发明内容
本发明涉及一种重组人SOD-生长因子融合蛋白、其制备方法及其应用。本发明还涉及编码所述融合蛋白的核苷酸序列,携带该核苷酸序列的重组细胞,例如,细菌、酵母、动物细胞、植物细胞。
本发明的重组人SOD生长因子融合蛋白的半衰期较单独的SOD长,活性优于单独的SOD,不仅能迅速清除创伤部位的大量自由基,同时促进创伤部位血管和神经的修复再生,提高免疫,加速止血、愈合,活性保存时间长,不易丧失。
本发明获得的重组人SOD-生长因子融合蛋白纯度达95%以上,兼具人SOD和人生长因子的特性,复配以适当辅料后,可进一步制备成冻干粉剂、纳米微球、纳米脂质体、水剂、凝胶等半固体制剂,作为活性添加剂应用于组织工程、药学以及美容护肤领域。该重组人SOD-生长因子融合蛋白具有人源化,免疫原性低,不易发生过敏反应的突出优点。
在第一方面,本发明提供一种重组人SOD-生长因子融合蛋白,所述融合蛋白由第一区和第二区组成,其中第一区与人SOD至少85%序列同源,第二区与人生长因子至少85%序列同源。并且所述第一区与第二区之间设有连接肽,所述连接肽的通式是(GGGGS)n,其中n=1~5,优选n=3。
优选地,第一区与人SOD至少90%、更优选至少95%、甚至至少99%序列同源,第二区与人生长因子至少90%、更优选至少95%、甚至至少99%序列同源。
更优选地,第一区为人SOD,第二区为人生长因子。
并且,在不改变融合蛋白特性的前提下,进行个别氨基酸残基的取代、缺失或加入所得到的融合蛋白的衍生物也在本发明的范围内。
在优选的实施方案中,所述重组人SOD-生长因子融合蛋白由第一区和第二区组成,其中第一区为人SOD,第二区为人生长因子,并且所述第一区与第二区之间的连接肽为(GGGGS)n,其中n=1~5,优选n=3。
在本发明的某些实施方案中,提供了一种重组人SOD-生长因子融合蛋白,其特征在于该融合蛋白可以在不改变融合蛋白特性的前提下,进行个别氨基酸残基的取代、缺失或加入。
在本发明的某些实施方案中,提供了一种重组人SOD-生长因子融合蛋白,其特征在于所述与人SOD同源的第一区位于融合蛋白的N-末端,与人生长因子同源的第二区位于融合蛋白的C-末端,第一区和第二区之间的连接肽为(GGGGS)n,其中n=1~5,优选n=3。
根据本发明的某些实施方案中的一个方面,提供的上述任何一项所述的融合蛋白,其特征在于所述的人生长因子选自aFGF、bFGF、EGF或NGF。在优选的实施方案中,所述人生长因子为bFGF。
在更优选的实施方案中,在所述重组人SOD-生长因子融合蛋白中,第一区为人SOD,第二区为人aFGF(人酸性成纤维生长因子)。其中第一区位于融合蛋白的N-末端,第二区位于融合蛋白的C-末端,二者通过连接肽(GGGGS)n连接,其中n为3。
具体地,所述重组人SOD-生长因子融合蛋白的氨基酸序列为SEQ ID No.1所示。
在第二方面,本发明提供编码本发明第一方面的重组人SOD-生长因子融合蛋白的核苷酸序列。
优选地,当第一区为人SOD,第二区为人aFGF,并且其中第一区位于融合蛋白的N-末端,第二区位于融合蛋白的C-末端,第一区和第二区通过连接肽(GGGGS)3连接,所述编码核苷酸序列为SEQ ID No.2或3。其中SEQ ID No.2具有大肠杆菌密码子偏好性,SEQ IDNo.3具有酵母密码子偏好性,分别适合在大肠杆菌和酵母细胞中表达所述融合蛋白。
在第三方面,本发明提供了一种包含重组人SOD-生长因子融合蛋白的编码核苷酸序列的重组细胞,所述细胞可以选自细菌、酵母、动物细胞或植物细胞,其中优选酵母或大肠杆菌细胞,酵母细胞优选是毕赤酵母细胞。
在第四方面,本发明提供所述重组人SOD-生长因子融合蛋白的应用。本发明的融合蛋白复配以适当辅料后,可进一步制备成冻干粉剂、纳米微球、纳米脂质体、水剂、凝胶等半固体制剂,作为活性添加剂应用于组织工程、药学以及美容护肤领域。
在第五方面,本发明提供一种活性添加剂,其包含本发明所述的重组人SOD-生长因子融合蛋白。所述添加剂中还可以复配以适当的辅料,应用于组织工程、药学以及美容护肤领域。并且,所述添加剂可以与适当的辅料进一步制备成冻干粉剂、纳米微球、纳米脂质体、水剂、凝胶等半固体制剂。
