CN108210457A - 胶原蛋白肽的药物应用、葫芦素口服胶束及其制备方法 - Google Patents

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Abstract

本发明属于医药技术领域,特别涉及胶原蛋白肽的药物应用、葫芦素口服胶束及其制备方法,其中胶原蛋白肽作为药物穿膜工具在制备口服药物制剂中的应用,所述胶原蛋白肽带正电荷;本发明提供了一种含胶原蛋白肽的葫芦素口服胶束,包括以下重量份的组分:葫芦素8~15份、卵磷脂30~70份、辛酸癸酸聚乙二醇甘油酯50~75份、聚乙二醇15‑羟基硬脂酸酯25~50份和带正电荷的胶原蛋白肽80~100份;本发明制备的胶原蛋白肽,协同其余载体材料,提高了药物的膜渗透性,并降低了药物的外排作用,可作为药物穿膜工具使用,针对葫芦素口服生物利用度的问题,本发明采用的胶原蛋白肽包覆纳米胶束的技术,利用胶原蛋白肽的特性,以改善药物,如葫芦素口服存在的生物利用度低的问题。

Description

胶原蛋白肽的药物应用、葫芦素口服胶束及其制备方法
技术领域
本发明属于医药技术领域,特别涉及胶原蛋白肽的药物应用、葫芦素口服胶束及其制备方法。
背景技术
药物临床应用多以口服给药为主,药效的发挥主要依赖于药效组分在肠道的吸收。药物的溶解性、稳定性、膜通透性和首过作用等生物药剂学性质是影响药物口服后经胃肠道吸收的主要因素。不少活性成分溶解性低、渗透性差,并由于转运蛋白外排、肠道代谢等原因,口服生物利用度很低,大大制约了临床药效的发挥。采用制剂新技术提高药物的口服生物利用度的研究报道最多,主要包括微粉化、环糊精包合、固体分散、生物粘附、磷脂复合物、新型载体技术等。消化道上皮细胞是药物吸收的屏障,药物的跨膜转运能力即药物的膜通透性是这一过程的主要影响因素。载体跨膜转运促进技术是当前药剂学界研究的热点。当前促进载体跨膜转运的方法主要包括植物凝集素、膜融合蛋白、多聚乙烯亚胺、穿膜肽修饰等,其中穿膜肽由于其高效性和安全性,最具发展前景。穿膜肽(cell-permeablepeptides,CPPs)是一类具有较强细胞膜穿透能力的多肽,它们具有高效穿过细胞膜而不损伤细胞膜结构和功能的特点。将细胞穿膜肽用于携带各种物质,如小分子、纳米粒,特别是生物药如核酸、抗体等进入细胞。穿膜肽在口服吸收方面的应用报道很少,目前仅有学者采用穿膜肽R8修饰固态脂质纳米粒,显著增加了胰岛素和紫杉醇的吸收。穿膜肽目前都是通过固相合成或原核表达制备,成本很高,限制了其在口服给药中的应用。因此,找到一种制备工艺简单、成本低、安全的穿膜肽对提高药物的口服生物利用度,从而提高药效非常必要;此外,大多数药物纳米胶束都带有电负性,与带正电荷的胶原蛋白肽易形成稳定药物组合物,胶原蛋白肽对纳米胶束的包覆度较好,此组合物更有利于透过肠系膜而吸收。
葫芦素为一类葫芦烷型四环三萜类化合物,可用于湿热毒盛所致迁延性肝炎、慢性肝炎及原发性肝癌的辅助治疗。而有研究表明,市售葫芦素片中葫芦素类成分水溶性差,溶出慢,且该类成分属生物药剂学分类中第四类低溶解性、低渗透性药物,限制了其口服药效的发挥与临床应用。
