CN107573408A - 一种高纯度亮丙瑞林的合成方法 - Google Patents
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Abstract
本发明提供一种制备亮丙瑞林的方法,包括步骤:(1)由Fmoc‑Pro‑CTC‑OH和CTC树脂为起始原料,经处理得Fmoc‑Pro‑CTC树脂;(2)将Fmoc‑Pro‑CTC树脂采用Fmoc/tBu固相法逐一偶联的方式依次连接具有保护基团的氨基酸,合成得侧链全保护的亮丙瑞林前体肽‑树脂;(3)以20%三氟乙醇/DCM溶液作为切割试剂,对侧链全保护的亮丙瑞林前体肽‑树脂进行切割,得侧链全保护的亮丙瑞林前体肽;(4)将侧链全保护的亮丙瑞林前体肽进行乙胺化,得侧链全保护亮丙瑞林;(5)对侧链全保护的亮丙瑞林进行侧链切割,得亮丙瑞林粗肽;(6)对亮丙瑞林粗肽进行CM纯化、HPLC纯化,浓缩,溶解、冻干,得高纯亮丙瑞林原料药。本发明方法操作简单,周期短,成本低,产品收率高,环境污染小,非常适于工业化生产。
Description
技术领域
本发明涉及制药技术领域,特别涉及一种固相法和液相法结合的高纯度亮丙瑞林合成方法。
背景技术
亮丙瑞林,制剂中文名称为醋酸亮丙瑞林、抑那通或者简称亮丙瑞林,英文名称为Leuprorelinacetate、Enanton,Lucrin等。亮丙瑞林的适应症为子宫内膜异位症;伴有月经过多、下腹痛、腰痛及贫血等的子宫肌瘤;绝经前乳腺癌,且雌激素受体阳性患者;前列腺癌;中枢性性早熟症。临床主要用于前列腺癌及子宫内膜异位症。
亮丙瑞林是1974年由日本武田化工的Fujino Masahiko等人首先发现,并且发明合成工艺,其作为促黄体激素释放激素的九肽酰胺类似物,具有很好的活性。其先后在日本、德国、美国等国家申请专利,专利号分别为 JP19740027442、DE2446005、US4008209等。随后,又有一些研究机构和个人发表了一些合成工艺,专利号为EP1088555、EP1777232、US5480868 等。
在中国专利CN200610119341.6公开的制备方法为在粗品合成肽键接肽时采用机械搅拌,氨基酸单体、HOBt和DIC用DMF溶解后倒入树脂中,室温下反应1-2h。抽干溶剂,再以DMF洗涤8次、抽干,kaiser试剂检测反应是否完全。然而,机械搅拌死角较多,不利于反应充分混匀反应,脱保护产生的CO2和缩合反应产生的H2O,残留在反应液中,导致消耗更多的单体和试剂,并容易发生副反应,接肽反应率下降,粗品纯度和含量降低。
在中国专利CN200910104993.6公开的制备方法为在亮丙瑞林粗肽制备时,将侧链全保护,即将亮丙瑞林10mmol加入到250ml反应瓶中,将配制好的裂解试剂200mL倒入至上述反应瓶中,室温反应2小时。反应结束,将反应液倒入至2000ml冰乙醚中,洗出大量白色沉淀,离心,洗涤,干燥称重得亮丙瑞林粗肽。裂解沉淀过程时,需要消耗大量乙醚,增加了生产成本和后期废液处理的成本,不利于工业化生产。同时,该法无法完全避免二酮哌嗪副反应,放大生产时,二酮哌嗪副反应造成肽链脱落,显著降低收率。
目前已经公布的亮丙瑞林制备工艺都有着一定的缺陷,不能在操作复杂性、危险性、生产周期、产品总收率、产品成本和污染环境等方面达到一种较好的结合,应用价值不高。
发明内容
本发明的目的是提供一种高收率、低成本、反应条件温和、环境污染小、有利于实现产业化的亮丙瑞林的合成工艺,解决现有技术存在的缺陷。
为实现上述目的,本发明采用以下技术方案:
