CN108949848B - 一种利用海洋细菌发酵制备海绵酸的方法 - Google Patents

一种利用海洋细菌发酵制备海绵酸的方法 Download PDF

Info

Publication number
CN108949848B
CN108949848B CN201810898503.3A CN201810898503A CN108949848B CN 108949848 B CN108949848 B CN 108949848B CN 201810898503 A CN201810898503 A CN 201810898503A CN 108949848 B CN108949848 B CN 108949848B
Authority
CN
China
Prior art keywords
fermentation
acid
preparing
seed
marine bacteria
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
CN201810898503.3A
Other languages
English (en)
Other versions
CN108949848A (zh
Inventor
杨桥
张晓玲
穆军
蒋志伟
张若男
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Zhejiang Ocean University ZJOU
Original Assignee
Zhejiang Ocean University ZJOU
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Zhejiang Ocean University ZJOU filed Critical Zhejiang Ocean University ZJOU
Priority to CN201810898503.3A priority Critical patent/CN108949848B/zh
Publication of CN108949848A publication Critical patent/CN108949848A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN108949848B publication Critical patent/CN108949848B/zh
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P17/00Preparation of heterocyclic carbon compounds with only O, N, S, Se or Te as ring hetero atoms
    • C12P17/18Preparation of heterocyclic carbon compounds with only O, N, S, Se or Te as ring hetero atoms containing at least two hetero rings condensed among themselves or condensed with a common carbocyclic ring system, e.g. rifamycin
    • C12P17/181Heterocyclic compounds containing oxygen atoms as the only ring heteroatoms in the condensed system, e.g. Salinomycin, Septamycin

Abstract

本发明涉及海洋微生物发酵领域,尤其涉及一种利用海洋细菌发酵制备腹泻性贝类毒素软海绵酸的方法。所述的方法包括以下步骤:(1)菌株活化;(2)种子液的准备;(3)发酵罐培养发酵;(4)发酵液的提取;(5)粗提物的纯化即得软海绵酸。与现有技术相比,本发明具有以下优点:(1)本发明采用海洋细菌发酵产生软海绵酸发酵周期短,仅为40~42小时,可节省能耗。(2)本发明采用海洋细菌发酵产生软海绵酸,产率较高,可达50~68μg/L。(3)本发明方法步骤简单、工作量小,周期较短,所用试剂与材料均为微生物发酵试验常用试剂,对人体无害,对环境友好,成本低,具有较高的市场前景与经济价值。