具体实施方式
下面参照具体的实施例进一步描述本发明,但是本领域技术人员应该理解,本发明并不限于这些具体的实施例。
实施例1重组人SOD-haFGF融合蛋白的在大肠杆菌系统的构建、表达和纯化
其中所述重组人SOD-haFGF融合蛋白的氨基酸序列为SEQ ID No.1。其中haFGF表示人酸性成纤维蛋白。
相应地,该融合蛋白的大肠杆菌密码子偏好性的编码核苷酸序列为SEQ ID No.2。
1、构建融合基因
根据Genebank公布的基因序列,合成hSOD1和haFGF基因序列(由华大基因公司全基因合成)。分别设计引物F1,R1,F2和R2,采用PCR分别扩增出hSOD1(引物F1和R1,引物序列如下)和haFGF(引物F2和R2,引物序列如下)的基因片段。利用重叠延伸法,得到融合片段模板,以此模板进行PCR扩增融合片段hSOD1-haFGF-1(SEQ ID No.2)。用于扩增hSOD1的引物(从5’到3’方向):
F1:CGCGGATCCATGCATCATCATCATCATCAC(下划线为BamHI位点)
R1:CGATGGTGGTGGTGGCTGCGCAATGCCAATCACGCC
用于扩增haFGF的引物:
F2:GGTGGTGGTGGTAGCGCCAACTATAAAAAACCT
R2:CCGGAATTCTTAATCGCTGCTAACAGG(下划线为EcoRI位点)
将构建成功的融合片段hSOD1-haFGF-1用EcoRI和BamHI酶切后与经相同酶酶切的pET28a质粒(购自Invitrogen公司,由实验室保存)连接,构建重组质粒,名称为:pET28a-hSOD1-haFGF,经酶切及测序检测,序列正确。
2、融合基因在大肠杆菌DE3中的表达
将含所构建的融合基因pET28a-hSOD1-haFGF的质粒转化E.coli DE3。方法如下:
(1)挑取E.coli DE3单菌落,接种于3~5ml LB液体培养中,37℃振荡培养8h左右,直至对数生长期。将该菌悬液以1∶100~1∶50(v/v)转接于50ml LB液体培养基中,37℃扩大培养10h;
(2)取2ml培养液转入2ml离心管中,在冰上冷却20-30min,于4℃,4000r/min离心10min;
(3)倒净上清培养液,用1ml冰冷的0.1mol/L CaCl2溶液轻轻悬浮细胞,冰浴;
(4)0~4℃,4000r/min离心10min;
(5)弃去上清液,加入500μl冰冷的0.1mol/L CaCl2溶液,小心悬浮细胞。0~4℃,4000r/min离心10min;
(6)弃去上清液,加入100μl冰冷的0.1mol/L CaCl2溶液,小心悬浮细胞,冰上放置片刻后,即制成了感受态细胞悬液;
(7)分别取3个100μl感受态细胞悬液,加入10μl重组质粒DNA(体积不超过10μl)+100μl感受态细胞,轻轻摇匀冰上放置30min,立即于42℃水浴中保温1.5min,然后迅速冰上冷却2min;
(8)立即向上述管中分别加入0.9ml LB液体培养基,摇匀后于37℃振荡培养约45~60min,使受体菌恢复正常生长状态,并使转化体表达卡那霉素抗性基因产物;
(9)取上述液体涂布于添加卡那霉素LB平板培养12h;
(10)挑取划线分离后的转化子于30ml添加卡那霉素的LB培养基中,37℃培养10h,取1ml转接至50ml LB培养基中,37℃培养约8h,加入IPTG至终浓度为1mmol/L,诱导5h后收集菌体,破壁后收集上清,利用蛋白质印迹(western-blot)进行检测。
3、融合蛋白的发酵、纯化
