扩增模板。扩增结果(图3、图4)表明,当动物溃疡伯杰氏菌和猪伯杰氏菌,分别按照107和105倍数稀释后为最低检测浓度,即为5.32×10-3pg/μL和8.96×10-1pg/μL;由于每个PCR扩增反应加DNA模板量为1μL,因此,动物溃疡伯杰氏菌和猪伯杰氏菌最低检测DNA量为5.32×10-3pg和0.896pg,表明所建立的PCR检测方法十分敏感。
以上所述仅为本发明最佳的实施例,对于本领域的技术人员来说,本发明可以有各种更改和变化。凡在本发明的精神和原则之内,所作的任何修改、等同替换、改进等,均应包含在本发明的保护范围之内。
序列表
<110> 河南牧业经济学院
<120> 一对检测伯杰氏菌属的特异性引物、试剂盒及PCR检测方法
<160> 2
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列()
<400> 1
ttgaaagctc cggcggatag 20
<210> 2
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列()
<400> 2
accctcacga gagtaggttt 20
Claims (9)
1.一对检测伯杰氏菌属的特异性引物,其特征在于,包括上游引物Bergeyella-F:5’-TTGAAAGCTCCGGCGGATAG-3’和下游引物Bergeyella-R:5’-ACCCTCACGAGAGTAGGTTT-3’。
2.根据权利要求1所述的检测伯杰氏菌属的特异性引物,其特征在于,伯杰氏菌属包括猪伯杰氏菌、动物溃疡伯杰氏菌。
3.一种伯杰氏菌属的PCR检测试剂盒,其特征在于,包括权利要求1所述的特异性引物。
4.根据权利要求3所述的PCR检测试剂盒,其特征在于,还包括2×Taq PCR Mastermix、去离子水。
5.一种权利要求3或4所述的PCR检测试剂盒在检测伯杰氏菌属中的应用。
6.一种利用权利要求1所述引物的伯杰氏菌属的PCR检测方法,其特征在于,包括以下步骤:提取待测菌种样品的DNA,作为模板;以提取的DNA为模板,利用引物进行PCR扩增,并将扩增产物进行凝胶电泳,根据条带分析结果。
7.根据权利要求6所述的伯杰氏菌属的PCR检测方法,其特征在于,PCR体系组成为:2×Taq PCR Master mix 10.0μL,10μM上、下游引物各0.5μL,DNA模板1.0μL,去离子水8μL。
8.根据权利要求6所述的伯杰氏菌属的PCR检测方法,其特征在于,PCR反应程序为:94℃预变性4min;94℃变性45s,52℃退火30s,72℃延伸30s,30个循环;最后72℃延伸10min。
9.根据权利要求6所述的伯杰氏菌属的PCR检测方法,其特征在于,当PCR扩增产物条带为266bp时,则检测样品为伯杰氏菌。
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