Description

一种利用海洋细菌发酵制备海绵酸的方法
技术领域
本发明涉及海洋微生物发酵领域,尤其涉及一种利用海洋细菌发酵制备腹泻性贝类毒素软海绵酸的方法。
背景技术
软海绵酸(Okadaic acid,OA)是腹泻性贝类毒素(diarrhetic shellfishpoisoning,DSP)导致腹泻的主要作用成分,属高毒性、脂溶性、热稳定聚醚类海洋生物毒素。OA是分布最广,发病率最高的海洋毒素之一。可对肠道、肝脏、神经、胎盘等多种器官与组织造成不可逆损伤,且中毒后无特效药救治。OA是细胞特异性蛋白磷酸酶PP1和PP2A强抑制剂,具有长期致畸性,是一种强肿瘤促进剂或原始致癌剂。其长期毒性效应对海洋生态环境、贝类水产品养殖及其出口贸易、人体生命健康构成严重威胁,是世界性研究热点。OA作为研究真核生物细胞调节极有价值的工具药物及引起DSP毒性的巨大威胁引起各国高度关注。目前,软海绵酸可通过涡鞭毛藻如利马原甲藻、蛎甲藻的规模培养及产物提取制备获得,但该方法不仅培养周期长、成本高,且需要特殊的藻培养设备。而与蛎甲藻相比,海洋细菌具有易培养、代谢调控相对简单等特性,因此,利用海洋细菌发酵产生及制备软海绵酸,是一种经济、高效的替代方法。
发明内容
本发明是为了克服现有技术中软海绵酸的获得方法中培养周期长、成本高,且需要特殊的藻培养设备的问题,提供了一种具有产量高、周期短、成本低的一种利用海洋细菌发酵制备海绵酸的方法。
本发明通过以下技术方案实现:
一种利用海洋细菌发酵制备海绵酸的方法,所述的海洋细菌为糖螺菌(Saccharospirillaceae sp.)LZ-5,收藏编号为CCTCC AB 2017232,购买自中国典型培养物保藏中心,所述的方法包括以下步骤:
(1)菌株活化:将糖螺菌(Saccharospirillaceae sp.)LZ-5接种于斜面培养基中,培养活化菌株;
(2)种子液的准备:挑取活化后的单菌落接种于种子罐中的液体种子培养基,扩培菌株待用;
(3)发酵罐培养发酵:将发酵培养基装入发酵罐中,将步骤(2)中的种子液接入发酵培养基中,发酵得到发酵液;
(4)发酵液的提取:将发酵液离心经板框过滤,获得菌体沉淀,用甲醇水溶液提取,合并提取液,旋蒸浓缩,得到粗提物;
(5)粗提物的纯化:将上述步骤得到的全部粗提物,经制备色谱洗脱,收集,旋转蒸发,获得白色粉末,即得软海绵酸。
本发明中的软海绵酸采用糖螺菌发酵法制备得到,其与现有技术相比,本发明的步骤较为简单,整体制备过程时间大大减少,有效的提高石房蛤毒素的制备效率与产量。因而能够有效的合成软海绵酸,为研究软海绵酸素的作用效果提供了有效的途径。
作为优选,所述的步骤(1)中的培养基配方如下:硫酸铵0.5~1.0g、蛋白胨0.2~0.8g、海藻酸钠0.3~0.8g、磷酸铁0.3~0.8g、琼脂2g,加天然海水至100ml,pH6.9~7.3。
本发明中的糖螺菌(Saccharospirillaceae sp.)LZ-5为海洋细菌,因此在培养过程中需加入一定量的天然海水,以促进其活性。
作为优选,所述的步骤(1)中培养温度为26~29℃,培养时间为1~3天。
作为优选,所述的步骤(2)中液体种子培养基配方如下:蛋白胨 5g,酵母膏 1.5g,磷酸二氢钾 0.05g,海水 1000 mL,pH 7.0~7.6。
作为优选,所述的步骤(2)中种子罐通气量55~70L/min,搅拌转速130~160转/min,28℃培养10~14小时,取培养物进行镜检,待种子液的OD600 达到0.6 ~0.8,光镜观察菌体生长良好,无杂菌污染时待用。
作为优选,所述的步骤(3)中发酵培养基的配方如下:蛋白胨 4.5g,酵母膏5.05g,葡萄糖 2.15g,硫酸铵 1.35g,磷酸二氢钾 0.25g,氯化钠 0.52g,氯化亚铁0.005g,脯氨酸 0.05g,海水1000 mL,pH 7.2~7.5。
作为优选,所述的步骤(3)中发酵培养基的装入量为发酵罐装液量体积百分比的35~50%,种子液按体积百分比2.5%~3.5% 的接种量接入发酵培养基中。