将含有表达质粒pET28a-hSOD1-haFGF的E.coli于37℃培养至对数期,加入IPTG至终浓度1mmol/L,诱导4h。4000rpm/min离心20min收集菌体,用无菌20mmol咪唑/0.5molNaCl pH 7.8,重悬沉淀,高压均质破碎大肠杆菌,4℃,20000rpm/min离心20min,取上清;上样至用20mmol咪唑/0.5mol NaCl pH7.8预平衡的Ni柱,继续用20mmol咪唑/0.5mol NaClpH7.8洗杂,直至基线走平;换50mmol咪唑/0.5mol NaCl pH4.0洗去杂质直至基线走平;改为50mmol咪唑/0.5mol NaCl pH 7.8洗去杂质直至基线走平;再用300mmol咪唑/0.5molNaCl pH 7.8的缓冲液将目的蛋白洗脱。含目的蛋白洗脱液经1∶1稀释后加入0.5%烷基葡萄糖苷上样至用0.3mol NaCl/0.5%烷基葡萄糖苷pH 7.8预平衡的G25凝胶柱进行脱盐。
纯化得到的蛋白经SDS-APGE电泳,考马斯亮蓝染色显示,与分子量Marker对照,在Mr34000附近有一条目的条带(图3),制得的hSOD1-haFGF融合蛋白的分子量约为32KDa,纯度达到90%以上。
实施例2重组人SOD-haFGF融合蛋白在毕赤酵母的构建、表达和纯化
其中所述重组人SOD-haFGF融合蛋白的氨基酸序列为SEQ ID No.1,其酵母密码子偏好性的编码核苷酸序列为SEQ ID No.3。
1、构建融合基因
根据Genebank公布的基因序列,结合酵母密码子偏好性重新合成hSOD1和haFGF基因序列。分别设计引物hSOD-F,hSOD1-haFGF-R,hSOD1-haFGF-F和haFGF-R(引物序列见下),采用PCR分别扩增出hSOD1(引物为hSOD-F和hSOD1-haFGF-R)和haFGF(引物为hSOD1-haFGF-F和haFGF-R)的基因片段。
引物序列(从5’到3’方向):
hSOD1-F:TTCCGGAATTCCATCATCATCATCATCAC(下划线表示EcoRI位点)
hSOD1-haFGF-R:GTAGTTAGCCTGCGCAATGCCAATCACG
hSOD1-haFGF-F:ATTGCGCAGGCTAACTACAAGAAG(下划线表示NotI位点)
haFGF-R:TAATATTAGCGGCCGCTTAATCAGAAGAAACTGG
将上述得到的hSOD1和haFGF片段等量混合,互为模板进行PCR,得到融合片段模板hSOD1-haFGF,以hSOD1-haFGF为模板进行PCR扩增酵母密码子偏好的融合片段hSOD1-haFGF-2(SEQ ID No.3)。
2、重组表达质粒的构建
将构建成功的酵母密码子偏好的融合片段hSOD1-haFGF-2用EcoRI和NotI酶切后连接到用相同的酶酶切的pPIC9k质粒(质粒购自Invitrogen公司,由实验室保存)上,得到的重组质粒为:pPIC9k-hSOD1-haFGF,经酶切及测序检测,序列正确。
3、融合基因在毕赤酵母中的表达
将含所构建的融合基因pPIC9k-hSOD1-haFGF的质粒转化毕赤酵母GS115,用作转化的毕赤酵母还可以是KM71,X33等(GS115、KM71、X33酵母菌株购自Invitrogen公司,由实验室保存)。
挑取转化子于MD平板上进行多次划线分离,挑取单菌落于15ml YPD培养基中,30℃培养10h,即为种子液。取1ml种子液转接至30ml YPG培养基中,30℃培养约16h后收集菌体,重悬于pH 5.5无甘油的BSM培养基中,添加0.5%甲醇(均已添加PTM1培养基)进行诱导,每隔12h添加0.5%甲醇,离心收集取上清进行SDS-PAGE,分析证实,上述融合基因在毕赤酵母GS115中获得高效表达。
MD培养基成分:1.34%YNB,0.004%生物素,2%葡萄糖;
YPD培养基成分:2%蛋白胨,1%酵母提取物,2%葡萄糖;
YPG培养基成分:2%蛋白胨,1%酵母提取物,2%甘油;
BSM培养基成分:26.7mL/L 85%磷酸,0.93g/L二水硫酸钙,18.2g/L硫酸钾,14.9g/L七水合硫酸镁,4.13g/L氢氧化钾,40g/L甘油。