一种合成高纯度亮丙瑞林的方法,其包括以下步骤:
(1)由Fmoc-Pro-CTC-OH和CTC树脂为起始原料,经反应得到 Fmoc-Pro-CTC树脂;
(2)将Fmoc-Pro-CTC树脂用Fmoc/tBu固相法以逐一偶联的方式依次连接具有保护基团的氨基酸,合成得到侧链全保护的亮丙瑞林前体肽-树脂;
(3)配制体积比为20%的三氟乙醇的DCM溶液作为切割试剂,切割试剂冷却后加入,对侧链全保护的亮丙瑞林前体肽-树脂进行切割,得到全保护亮丙瑞林前体肽;
(4)将侧链全保护的亮丙瑞林前体肽进行乙胺化修饰,得到侧链全保护的亮丙瑞林;
(5)对侧链全保护的亮丙瑞林进行侧链切割,得到亮丙瑞林粗肽;
(6)对亮丙瑞林粗肽进行CM纯化、HPLC纯化,浓缩,溶解、冻干,得到高纯度的亮丙瑞林原料药。
在本发明方法的步骤(1)中,以DCM作为反应的溶剂。具体来说,用 DCM将CTC树脂溶胀,溶胀时间为0.8-1h,加入反应釜中;用DCM将 Fmoc-Pro-OH溶解后,加入一定量的DIEA,然后再加入到反应釜中;从反应釜底部通入氮气,反应时间为2-3h;反应完成后,对树脂进行封头,配制甲醇:DIEA:DCM(体积比1∶1∶2)的混合溶液,加入反应釜中,继续通入氮气振摇反应,将反应液抽干,用DMF洗涤2-6次。
在现有的技术文献中,大部分的科研人员选用了HMPB-AM树脂或Wang树脂作为起始原料。然而,本发明的科研人员在长期的实验过程中发现,使用该两种树脂均十分容易产生副反应:二酮哌嗪反应,特别是Wang 树脂,该副反应主要出现在第一个氨基酸为Pro的时候,当第二个氨基酸脱 FMOC的时候,α-氨基被游离出来之后,立即对Wang树脂的苄酯键进行分子内胺解,生成六元环二酮哌嗪衍生物,同时从Wang树脂上释放出来,导致反应终止。该反应非常迅速,文献报道采用50%Pip/DMF,脱1min,4min 的条件,但是我们实验证明在多数情况下,即使是1min左右反应就超过了 20%。因此,经过理论摸索和实践验证,我们尝试了采用2-Cl-Trt树脂合成,该树脂的巨大空间阻力完全消除了该副反应。
同时,在步骤(1)中,采用了氮气搅拌,可以使反应更加充分地进行,并意想不到地通过带走反应产生的H2O,降低反应中氨基酸单体数量至1.5 倍。
本发明方法的步骤(2)所述的具有保护基团的氨基酸采用Fmoc基团保护,各种氨基酸分别以Fmoc-Pro-OH、Fmoc-Arg(pbf)-OH、Fmoc-Leu-OH、 Fmoc-D-Leu-OH、Fmoc-Tyr-OH、Fmoc-Ser(Trt)-OH、Fmoc-Trp(Boc)-OH、 Fmoc-His(Trt)-OH和pGlu的形式应用。
本发明方法的步骤(2)所述的Fmoc保护基通过20%哌啶/DMF溶液处理来除去。
在本发明方法的步骤(2)所述的逐一偶联时,氨基酸相对于合成规模的投料比为1-6倍;所述逐一偶联剂的体系是DCC/HOBt,或者是EDC/HOBt,或者是DIC/HOBt,或者是DIC/HOAt,或者是PyBOP/HOBt,或者是 PyAOP/HOAt,或者是TBTU/HOBt,或者是HBTU/HOBt,或者是HCTU/HOCt,或者是HATU/HOAt;偶联反应溶剂是四氢呋喃(THF),或者是二氧六环、 N,N-二甲基甲酰胺(DMF),或者是二氯甲烷(DCM),或者是N-甲基吡咯烷酮(NMP),或者是二甲基亚砜(DMSO);偶联反应的有机碱是N,N-二异丙基乙胺(DIPEA),或者是三乙胺(TEA),或者是N-甲基吗啡啉(NMM),或者是2,4,6-三甲基吡啶(TMP);偶联反应时间为1-3小时。
