CN107517854A - 一种圆叶桉的组培快繁方法 - Google Patents

一种圆叶桉的组培快繁方法 Download PDF

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Abstract

本发明公开了一种圆叶桉的组培快繁方法,本发明选择生长良好、无病虫害的圆叶桉,选取带腋芽的茎段或顶芽为外植体,在无菌条件下依次使用75%乙醇和0.1%升汞溶液进行消毒,建立无菌体系,通过改量培养基成分和调控植物外源激素,不经过愈伤组织,直接由外植体萌发腋芽或者不定芽,经过对无菌苗的继代增殖培养、壮苗培养、生根培养、炼苗移栽,获得再生植株。本发明具有操作难度低、培养周期短、有效芽多、生根率高、移植成活率高的特点,再生植株保持了母本的优良性状,较传统培育方法大幅缩短育苗时间、节省育苗成本。

Description

一种圆叶桉的组培快繁方法
技术领域
本发明涉及生物组织培养育苗技术领域,特别涉及一种圆叶桉的组培快繁方法。
背景技术
圆叶桉是常绿灌木或小乔木,株高可达3米;幼叶对生,无柄,阔卵形或阔盾形;老叶互生,呈披针形,两面均被白粉,是一种澳大利亚新南威尔士特产的桉树矮林,不耐高温,在华南地区以存高冷地栽培为佳,叶色优雅,枝叶是上等花材,市场常用做切枝,商品名为尤加利。
目前,圆叶桉的栽培以播种和扦插为主,但是由于圆叶桉奇特的叶形,播种繁殖容易产生变异,不能保持母本的优良形状,扦插虽然可以维持母本性状,但是繁殖速度慢、成活率低,大批生产速度太慢。
植物组织培养技术,是利用植物细胞的全能性,在无菌条件下,用离体的植物组织发育成完整的植株,使用植物组培技术,能够保留母本的优良性状、增加增殖速度、节省育苗成本,是大批量培养圆叶桉的有效途径。
因此,发明一种圆叶桉的组培快繁方法来解决上述问题很有必要。
发明内容
本发明的目的在于提供一种圆叶桉的组培快繁方法,以解决上述背景技术中提出的问题。
为实现上述目的,本发明提供如下技术方案:一种圆叶桉的组培快繁方法,采用带腋芽的茎段或顶芽为外植体,利用离体茎段或顶芽直接诱导无菌芽,经过无菌芽的继代增殖培养、壮苗培养、生根培养和炼苗移栽,获得再生植株,该方法的具体步骤如下:
(1)选取优良母本:优良母本是指经测算比较,生长速度快、抗虫指标好、叶片形状圆整和叶片颜色好看的植株;
(2)外植体的选择:外植体应选取新鲜的带腋芽茎段,去掉所有叶片,保留所有腋芽;
(3)外植体的预处理:外植体的预处理是指:用自来水冲洗3-5min,再用软毛刷沾取洗洁精轻轻刷洗2-3遍,用纯净水冲洗10-15min;在超净工作台上,将茎条分成每段5cm左右,带1-3个茎结的茎段,便于灭菌操作;
(4)无菌体系的建立:无菌体系的建立通过75%乙醇和0.1%升汞的处理实现,将带消毒材料用无菌水清洗2-4遍,再用75%乙醇处理15-25S,无菌水清洗3-5遍,每次浸泡清洗2-3min,洗去残留的乙醇,再用0.1%升汞溶液浸泡并适当搅拌7-10min,无菌水清洗4-6遍,每次浸泡清洗2-3min,洗去残留的升汞溶液,用灭过菌的冷却好的镊子夹取清洗好的茎段,放在无菌的接种盘上,切去茎段两端各0.5-1cm,减少升汞毒害,再切割成含有一个茎结的茎段,接种于无菌芽诱导的培养基;
(5)启动培养:外植体的腋芽或顶芽直接萌发,温度23-27℃,光照12h/d,光照强度2000-2500Lux;
(6)继代增殖培养:侧芽和不定芽不断生长,当达到1-1.5cm时,切割转接至继代增殖培养基,在温度23-27℃,光照12h/d,光照强度2000-2500Lux条件下培养,随着丛生芽的增加,反复继代,无菌芽苗数量不断增加;
(7)壮苗培养:增殖苗大多数都较为瘦弱,将增殖苗接种到壮苗培养基中,在温度23-27℃,光照12h/d,光照强度2000-2500Lux条件下培养;
(8)生根培养:当芽苗长到2.5-3cm,并且有3-4对叶片时,去除芽苗本身的根,转入生根培养基,在温度23-27℃,光照12h/d,光照强度1500-2000Lux条件下培养,当冒出根点或者短根时,调整温度23-27℃,光照12h/d,光照强度2500-3000Lux条件下培养;
