CN109007790A - 一种山药菌质粉的制备方法及其制备的山药菌质粉 - Google Patents

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Abstract

本发明首先提供了一种山药菌质粉的制备方法，包括以下步骤：（1）制备山药基质：向干燥的山药颗粒中加入水和营养基质，搅拌混合均匀，得到含水量为50%～65%的山药基质；（2）接种、发酵：将山药基质进行灭菌，灭菌后冷却至室温，然后向山药基质中接种食用真菌菌块；将接种后的山药基质在温度为25～28℃、相对湿度为75%～80%的条件下发酵7～30天，得到食用真菌菌丝体和山药基质的混合物；（3）将步骤（2）制得的食用真菌菌丝体和山药基质的混合物进行冷冻干燥，然后经超微粉碎制成混合物粉料，将混合物粉料进行微波杀菌，即得山药菌质粉。本发明制备的山药菌质粉具有优异的抗氧化活性，而且可直接用开水冲服，服用方便。

Description

一种山药菌质粉的制备方法及其制备的山药菌质粉
技术领域
本发明涉及一种山药菌质粉的制备方法及其制备的山药菌质粉，属于生物技术及食品加工技术领域。
背景技术
人体因为与外界的持续接触，如呼吸、外界污染、放射线照射等，会不断产生自由基。多种急慢性疾病，如衰老、心血管疾病等都与过量自由基的产生有关联。人体的抗氧化物质有自身合成的，也有由食物供给的，研究表明来自食物的天然抗氧化剂，能够清除体内过多的自由基，改善体内的氧化损伤，从而预防人体因氧化损伤而导致的疾病。
山药为薯蓣科薯蓣属(Dioscorea opposita)植物薯蓣的块根是我国传统的药食同源食物之一。山药中含有丰富的山药皂甙、山药多糖等具有抗氧化活性的成分，山药皂甙具有较强的清除DPPH(1,1-二苯基-2-三硝基苯肼)自由基能力，当浓度达到1.5mg/ml时，清除率可到达90％(吴祥庭,董新姣,杨海龙,等.山药皂甙均匀设计法优化提取及其体外抗氧化活性研究[J].中国食品学报,2013,13(2):91-96.)，山药多糖的抗氧化性随着浓度的提高而显著增强，当浓度为4mg/ml时对羟自由基的清除率可达到84.72％，浓度为8mg/ml时，对DPPH自由基的清除率可达到92.73％，浓度达到20mg/ml时，对超氧阴离子自由基的清除能力可达到89.14％(许效群,刘志芳,霍乃蕊,等.山药多糖的体外抗氧化活性及对正常小鼠的免疫增强作用[J].中国粮油学报,2012,27(7):42-46.)。山药最初食用方法是去皮、晒干、磨粉后长期保藏，通常将山药粉通过蒸煮做成各种食品或者将山药直接煲成汤来食用。近些年来，随着科学技术的进步，人们对山药的开发也逐渐的向深层次发展，有关山药产品研究开发的报道很多：将山药直接干燥制成全粉、精粉，将山药直接打浆制成系列饮料，将山药淀粉制成营养米粉，将山药和纯奶、大米等复合发酵成山药酸奶和山药酒等。将山药的有效成分直接提取出来开发成具有保健功能的食品正逐渐成为山药开发利用的新思路。
食用真菌，如羊肚菌、猴头、黑木耳等，均含有多糖、黄酮、萜类等具有抗氧化活性的成分。黑木耳黄酮对DPPH自由基的半数清除率EC50为12.97μg/mL(缪钱江,刘宇,许峰,等.4种食用菌总黄酮生物功能的研究[J].食品科技,2014(7):206-209.)；猴头菌的萜类物质对超氧阴离子的半数清除率EC50为0.926mg/mL，对DPPH自由基的半数清除率EC50为1.206mg/mL(何晋浙,沈强,HEJinzhe.猴头菌菌丝体萜类物质提取优化及抗氧化研究[J].浙江工业大学学报,2016,44(3):326-333.)；羊肚菌发酵液的石油醚相粗提产物的总抗氧化能为(0.082±0.037)mmol/L(罗果,保玉心,李三华,等.羊肚菌发酵粗提产物的抗氧化活性鉴定[J].生物化工,2018(2).)；银耳多糖TF-PC对羟基自由基、DPPH自由基、超氧阴离子的清除率依次为75.21％、35.24％、43.27％(吴振亚.银耳多糖的提取纯化、理化性质及抗氧化活性研究[D].四川农业大学,2015.)。