作为优选,所述的步骤(3)中发酵罐为平叶涡轮搅拌型发酵罐,发酵过程中保持罐压0.15~0.19MPa,搅拌速率为150-160 转/min,控制通气量90~135L/min,发酵温度为27~31℃,发酵时间为40-42小时。
作为优选,所述的步骤(4)中甲醇水溶液的浓度为80~95%,甲醇水溶液提取次数为3次。
作为优选,所述的海绵酸的产率为50~68 μg/L。
与现有技术相比,本发明具有以下优点:
(1)本发明采用海洋细菌发酵产生软海绵酸发酵周期短,仅为40~42小时,可节省能耗。
(2)本发明采用海洋细菌发酵产生软海绵酸,产率较高,可达50~68 μg/L。
(3)本发明方法步骤简单、工作量小,周期较短,所用试剂与材料均为微生物发酵试验常用试剂,对人体无害,对环境友好,成本低,具有较高的市场前景与经济价值。
具体实施方式
下面结合实施例,对本发明进一步说明,下述实施例是说明性的,不是限定性的,不能以下述实施例来限定本发明的保护范围。
实施例1
一种利用海洋细菌发酵制备海绵酸的方法,所述的海洋细菌为糖螺菌(Saccharospirillaceae sp.)LZ-5,收藏编号为CCTCC AB 2017232,购买自中国典型培养物保藏中心,其特征在于,所述的方法包括以下步骤:
(1)菌株活化:将糖螺菌(Saccharospirillaceae sp.)LZ-5接种于斜面培养基中,26℃下培养1天活化菌株,所述的步骤(1)中的培养基配方如下:硫酸铵0.5g、蛋白胨0.2g、海藻酸钠0.3g、磷酸铁0.3g、琼脂2g,加天然海水至100ml,pH6.9。
(2)种子液的准备:配制种子培养基1L,加入5L容积种子罐中,蒸汽加热,121℃灭菌30分钟,冷却至28℃,挑取活化后的单菌落,火焰法接种于种子罐中的液体种子培养基中,,种子罐通气量55L/min,搅拌转速130转/min,28℃培养10小时,取培养物进行镜检,待种子液的OD600 达到0.6,光镜观察菌体生长良好,无杂菌污染时待用,所述液体种子培养基配方如下:蛋白胨 5g,酵母膏 1.5g,磷酸二氢钾 0.05g,海水 1000 mL,pH 7.0。
(3)发酵罐培养发酵:配制发酵培养基,按照发酵罐装液量体积百分比的35%装入平叶涡轮搅拌型发酵罐,通蒸汽加热,121℃灭菌30分钟,降温至27℃,种子液按体积百分比2.5%的接种量接入发酵培养基中,发酵过程中保持罐压0.15MPa,搅拌速率为150 转/min,控制通气量90L/min,发酵温度为27℃,发酵时间为40小时,所述的发酵培养基的配方如下:蛋白胨 4.5g,酵母膏 5.05g,葡萄糖 2.15g,硫酸铵 1.35g,磷酸二氢钾 0.25g,氯化钠0.52g,氯化亚铁 0.005g,脯氨酸 0.05g,海水1000 mL,pH 7.2。
(4)发酵液的提取:发酵液板框过滤,获得菌体沉淀,用浓度为80~95%甲醇水溶液提取,将提取液通过0.45微米滤膜过滤,对沉淀进行二次提取,得到二次提取液;将二次澄清液经0.45微米滤膜过滤后,加入浓度为80%甲醇水溶液溶液进行三次提取,合并三次提取液,旋蒸浓缩,得到粗提取。
(5)粗提物的纯化:将上述步骤得到的全部粗提物,经制备色谱洗脱,收集,旋转蒸发,获得白色粉末,即得软海绵酸产率为50 .36μg/L。
实施例2
一种利用海洋细菌发酵制备海绵酸的方法,所述的海洋细菌为糖螺菌(Saccharospirillaceae sp.)LZ-5,收藏编号为CCTCC AB 2017232,购买自中国典型培养物保藏中心,其特征在于,所述的方法包括以下步骤:
(1)菌株活化:将糖螺菌(Saccharospirillaceae sp.)LZ-5接种于斜面培养基中,29℃下培养3天活化菌株,所述的步骤(1)中的培养基配方如下:硫酸铵1.0g、蛋白胨0.8g、海藻酸钠0.8g、磷酸铁0.8g、琼脂2g,加天然海水至100ml,pH7.3。
(2)种子液的准备:配制种子培养基1L,加入5L容积种子罐中,蒸汽加热,121℃灭菌30分钟,冷却至28℃,挑取活化后的单菌落,火焰法接种于种子罐中的液体种子培养基中,种子罐通气量70L/min,搅拌转速160转/min,28℃培养14小时,取培养物进行镜检,待种子液的OD600 达到0.8,光镜观察菌体生长良好,无杂菌污染时待用,所述液体种子培养基配方如下:蛋白胨 5g,酵母膏 1.5g,磷酸二氢钾 0.05g,海水 1000 mL,pH 7.6。