(9)炼苗移栽:待观察到苗根系明显时转至大棚,进行炼苗移栽,将培养瓶移至大棚中闭瓶炼苗6天,之后打开瓶盖,加些许水,盖没培养基,防止培养基发霉,开瓶炼苗3天,将生根齐全、根系发达、高3cm以上的瓶苗,洗去培养基,移栽到用高锰酸钾消毒过的基质中,将根系发育较弱的瓶苗,洗去培养基,用生根粉浸泡10-20min,移栽到用高锰酸钾消毒过的基质中,将两种苗分开管理。
优选的,所述步骤(5)中的启动培养基为:MS+6-BA0.7-1.3mg/L+NAA0.3-0.5mg/L+蔗糖30g/L+琼脂粉7g/L,PH5.8-6.0。
优选的,所述步骤(6)中的继代增殖培养基为:MS+6-BA1.3-1.7mg/L+NAA0.1-0.3mg/L+蔗糖30g/L+琼脂粉7g/L,PH5.8-6.0。
优选的,所述步骤(7)中的壮苗培养基为:MS+NAA0.4-0.7mg/L+蔗糖30g/L+琼脂粉7g/L+活性炭0.5g/L,PH6.0-6.5。
优选的,所述步骤(8)中的生根培养基为:MS+IBA0.4-0.7mg/L+蔗糖30g/L+琼脂粉7g/L+活性炭0.5g/L,PH6.0-6.5。
本发明的技术效果和优点:1、采用本发明的诱导小苗培养基的诱导率高达95.7%;2、采用本发明的增殖培养基,增殖倍数达5.2倍,有效苗多;3、采用本发明的生根培养基,平均生根数达3.7根,平均根长4.3cm;4、采用本发明培育的苗成活率高达98.2%;5、在无菌条件下,直接通过离体植物器官诱导无菌苗,再经过反复增殖,快速获得大量的再生植株,达到性状稳定、育苗周期短、生产成本低、苗成活率高的目的。
具体实施方式
下面将结合本发明实施例,对本发明实施例中的技术方案进行清楚、完 整地描述,显然,所描述的实施例仅仅是本发明一部分实施例,而不是全部 的实施例。基于本发明中的实施例,本领域普通技术人员在没有做出创造性 劳动前提下所获得的所有其他实施例,都属于本发明保护的范围。
实施例1:
本发明提供了一种圆叶桉的组培快繁方法,采用带腋芽的茎段或顶芽为外植体,利用离体茎段或顶芽直接诱导无菌芽,经过无菌芽的继代增殖培养、壮苗培养、生根培养和炼苗移栽,获得再生植株,该方法的具体步骤如下:
(1)选取优良母本:优良母本是指经测算比较,生长速度快、抗虫指标好、叶片形状圆整和叶片颜色好看的植株;
(2)外植体的选择:外植体应选取新鲜的带腋芽茎段,去掉所有叶片,保留所有腋芽;
(3)外植体的预处理:外植体的预处理是指:用自来水冲洗3-5min,再用软毛刷沾取洗洁精轻轻刷洗2-3遍,用纯净水冲洗10-15min;在超净工作台上,将茎条分成每段5cm左右,带1-3个茎结的茎段,便于灭菌操作;
(4)无菌体系的建立:无菌体系的建立通过75%乙醇和0.1%升汞的处理实现,将带消毒材料用无菌水清洗2-4遍,再用75%乙醇处理15-25S,无菌水清洗3-5遍,每次浸泡清洗2-3min,洗去残留的乙醇,再用0.1%升汞溶液浸泡并适当搅拌7-10min,无菌水清洗4-6遍,每次浸泡清洗2-3min,洗去残留的升汞溶液,用灭过菌的冷却好的镊子夹取清洗好的茎段,放在无菌的接种盘上,切去茎段两端各0.5-1cm,减少升汞毒害,再切割成含有一个茎结的茎段,接种于无菌芽诱导的培养基;
(5)启动培养:外植体的腋芽或顶芽直接萌发,温度23℃,光照12h/d,光照强度2000-2500Lux,启动培养基为:MS+6-BA0.7-1.3mg/L+NAA0.3-0.5mg/L+蔗糖30g/L+琼脂粉7g/L,PH5.8-6.0;
(6)继代增殖培养:侧芽和不定芽不断生长,当达到1-1.5cm时,切割转接至继代增殖培养基,在温度23℃,光照12h/d,光照强度2000-2500Lux条件下培养,随着丛生芽的增加,反复继代,无菌芽苗数量不断增加,继代增殖培养基为:MS+6-BA1.3-1.7mg/L+NAA0.1-0.3mg/L+蔗糖30g/L+琼脂粉7g/L,PH5.8-6.0;