目前，还没有关于利用山药和食用真菌来制备具有抗氧化活性的保健品或药品的研究，因此，鉴于山药和食用真菌的抗氧化活性，研究一种可以直接食用的具有优良抗氧化活性的保健品十分有必要。
发明内容
本发明的目的旨在提供一种山药菌质粉的制备方法及其利用该制备方法制备的山药菌质粉产品。
为实现发明目的，本发明采用的技术方案如下：
本发明首先提供了一种山药菌质粉的制备方法，所述制备方法包括以下步骤：
(1)向干燥的山药颗粒中加入水和营养基质，搅拌混合均匀，得到含水量为50％～65％的山药基质；
(2)将山药基质进行灭菌，灭菌后冷却至室温，然后向山药基质中接种食用真菌菌块；将接种后的山药基质在温度为25～28℃、相对湿度为75％～80％的条件下发酵7～30天，得到食用真菌菌丝体和山药基质的混合物；
(3)将步骤(2)制得的食用真菌菌丝体和山药基质的混合物进行冷冻干燥，然后经超微粉碎制成混合物粉料，将混合物粉料进行微波杀菌，即得山药菌质粉。
根据上述的山药菌质粉的制备方法，优选地，步骤(1)中所述山药颗粒是将新鲜山药经清洗、粉碎、干燥制备而成。更加优选地，所述山药颗粒的含水量为10％～15％。
根据上述的山药菌质粉的制备方法，优选地，步骤(1)中所述营养基质的加入量为山药颗粒重量的0～20％。更加优选地，所述营养基质的加入量为山药颗粒重量的0～10％。
根据上述的山药菌质粉的制备方法，优选地，步骤(1)中所述营养基质为玉米粉、花生粉中的至少一种。
根据上述的山药菌质粉的制备方法，优选地，步骤(2)中所述灭菌为高压蒸汽灭菌，灭菌的温度为121℃，时间为30min。
根据上述的山药菌质粉的制备方法，优选地，其特征在于，步骤(2)中所述食用真菌为银耳、羊肚菌、香菇、黑木耳、猴头菌中的任意一种。
根据上述的山药菌质粉的制备方法，优选地，步骤(2)中所述接种的接种量为每25g山药颗粒接种8～10块边长为7～8mm的菌块。
根据上述的山药菌质粉的制备方法，优选地，步骤(2)中所述食用真菌菌块的制备方法为：从保藏的食用真菌试管斜面上取菌丝接种于PDA琼脂培养基上，在25～28℃活化培养7～15d，然后将PDA琼脂培养基进行切割，得到菌块。更加优选地，所述活化培养的温度为25℃。
根据上述的山药菌质粉的制备方法，优选地，步骤(3)中所述混合物粉料的粒度为10～25μm。
根据上述的山药菌质粉的制备方法，优选地，步骤(3)中所述微波杀菌的微波功率为500W，微波杀菌的时间为120s。
本发明还提供了一种利用上述山药菌质粉的制备方法制备的山药菌质粉产品。该山药菌质粉可直接用开水冲服，服用方便，而且具优良有抗氧化活性，可以作为延缓衰老、预防心脑血管疾病的保健食品。
与现有技术相比，本发明取得的积极有益效果为：
(1)本发明利用山药富含大量的淀粉，同时还含有一定量纤维素的特点，将山药作为食用真菌固态发酵的底物，山药中多糖、蛋白质、自由氨基酸、微量元素等成分，能促进真菌的生长、代谢，促进活性产物的产生；同时，食用真菌在生长代谢过程中凭借菌丝的穿透能力、菌丝分泌的水解酶和氧化酶的分解能力，可以解聚山药基质的细胞结构，促进山药基质胞内活性成分(如山药多糖、多酚、皂甙)的释放，使发酵后的山药基质较发酵前基质有更强的抗氧化活性。而且，食用真菌在生长代谢的过程中，能够对山药基质中的一些成分进行转化，将山药基质中原本不具备抗氧化活性的成分转化成具备抗氧化活性的物质，进而提高制备的山药菌质粉的抗氧化活性(以多酚为例，灭菌处理后未接种食用菌的山药基质中多酚含量为400-440μg/g，经过接种食用菌发酵后，菌质中多酚含量为800-1400μg/g)。因此，本发明采用食用真菌固态发酵山药具有双向性，发酵终产物——山药菌质粉包含了食用真菌菌丝体以及其中的活性成分、真菌代谢产物和山药培养基质成分，具有更强的抗氧化功效。