因此,本发明从3000Da的牛皮胶原蛋白肽中分离得到的正电性的牛皮胶原蛋白肽(CPs),并将其用于制备葫芦素纳米胶束,结果表明,本发明制备的葫芦素纳米胶束的口服生物利用度、抗肿瘤效果较好。
发明内容
为解决上述技术问题,本发明提供了胶原蛋白肽的药物应用、葫芦素口服胶束及其制备方法,本发明的目的是针对现有技术中胶原蛋白肽制备方法繁杂、成本高的缺陷,提供一种低成本、高效率、能促进药物口服吸收的胶原蛋白肽的制备方法,本发明的另一目的是将带正电性的胶原蛋白肽在口服给药中的应用,并且提供了含胶原蛋白肽的葫芦素口服胶束,提高葫芦素的口服生物利用度。
本发明解决其技术问题采用的技术方案是:
胶原蛋白肽作为药物穿膜工具在制备口服药物制剂中的应用,所述胶原胶原蛋白肽带正电荷。
作为优选,所述带正电荷的胶原蛋白肽的制备方法如下:
(a)将胶原蛋白肽水溶液与阳离子交换树脂混合,于摇床内40℃下震荡吸附3h,取出吸附后的阳离子交换树脂,用0.2mol/L氯化钠水溶液洗脱2h,过滤,弃去洗脱液;
(b)将步骤(a)过滤后的阳离子交换树脂,用0.5mol/L氯化钠水溶液同样步骤重复洗脱3次,收集洗脱液;所得洗脱液合并,得总液;其中,阳离子交换树脂和氯化钠水溶液的质量体积比为1∶2,单位为g∶mL;
(c)将步骤(b)所得总液,浓缩除盐,透析袋透析,冻干,即得带正电荷的胶原蛋白肽。
作为优选,所述阳离子交换树脂型号为D152、732、D072、D61或D001,所述胶原蛋白肽分子量为1000~5000Da,所述胶原蛋白肽水溶液的浓度为(10~100)mg/mL。
作为优选,所述步骤(a)中,胶原蛋白肽水溶液、阳离子交换树脂和氯化钠水溶液的质量体积比为2∶1∶2,其单位为mL∶g∶mL。
一种含胶原蛋白肽的葫芦素口服胶束,包括以下重量份的组分:葫芦素8~15份、卵磷脂30~70份、辛酸癸酸聚乙二醇甘油酯50~75份、聚乙二醇15-羟基硬脂酸酯25~50份和带正电荷的胶原蛋白肽80~100份。
作为优选,所述葫芦素为葫芦素B或含有葫芦素B含量大于60%的总葫芦素。
作为优选,所述含胶原蛋白肽的葫芦素口服胶束的制备方法,包括以下方法步骤:
(1)称取所述重量份的葫芦素溶于一定量的甲醇中,加入所述重量份的卵磷脂,30~50℃下搅拌40~50min;其中,葫芦素与甲醇的质量体积比为(4~6)∶1,单位为mg/mL;
(2)称取所述重量份的辛酸癸酸聚乙二醇甘油酯和聚乙二醇15-羟基硬脂酸酯,加入到步骤(1)所得混合液中,相同温度下继续搅拌40~50min;
(3)将步骤(2)所得溶液,蒸发除去甲醇,氮吹完全除去有机溶剂,得均匀分布透明的含药脂膜;
(4)称取一定量的纯水,溶解步骤(3)所得的脂膜,超声水化后,离心分离,取上清液,加入所述重量份的改性胶原蛋白肽,室温溶解后,于35~40℃下孵育30min,过0.22μm滤膜,滤液即为含改性胶原蛋白肽的葫芦素纳米胶束。
其中,所述步骤(4)中,葫芦素与水的质量体积比为1∶(1~3),单位为mg/mL,超声水化时间为:0.5~2h,离心分离条件为:温度35~40℃,转速10000rpm,离心20min。
其中本发明中,带正电荷的胶原蛋白肽的制备方法的原理是:利用阳离子交换树脂,吸附胶原蛋白肽中的碱性胶原蛋白肽,再利用氯化钠水溶液洗脱吸附后的阳离子交换树脂,将吸附的碱性胶原蛋白肽洗脱至水溶液中,浓缩、透析、冻干,得到碱性胶原蛋白肽产品,其带正电荷,最终达到从胶原蛋白肽中分离出碱性胶原蛋白肽的目的。