(3)发酵罐培养发酵:配制发酵培养基,按照发酵罐装液量体积百分比的35%装入平叶涡轮搅拌型发酵罐,通蒸汽加热,121℃灭菌30分钟,降温至27~31℃,种子液按体积百分比3.5%的接种量接入发酵培养基中,发酵过程中保持罐压0.19MPa,搅拌速率为160 转/min,控制通气量135L/min,发酵温度为31℃,发酵时间为42小时,所述的发酵培养基的配方如下:蛋白胨 4.5g,酵母膏 5.05g,葡萄糖 2.15g,硫酸铵 1.35g,磷酸二氢钾 0.25g,氯化钠 0.52g,氯化亚铁 0.005g,脯氨酸 0.05g,海水1000 mL,pH7.5。
(4)发酵液的提取:发酵液板框过滤,获得菌体沉淀,用浓度为95%甲醇水溶液提取,将提取液通过0.45微米滤膜过滤,对沉淀进行二次提取,得到二次提取液;将二次澄清液经0.45微米滤膜过滤后,加入浓度为95%甲醇水溶液溶液进行三次提取,合并三次提取液,旋蒸浓缩,得到粗提取。
(5)粗提物的纯化:将上述步骤得到的全部粗提物,经制备色谱洗脱,收集,旋转蒸发,获得白色粉末,即得软海绵酸产率为68 μg/L。
实施例3
一种利用海洋细菌发酵制备海绵酸的方法,所述的海洋细菌为糖螺菌(Saccharospirillaceae sp.)LZ-5,收藏编号为CCTCC AB 2017232,购买自中国典型培养物保藏中心,其特征在于,所述的方法包括以下步骤:
(1)菌株活化:将糖螺菌(Saccharospirillaceae sp.)LZ-5接种于斜面培养基中,26~29℃下培养2天活化菌株,所述的步骤(1)中的培养基配方如下:硫酸铵0.8g、蛋白胨0.5g、海藻酸钠0.6g、磷酸铁0.4g、琼脂2g,加天然海水至100ml,pH7.1。
(2)种子液的准备:配制种子培养基1L,加入5L容积种子罐中,蒸汽加热,121℃灭菌30分钟,冷却至28℃,挑取活化后的单菌落,火焰法接种于种子罐中的液体种子培养基中,,种子罐通气量60L/min,搅拌转速150转/min,28℃培养12小时,取培养物进行镜检,待种子液的OD600 达到0.8,光镜观察菌体生长良好,无杂菌污染时待用,所述液体种子培养基配方如下:蛋白胨 5g,酵母膏 1.5g,磷酸二氢钾 0.05g,海水 1000 mL,pH 7.4。
(3)发酵罐培养发酵:配制发酵培养基,按照发酵罐装液量体积百分比的35%装入平叶涡轮搅拌型发酵罐,通蒸汽加热,121℃灭菌30分钟,降温至28℃,种子液按体积百分比3%的接种量接入发酵培养基中,发酵过程中保持罐压0.16MPa,搅拌速率为155 转/min,控制通气量110L/min,发酵温度为28℃,发酵时间为41小时,所述的发酵培养基的配方如下:蛋白胨 4.5g,酵母膏 5.05g,葡萄糖 2.15g,硫酸铵 1.35g,磷酸二氢钾 0.25g,氯化钠0.52g,氯化亚铁 0.005g,脯氨酸 0.05g,海水1000 mL,pH 7.4。
(4)发酵液的提取:发酵液板框过滤,获得菌体沉淀,用浓度为90%甲醇水溶液提取,将提取液通过0.45微米滤膜过滤,对沉淀进行二次提取,得到二次提取液;将二次澄清液经0.45微米滤膜过滤后,加入浓度为90%甲醇水溶液溶液进行三次提取,合并三次提取液,旋蒸浓缩,得到粗提取。
(5)粗提物的纯化:将上述步骤得到的全部粗提物,经制备色谱洗脱,收集,旋转蒸发,获得白色粉末,即得软海绵酸产率为57.68μg/L。
实施例4
一种利用海洋细菌发酵制备海绵酸的方法,所述的海洋细菌为糖螺菌(Saccharospirillaceae sp.)LZ-5,收藏编号为CCTCC AB 2017232,购买自中国典型培养物保藏中心,其特征在于,所述的方法包括以下步骤:
(1)菌株活化:将糖螺菌(Saccharospirillaceae sp.)LZ-5接种于斜面培养基中,28℃下培养1~3天活化菌株,所述的步骤(1)中的培养基配方如下:硫酸铵0.6g、蛋白胨0.7g、海藻酸钠0.7g、磷酸铁0.7g、琼脂2g,加天然海水至100ml,pH7.1。