(7)壮苗培养:增殖苗大多数都较为瘦弱,将增殖苗接种到壮苗培养基中,在温度23℃,光照12h/d,光照强度2000-2500Lux条件下培养,壮苗培养基为:MS+NAA0.4-0.7mg/L+蔗糖30g/L+琼脂粉7g/L+活性炭0.5g/L,PH6.0-6.5;
(8)生根培养:当芽苗长到2.5-3cm,并且有3-4对叶片时,去除芽苗本身的根,转入生根培养基,在温度23℃,光照12h/d,光照强度1500-2000Lux条件下培养,当冒出根点或者短根时,调整温度23-27℃,光照12h/d,光照强度2500-3000Lux条件下培养,生根培养基为:MS+IBA0.4-0.7mg/L+蔗糖30g/L+琼脂粉7g/L+活性炭0.5g/L,PH6.0-6.5;
(9)炼苗移栽:待观察到苗根系明显时转至大棚,进行炼苗移栽,将培养瓶移至大棚中闭瓶炼苗6天,之后打开瓶盖,加些许水,盖没培养基,防止培养基发霉,开瓶炼苗3天,将生根齐全、根系发达、高3cm以上的瓶苗,洗去培养基,移栽到用高锰酸钾消毒过的基质中,将根系发育较弱的瓶苗,洗去培养基,用生根粉浸泡10min,移栽到用高锰酸钾消毒过的基质中,将两种苗分开管理。
实施例2:
本发明提供了一种圆叶桉的组培快繁方法,采用带腋芽的茎段或顶芽为外植体,利用离体茎段或顶芽直接诱导无菌芽,经过无菌芽的继代增殖培养、壮苗培养、生根培养和炼苗移栽,获得再生植株,该方法的具体步骤如下:
(1)选取优良母本:优良母本是指经测算比较,生长速度快、抗虫指标好、叶片形状圆整和叶片颜色好看的植株;
(2)外植体的选择:外植体应选取新鲜的带腋芽茎段,去掉所有叶片,保留所有腋芽;
(3)外植体的预处理:外植体的预处理是指:用自来水冲洗3-5min,再用软毛刷沾取洗洁精轻轻刷洗2-3遍,用纯净水冲洗10-15min;在超净工作台上,将茎条分成每段5cm左右,带1-3个茎结的茎段,便于灭菌操作;
(4)无菌体系的建立:无菌体系的建立通过75%乙醇和0.1%升汞的处理实现,将带消毒材料用无菌水清洗2-4遍,再用75%乙醇处理15-25S,无菌水清洗3-5遍,每次浸泡清洗2-3min,洗去残留的乙醇,再用0.1%升汞溶液浸泡并适当搅拌7-10min,无菌水清洗4-6遍,每次浸泡清洗2-3min,洗去残留的升汞溶液,用灭过菌的冷却好的镊子夹取清洗好的茎段,放在无菌的接种盘上,切去茎段两端各0.5-1cm,减少升汞毒害,再切割成含有一个茎结的茎段,接种于无菌芽诱导的培养基;
(5)启动培养:外植体的腋芽或顶芽直接萌发,温度25℃,光照12h/d,光照强度2000-2500Lux,启动培养基为:MS+6-BA0.7-1.3mg/L+NAA0.3-0.5mg/L+蔗糖30g/L+琼脂粉7g/L,PH5.8-6.0;
(6)继代增殖培养:侧芽和不定芽不断生长,当达到1-1.5cm时,切割转接至继代增殖培养基,在温度25℃,光照12h/d,光照强度2000-2500Lux条件下培养,随着丛生芽的增加,反复继代,无菌芽苗数量不断增加,继代增殖培养基为:MS+6-BA1.3-1.7mg/L+NAA0.1-0.3mg/L+蔗糖30g/L+琼脂粉7g/L,PH5.8-6.0;
(7)壮苗培养:增殖苗大多数都较为瘦弱,将增殖苗接种到壮苗培养基中,在温度25℃,光照12h/d,光照强度2000-2500Lux条件下培养,壮苗培养基为:MS+NAA0.4-0.7mg/L+蔗糖30g/L+琼脂粉7g/L+活性炭0.5g/L,PH6.0-6.5;
(8)生根培养:当芽苗长到2.5-3cm,并且有3-4对叶片时,去除芽苗本身的根,转入生根培养基,在温度25℃,光照12h/d,光照强度1500-2000Lux条件下培养,当冒出根点或者短根时,调整温度23-27℃,光照12h/d,光照强度2500-3000Lux条件下培养,生根培养基为:MS+IBA0.4-0.7mg/L+蔗糖30g/L+琼脂粉7g/L+活性炭0.5g/L,PH6.0-6.5;