(2)本发明将食用真菌接种至山药基质上进行发酵，得到食用真菌菌丝体和山药基质的混合物，食用真菌菌丝体和山药基质的混合物经冷冻干燥、超微粉碎、微波杀菌即制得可以直接服用的山药菌质粉，因此，在食用真菌菌丝体和山药基质的混合物处理过程中，不采用任何高温处理，避免了高温对混合物中营养活性成分的破坏，最大程度的保留了食用真菌菌丝体和山药基质中的营养活性成分，而且，经过超微粉碎处理，制得的山药菌质粉的粒径仅有10～25μm，营养成分细化，更易于人体吸收。
(3)本发明的山药菌质粉制备方法工艺简单、易于实施，生产成本低，可以大规模推广应用。
(4)经实验测定，本发明制备的山药菌质粉的抗氧化活性较山药本身有大幅度提高，其羟自由基清除率提高了21.4％～163.6％、DPPH自由基清除率提高了72.4％～162.5％、超氧自由基清除率提高了53.1％～174.4％。因此，本发明制备的山药菌质粉具备优异的抗氧化性能，可以作为延缓衰老、预防心脑血管疾病的保健品。
(5)本发明制备的山药菌质粉含有丰富的营养活性成分，具有优异的抗氧化功效，可直接用开水冲服，服用方便。
具体实施方式
以下通过具体的实施例对本发明做进一步详细说明，但并不限制本发明的范围。若未特别指明，实施例中所用的原料、化学试剂均为常规市售商品，所用的技术手段为本领域技术人员所公知的常规手段。
实验材料：本发明采用的使用食用真菌均购买于中国工业微生物菌种保藏管理中心，菌种分别为：银耳Tremella fuciformis(菌株编号：CICC 50179)、羊肚菌Morchellasp.(菌株编号：CICC 14033)、猴头菌Hericium erinaceus(菌种编号：CICC14026)、香菇Lentinula sp.(菌种编号：CICC 14031)、黑木耳Auricularia auricula(菌株编号：CICC14008)
实施例1：山药-银耳菌质粉的制备
(1)银耳菌块的制备方法：从保藏的银耳菌种试管斜面上取菌丝接种于PDA琼脂培养基上，在25活化培养10天，然后将PDA琼脂培养基进行切割，切分成边长为7～8mm的带菌丝菌块，得到银耳菌块；
(2)制备山药基质：取新鲜山药，清洗后切成边长为3～5mm的颗粒，经干燥，制成含水量为15％的山药颗粒；向山药颗粒中加入适量水，搅拌混合均匀后，得到含水量为65％的山药基质；
(3)接种、发酵：将山药基质装入培养瓶(料层厚度3.5cm)，采用高压蒸汽灭菌，灭菌温度121℃，灭菌时间30min；将灭菌后的山药基质冷却至室温，然后向山药基质中接种银耳菌块，接种量为每25g山药颗粒接种8块银耳菌块；接种后将培养瓶置于温度为25℃、相对湿度为75％的恒温恒湿培养条件下发酵7天，制得银耳菌丝和山药基质的混合物；
(4)将步骤(3)制得的银耳菌丝和山药基质的混合物进行冷冻干燥，然后超微粉碎成混合物粉料，将混合物粉料进行微波杀菌，即得山药-银耳菌质粉；其中，所述微波杀菌的微波功率为500W，杀菌时间为120s。
分别对接种前山药基质和制备的山药-银耳菌质粉进行羟自由基清除率、DPPH自由基清除率、超氧自由基清除率检测，分析山药基质和山药-银耳菌质粉的抗氧化性能。同时，为了进行对比，发明人在相同的条件下采用等质量的普通培养基质发酵培养银耳，制备得到银耳-普通培养基质混合物(银耳-普通培养基质混合物的制备方法中除采用的培养基质为普通培养基质外，其他条件均与山药-银耳菌质粉相同)，并对银耳-普通培养基质混合物的羟自由基清除率、DPPH自由基清除率、超氧自由基清除率检测；其中，所述普通培养基质的制备方法为：将玉米粒与麦麸按质量比5:1混合均匀，然后，向玉米粒与麦麸的混合物中加入适量水，搅拌混合均匀后，得到含水量为65％的固体培养基质，将固体培养基质装入培养瓶(料层厚度3.5cm)，在121℃高压蒸汽灭菌30min，即得普通培养基质。