(2)种子液的准备:配制种子培养基1L,加入5L容积种子罐中,蒸汽加热,121℃灭菌30分钟,冷却至28℃,挑取活化后的单菌落,火焰法接种于种子罐中的液体种子培养基中,,种子罐通气量65L/min,搅拌转速155转/min,28℃培养12小时,取培养物进行镜检,待种子液的OD600 达到0.6 ~0.8,光镜观察菌体生长良好,无杂菌污染时待用,所述液体种子培养基配方如下:蛋白胨 5g,酵母膏 1.5g,磷酸二氢钾 0.05g,海水 1000 mL,pH 7.5。
(3)发酵罐培养发酵:配制发酵培养基,按照发酵罐装液量体积百分比的35%装入平叶涡轮搅拌型发酵罐,通蒸汽加热,121℃灭菌30分钟,降温至29℃,种子液按体积百分比2.5%的接种量接入发酵培养基中,发酵过程中保持罐压0.18MPa,搅拌速率为155 转/min,控制通气量120L/min,发酵温度为29℃,发酵时间为41小时,所述的发酵培养基的配方如下:蛋白胨 4.5g,酵母膏 5.05g,葡萄糖 2.15g,硫酸铵 1.35g,磷酸二氢钾 0.25g,氯化钠0.52g,氯化亚铁 0.005g,脯氨酸 0.05g,海水1000 mL,pH7.3。
(4)发酵液的提取:发酵液板框过滤,获得菌体沉淀,用浓度为90%甲醇水溶液提取,将提取液通过0.45微米滤膜过滤,对沉淀进行二次提取,得到二次提取液;将二次澄清液经0.45微米滤膜过滤后,加入浓度为90%甲醇水溶液溶液进行三次提取,合并三次提取液,旋蒸浓缩,得到粗提取。
(5)粗提物的纯化:将上述步骤得到的全部粗提物,经制备色谱洗脱,收集,旋转蒸发,获得白色粉末,即得软海绵酸产率为59.62 μg/L。
实施例5
一种利用海洋细菌发酵制备海绵酸的方法,所述的海洋细菌为糖螺菌(Saccharospirillaceae sp.)LZ-5,收藏编号为CCTCC AB 2017232,购买自中国典型培养物保藏中心,其特征在于,所述的方法包括以下步骤:
(1)菌株活化:将糖螺菌(Saccharospirillaceae sp.)LZ-5接种于斜面培养基中,29℃下培养1天活化菌株,所述的步骤(1)中的培养基配方如下:硫酸铵1.0g、蛋白胨0.2g、海藻酸钠0.3g、磷酸铁0.8g、琼脂2g,加天然海水至100ml,pH7.2。
(2)种子液的准备:配制种子培养基1L,加入5L容积种子罐中,蒸汽加热,121℃灭菌30分钟,冷却至28℃,挑取活化后的单菌落,火焰法接种于种子罐中的液体种子培养基中,,种子罐通气量65L/min,搅拌转速155转/min,28℃培养13小时,取培养物进行镜检,待种子液的OD600 达到0.8,光镜观察菌体生长良好,无杂菌污染时待用,所述液体种子培养基配方如下:蛋白胨 5g,酵母膏 1.5g,磷酸二氢钾 0.05g,海水 1000 mL,pH 7.5。
(3)发酵罐培养发酵:配制发酵培养基,按照发酵罐装液量体积百分比的35%装入平叶涡轮搅拌型发酵罐,通蒸汽加热,121℃灭菌30分钟,降温至30℃,种子液按体积百分比2.5%的接种量接入发酵培养基中,发酵过程中保持罐压0.16MPa,搅拌速率为155 转/min,控制通气量120L/min,发酵温度为30℃,发酵时间为42小时,所述的发酵培养基的配方如下:蛋白胨 4.5g,酵母膏 5.05g,葡萄糖 2.15g,硫酸铵 1.35g,磷酸二氢钾 0.25g,氯化钠0.52g,氯化亚铁 0.005g,脯氨酸 0.05g,海水1000 mL,pH 7.4。
(4)发酵液的提取:发酵液板框过滤,获得菌体沉淀,用浓度为90%甲醇水溶液提取,将提取液通过0.45微米滤膜过滤,对沉淀进行二次提取,得到二次提取液;将二次澄清液经0.45微米滤膜过滤后,加入浓度为90%甲醇水溶液溶液进行三次提取,合并三次提取液,旋蒸浓缩,得到粗提取。
(5)粗提物的纯化:将上述步骤得到的全部粗提物,经制备色谱洗脱,收集,旋转蒸发,获得白色粉末,即得软海绵酸产率为60.28μg/L。