(9)炼苗移栽:待观察到苗根系明显时转至大棚,进行炼苗移栽,将培养瓶移至大棚中闭瓶炼苗6天,之后打开瓶盖,加些许水,盖没培养基,防止培养基发霉,开瓶炼苗3天,将生根齐全、根系发达、高3cm以上的瓶苗,洗去培养基,移栽到用高锰酸钾消毒过的基质中,将根系发育较弱的瓶苗,洗去培养基,用生根粉浸泡15min,移栽到用高锰酸钾消毒过的基质中,将两种苗分开管理。
实施例3:
本发明提供了一种圆叶桉的组培快繁方法,采用带腋芽的茎段或顶芽为外植体,利用离体茎段或顶芽直接诱导无菌芽,经过无菌芽的继代增殖培养、壮苗培养、生根培养和炼苗移栽,获得再生植株,该方法的具体步骤如下:
(1)选取优良母本:优良母本是指经测算比较,生长速度快、抗虫指标好、叶片形状圆整和叶片颜色好看的植株;
(2)外植体的选择:外植体应选取新鲜的带腋芽茎段,去掉所有叶片,保留所有腋芽;
(3)外植体的预处理:外植体的预处理是指:用自来水冲洗3-5min,再用软毛刷沾取洗洁精轻轻刷洗2-3遍,用纯净水冲洗10-15min;在超净工作台上,将茎条分成每段5cm左右,带1-3个茎结的茎段,便于灭菌操作;
(4)无菌体系的建立:无菌体系的建立通过75%乙醇和0.1%升汞的处理实现,将带消毒材料用无菌水清洗2-4遍,再用75%乙醇处理15-25S,无菌水清洗3-5遍,每次浸泡清洗2-3min,洗去残留的乙醇,再用0.1%升汞溶液浸泡并适当搅拌7-10min,无菌水清洗4-6遍,每次浸泡清洗2-3min,洗去残留的升汞溶液,用灭过菌的冷却好的镊子夹取清洗好的茎段,放在无菌的接种盘上,切去茎段两端各0.5-1cm,减少升汞毒害,再切割成含有一个茎结的茎段,接种于无菌芽诱导的培养基;
(5)启动培养:外植体的腋芽或顶芽直接萌发,温度27℃,光照12h/d,光照强度2000-2500Lux,启动培养基为:MS+6-BA0.7-1.3mg/L+NAA0.3-0.5mg/L+蔗糖30g/L+琼脂粉7g/L,PH5.8-6.0;
(6)继代增殖培养:侧芽和不定芽不断生长,当达到1-1.5cm时,切割转接至继代增殖培养基,在温度27℃,光照12h/d,光照强度2000-2500Lux条件下培养,随着丛生芽的增加,反复继代,无菌芽苗数量不断增加,继代增殖培养基为:MS+6-BA1.3-1.7mg/L+NAA0.1-0.3mg/L+蔗糖30g/L+琼脂粉7g/L,PH5.8-6.0;
(7)壮苗培养:增殖苗大多数都较为瘦弱,将增殖苗接种到壮苗培养基中,在温度27℃,光照12h/d,光照强度2000-2500Lux条件下培养,壮苗培养基为:MS+NAA0.4-0.7mg/L+蔗糖30g/L+琼脂粉7g/L+活性炭0.5g/L,PH6.0-6.5;
(8)生根培养:当芽苗长到2.5-3cm,并且有3-4对叶片时,去除芽苗本身的根,转入生根培养基,在温度27℃,光照12h/d,光照强度1500-2000Lux条件下培养,当冒出根点或者短根时,调整温度23-27℃,光照12h/d,光照强度2500-3000Lux条件下培养,生根培养基为:MS+IBA0.4-0.7mg/L+蔗糖30g/L+琼脂粉7g/L+活性炭0.5g/L,PH6.0-6.5;
(9)炼苗移栽:待观察到苗根系明显时转至大棚,进行炼苗移栽,将培养瓶移至大棚中闭瓶炼苗6天,之后打开瓶盖,加些许水,盖没培养基,防止培养基发霉,开瓶炼苗3天,将生根齐全、根系发达、高3cm以上的瓶苗,洗去培养基,移栽到用高锰酸钾消毒过的基质中,将根系发育较弱的瓶苗,洗去培养基,用生根粉浸泡20min,移栽到用高锰酸钾消毒过的基质中,将两种苗分开管理。
最后应说明的是:以上所述仅为本发明的优选实施例而已,并不用于限制本发明,尽管参照前述实施例对本发明进行了详细的说明,对于本领域的技术人员来说,其依然可以对前述各实施例所记载的技术方案进行修改,或者对其中部分技术特征进行等同替换,凡在本发明的精神和原则之内,所作的任何修改、等同替换、改进等,均应包含在本发明的保护范围之内。