本发明方法的步骤(3)所述的切割试剂,根据亮丙瑞林前体肽-树脂的质量多少进行投料,每克干燥树脂配制10ml切割试剂。
在本发明方法的步骤(4)所述的乙胺化修饰中,需加入HATU、2,4,6- 三甲基吡啶、乙胺作为反应试剂,反应在25℃恒温进行,搅拌,反应0.5-3h。
在本发明方法的步骤(4)所述的乙胺化修饰中,加入HATU、2,4,6-三甲基吡啶作为反应试剂。其中,前体肽、HATU、2,4,6-三甲基吡啶三者的摩尔比为1∶2-3∶1.5-2;最佳地,三者的摩尔比为1∶2∶2。
本发明方法的步骤(4)所述的实验过程是将侧链全保护的亮丙瑞林前体肽进行乙胺化修饰,得到侧链全保护的亮丙瑞林。在现有的文献中,公开的实验方案虽多,但是实验反应所需的时间均在12-24小时之间,通常需要反应过夜。本发明的步骤(4)在已公开的实验技术基础上,反复优化实验条件,使得反应进行所需的时间大大地得到缩短,仅需0.5-3h即可完成。优选地,步骤(4)所述的乙胺化修饰得到侧链全保护的亮丙瑞林的反应时间为1h。本发明的步骤(4)中,反应釜中加入HATU、2,4,6-三甲基吡啶、乙胺的摩尔比为1∶1∶1。
本发明方法的步骤(5)所述的对侧链全保护的亮丙瑞林进行侧链切割需使用切割液,切割液为TFA:水(体积比为95∶5)。先低温下0-5℃加入侧链全保护的亮丙瑞林,再缓慢恢复至室温,反应1.5-3.5h。反应完成后,在 33℃下低温旋蒸,去除反应液至原体积的1/3,再加入冰无水乙醚沉淀,离心过滤收集沉淀。
本发明方法步骤(5)所述的对侧链全保护的亮丙瑞林进行侧链切割的反应在0-5℃下进行,可以有效避免反应过于剧烈,使反应趋于温和,减少消旋副反应的发生。
本发明方法的步骤(6)所述的CM纯化是将亮丙瑞林粗品用pH6.0、 0.05mol/L的乙酸钠溶液溶解(按1g粗品加入80~100ml溶液),0.45μm膜过滤,上层析柱CM-SephadexG25。上样完毕后用pH6.0、0.05mol/L的乙酸钠缓冲液洗涤至稳定,再用pH6.0、0.5mol/L乙酸钠缓冲液进行洗脱,测定洗脱流出液在280nm处的吸光值,出峰时开始收集,至吸光值不在变化时停止收集。收集的洗脱液经HPLC分析纯度,并计算含量。
CM纯化:为弱阳离子交换树脂纯化,为HPLC纯化前的预纯化。粗品经过预纯化处理后,一方面可将大部分短肽和大分子肽分离去除,将其纯度提高至少10%,有利于实现生产出高纯度肽(纯度可达到99.5%以上)。另一方面则可提前去除粗品中的各种有机溶剂(极性有机溶剂),不溶性颗粒,使之避免进入HPLC系统内,保护和延长HPLC系统使用寿命,大大降低设备使用成本;同时可使HPLC柱在梯度精细分离过程中避免极性有机溶剂干扰,保持良好的重复性和分离度,从而实现产品质量的持续稳定性。CM预纯化后,获得较高纯度的洗脱液可显著提高后期HPLC纯化的单次上样量,从而实现工业化生产。
本发明方法的步骤(6)所述的HPLC纯化是收集的预处理洗脱液经 0.45μm膜过滤后上已经过溶剂A(0.5%乙酸、5%乙腈溶液)平衡好的制备型HPLC柱。用溶剂A(0.5%乙酸、5%乙腈溶液)和溶剂B(0.5%乙酸、 80%乙腈溶液)进行梯度洗脱,收集合并所有纯度≥99.5%的收集液即得醋酸亮丙瑞林中间体,杂质总含量小于0.5%。
本发明方法的步骤(6)中,使用的溶剂A和溶剂B避免了使用较复杂的磷酸三乙胺体系、或者酸性强且不容易保存和配制的三氟乙酸体系,采用乙酸/乙腈体系,大大简化了纯化过程,降低了生产成本和人力成本。采用乙酸/乙腈体系,可避免引入磷酸,三乙胺,三氟乙酸等试剂,简化了后续有机溶剂去除工艺,降低原料药有机溶剂残留风险。
