CN105647825A - 一种同时提高螺旋藻生物质和多糖产率的方法 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及螺旋藻培养积累生物质和多糖,具体的说是一种通过控制营养盐的添加培养螺旋藻,使其生物质和多糖同时积累。将培养至指数生长期的螺旋藻细胞转入营养限制性培养基,自然光照或人工光照,培养至稳定期收获藻细胞,其生物质产率是营养丰富条件下培养的1~4倍,多糖产率比营养丰富条件下培养提高0.8~20倍,多糖含量达到藻干重的45%~80%,比营养丰富条件下培养提高2~6倍。本发明解决了螺旋藻生物质与多糖不能同时积累的矛盾,实现了快速高效地生产螺旋藻多糖,具有营养盐消耗少、生产成本低、多糖含量高等优点,有利于简化下游加工操作,促进螺旋藻多糖的产业化生产。
Description
技术领域
本发明涉及螺旋藻培养积累生物质和多糖,具体的说是一种通过控制营养盐的添加,采用合适的接种密度、光照、温度和pH值培养螺旋藻,使其生物质和多糖同时积累。可用于螺旋藻培养及其多糖的生产以及以螺旋藻多糖为原料的食品、医药、能源等相关领域。
背景技术
螺旋藻是一种的多细胞丝状蓝藻(BlueGreenAlgae),又称蓝细菌(Cyanobacteria),属蓝藻门(Cyanophyta)、蓝藻纲(Cyanophyceae)、颤藻目(Oscillatoriales)、颤藻科(Osciallatoriaceae)、节旋藻属(Arthrospira),主要分布于热带、亚热带地区淡水或盐碱性湖泊中。螺旋藻含有丰富的蛋白质、不饱和脂肪酸、色素、多糖、维生素和微量元素,被认为是21世纪最理想的保健品,目前国内外已将螺旋藻广泛应用于食品、保健品、化妆品、医药、饲料等行业。
螺旋藻多糖是螺旋藻细胞内的一种水溶性多糖,具有抗肿瘤、抗辐射、抗突变等生物活性,能提高机体细胞和体液的免疫功能,抵制癌细胞增殖,减轻辐射所引起的遗传损伤等,在防癌、抗衰老、增强机体免疫力等方面具有广阔的应用前景。此外,螺旋藻多糖主要由葡萄糖残基连接而成,经过水解后可用于发酵法生产生物乙醇、生物丁醇、生物氢、甲烷等生物能源,因此在微藻生物能源领域具有潜在应用价值。然而在营养丰富条件下螺旋藻多糖含量很少,占细胞干重的8%以下,这严重影响了螺旋藻多糖的产量,增加了后续加工提取的成本,使其难于产业化生产。另一方面,在胁迫条件下,微藻细胞倾向于积累糖类和油脂,但同时蛋白质的合成受到阻碍,这会影响细胞的生长和光合固碳效率,降低生物质的产率,从而使多糖的产率没有明显提高。因此,开发一种积累螺旋藻多糖,同时不影响细胞生物质生产的方法,是目前亟待解决的问题。
发明内容
本发明旨在提供一种同时提高螺旋藻生物质和多糖产率的方法。为了实现上述目的,本发明采用的技术方案为:
将培养至指数生长期的螺旋藻细胞转入营养限制性培养基,通过控制营养盐的添加,采用合适的接种密度、光照、温度和pH值培养螺旋藻,使其生物质和多糖同时积累。可按如下步骤具体操作:
1)藻种的培养