Claims (7)

1.一种利用海洋细菌发酵制备海绵酸的方法,所述的海洋细菌为糖螺菌(Saccharospirillaceae sp.)LZ-5已于2017年10月18日保藏于中国典型培养物中心CCTCC,其保藏编号为:CCTCC AB 2017232,其特征在于,所述的方法包括以下步骤:
(1)菌株活化:将糖螺菌(Saccharospirillaceae sp.)LZ-5接种于斜面培养基中,培养活化菌株;培养基配方如下:硫酸铵0.5~1.0g、蛋白胨0.2~0.8g、海藻酸钠0.3~0.8g、磷酸铁0.3~0.8g、琼脂2g,加天然海水至100ml,pH6.9~7.3;
(2)种子液的准备:挑取活化后的单菌落接种于种子罐中的液体种子培养基,扩培菌株待用;液体种子培养基配方如下:蛋白胨 5g,酵母膏 1.5g,磷酸二氢钾 0.05g,海水 1000mL,pH 7.0~7.6;
(3)发酵罐培养发酵:将发酵培养基装入发酵罐中,将步骤(2)中的种子液接入发酵培养基中,发酵得到发酵液;发酵培养基的配方如下:蛋白胨4.5g,酵母膏5.05g,葡萄糖2.15g,硫酸铵1.35g,磷酸二氢钾0.25g,氯化钠0.52g,氯化亚铁0.005g,脯氨酸 0.05g,海水1000 mL,pH 7.2~7.5;
(4)发酵液的提取:将发酵液离心经板框过滤,获得菌体沉淀,用甲醇水溶液提取,合并提取液,旋蒸浓缩,得到粗提物;
(5)粗提物的纯化:将上述步骤得到的全部粗提物,经制备色谱洗脱,收集,旋转蒸发,获得白色粉末,即得软海绵酸。
2.根据权利要求1所述的一种利用海洋细菌发酵制备海绵酸的方法,其特征在于,所述的步骤(1)中培养温度为26~29℃,培养时间为1~3天。
3.根据权利要求1所述的一种利用海洋细菌发酵制备海绵酸的方法,其特征在于,所述的步骤(2)中种子罐通气量55~70L/min,搅拌转速130~160转/min,28℃培养10~14小时,取培养物进行镜检,待种子液的OD600 达到0.6 ~0.8,光镜观察菌体生长良好,无杂菌污染时待用。
4.根据权利要求1所述的一种利用海洋细菌发酵制备海绵酸的方法,其特征在于,所述的步骤(3)中发酵培养基的装入量为发酵罐装液量体积百分比的35~50%,种子液按体积百分比2.5%~3.5% 的接种量接入发酵培养基中。
5.根据权利要求1所述的一种利用海洋细菌发酵制备海绵酸的方法,其特征在于,所述的步骤(3)中发酵罐为平叶涡轮搅拌型发酵罐,发酵过程中保持罐压0.15~0.19MPa,搅拌速率为150-160 转/min,控制通气量90~135L/min,发酵温度为27~31℃,发酵时间为40-42小时。
6.根据权利要求1所述的一种利用海洋细菌发酵制备海绵酸的方法,其特征在于,所述的步骤(4)中甲醇水溶液的浓度为80~95%,甲醇水溶液提取次数为3次。
7.根据权利要求1所述的一种利用海洋细菌发酵制备海绵酸的方法,其特征在于,所述的海绵酸的产率为50~68 μg/L。
CN201810898503.3A 2018-08-08 2018-08-08 一种利用海洋细菌发酵制备海绵酸的方法 Active CN108949848B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201810898503.3A CN108949848B (zh) 2018-08-08 2018-08-08 一种利用海洋细菌发酵制备海绵酸的方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201810898503.3A CN108949848B (zh) 2018-08-08 2018-08-08 一种利用海洋细菌发酵制备海绵酸的方法