相对于现有技术,本发明具有以下有益效果:
1.本发明制备的胶原蛋白肽,制备方法简便,成本低,协同其余载体材料,提高了药物的膜渗透性,并降低了药物的外排作用,可作为药物穿膜工具使用。
2.本发明的含胶原蛋白肽的葫芦素纳米胶束,通过在水溶液中自组装形成纳米胶束,解决了葫芦素在水溶液中溶解度低的问题。
3.本发明的含胶原蛋白肽的葫芦素纳米胶束,显著的提高了葫芦素的生物利用度。
4.本发明的含胶原蛋白肽的葫芦素纳米胶束,对HepG-2细胞有较好的抑制率。
5.本发明的含胶原蛋白肽的葫芦素纳米胶束,用于治疗荷瘤小鼠,给药两周后即有治疗效果,有效的抑制了肿瘤的生长。
6.本发明的含胶原蛋白肽的葫芦素纳米胶束,可以作为抗肿瘤药物而应用,其具有提高口服葫芦素药物生物利用度的功能,体内外抗肿瘤效果显著。
7.针对葫芦素口服生物利用度的问题,本发明采用的胶原蛋白肽包覆纳米胶束的技术,利用胶原蛋白肽的特性,以改善葫芦素口服存在的生物利用度低的问题。另本发明选用辛酸癸酸聚乙二醇甘油酯与聚乙二醇15-羟基硬脂酸酯作为葫芦素纳米胶束的主要载体,构建新型的抗肿瘤纳米胶束,其中辛酸癸酸聚乙二醇甘油酯能改善细胞膜通透性,聚乙二醇15-羟基硬脂酸酯具有P-糖蛋白抑制作用,两者作为药物载体,不仅能提高葫芦素的溶解性,还能改善葫芦素的穿膜效率及摄取率。
8.本发明所开发的胶原蛋白肽-葫芦素纳米胶束,利用载体两亲性与带电性自组装成纳米胶束,其制备方法简单,成本低。
附图说明
图1胶原蛋白肽-总葫芦素混合纳米胶束粒径分布;
图2胶原蛋白肽-总葫芦素混合纳米胶束SEM图;
图3总葫芦素、无胶原蛋白肽的总葫芦素混合纳米胶束及胶原蛋白肽-总葫芦素混合纳米胶束口服给药后的药-时曲线图(n=6);
图4葫芦素B、无胶原蛋白肽的葫芦素B混合纳米胶束及胶原蛋白肽-葫芦素B混合纳米胶束口服给药后的药-时曲线图(n=6);
图5葫芦素B、无胶原蛋白肽的葫芦素B混合纳米胶束及胶原蛋白肽-葫芦素B混合纳米胶束对肝癌细胞HepG-2的生长抑制率(n=3);
图6生理盐水、总葫芦素混悬液组及胶原蛋白肽-总葫芦素混合纳米胶束给药期间各组荷瘤鼠体重变化(n=8);
图7各组荷瘤鼠体内肿瘤体积在总葫芦素给药期间的变化(n=8);
图8给药各组荷瘤鼠体内肿瘤;
图9生理盐水、葫芦素B及葫芦素B纳米胶束给药期间各组荷瘤鼠体重变化(n=8);
图10各组荷瘤鼠体内肿瘤体积在给药期间的变化(n=8);
图11给药各组荷瘤鼠体内肿瘤;
n代表各组平行组的数量。
具体实施方式
下面结合实施例对本发明及其具体实施方式作进一步详细说明,但不意味着限制本发明的范围。
实施例1:
带正电荷的胶原蛋白肽的制备:称取5g型号为D152阳离子交换树脂置于锥形瓶内,加入10mL质量浓度为0.1g/mL的胶原蛋白肽水溶液,其中胶原蛋白肽的分子量为3000Da,于摇床内40℃下震荡吸附3h后,收集已吸附的树脂,用10mL浓度为0.2mol/L氯化钠水溶液洗脱2h,过滤,弃去洗脱液;再以每次10mL浓度为0.5mol/L氯化钠水溶液同样步骤重复洗脱3次,收集洗脱液,所得洗脱液合并,得总液,浓缩除盐,透析袋透析,冻干,即得带正电荷的胶原蛋白肽,其外观为白色松软粉末,晶体光泽明显。