Claims (5)

1.一种圆叶桉的组培快繁方法,其特征在于:采用带腋芽的茎段或顶芽为外植体,利用离体茎段或顶芽直接诱导无菌芽,经过无菌芽的继代增殖培养、壮苗培养、生根培养和炼苗移栽,获得再生植株,该方法的具体步骤如下:
(1)选取优良母本:优良母本是指经测算比较,生长速度快、抗虫指标好、叶片形状圆整和叶片颜色好看的植株;
(2)外植体的选择:外植体应选取新鲜的带腋芽茎段,去掉所有叶片,保留所有腋芽;
(3)外植体的预处理:外植体的预处理是指:用自来水冲洗3-5min,再用软毛刷沾取洗洁精轻轻刷洗2-3遍,用纯净水冲洗10-15min;在超净工作台上,将茎条分成每段5cm左右,带1-3个茎结的茎段,便于灭菌操作;
(4)无菌体系的建立:无菌体系的建立通过75%乙醇和0.1%升汞的处理实现,将带消毒材料用无菌水清洗2-4遍,再用75%乙醇处理15-25S,无菌水清洗3-5遍,每次浸泡清洗2-3min,洗去残留的乙醇,再用0.1%升汞溶液浸泡并适当搅拌7-10min,无菌水清洗4-6遍,每次浸泡清洗2-3min,洗去残留的升汞溶液,用灭过菌的冷却好的镊子夹取清洗好的茎段,放在无菌的接种盘上,切去茎段两端各0.5-1cm,减少升汞毒害,再切割成含有一个茎结的茎段,接种于无菌芽诱导的培养基;
(5)启动培养:外植体的腋芽或顶芽直接萌发,温度23-27℃,光照12h/d,光照强度2000-2500Lux;
(6)继代增殖培养:侧芽和不定芽不断生长,当达到1-1.5cm时,切割转接至继代增殖培养基,在温度23-27℃,光照12h/d,光照强度2000-2500Lux条件下培养,随着丛生芽的增加,反复继代,无菌芽苗数量不断增加;
(7)壮苗培养:增殖苗大多数都较为瘦弱,将增殖苗接种到壮苗培养基中,在温度23-27℃,光照12h/d,光照强度2000-2500Lux条件下培养;
(8)生根培养:当芽苗长到2.5-3cm,并且有3-4对叶片时,去除芽苗本身的根,转入生根培养基,在温度23-27℃,光照12h/d,光照强度1500-2000Lux条件下培养,当冒出根点或者短根时,调整温度23-27℃,光照12h/d,光照强度2500-3000Lux条件下培养;
(9)炼苗移栽:待观察到苗根系明显时转至大棚,进行炼苗移栽,将培养瓶移至大棚中闭瓶炼苗6天,之后打开瓶盖,加些许水,盖没培养基,防止培养基发霉,开瓶炼苗3天,将生根齐全、根系发达、高3cm以上的瓶苗,洗去培养基,移栽到用高锰酸钾消毒过的基质中,将根系发育较弱的瓶苗,洗去培养基,用生根粉浸泡10-20min,移栽到用高锰酸钾消毒过的基质中,将两种苗分开管理。
2.根据权利要求1所述的一种圆叶桉的组培快繁方法,其特征在于:所述步骤(5)中的启动培养基为:MS+6-BA0.7-1.3mg/L+NAA0.3-0.5mg/L+蔗糖30g/L+琼脂粉7g/L,PH5.8-6.0。
3.根据权利要求1所述的一种圆叶桉的组培快繁方法,其特征在于:所述步骤(6)中的继代增殖培养基为:MS+6-BA1.3-1.7mg/L+NAA0.1-0.3mg/L+蔗糖30g/L+琼脂粉7g/L,PH5.8-6.0。
4.根据权利要求1所述的一种圆叶桉的组培快繁方法,其特征在于:所述步骤(7)中的壮苗培养基为:MS+NAA0.4-0.7mg/L+蔗糖30g/L+琼脂粉7g/L+活性炭0.5g/L,PH6.0-6.5。
5.根据权利要求1所述的一种圆叶桉的组培快繁方法,其特征在于:所述步骤(8)中的生根培养基为:MS+IBA0.4-0.7mg/L+蔗糖30g/L+琼脂粉7g/L+活性炭0.5g/L,PH6.0-6.5。
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Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN110574683A (zh) * 2019-10-08 2019-12-17 海南省林业科学研究所 一种新优花卉红冠桉组培快繁方法
CN115250919A (zh) * 2022-08-29 2022-11-01 玉林师范学院 一种大叶桉组织培养方法