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN108949848A CN108949848A (zh) 2018-12-07
CN108949848B true CN108949848B (zh) 2021-08-20

Family

ID=64467789

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201810898503.3A Active CN108949848B (zh) 2018-08-08 2018-08-08 一种利用海洋细菌发酵制备海绵酸的方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN108949848B (zh)

Citations (15)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS5711986A (en) * 1980-06-25 1982-01-21 Fujisawa Pharmaceut Co Ltd Okadaic acid, its salt, and its ester
US6770490B1 (en) * 1998-07-15 2004-08-03 Oceanit Test Systems, Inc. Membrane immunobead assay for the detection of ciguatoxin and related polyether marine toxins
CN1979169A (zh) * 2005-12-05 2007-06-13 曹际娟 腹泻性贝毒竞争酶联免疫定量检测试剂盒及其制备和应用
CN101598732A (zh) * 2009-07-21 2009-12-09 上海海洋大学 一种赤潮藻毒素软海绵酸oa的elisa检测方法
CN101825630A (zh) * 2010-05-23 2010-09-08 青岛科技大学 一种检测腹泻性贝毒的方法
CN101975768A (zh) * 2010-08-27 2011-02-16 深圳市疾病预防控制中心 腹泻性贝类毒素检测方法
CN102213702A (zh) * 2011-05-18 2011-10-12 上海海洋大学 液质联用检测贝肉中腹泻性贝毒的方法
CN102584861A (zh) * 2011-09-28 2012-07-18 王秋艳 腹泻性贝类毒素标准样品及其制备方法和应用
CN102936252A (zh) * 2012-10-22 2013-02-20 中山大学 一类二倍半萜类化合物及其制备方法与应用
EP2770058A1 (en) * 2013-02-26 2014-08-27 Université de Perpignan Ligand and method for detection of okadaic acid
CN105561958A (zh) * 2016-03-01 2016-05-11 中国水产科学研究院黄海水产研究所 一种用于贝类毒素富集纯化的离子液体键合硅胶及其制备方法
CN105785015A (zh) * 2016-04-25 2016-07-20 浙江大学 一种快速高灵敏检测大田软海绵酸毒素的试剂盒及方法
CN106153783A (zh) * 2016-09-28 2016-11-23 山东出入境检验检疫局检验检疫技术中心 腹泻性贝毒毒素的液相色谱‑串联质谱检测方法
RU2666247C1 (ru) * 2017-11-21 2018-09-06 Федеральное Государственное Бюджетное Учреждение "Федеральный Исследовательский Центр Питания, Биотехнологии И Безопасности Пищи" Способ количественного определения окадаиковой кислоты в морепродуктах
WO2019174560A1 (zh) * 2018-03-14 2019-09-19 必康生技(香港)有限公司 用于生物流体净化的组合物

Family Cites Families (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR101055594B1 (ko) * 2008-09-25 2011-08-09 군산대학교산학협력단 디노피시스 아쿠미나타의 대량배양 및 이로부터 펙테노톡신-2의 분리 방법

Patent Citations (15)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS5711986A (en) * 1980-06-25 1982-01-21 Fujisawa Pharmaceut Co Ltd Okadaic acid, its salt, and its ester
US6770490B1 (en) * 1998-07-15 2004-08-03 Oceanit Test Systems, Inc. Membrane immunobead assay for the detection of ciguatoxin and related polyether marine toxins
CN1979169A (zh) * 2005-12-05 2007-06-13 曹际娟 腹泻性贝毒竞争酶联免疫定量检测试剂盒及其制备和应用
CN101598732A (zh) * 2009-07-21 2009-12-09 上海海洋大学 一种赤潮藻毒素软海绵酸oa的elisa检测方法
CN101825630A (zh) * 2010-05-23 2010-09-08 青岛科技大学 一种检测腹泻性贝毒的方法
CN101975768A (zh) * 2010-08-27 2011-02-16 深圳市疾病预防控制中心 腹泻性贝类毒素检测方法
CN102213702A (zh) * 2011-05-18 2011-10-12 上海海洋大学 液质联用检测贝肉中腹泻性贝毒的方法
CN102584861A (zh) * 2011-09-28 2012-07-18 王秋艳 腹泻性贝类毒素标准样品及其制备方法和应用
CN102936252A (zh) * 2012-10-22 2013-02-20 中山大学 一类二倍半萜类化合物及其制备方法与应用
EP2770058A1 (en) * 2013-02-26 2014-08-27 Université de Perpignan Ligand and method for detection of okadaic acid
CN105561958A (zh) * 2016-03-01 2016-05-11 中国水产科学研究院黄海水产研究所 一种用于贝类毒素富集纯化的离子液体键合硅胶及其制备方法
CN105785015A (zh) * 2016-04-25 2016-07-20 浙江大学 一种快速高灵敏检测大田软海绵酸毒素的试剂盒及方法
CN106153783A (zh) * 2016-09-28 2016-11-23 山东出入境检验检疫局检验检疫技术中心 腹泻性贝毒毒素的液相色谱‑串联质谱检测方法
RU2666247C1 (ru) * 2017-11-21 2018-09-06 Федеральное Государственное Бюджетное Учреждение "Федеральный Исследовательский Центр Питания, Биотехнологии И Безопасности Пищи" Способ количественного определения окадаиковой кислоты в морепродуктах
WO2019174560A1 (zh) * 2018-03-14 2019-09-19 必康生技(香港)有限公司 用于生物流体净化的组合物