羟自由基清除率、DPPH自由基清除率、超氧自由基清除率测定方法分别参考以下文献：(1)郭雪峰,岳永德,孟志芬,等.用清除羟自由基法评价竹叶提取物抗氧化能力[J].光谱学与光谱分析,2010,30(2):508-511.(2)Abhijit Ganguli,Moushumi Ghosh,NavdeepSingh.Antioxidant Activities and Total Phenolics of Pickles Produced from theEdible Mushroom,Agaricus bisporous[J].Journal of Culinary Science&Technology,2002,5(2-3):131-142.(3)阎欲晓,石庆师.玉竹多糖分离纯化及自由基清除能力研究[J].食品工业科技,2009(2):149-151)。检测结果见表1。
表1山药基质、银耳-普通培养基质混合物和山药-银耳菌质粉的抗氧化性能
检测
由表1可知，与山药基质(灭菌后)相比，山药-银耳菌质粉的羟自由基清除率提高了146.3％，DPPH自由基清除率提高了72.4％，超氧自由基清除率提高了53.1％；与银耳-普通培养基质混合物相比，山药-银耳菌质粉的羟自由基清除率提高了107.3％，DPPH自由基清除率提高了55.3％，超氧自由基清除率提高了42.3％。由此说明，本发明制备的山药-银耳菌质粉比未发酵山药基质具有更好的抗氧化活性，比在普通基质上生长的银耳-普通基质混合物也具有更好的抗氧化活性。
实施例2：山药-羊肚菌菌质粉的制备
(1)羊肚菌菌块的制备方法：从保藏的羊肚菌菌种试管斜面上取菌丝接种于PDA琼脂培养基上，在25活化培养10天，然后将PDA琼脂培养基进行切割，切分成边长为7～8mm的带菌丝菌块，得到羊肚菌菌块；
(2)制备山药基质：取新鲜山药，清洗后切成边长为3～5mm的颗粒，经干燥，制成含水量为12％的山药颗粒；向山药颗粒中加入水和营养基质，搅拌混合均匀后，得到含水量为60％的山药基质；其中，所述营养基质为花生粉，所述花生粉的加入量为山药颗粒重量的4％；
(3)接种、发酵：将山药基质装入培养瓶(料层厚度4cm)，采用高压蒸汽灭菌，灭菌温度121℃，灭菌时间30min；将灭菌后的山药基质冷却至室温，然后向山药基质中接种羊肚菌菌块，接种量为每25g山药颗粒接种10块羊肚菌菌块；接种后将培养瓶置于温度为25℃、相对湿度为80％的恒温恒湿培养条件下发酵16天，制得羊肚菌菌丝和山药基质的混合物；
(4)将步骤(3)制得的羊肚菌菌丝和山药基质的混合物进行冷冻干燥，然后经超微粉碎得到粒径为混合物粉料，将混合物粉料进行微波杀菌，即得山药-羊肚菌菌质粉；其中，所述微波杀菌的微波功率为500W，杀菌时间为120s。
分别对接种前山药基质和制备的山药-羊肚菌菌质粉进行羟自由基清除率、DPPH自由基清除率、超氧自由基清除率检测，分析山药基质和山药-羊肚菌菌质粉的抗氧化性能。同时，为了进行对比，发明人在相同的条件下采用等质量的普通培养基质发酵培养羊肚菌，制备得到羊肚菌-普通培养基质混合物(羊肚菌-普通培养基质混合物的制备方法中除采用的培养基质为普通培养基质外，其他条件均与山药-羊肚菌菌质粉相同)，并对羊肚菌-普通培养基质混合物的羟自由基清除率、DPPH自由基清除率、超氧自由基清除率检测；其中，所述普通培养基质的制备方法为：将玉米粒与麦麸按质量比5:1混合均匀，然后，向玉米粒与麦麸的混合物中加入适量水，搅拌混合均匀后，得到含水量为60％的固体培养基质，将固体培养基质装入培养瓶(料层厚度4cm)，在121℃高压蒸汽灭菌30min，即得普通培养基质。羟自由基清除率、DPPH自由基清除率、超氧自由基清除率的测定方法同实施例1，其检测结果见表2。