本发明方法的步骤(6)所述的浓缩过程为:醋酸亮丙瑞林中间体用1~ 2倍注射用水稀释后再吸附到HPLC制备柱上,用溶剂C(0.1M醋酸铵溶液、 pH=5.0)洗涤,溶剂A(0.5%乙酸、5%乙腈溶液)洗涤,最后用溶剂D(0.5%乙酸、40%乙腈溶液)洗脱,收集有吸收值部分;旋转浓缩:上述的柱浓缩液,经40~45℃减压浓缩(真空度为-0.08~-0.1Mpa)至干,然后加入适量的注射用水溶解后再次浓缩至干,反复至少3次,得浓缩物。
本发明方法的步骤(6)所述溶解、冻干过程为:将浓缩物加适量注射用水溶解,通过两个0.22μm过滤器过滤,再用注射用水冲洗过滤器。最终控制过滤收集液的浓度为8%~10%;进箱:过滤后的药液,倒入冻干盘中,进冻干箱冻干;冻干工艺条件为:预冻:导热油温度小于-40℃,保温2小时左右。升华:导热油升温速度约10℃/小时,至油温升至38℃,过程控制前箱真空度不大于30pa。导热油温度达约38℃时,保温约8小时至干燥终点;出箱后即得醋酸亮丙瑞林原料药。
具体实施方式
下面结合具体实施例对本发明做进一步详细说明。
说明书和权利要求书中所使用的缩写的含义如表1所示:
表1缩略词表
实施例1
Fmoc-Pro-CTC树脂制备
1.1称量CTC树脂200g,加入到反应釜中,加入1500ml DCM,使树脂完全溶胀在DCM溶剂中,溶胀1h,抽干。若溶胀过程出现试剂不能完全浸泡树脂的情况,应酌量补加试剂。称量Fmoc-Pro-OH 54.0g,用700ml DCM 溶解,加入28ml DIEA混匀,然后加入到反应釜中,从反应釜底部通入氮气,反应120min。
1.2封头,配制甲醇:DIEA:DCM(体积比1:1:2)混合溶液800ml;加入到反应釜中,氮气振摇反应20min。将反应液抽干,用DMF洗涤4次。
1.3分光光度计测定取代度,检测替代度为0.51mmol/g。
实施例2
侧链全保护的亮丙瑞林前体肽-CTC树脂的制备
Pyr-His(trt)-Trp(boc)-Ser(tbu)-Tyr(tbu)-D-Leu-Leu-Arg(pbf)-Pro-CTCResin
2.1、接二肽
脱保护:DMF洗涤完毕后,向反应釜中加入20%哌啶/DMF溶液700ml (此数值可调整,以树脂充分混合均匀为宜,反应20min。将脱保护液抽干, DMF洗涤8次,每次700ml。洗完可用kaiser试剂检测,若数值呈红褐色,则表明脱保护成功。
接肽:Fmoc-Arg(pbf)-OH 97g(150mmol)
Hobt 20g(150mmol)
DIC 54ml(300mmol)
将称取的Fmoc-Arg(pbf)-OH和HOBT放于烧杯中,加入DMF将其溶解,再向烧杯中加入DIC活化20s,混合均匀。加入到反应釜中反应60min。在缩合过程中,视情况补加DMF溶液,使反应中树脂呈流沙状。
检测:用长勺取少量树脂于试管中,用kaiser试剂检测,树脂呈无色透明状,说明反应完全。将反应液抽干,再向反应釜中加入700ml DMF,混合振摇洗涤3min,抽干,重复操作8次。
2.2、接三肽
去保护基、洗涤:方法同接二肽项目
接肽:Fmoc-Leu-OH 61g(150mmol)
Hobt 20g(150mmol)
DIC 54ml(300mmol)
方法同接二肽。
2.3、接四肽
去保护基、洗涤,方法同接二肽项下。
接肽:Fmoc-D-Leu-OH 61g(150mmol)
Hobt 20g(150mmol)