螺旋藻细胞在营养丰富的培养基中培养,每升水体含:NaHCO33~20g,KCl0~1g,NaCl0~2g,FeSO4·7H2O0.01~0.02g,MgCl2·6H2O0~0.2g,CaCl2·2H2O0~0.05g,H3BO30~3mg,MnCl2·4H2O0~2mg,Na2MoO4·2H2O0~0.5mg,ZnSO4·7H2O0~0.3mg,CuSO4·5H2O0~0.3mg,并通过添加NaNO3控制培养基中N浓度在0.16~0.64g/L,通过添加K2HPO4和H3PO4控制P浓度在0.04~0.16g/L,通过添加K2SO4和MgSO4·7H2O控制S浓度在0.2~0.4g/L;初始接种密度OD560为0.3~0.5,温度20~35℃,pH值8~12,自然条件下光照或人工光暗比12h:12h~24h:0h光照,培养液受光面光照强度80~3000μmol/(m-2·s-1),培养至指数生长期。
2)藻细胞生物质和多糖的同时积累
将培养至指数生长期的螺旋藻细胞作为藻种,将原藻种液经离心或过滤洗涤后得到藻泥,接入新鲜营养限制性培养基并调整初始接种密度OD560为0.3~0.5;或原藻种液经新鲜新鲜营养限制性培养基直接稀释至初始接种密度OD560为0.3~0.5;温度20~35℃,pH值8~12,自然条件下光照或人工光暗比12h:12h~24h:0h光照,培养液受光面光照强度80~3000μmol/(m-2·s-1),培养至稳定期收获藻细胞。
步骤2)所述营养限制性培养基中每升水体含:NaHCO33~20g,KCl0~1g,NaCl0~2g,FeSO4·7H2O0.01~0.02g,MgCl2·6H2O0~0.2g,CaCl2·2H2O0~0.05g,H3BO30~3mg,MnCl2·4H2O0~2mg,Na2MoO4·2H2O0~0.5mg,ZnSO4·7H2O0~0.3mg,CuSO4·5H2O0~0.3mg,并通过添加NaNO3控制培养基中N浓度在0~10mg/L,通过添加K2HPO4和H3PO4控制P浓度在0.04~0.16g/L,通过添加K2SO4和MgSO4·7H2O控制S浓度在0.2~0.4g/L;或通过添加NaNO3控制培养基中N浓度在0.16~0.64g/L,通过添加K2HPO4和H3PO4控制P浓度在0~1mg/L,通过添加K2SO4和MgSO4·7H2O控制S浓度在0.2~0.4g/L;或通过添加NaNO3控制培养基中N浓度在0.16~0.64g/L,通过添加K2HPO4和H3PO4控制P浓度在0.04~0.16g/L,通过添加K2SO4和MgSO4·7H2O控制S浓度在1.0~1.5mg/L。
步骤1)和2)所述营养限制性培养基的水体来源为天然盐碱水、地下水、自来水或积累多糖的藻细胞收获后的培养废水。
本发明与现有技术相比具有如下优点:
1.实现了螺旋藻生物质和多糖产率的同时提高:依此方法培养螺旋藻,其生物质产率是营养丰富条件下培养的1~4倍,多糖产率比营养丰富条件下培养提高0.8~20倍,多糖含量达到藻干重的45%~80%,比营养丰富条件下培养提高2~6倍。
2.培养成本低,多糖积累迅速:利用营养限制性培养基培养螺旋藻,可以降低营养盐的消耗,提高单位营养盐投入的产品产出,有利于降低生产成本;多糖在藻细胞内迅速积累,一般3~4天可以达到最大多糖产率,生产周期短。
3.螺旋藻多糖生产的可持续性好:利用天然盐碱水培养并循环利用采收废水,可以节约淡水资源,减少污水排放,同时可以在不适合粮食种植和人类居住的碱湖附近进行培养,不占用耕地。
总之,本发明解决了螺旋藻生物质与多糖不能同时积累的矛盾,实现了快速高效地生产螺旋藻多糖,具有营养盐消耗少、生产成本低、多糖含量高等优点,有利于简化下游加工操作,促进螺旋藻多糖的产业化生产,可广泛应用于以螺旋藻多糖为原料的食品、医药、能源等相关领域。
附图说明
图1为本发明在营养丰富(+N+P+S)、P限制(-P)和S限制(-S)下培养螺旋藻的生物质积累情况。