表2山药基质、羊肚菌-普通培养基质混合物和山药-羊肚菌菌质粉的抗氧化
性能检测
由表2可知，与山药基质(灭菌后)相比，山药-羊肚菌菌质粉的羟自由基清除率提高了21.4％，DPPH自由基清除率提高了74.1％，超氧自由基清除率提高了75.0％；与羊肚菌-普通普通基质混合物相比，山药-羊肚菌菌质粉的羟自由基清除率提高了28.4％，DPPH自由基清除率提高了61.0％，超氧自由基清除率提高了57.9％。由此说明，本发明制备的山药-羊肚菌菌质粉比未发酵山药基质具有更好的抗氧化活性，比在普通培养基质上生长的羊肚菌-普通基质混合物也具有更好的抗氧化活性。
实施例3：山药-猴头菌菌质粉的制备
(1)猴头菌菌块的制备方法：从保藏的猴头菌菌种试管斜面上取菌丝接种于PDA琼脂培养基上，在25活化培养15天，然后将PDA琼脂培养基进行切割，切分成边长为7～8mm的带菌丝菌块，得到猴头菌菌块；
(2)制备山药基质：取新鲜山药，清洗后切成边长为3～5mm的颗粒，经干燥，制成含水量为10％的山药颗粒；向山药颗粒中加入适量水，搅拌混合均匀后，得到含水量为65％的山药基质；
(3)接种、发酵：将山药基质装入培养瓶(料层厚度2.5cm)，采用高压蒸汽灭菌，灭菌温度121℃，灭菌时间30min；将灭菌后的山药基质冷却至室温，然后向山药基质中接种猴头菌菌块，接种量为每25g山药颗粒接种10块猴头菌菌块；接种后将培养瓶置于温度为25℃、相对湿度为80％的恒温恒湿培养条件下发酵25天，制得猴头菌菌丝和山药基质的混合物；
(4)将步骤(3)制得的猴头菌菌丝和山药基质的混合物进行冷冻干燥，然后经超微粉碎得到粒径为混合物粉料，将混合物粉料进行微波杀菌，即得山药-猴头菌菌质粉；其中，所述微波杀菌的微波功率为500W，杀菌时间为120s。
分别对接种前山药基质和制备的山药-猴头菌菌质粉进行羟自由基清除率、DPPH自由基清除率、超氧自由基清除率检测，分析山药基质和山药-猴头菌菌质粉的抗氧化性能。同时，为了进行对比，发明人在相同的条件下采用等质量的普通培养基质发酵培养猴头菌，制备得到猴头菌-普通培养基质混合物(猴头菌-普通培养基质混合物的制备方法中除采用的培养基质为普通培养基质外，其他条件均与山药-猴头菌菌质粉相同)，并对猴头菌-普通培养基质混合物的羟自由基清除率、DPPH自由基清除率、超氧自由基清除率检测；其中，所述普通培养基质的制备方法为：将玉米粒与麦麸按质量比5:1混合均匀，然后，向玉米粒与麦麸的混合物中加入适量水，搅拌混合均匀后，得到含水量为65％的固体培养基质，将固体培养基质装入培养瓶(料层厚度2.5cm)，在121℃高压蒸汽灭菌30min，即得普通培养基质。羟自由基清除率、DPPH自由基清除率、超氧自由基清除率的测定方法同实施例1，其检测结果见表3。
表3山药基质、猴头菌-普通培养基质混合物和山药-猴头菌菌质粉的抗氧化
性能检测
由表3可知，与山药基质(灭菌后)相比，山药-猴头菌菌质粉的羟自由基清除率提高了131.4％，DPPH自由基清除率提高了100％，超氧自由基清除率提高了174.4％；与猴头菌-普通培养基质混合物相比，山药-猴头菌菌质粉的羟自由基清除率提高了88.2％，DPPH自由基清除率提高了4.5％，超氧自由基清除率提高了56.3％。由此说明，山药-猴头菌菌质粉比未发酵山药基质具有更好的抗氧化活性，比在普通培养基质上生长的猴头菌-普通基质混合物也具有更好的抗氧化活性。
实施例4：山药-香菇菌质粉的制备
(1)香菇菌块的制备方法：从保藏的香菇菌种试管斜面上取菌丝接种于PDA琼脂培养基上，在25活化培养7天，然后将PDA琼脂培养基进行切割，切分成边长为7～8mm的带菌丝菌块，得到香菇菌块；