DIC 54ml(300mmol)
方法同接二肽。
2.4、接五肽
接肽:Fmoc-Tyr(tbu)-OH 79g(150mmol)
Hobt 20g(150mmol)
DIC 54ml(300mmol)
方法同接二肽。
2.5、接六肽
接肽:Fmoc-Ser(tbu)-OH 66g(150mmol)
Hobt 20g(150mmol)
DIC 54ml(300mmol)
方法同接二肽。
2.6、接七肽
去保护基、洗涤、中和:方法同接二肽项下。
接肽:Fmoc-Trp(Boc)-OH 90g(150mmol)
Hobt 20g(150mmol)
DIC 54ml(300mmol)
方法同接二肽项目。
2.7、接八肽
脱保护、洗涤:方法同接二肽项下。
接肽:Fmoc-His(trt)-OH 108g(150mmol)
Hobt 20g(150mmol)
DIC 54ml(300mmol)
方法同接二肽。
2.8、接九肽
脱保护、洗涤:方法同接二肽项下。
接肽:pGlu 22g(150mmol)
Hobt 20g(150mmol)
DIC 54ml(300mmol)
方法同接二肽。
洗涤:DMF洗涤4次、甲醇洗涤4次,抽干。
干燥:树脂于50℃烘箱中干燥5小时以上,再置P2O5干燥箱中干燥至恒重,称重得亮丙瑞林前体肽-树脂167g。
实施例3
制备侧链全保护的亮丙瑞林前体肽:
Pyr-His(trt)-Trp(boc)-Ser(tbu)-Tyr(tbu)-D-Leu-Leu-Arg(pbf)-Pro-OH
称量亮丙瑞林前体肽-树脂,加入到两个3L三角瓶中。按每g干燥树脂 10ml切割试剂,配制20%的三氟乙醇/DCM溶液,在冰箱冷却1h后,分别加入到两个反应瓶中,振摇速度100r/min,反应120min;将上述切割后溶液置于旋转蒸发器中,35℃减压蒸干,得亮丙瑞林前体肽175.2g,MS:1889。
实施例4
制备侧链全保护的亮丙瑞林:
pGlu-His(Trt)-Trp(Boc)-Ser(Trt)-Tyr-D-Leu-Leu-Arg(pbf)-Pro-NHCH2CH3
取冻干后的上述肽46mmol(87g),溶于5.75L二氯甲烷中,进行乙胺化修饰,按摩尔比,称取92mmol(35g,2n)的HATU,92mmol(11.1g,2n)的2,4,6-三甲基吡啶和92mmol(4.1g,2n)的乙胺加入到上述混合溶液中,25℃恒温搅拌1h。乙胺化修饰完成后,将上述反应液旋转浓缩至干,再冻干。得侧链全保护的亮丙瑞林91.5g(HPLC纯度94.0%,收率98%,MS1916)。
实施例5
制备亮丙瑞林粗肽:
pGlu-His-Trp-Ser-Tyr-D-Leu-Leu-Arg-Pro-NHCH2CH3
取冻干后的上述肽,按50mg/ml的多肽浓度,进行侧链切割。按TFA:水=95:5配制切割液,先低温加入肽,再缓慢恢复至室温,反应120min。反应结束后,在33℃下低温旋蒸,去除反应液至原体积的1/3。再加入冰无水乙醚沉淀,离心/过滤收集沉淀,真空干燥得亮丙瑞林粗品91g。(HPLC 纯度88.0%,收率98%,MS1209)。
实施例6
CM纯化
将上述亮丙瑞林粗品91克,用pH6.0、0.05mol/L的乙酸钠溶液溶解(按 1g粗品加入80~100ml溶液),0.45μm膜过滤,上层析柱CM-SephadexG25。上样完毕后用pH6.0、0.05mol/L的乙酸钠缓冲液洗涤至稳定,再用pH6.0、 0.5mol/L乙酸钠缓冲液进行洗脱,测定洗脱流出液在280nm处的吸光值,出峰时开始收集,至吸光值不在变化时停止收集。收集的洗脱液经HPLC分析纯度(纯度应≥90%),并计算含量。