实施例2:
胶原蛋白肽肽氨基酸组成分析:分别称取0.1g市售胶原蛋白肽与实施例1制备的胶原蛋白肽,分别加入10ml浓度为6mol/L的HCl,震荡混匀,封口放入110℃烘箱里水解24h,将水解液过滤,取500μl滤液,55℃真空干燥,干燥后的样品内加入0.02mol/L HCl溶解稀释,与氨基酸混合标准品溶液进行茚三酮比色,确定样品稀释程度,用0.22μm微孔滤膜过滤,全自动氨基酸分析仪进行分析,分离前后胶原蛋白肽中不同氨基酸种类的组成含量变化结果见表1;
表1 3000Da市售胶原蛋白肽与正电荷胶原蛋白肽氨基酸组成分析
酸性氨基酸与碱性氨基酸的量是直接导致多肽显负电性或正电性的原因。对市售胶原蛋白肽和实施例1制备的带正电荷的胶原蛋白肽的氨基酸各组分含量变化比例进行分析,可发现相对于市售胶原蛋白肽,实施例1制备的带正电荷的胶原蛋白肽,除甘氨酸、蛋氨酸外,其余氨基酸含量均发生明显变化,其中碱性氨基酸赖氨酸、精氨酸的含量较市售胶原蛋白肽中的含量均显著增加,而酸性氨基酸谷氨酸含量则显著减少,并未见天冬氨酸,由此实施例1制备的带正电荷的胶原蛋白肽分子中的碱性氨基酸较多。
实施例3:
制备胶原蛋白肽-总葫芦素混合纳米胶束:
1)配制5mg/mL的总葫芦素甲醇溶液(以葫芦素B浓度计,葫芦素B含量65%),取2mL上述溶液加入48mg卵磷脂,40℃下搅拌45min;
2)称取71mg的辛酸癸酸聚乙二醇甘油酯和29mg的聚乙二醇15-羟基硬脂酸酯,加入到步骤1)所得混合液中,相同温度下继续搅拌45min;
3)将步骤2)所得溶液,蒸发除去甲醇,氮吹完全除去有机溶剂,得均匀分布透明的含药脂膜;
4)加入17mL纯化水溶解步骤3)所得脂膜,在40℃温度下超声水化1h后,10000rpm离心20min;
5)取步骤4)所得上清液,加入90mg实施例1制备的胶原蛋白肽,室温搅拌溶解后,于37℃下孵育30min,过0.22μm滤膜,得到澄清透明的载总葫芦素胶原蛋白肽纳米胶束溶液;
所得纳米胶束用Beckman公司的纳米粒径电位分析仪DelsaNano C检测,所述纳米胶束的平均粒径为73.5nm,电位为3.49mV,包封率为89.92%,载药量为5.90%。粒径分布如图1所示,纳米胶束形态如透射电镜图图2所示。
实施例4:
制备无胶原蛋白肽的总葫芦素混合纳米胶束:
1)配制5mg/mL的总葫芦素甲醇溶液(以葫芦素B浓度计,葫芦素B含量65%),取2mL上述溶液加入50mg卵磷脂,40℃下搅拌45min;
2)称取60mg的辛酸癸酸聚乙二醇甘油酯和40mg的聚乙二醇15-羟基硬脂酸酯,加入到步骤1)所得混合液中,相同温度下继续搅拌45min;
3)将步骤2)所得溶液,蒸发除去甲醇,氮吹完全除去有机溶剂,得均匀分布透明的含药脂膜;
4)加入15mL纯化水溶解步骤3)所得脂膜,在40℃温度下超声水化1h后,10000rpm离心20min;
5)取步骤4)所得上清液,加入90mg实施例1制备的胶原蛋白肽,室温搅拌溶解后,于37℃下孵育30min,过0.22μm滤膜,滤液即为胶原蛋白肽的总葫芦素混合纳米胶束;
所得纳米胶束用Beckman公司的纳米粒径电位分析仪DelsaNano C检测,所述纳米胶束的平均粒径为59.3nm,电位为-18.29mV,包封率为89.24%,载药量为5.82%。