PMT1培养基成分:CuSO4·5H2O 6.0g/L(五水硫酸铜),0.088g/L碘化钾,MnSO4·1H2O 3.0g/L(一水合硫酸锰),0.2g/L二水钼酸钠,0.02g/L硼酸,0.5g/L六水氯化钴,20.0g/L氯化锌,65.0g/L七水合硫酸亚铁,0.2g/L生物素,5.0ml浓H2SO4。
4、融合蛋白的纯化
发酵结束后,离心收集上清,经微滤(0.45μm)和超滤(MWCO=30kDa)浓缩后,上Ni柱,脱盐后,收集峰,得到最终纯化产品。融合蛋白的SDS-PAGE电泳图见图6,分子量约为32KDa。
实施例3重组人hSOD1-haFGF的活性测定
1、活性测定原理
超氧化物歧化酶(SOD)是一种重要的抗氧化酶,它可以催化超氧阴离子(O2-)的歧化反应,生成过氧化氢和单质氧,WST-1法是利用水溶性四唑盐WST-1(2-(4-碘苯基)-3-(4-硝基苯基)-5-(2,4-二磺酸苯基)-2氢-四唑盐,二钠盐)能与超氧阴离子(O2-)反应生成一种水溶性的染料,WST-1被超氧阴离子还原的比率与黄嘌呤氧化酶的活性线性相关,并且会被SOD所抑制(见图8,即粉色区域SOD反应优先发生,SOD反应完后蓝色区域WST-1反应才能发生),因此,SOD或SOD类似物的IC50(50%的抑制浓度)就能用比色法来测定。
2、试剂组成与配制(试剂盒购自南京建成生物工程研究所,批号:20120808)
试剂组成:(1)缓冲液:12mL×1瓶
(2)底物贮备液:0.06mL×1支
(3)酶贮备液:0.11mL×1支
(4)酶稀释液:1.5mL×1瓶
溶液配制:
(1)底物应用液的配制:底物贮备液:缓冲液按1∶200的比例混匀配成底物应用液,现用现配,用多少配多少,用不完的2至零下8℃可保存7天。
(2)酶工作液的配制:酶贮备液:酶稀释液按1∶10的比例混匀配成酶工作液,现用现配,用多少配多少,用不完的2至零下8℃可保存3天。3、仪器
酶标仪(450nm波长)(Thermo,3001-1473);温孵育箱(科力仪器,PYX-250Q-A);96孔微孔板(Corning);
3、操作表
4、单位定义
单位定义:在本反应体系中SOD抑制率达50%时所对应的酶量为一个SOD活力单位(U)。
5、实验结果
计算公式
按公式计算样品的抑制率:
按公式计算SOD的活性
SOD比活力=SOD活力/蛋白质浓度6、计算结果
分别纯化单独的SOD和重组SOD-生长因子样品,取抑制率接近50%的样品进行计算:
重组SOD-生长因子SOD活力(U/mL)=56.8%÷50%×(0.24/0.02)×25=340.75(U/mL),
比活力=340.75÷1.1=309.77(U/mg)>单独的SOD样品比活力(125.62U/mg)
表1.SOD活性测定结果分析
|
重组SOD-生长因子 |
单独的SOD |
原浓度(mg/ml) |
1.1 |
2.03 |
SOD活力(U/ml) |
340.75 |
255 |
比活力(U/mg) |
309.77 |
125.62 |
实施例4重组SOD-生长因子稳定性的测定
在等温条件下,酶的失活一般服从一级反应动力学关系式。酶的失活半衰期可表示为式(1):t1/2=0.693/[(-2.303/t)lgX/X0],其中X/X0是t天后酶活力保持的百分数。以单独的SOD为对照,重组SOD-生长因子置于4℃下,隔日检测其活力。分别将第4天、第8天、第12天、第16天与第20天所得活力值代入公式,计算半衰期,取平均值。
根据图9中的相对酶活力与储存时间的关系由式(1)计算半衰期。经计算,在4℃,单独的SOD的半衰期为9.5天,本发明制备的重组SOD-生长因子半衰期为19.5天。结果表明,本发明制备的重组SOD-生长因子具有较好的储存效果,活性较为稳定。储存12天后,单独的SOD的相对酶活力在35%以下,重组SOD-生长因子的相对酶活力保持在60%以上。
应该理解,尽管参考其示例性的实施方案,已经对本发明进行了具体的显示和描述,但是本领域的普通技术人员应该理解,在不背离由权利要求书所定义的本发明的精神和范围的条件下,可以在其中进行各种形式和细节的变化,可以进行各种实施方案的任意组合。