实施例7
HPLC纯化
收集的预处理洗脱液经0.45μm膜过滤后上已经过溶剂A(0.5%乙酸、 5%乙腈溶液)平衡好的制备型HPLC柱。用溶剂A(0.5%乙酸、5%乙腈溶液)和溶剂B(0.5%乙酸、80%乙腈溶液)进行梯度洗脱,收集合并所有纯度≥99.5%的收集液即得醋酸亮丙瑞林中间体,有关物质总纯度≤0.5%。 (HPLC纯度99.8%,收率89%)。
实施例8
浓缩
8.1、醋酸亮丙瑞林中间体用1~2倍注射用水稀释后再吸附到HPLC制备柱上,用溶剂C(0.1M醋酸铵溶液、pH=5.0)洗涤,溶剂A(0.5%乙酸、 5%乙腈溶液)洗涤,最后用溶剂D(0.5%乙酸、40%乙腈溶液)洗脱,收集有吸收值部分。
8.2、旋转浓缩:上述的柱浓缩液,经40~45℃减压浓缩(真空度为 -0.08~-0.1Mpa)至干,然后加入适量的注射用水溶解后再次浓缩至干,反复至少3次,得浓缩物。
实施例9
溶解、冻干
9.1、溶解:将浓缩物加适量注射用水溶解,通过两个0.22μm过滤器过滤,再用注射用水冲洗过滤器。最终控制过滤收集液的浓度为8%~10%。
9.2、进箱:过滤后的药液,倒入冻干盘中,进冻干箱冻干。
9.3、冻干工艺条件为:预冻:导热油温度小于-40℃,保温2小时左右。升华:导热油升温速度约10℃/小时,至油温升至38℃,过程控制前箱真空度不大于30pa。导热油温度达约38℃时,保温约8小时至干燥终点。
9.4、出箱后即得醋酸亮丙瑞林原料药49克。
实施例10
1、实验A按照以下实验步骤进行:
1)Fmoc-Pro-HMPB-AM树脂的制备
将HMPB-AM树脂111.0g,替代度为0.9mmol/g,加入到固相反应柱中,用DMF洗涤1次,用DCM溶胀树脂30分钟后,将77.6g Fmoc-Pro-OH,加入上述装有树脂的反应柱中搅拌反应2小时。反应结束,用DMF洗涤3 次,DCM洗3次,用甲醇封闭30分钟,后用甲醇收缩得到Fmoc-Pro-HMPB-AM树脂,检测替代度为0.6mmol/g。
2)侧链全保护的亮丙瑞林前体肽-HMPB-AM树脂的制备
称取100gFmoc-Pro-HMPB-AM树脂(0.6mmol/g,60mmol)加入反应器中,用DMF洗涤一次,用DCM溶胀0.5小时。溶胀结束,用20%DBLK 去除Fmoc保护,后用DMF洗涤4次,DCM洗2次。将77.76g Fmoc-Arg(pbf)-OH(120mmol),24.315g HOBt(180mmol),37.8g DCC溶于 DCM中(可以加入少量DMF助溶),加入固相反应器中,室温搅拌反应2h (反应终点以茚三酮法检测为准)。重复以上步骤,依次完成Fmoc-Leu-OH、 Fmoc-D-Leu-OH、Fmoc-Tyr-OH、、Fmoc-Ser(Trt)-OH、Fmoc-Trp(Boc)-OH、 Fmoc-His(Trt)-OH和pGlu等剩余氨基酸的连接。当pGlu偶联结束后,将树脂用DMF洗涤3次,DCM洗3次,后用甲醇收缩,放置在真空干燥器中干燥过夜。第二天,称重得到侧链全保护的亮丙瑞林前体肽-HMPB-AM树脂 201.082g(树脂增重率99.1%)。
3)pGlu-His(Trt)-Trp(Boc)-Ser(Trt)-Tyr-D-Leu-Leu-Arg(pbf)-Pro-OH的制备(侧链全保护的亮丙瑞林前体肽的制备)