实施例5:
制备胶原蛋白肽-葫芦素B混合纳米胶束:
1)配制浓度为5mg/mL的葫芦素B甲醇溶液,取2mL上述溶液加入48mg卵磷脂,40℃下搅拌45min;
2)称取71mg的辛酸癸酸聚乙二醇甘油酯和29mg的聚乙二醇15-羟基硬脂酸酯,加入到步骤1)所得混合液中,相同温度下继续搅拌45min;
3)将步骤2)所得溶液,蒸发除去甲醇,氮吹完全除去有机溶剂,得均匀分布透明的含药脂膜;
4)加入17mL纯化水溶解步骤3)所得脂膜,在40℃温度下超声水化1h后,10000rpm离心20min;
5)取步骤4)所得上清液,加入90mg实施例1制备的胶原蛋白肽,室温搅拌溶解后,于37℃下孵育30min,过0.22μm滤膜,滤液即为含胶原蛋白肽的葫芦素纳米胶束;
所得纳米胶束用Beckman公司的纳米粒径电位分析仪DelsaNano C检测,所述纳米胶束的平均粒径为76.5nm,电位为3.62mV,包封率为90.12%,载药量为5.87%。
实施例6:
本实施例中,对总葫芦素、无胶原蛋白肽的总葫芦素混合纳米胶束及胶原蛋白肽-总葫芦素混合纳米胶束的药动学进行了测定,其中胶原蛋白肽-总葫芦素混合纳米胶束制备方法重复实施例3,无胶原蛋白肽的总葫芦素混合纳米胶束制备方法重复实施例3,但过程中不加入胶原蛋白肽。其中三组总葫芦素组分及含量相同。
方法如下:将SD雄性大鼠(体重250±20g)随机分为3组,灌胃给予总葫芦素、无胶原蛋白肽总葫芦素纳米胶束及总葫芦素胶原蛋白肽纳米胶束,其剂量均为1mg/kg(均以葫芦素B量计,每组各6只);大鼠给药前禁食12h,期间自由饮水。给药后,于5min,10min,20min,30min,40min,1h,3h,5h,8h,12h,24h,36h眼眶取血,置于肝素化的EP管内,8000rpm离心10min后,移取上层血浆300μL于1.5mL EP管内,加入800μL的乙酸乙酯,涡旋萃取1min,8000rpm离心5min,取出上清液,往剩余下层液体内再加入400μL乙酸乙酯,再次涡旋萃取以及离心,吸取上清液合并,置于40℃水浴下氮气吹干后,加入100μL甲醇,超声复溶,再次离心(8000rpm,10min),取上清进样,用HPLC测定血浆中的含量,将所得数据用DAS 3.2.7药代动力学数据处理软件进行统计分析;
药-时曲线如图3所示,药代动力学参数如表2所示。根据药-时曲线下面积所示,与原药总葫芦素相比,无胶原蛋白肽总葫芦素纳米胶束口服生物利用度提高了2.05倍,胶原蛋白肽-总葫芦素混合纳米胶束提高了3.05倍;这说明本发明选用的辛酸癸酸聚乙二醇甘油酯与聚乙二醇15-羟基硬脂酸酯作为葫芦素纳米胶束的主要载体,可显著改善葫芦素的穿膜效率及摄取率;其中,图3中,a、b、c分别代表总葫芦素、胶原蛋白肽-总葫芦素混合纳米胶束和无胶原蛋白肽总葫芦素纳米胶束;
表2总葫芦、无胶原蛋白肽的总葫芦素混合纳米胶束及胶原蛋白肽-总葫芦素混合纳米胶束口服给药后的药代动力学参数(n=6)
实施例7:
本实施例中,对葫芦素B、无胶原蛋白肽的葫芦素B混合纳米胶束及实施例5制备的胶原蛋白肽-葫芦素B混合纳米胶束的药动学进行了测定;其中,无胶原蛋白肽葫芦素B纳米胶束制备方法重复实施例5,但是过程不加入胶原蛋白肽,三组葫芦素B用量相同。其测试方法重复实施例6,药-时曲线如图4所示,药代动力学参数如表3所示。根据药-时曲线下面积所示,与原料药葫芦素B相比,无胶原蛋白肽的葫芦素B混合纳米胶束口服生物利用度提高了2.14倍,胶原蛋白肽-葫芦素B混合纳米胶束提高了3.43倍。实施例6与实施例7对比,说明葫芦素B相对于葫芦素D有更好的生物利用度。其中,图4中,a、b、c分别代表葫芦素B、胶原蛋白肽-葫芦素B混合纳米和无胶原蛋白肽的葫芦素B混合纳米胶束。
表3葫芦B、无胶原蛋白肽的葫芦素B混合纳米胶束及胶原蛋白肽-葫芦素B混合纳米胶束口服给药后的药代动力学参数(n=6)
实施例8:
在本实施例中,测定了葫芦素B、无胶原蛋白肽的葫芦素B混合纳米胶束及实施例5制备的胶原蛋白肽-葫芦素B混合纳米胶束,对HepG-2的细胞毒性,其中葫芦素B与实施例5相同,无胶原蛋白肽的葫芦素B混合纳米胶束制备方法重复实施例5,但是过程不添加胶原蛋白肽。方法如下:将HepG-2细胞培养于含有10%胎牛血清的DMEM高糖培养基内,取对数生长期的HepG-2细胞,消化后用培养液稀释至3×104cells/mL,吹打分散均匀后接种于96孔板内,每孔加入细胞悬液180μL,置细胞培养箱内孵育24h。待细胞贴壁后,加入各组设定梯度浓度的药物。实验中葫芦素溶液与胶束制剂均用DMEM高糖培养液稀释,并用0.22μm无菌滤膜过滤。受试溶液每孔加入20μL,每个浓度设置3个复孔,对照组则补加20μL空白培养液,空白组单加200μL无细胞培养液,置于培养箱中孵育。于加药后48h,将96孔板取出,每孔加入2mg/mL MTT溶液50μL,放回培养箱内孵育4h后甩板,将96孔板倒扣于滤纸上,吸干残留液体后,每孔加入150μL DMSO,放入酶标仪内震荡均匀。用酶标仪测定在490nm处各孔的吸光度值,将数据进行统计分析;
结果如图5可知,空白纳米胶束对HepG-2细胞具有一定的抑制作用,但抑制程度与浓度无关;葫芦素B及含胶原蛋白肽-葫芦素B纳米胶束对HepG-2肿瘤细胞均具有较好的抑制作用,且随着药物浓度的增加,表现出更强的细胞毒性。
实施例9:
本实施例将实施例3制备的胶原蛋白肽-总葫芦素混合纳米胶束,用于以下药效学试验:
(1)受试对象:
裸鼠(SPF级),雄性,体重(20±2)g,由浙江省医学科学院实验动物中心提供。取处于生长对数期的HepG-2肝癌细胞,消化后用PBS清洗3次,用PBS配制成细胞浓度为5×107个/mL,将其注射入健康的裸鼠左侧腋窝皮下,每只注射细胞悬液量为0.2mL,造荷HepG-2肝癌瘤模型。
(2)试验方法:
接种后,测量肿瘤体积,待肿瘤体积生长至100-200mm3,对荷瘤小鼠进行灌胃给药。将荷瘤小鼠分成3组,每组8只,分别为模型对照组、总葫芦素混悬液组及胶原蛋白肽-总葫芦素混合纳米胶束组。模型对照组灌胃给予生理盐水,另两组分别给予总葫芦素混悬液与胶原蛋白肽-总葫芦素混合纳米胶束,每两天给药一次,连续给药21天,给药剂量为2mg/kg(以葫芦素B计)。