(2)制备山药基质：取新鲜山药，清洗后切成边长为3～5mm的颗粒，经干燥，制成含水量为12％的山药颗粒；向山药颗粒中加入水和营养基质，搅拌混合均匀后，得到含水量为60％的山药基质；其中，所述营养基质为玉米粉，所述玉米粉的加入量为山药颗粒重量的10％；
(3)接种、发酵：将山药基质装入培养瓶(料层厚度4cm)，采用高压蒸汽灭菌，灭菌温度121℃，灭菌时间30min；将灭菌后的山药基质冷却至室温，然后向山药基质中接种香菇菌块，接种量为每25g山药颗粒接种10块香菇菌块；接种后将培养瓶置于温度为25℃、相对湿度为77％的恒温恒湿培养条件下发酵18天，制得香菇菌丝和山药基质的混合物；
(4)将步骤(3)制得的香菇菌丝和山药基质的混合物进行冷冻干燥，然后经超微粉碎得到粒径为混合物粉料，将混合物粉料进行微波杀菌，即得山药-香菇菌质粉；其中，所述微波杀菌的微波功率为500W，杀菌时间为120s。
分别对接种前山药基质和制备的山药-香菇菌质粉进行羟自由基清除率、DPPH自由基清除率、超氧自由基清除率检测，分析山药基质和山药-香菇菌质粉的抗氧化性能。同时，为了进行对比，发明人在相同的条件下采用等质量的普通培养基质发酵培养香菇，制备得到香菇-普通培养基质混合物(香菇-普通培养基质混合物的制备方法中除采用的培养基质为普通培养基质外，其他条件均与山药-香菇菌质粉相同)，并对香菇-普通培养基质混合物的羟自由基清除率、DPPH自由基清除率、超氧自由基清除率检测；其中，所述普通培养基质的制备方法为：将玉米粒与麦麸按质量比5:1混合均匀，然后，向玉米粒与麦麸的混合物中加入适量水，搅拌混合均匀后，得到含水量为60％的固体培养基质，将固体培养基质装入培养瓶(料层厚度4cm)，在121℃高压蒸汽灭菌30min，即得普通培养基质。羟自由基清除率、DPPH自由基清除率、超氧自由基清除率的测定方法同实施例1，其检测结果见表4。
表4山药基质、香菇-普通培养基质混合物和山药-香菇菌质粉的抗氧化性能
检测
由表4可知，与山药基质(灭菌后)相比，山药-香菇菌质粉的羟自由基清除率提高了92.0％，DPPH自由基清除率提高了162.5％，超氧自由基清除率提高了88.6％；与香菇-普通培养基质混合物相比，山药-香菇菌质粉的羟自由基清除率提高了21.9％，DPPH自由基清除率提高了130.8％，超氧自由基清除率提高了34.7％。由此说明，本发明制备的山药-香菇菌质粉比未发酵山药基质具有更好的抗氧化活性，比在普通培养基质上生长的香菇-普通培养基质混合物也具有更好的抗氧化活性。
实施例5：山药-黑木耳菌质粉的制备
(1)黑木耳菌块的制备方法：从保藏的黑木耳菌种试管斜面上取菌丝接种于PDA琼脂培养基上，在25活化培养8天，然后将PDA琼脂培养基进行切割，切分成边长为7～8mm的带菌丝菌块，得到黑木耳菌块；
(2)制备山药基质：取新鲜山药，清洗后切成边长为3～5mm的颗粒，经干燥，制成含水量为12％的山药颗粒；向山药颗粒中加入适量水，搅拌混合均匀后，得到含水量为60％的山药基质；
(3)接种、发酵：将山药基质装入培养瓶(料层厚度3cm)，采用高压蒸汽灭菌，灭菌温度121℃，灭菌时间30min；将灭菌后的山药基质冷却至室温，然后向山药基质中接种黑木耳菌块，接种量为每25g山药颗粒接种10块黑木耳菌块；接种后将培养瓶置于温度为28℃、相对湿度为75％的恒温恒湿培养条件下发酵22天，制得黑木耳菌丝和山药基质的混合物；
(4)将步骤(3)制得的黑木耳菌丝和山药基质的混合物进行冷冻干燥，然后经超微粉碎得到粒径为混合物粉料，将混合物粉料进行微波杀菌，即得山药-黑木耳菌质粉；其中，所述微波杀菌的微波功率为500W，杀菌时间为120s。