将201.082g侧链全保护的亮丙瑞林前体肽-HMPB-AM树脂(60mmol) 加入到3000ml圆底烧瓶中,配制裂解试剂2000ml(三氟乙醇1800ml, DCM200ml),将裂解试剂倒入树脂中,室温反应1小时。反应结束,过滤树脂,收集滤液。用少量DCM洗涤树脂,合并滤液,将滤液减压蒸干,并且真空干燥,得到侧链全保护的亮丙瑞林前体粗肽104.2g(HPLC纯度86.5%,收率92.04%,MS1889)。
4)pGlu-His(Trt)-Trp(Boc)-Ser(Trt)-Tyr-D-Leu-Leu-Arg(pbf)-Pro-NHCH2CH3的制备(侧链全保护的亮丙瑞林)
将104.2g侧链全保护的亮丙瑞林前体粗肽(55.2mmol)加到2000ml的三口烧瓶中,加入500ml二氯甲烷使其完全溶解。称取115.9g DCC和74.25g HOBt(552mmol)加入到上述反应瓶中,剧烈搅拌反应30min。30min后再反应瓶中加入550ml 1mol/L乙胺的二氯甲烷溶液,室温反应过夜。反应结束,用1M盐酸洗、水洗、10%碳酸氢钠洗、水洗、饱和氯化钠洗,然后用无水硫酸镁干燥1小时。干燥结束,过滤滤液浓缩蒸干,减压干燥得侧链全保护的亮丙瑞林105.2g(HPLC纯度80.5%,收率99.5%,MS1916)。
5)亮丙瑞林粗肽的制备
将19.2g侧链全保护的亮丙瑞林(10mmol,纯度80.5%)加入到250ml 反应瓶中,将配制好的裂解试剂200mL(三氟乙酸190ml,水10ml)倒入至上述反应瓶中,室温反应2小时。反应结束,将反应液倒入至2000ml冰乙醚中,洗出大量白色沉淀,离心,洗涤,干燥称重得亮丙瑞林粗肽11.872g (HPLC纯度85.7%,收率98.2%,MS1209)。
6)亮丙瑞林精肽的制备
将11.872g亮丙瑞林粗品使用高效液相制备色谱纯化,流动相:A相: 0.1%-0.3%磷酸水溶液用三乙胺调pH至2.0-3.0;B相:乙腈和甲醇(V乙腈∶ V甲醇=4∶1)混合液。流速:70-80ml/min。检测波长:280nm。梯度:B%: 12%~43%(55min),收集纯度大于98.5%以上馏分,浓缩、冻干得到7.242g 亮丙瑞林的精肽(HPLC纯度>98.5%,收率51.0%,MS1209),总收率46.0%。
2、实验B按照本说明书实施例1-9依次进行
3、实验C按照本说明书实施例1-5、7-9,依次进行
4、实验结论分析
实验A、B、C三者的比较情况如表1。由表1分析对比可知,运用氮气搅拌反应,可以使氨基酸单体数量和HOBT数量减半,粗品纯度也有所提高。旋蒸去除反应液可使乙醚用量大大降低,采用CM纯化预处理和乙酸/ 乙腈HPLC纯化体系,不仅简化了生产过程,降低生产成本,进一步提高了成品质量和稳定性。
实验B所得粗品,当经过实施例6步骤(CM柱预纯化)后,所得洗脱液再进行实施例7步骤(HPLC纯化),所得纯度≥99.5%的合格中间体,纯化收率比实验C由60%提高至89%,中间体有关物质也明显偏低,进一步提高了成品质量。
表1工艺结果对比
实施例11
偶联试剂的选择
取冻干后的亮丙瑞林前体肽,按8mmol/ml的多肽浓度,进行乙胺化修饰,按摩尔比,加入偶联试剂,到上述混合溶液中,25℃恒温搅拌1h。乙胺化修饰完成后,将上述反应液旋转浓缩至干,再冻干,得侧链全保护亮丙瑞林。(表2中,n表示摩尔量的倍数)
表2不同偶联试剂的实验结果比较