荷瘤鼠的体重变化如图6所示,给予生理盐水的模型对照组体重稍有增加,给予总葫芦素组体重无显著变化,而给予胶原蛋白肽-总葫芦素混合纳米胶束组荷瘤鼠体重较其余组略有下降(p<0.05),且胶原蛋白肽-总葫芦素混合纳米胶束内出现一只老鼠死亡。结果表明总葫芦素具有一定的毒性,总葫芦素混悬于生理盐水中给药,吸收较差,因此在同等给药剂量下,胶原蛋白肽-总葫芦素混合纳米胶束组表现出稍大的毒性,在保证药效的前提下,可稍降低给药量。测量肿瘤大小,各组荷瘤鼠肿瘤体积的变化情况如图7所示。与对照组相比,灌胃给予总葫芦素和胶原蛋白肽-总葫芦素混合纳米胶束后,肿瘤的体积均有明显抑制,显示出较好的肿瘤抑制效果。与总葫芦素相比,总葫芦素纳米胶束组的肿瘤抑制活性更强,尤其在给药初期,15天内抑制效果较好,7天内肿瘤体积有所下降。处死裸鼠后取出肿瘤如图8所示。其中,图6、图7、图8中,a、b、c分别代表空白对照、总葫芦素混悬液和胶原蛋白肽-总葫芦素混合纳米胶束。
实施例10:
本实施例将实施例5制备的胶原蛋白肽-葫芦素B混合纳米胶束,用于以下药效学试验:
(1)受试对象:
裸鼠(SPF级),雄性,体重(20±2)g,由浙江省医学科学院实验动物中心提供。取处于生长对数期的HepG-2肝癌细胞,消化后用PBS清洗3次,用PBS配制成细胞浓度为5×107个/mL,将其注射入健康的裸鼠左侧腋窝皮下,每只注射细胞悬液量为0.2mL,造荷HepG-2肝癌瘤模型。
(2)试验方法:
接种后,测量肿瘤体积,待肿瘤体积生长至100-200mm3,对荷瘤小鼠进行灌胃给药。将荷瘤小鼠分成3组,每组8只,分别为模型对照组、葫芦素B混悬液组及胶原蛋白肽-葫芦素B混合纳米胶束组。模型对照组灌胃给予生理盐水,另两组分别给予葫芦素B混悬液与胶原蛋白肽-葫芦素B混合纳米胶束,每两天给药一次,连续给药21天,给药剂量为2mg/kg(以葫芦素B计)。
荷瘤鼠的体重变化如图9所示,给予生理盐水的模型对照组体重稍有增加,给予葫芦素B组体重无显著变化,而给予载药纳米胶束组荷瘤鼠体重较其余组略有下降(p<0.05)。结果表明葫芦素B混悬于生理盐水中给药,吸收较差,而在同等给药剂量下,纳米胶束组表现出一定的毒性。测量肿瘤大小,各组荷瘤鼠肿瘤体积的变化情况如图10所示。与对照组相比,灌胃给予葫芦素B和胶原蛋白肽-葫芦素B混合纳米胶束后,肿瘤的体积均有明显抑制,显示出较好的肿瘤抑制效果。与葫芦素B相比,胶原蛋白肽-葫芦素B混合纳米胶束组的肿瘤抑制活性更强,尤其在给药初期,15天内抑制效果较好,7天内肿瘤体积有所下降。处死裸鼠后取出肿瘤如图11所示。其中,图9、图10、图11中,a、b、c分别代表空白对照、葫芦素B混悬液和胶原蛋白肽-葫芦素B混合纳米胶束。
以上所述的实施例只是本发明的一种较佳的方案,并非对本发明作任何形式上的限制,对本领域熟悉的人员来说,可容易的实现另外的修改,在不违背权利要求及等同范围所限定的一般概念的情况下,本发明并不限于特定的细节。

Claims (9)

1.胶原蛋白肽作为药物穿膜工具在制备口服药物制剂中的应用,所述胶原蛋白肽带正电荷。
2.根据权利要求1所述的胶原蛋白肽作为药物穿膜工具在制备口服药物制剂中的应用,其特征在于,所述带正电荷的胶原蛋白肽的制备方法如下:
(a)将胶原蛋白肽水溶液与阳离子交换树脂混合,于摇床内40℃下震荡吸附3h,取出吸附后的阳离子交换树脂,用0.2mol/L氯化钠水溶液洗脱2h,过滤,弃去洗脱液;