Non-Patent Citations (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Comparison of two screening methods in detection of shellfish poisons;Liu Ying等;《Journal of Food Safety and Quality》;20121231;第495-501页 *
Quantification of diarrhetic shellfish toxins and identification of novel protein phosphatase inhibitors in marine phytoplankton and mussels;Luu, Hue Anh等;《Toxicon》;19931231;第75-83页 *
Saccharospirillum alexandrii sp. nov., isolated from the toxigenic marine dinoflagellate Alexandrium catenella LZT09;Qiao Yang等;《Int. J. Syst. Evol. Microbiol.》;20191031;第820-826页 *
Saccharospirillum correiae sp. nov., an endophytic bacterium isolated from the halophyte Halimione portulacoides;Catia Fidalgo等;《Int. J. Syst. Evol. Microbiol.》;20170601;第2026-2030页 *
The Toxic Dinoflagellate Prorocentrum lima and its Associated Bacteria;Marie-Odile Soyer-Gobillard等;《Europ. J. Protistol》;19951215;第383-388页 *
东海产麻痹性贝毒链状亚历山大藻共附生菌群多样性研究;唐莹莹等;《海洋渔业》;20181130;第720-727页 *
冈田软海绵酸研究进展;胡章等;《中国海洋药物》;20010228;第46-51页 *

Also Published As

Publication number Publication date
CN108949848A (zh) 2018-12-07

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN111154673B (zh) 一株灵菌红素产生菌及其生产方法与应用
CN104845896B (zh) 生产威兰胶的菌株及方法
CN101284956B (zh) 一种海洋微生物防污涂料的制备方法
CN103333845A (zh) 一种绿针假单胞菌及其发酵培养方法
CN102329849A (zh) 微生物共栖培养发酵生产河豚毒素的方法
CN113943685A (zh) 一种污水专用枯草芽孢杆菌菌剂的培养方法及其应用
CN108949848B (zh) 一种利用海洋细菌发酵制备海绵酸的方法
CN100475971C (zh) 一种深海适冷微生物胞外多糖的制备方法
CN110951625B (zh) 一种溶磷青霉psf及其应用
CN109321616B (zh) 一种井冈霉素发酵培养基及利用该培养基发酵井冈霉素的方法
CN101914468A (zh) 固氮巨大芽孢杆菌株dl7及其应用
CN102887743A (zh) 以藻泥为添加剂生产香蕉专用生物有机肥的工艺及其产品
CN116396902A (zh) 一株具有溶藻能力的杀鱼假交替单胞菌及其对赤潮异弯藻赤潮的应用
SU517265A3 (ru) Способ получени азотсодержащего антибиотика
CN101935320B (zh) 一种强杀藻活性化合物及其制备方法
CN108949867B (zh) 一种利用海洋细菌发酵制备海葵毒素的方法
CN114162978A (zh) 土生隐球酵母在废水处理中的用途
CN109251946B (zh) 一种利用海洋硅藻共栖细菌发酵制备遗忘性贝毒软骨藻酸的方法
CN108949847B (zh) 一种利用海洋细菌发酵制备膝沟藻毒素的方法
CN116515647B (zh) 一种溜曲霉及其在制备单宁酶和/或降解单宁中的应用
CN110521738A (zh) 一种防治辣椒疫霉的复合生防制剂及其防治方法
CN111363692A (zh) 一种复合菌剂及其发酵产物的应用
CN114208586B (zh) 一种新古尼异虫草子实体及人工栽培的生产方法
CN116622560B (zh) 一株含细菌叶绿素且产胞外多糖的赤杆菌scsio17413及其在岛礁结皮中的应用
CN103911411A (zh) 含天蚕素AD和BuforinⅡ的抗菌肽复合液的生产及纯化方法

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
GR01 Patent grant
GR01 Patent grant