实验结论:由上述表格数据分析可知,使用不同组合的缩合剂进行乙胺化,反应1小时后,DCC+HOBt反应率最低,纯度也最低。DIC+HOBt 所得侧链全保护亮丙瑞林,颜色最浅,为类白色,但是纯度较低。对偶联试剂HATU和2,4,6-三甲基吡啶(TMP)的用量进行对比试验,随着2,4,6- 三甲基吡啶用量的增加,所得侧链全保护的亮丙瑞林,颜色加深。当前体肽:HATU:TMP摩尔比例为1∶2-3∶1.5-2时,实验的收率与纯度较优;当HATU、TMP的比例均为肽投料量的2倍摩尔量(2n)时,为浅黄色,收率可达到98%,纯度最优,且HATU、TMP都是工业上易得价廉的原料,非常有利于规模化的大生产。
Claims (8)
1.一种固相法和液相法结合的制备亮丙瑞林的方法,其包括以下步骤:
1)将CTC树脂置于反应釜中,加入DCM溶胀;将Fmoc-Pro-OH溶解于DCM,加入DIEA混匀后,加入到反应釜中,从反应釜底部通入氮气,进行搅拌、反应;配制甲醇∶DIEA∶DCM混合溶液,加入反应釜中,继续通入氮气振摇反应,将反应液抽干,用DMF洗涤,得到Fmoc-Pro-CTC树脂;
2)将Fmoc-Pro-CTC树脂用Fmoc/tBu固相法以逐一偶联的方式依次连接具有保护基团的氨基酸,合成得到侧链全保护的亮丙瑞林前体肽-树脂;
3)配制三氟乙醇/DCM溶液作为切割试剂,浓度优选为20%v/v,切割试剂冷却后,加入到反应釜中反应,对侧链全保护的亮丙瑞林前体肽-树脂进行切割,得到侧链全保护的亮丙瑞林前体肽;
4)将侧链全保护的亮丙瑞林前体肽进行乙胺化修饰,向反应釜中加入HAT U、2,4,6-三甲基吡啶、乙胺作为反应试剂,搅拌,反应0.5-3h,得到侧链全保护的亮丙瑞林;
5)对侧链全保护的亮丙瑞林进行侧链切割,切割液为TFA/水混合溶液,混合比优选体积比95/5,先低温下加入侧链全保护的亮丙瑞林,再缓慢恢复至室温,反应1.5-3.5h,低温下旋蒸、沉淀、离心,得到亮丙瑞林粗肽;
6)对亮丙瑞林粗肽进行CM纯化、HPLC纯化,浓缩,溶解、冻干,得到高纯度的亮丙瑞林原料药。
2.根据权利要求1所述的制备亮丙瑞林的方法,其中步骤4)中的侧链全保护的亮丙瑞林前体肽与HATU、2,4,6-三甲基吡啶三者的摩尔量比为1∶2-3∶1.5-2。
3.根据权利要求1所述的制备亮丙瑞林的方法,其中步骤4)中的侧链全保护的亮丙瑞林前体肽与HATU、2,4,6-三甲基吡啶三者的摩尔量比为1∶2∶2。
4.根据权利要求1所述的制备亮丙瑞林的方法,其中步骤4)中的HATU、2,4,6-三甲基吡啶、乙胺的摩尔比为1∶1∶1。
5.根据权利要求1所述的制备亮丙瑞林的方法,其中步骤4)中的反应时间为1h。
6.根据权利要求1所述的制备亮丙瑞林的方法,其中步骤5)中的反应是在0-5℃下进行的。
7.根据权利要求1所述的制备亮丙瑞林的方法,其中步骤6)中的CM纯化包括:将亮丙瑞林粗品用pH6.0、0.05mol/L的乙酸钠溶液溶解,0.45μm膜过滤,上层析柱CM-Sephadex G25,上样完毕后用pH6.0、0.05mol/L的乙酸钠缓冲液洗涤至稳定,再用pH6.0、0.5mol/L乙酸钠缓冲液进行洗脱,测定洗脱流出液在280nm处的吸光值,出峰时开始收集,至吸光值不在变化时停止收集。
8.根据权利要求1所述的制备亮丙瑞林的方法,其中步骤6)中所述HPLC纯化的操作为:收集的预处理洗脱液经0.45μm膜过滤后上已经过溶剂A平衡好的制备型HPLC柱;用溶剂A和溶剂B进行梯度洗脱,收集合并所有纯度≥99.5%的收集液即得醋酸亮丙瑞林中间体;其中溶剂A为0.5%v/v乙酸和5%v/v乙腈混合水溶液,溶剂B为0.5%v/v乙酸和80%v/v乙腈混合水溶液。
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