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN105379624A (zh) * 2015-12-10 2016-03-09 广西壮族自治区国有东门林场 一种粗皮桉的组培快繁方法
CN105724252A (zh) * 2016-03-02 2016-07-06 广西壮族自治区林业科学研究院 一种促进邓恩桉组培苗生根方法

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN105379624A (zh) * 2015-12-10 2016-03-09 广西壮族自治区国有东门林场 一种粗皮桉的组培快繁方法
CN105724252A (zh) * 2016-03-02 2016-07-06 广西壮族自治区林业科学研究院 一种促进邓恩桉组培苗生根方法

Non-Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
刘捍中等: "《葡萄优质高效栽培》", 30 September 2001, 金盾出版社 *
孙秀梅等: "《农业生物技术》", 31 December 2001, 中国农业出版社 *
江海涛: ""桉树组培快繁研究及其应用进展"", 《现代物业》 *
陈家龙等: ""圆叶桉(Eucalyptus pulverulenta Sims)繁殖技术初探"", 《浙江农业科学》 *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN110574683A (zh) * 2019-10-08 2019-12-17 海南省林业科学研究所 一种新优花卉红冠桉组培快繁方法
CN115250919A (zh) * 2022-08-29 2022-11-01 玉林师范学院 一种大叶桉组织培养方法

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