(b)将步骤(a)过滤后的阳离子交换树脂,用0.5mol/L氯化钠水溶液同样步骤重复洗脱3次,收集洗脱液;所得洗脱液合并,得总液;其中,阳离子交换树脂和氯化钠水溶液的质量体积比为1∶2,单位为g:mL;
(c)将步骤(b)所得总液,浓缩除盐,透析袋透析,冻干,即得带正电荷的胶原蛋白肽。
3.根据权利要求2所述的胶原蛋白肽在制备口服给药中的应用,其特征在于,所述阳离子交换树脂型号为D152、732、D072、D61或D001,所述胶原蛋白肽分子量为1000~5000Da,所述胶原蛋白肽水溶液的浓度为(10~100)mg/mL。
4.根据权利要求2所述的胶原蛋白肽在制备口服给药中的应用,其特征在于,所述步骤(a)中,胶原蛋白肽水溶液、阳离子交换树脂和氯化钠水溶液的质量体积比为2∶1∶2,其单位为mL:g:mL。
5.一种含胶原蛋白肽的葫芦素口服胶束,起特征在于,包括以下重量份的组分:葫芦素8~15份、卵磷脂30~70份、辛酸癸酸聚乙二醇甘油酯50~75份、聚乙二醇15-羟基硬脂酸酯25~50份和带正电荷的胶原蛋白肽80~100份。
6.根据权利要求5所述的一种含胶原蛋白肽的葫芦素口服胶束,其特征在于,所述葫芦素为葫芦素B或含有葫芦素B含量大于60%的总葫芦素。
7.一种权利要求5或6的含胶原蛋白肽的葫芦素口服胶束的制备方法,其特征在于,包括以下方法步骤:
(1)称取所述重量份的葫芦素溶于一定量的甲醇中,加入所述重量份的卵磷脂,30~50℃下搅拌40~50min;其中,葫芦素与甲醇的质量体积比为(4~6):1,单位为mg/mL;
(2)称取所述重量份的辛酸癸酸聚乙二醇甘油酯和聚乙二醇15-羟基硬脂酸酯,加入到步骤(1)所得混合液中,相同温度下继续搅拌40~50min;
(3)将步骤(2)所得溶液,蒸发除去甲醇,氮吹完全除去有机溶剂,得均匀分布透明的含药脂膜;
(4)称取一定量的纯水,溶解步骤(3)所得的脂膜,超声水化后,离心分离,取上清液,加入所述重量份的改性胶原蛋白肽,室温溶解后,于35~40℃下孵育30min,过0.22μm滤膜,滤液即为含改性胶原蛋白肽的葫芦素纳米胶束。
8.根据权利要求7所述的含改性胶原蛋白肽的葫芦素纳米胶束的制备方法,其特征在于,所述步骤(4)中,葫芦素与水的质量体积比为1∶(1~3),单位为mg/mL。
9.根据权利要求7所述的一种含改性胶原蛋白肽的葫芦素纳米胶束的制备方法,其特征在于,所述步骤(4)中,超声水化时间为:0.5~2h,离心分离条件为:温度35~40℃,转速10000rpm,离心20min。
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Denomination of invention: Drug Application of Collagen Peptide, Cucurbitacin Oral Micelle and Its Preparation Method

Granted publication date: 20200602

License type: Common License

Record date: 20231102

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