分别对接种前山药基质和制备的山药-黑木耳菌质粉进行羟自由基清除率、DPPH自由基清除率、超氧自由基清除率检测，分析山药基质和山药-黑木耳菌质粉的抗氧化性能。同时，为了进行对比，发明人在相同的条件下采用等质量的普通培养基质发酵培养黑木耳，制备得到黑木耳-普通培养基质混合物(黑木耳-普通培养基质混合物的制备方法中除采用的培养基质为普通培养基质外，其他条件均与山药-黑木耳菌质粉相同)，并对黑木耳-普通培养基质混合物的羟自由基清除率、DPPH自由基清除率、超氧自由基清除率检测；其中，所述普通培养基质的制备方法为：将玉米粒与麦麸按质量比5:1混合均匀，然后，向玉米粒与麦麸的混合物中加入适量水，搅拌混合均匀后，得到含水量为60％的固体培养基质，将固体培养基质装入培养瓶(料层厚度4cm)，在121℃高压蒸汽灭菌30min，即得普通培养基质。羟自由基清除率、DPPH自由基清除率、超氧自由基清除率的测定方法同实施例1，其检测结果见表5。
表5山药基质、黑木耳-普通培养基质混合物和山药-黑木耳菌质粉的抗氧化
性能检测
由表5可知，与山药基质(灭菌后)相比，山药-黑木耳菌质粉的羟自由基清除率提高了163.6％，DPPH自由基清除率提高了79.3％，超氧自由基清除率提高了71.1％；与黑木耳-普通培养基质混合物相比，山药-黑木耳菌质粉的羟自由基清除率提高了35.1％，DPPH自由基清除率提高了26.6％，超氧自由基清除率提高了48.9％。由此说明，本发明制备的山药-黑木耳菌质粉比未发酵山药具有更好的抗氧化活性，比在普通培养基质上生长的黑木耳-普通基质混合物也具有更好的抗氧化活性。
虽然上文中已经用一般性说明及具体实施方案对本发明作了详尽的描述，但在本发明基础上，可以对之作一些修改或改进，这对本领域技术人员而言是显而易见的。因此，在不偏离本发明精神的基础上所做的这些修改或改进，均属于本发明要求保护的范围。

Claims (9)

1.一种山药菌质粉的制备方法，其特征在于，包括以下步骤：
（1）向干燥的山药颗粒中加入水和营养基质，搅拌混合均匀，得到含水量为50%～65%的山药基质；
（2）将山药基质进行灭菌，灭菌后冷却至室温，然后向山药基质中接种食用真菌菌块；将接种后的山药基质在温度为25～28℃、相对湿度为75%～80%的条件下发酵7～30天，得到食用真菌菌丝体和山药基质的混合物；
（3）将步骤（2）制得的食用真菌菌丝体和山药基质的混合物进行冷冻干燥，然后经超微粉碎制成混合物粉料，将混合物粉料进行微波杀菌，即得山药菌质粉。
2.根据权利要求1所述的山药菌质粉的制备方法，其特征在于，所述山药颗粒的含水量为10%～15%。
3.根据权利要求1所述的山药菌质粉的制备方法，其特征在于，步骤（1）中所述营养基质的加入量为山药颗粒重量的0～20%。
4.根据权利要求1所述的山药菌质粉的制备方法，其特征在于，步骤（1）中所述营养基质为玉米粉、花生粉中的至少一种。
5.根据权利要求1所述的山药菌质粉的制备方法，其特征在于，步骤（2）中所述食用真菌为银耳、羊肚菌、香菇、黑木耳、猴头菌中的任意一种。
6.根据权利要求1所述的山药菌质粉的制备方法，其特征在于，步骤（2）中所述接种的接种量为每25g山药颗粒接种8～10块边长为7～8mm的菌块。
7.根据权利要求1所述的山药菌质粉的制备方法，其特征在于，步骤（2）中所述食用真菌菌块的制备方法为：从保藏的食用真菌试管斜面上取菌丝接种于PDA琼脂培养基上，在25～28℃活化培养7～15d，然后将PDA琼脂培养基进行切割，得到菌块。
8.根据权利要求1所述的山药菌质粉的制备方法，其特征在于，步骤（3）中所述微波杀菌的微波功率为500W，微波杀菌的时间为120s。
9.一种利用权利要求1～8任一所述的山药菌质粉的制备方法制备的山药菌质粉产品。
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