图2为本发明在营养丰富(+N+P+S)、P限制(-P)和S限制(-S)下培养螺旋藻的多糖含量变化情况。
具体实施方式
下面通过具体实施例对本发明的方法和结果进行说明。本发明通过控制营养盐的添加,采用合适的接种密度、光照、温度和pH值培养螺旋藻,使其生物质和多糖同时积累。
实施例1
考察P限制和S限制条件下螺旋藻生物质和多糖积累情况。
藻种培养和多糖积累过程均在500mL柱形鼓泡式光生物反应器(玻璃材质,直径50mm,高400mm)进行。
1)藻种的培养
螺旋藻细胞在营养丰富的培养基(Zarrouk)中培养,培养基用去离子水配制,每升水体含:NaHCO316.8g,K2HPO40.5g,NaNO32.5g,K2SO41g,NaCl1g,MgSO4·7H2O0.2g,CaCl2·2H2O0.04g,FeSO4·7H2O0.01g,H3BO32.86mg,MnCl2·4H2O1.86mg,ZnSO4·7H2O0.22mg,Na2MoO4·2H2O0.39mg,CuSO4·5H2O0.08mg。初始接种密度OD560为0.5,培养温度30±2℃,连续单排照光,光照强度200μmolm–2s–1,通入空气流量0.4vvm。
2)藻细胞生物质和多糖的同时积累
将培养至OD560为3的细胞以4000rpm离心5min,弃上清,藻泥用不含K2HPO4、K2SO4和MgSO4·7H2O的Zarrouk培养基(Zarrouk-P-S)洗一次后重悬于Zarrouk-P-S中,调整细胞密度OD560为0.5,接种于500mL柱形鼓泡式光生物反应器。培养温度30±2℃,连续单排照光,光照强度80μmolm–2s–1,通入空气流量0.4vvm。
营养丰富条件(+N+P+S):每升藻液加入K2HPO40.5g,K2SO41g,MgSO4·7H2O0.2g。
P限制条件(-P):每升藻液加入KCl0.43g,K2SO41g,MgSO4·7H2O0.2g。
S限制条件(-S):每升藻液加入K2HPO40.5g,KCl0.43g,MgCl2·6H2O0.17g。
从图1可以看出,利用上述光照生物反应器进行螺旋藻培养,在初始接种量、温度、光照强度、通气速率等培养条件均一样的情况下,P限制的螺旋藻细胞在培养的7天内生物质积累均高于营养丰富下的生物质积累;在第6天收获细胞,生物质浓度达到2.3g/L,生物质产率达到0.25g/(L·d),比营养丰富条件下生物质产率提高27%。S限制下生物质产率比营养丰富条件下略高。
从图2可以看出,利用上述光照生物反应器进行螺旋藻培养,在初始接种量、温度、光照强度、通气速率等培养条件均一样的情况下,P限制的螺旋藻细胞在培养的第6天多糖占细胞干重含量达到最大值84.5%,比营养丰富条件下提高3.5倍;多糖产率达到0.31g/(L·d),比营养丰富条件下提高5.5倍。S限制的螺旋藻细胞在培养的第2天多糖占细胞干重含量达到45%,比营养丰富条件下提高1倍;多糖产率达到0.23g/(L·d),比营养丰富条件下提高1.7倍。
此实施例说明,P限制和S限制均能同时提高螺旋藻生物质和多糖产率。
实施例2
考察N限制对室内小规模培养螺旋藻的生物质和多糖积累影响。
藻种的培养与实施例1中藻种的培养相同。多糖积累过程在6L塑料方形盆中进行,水深8cm。
将培养至OD560为3的细胞以4000rpm离心5min,弃上清,藻泥用不含NaNO3的Zarrouk培养基(Zarrouk-N)洗一次后重悬于Zarrouk-N中,调整细胞密度OD560为0.5,接种于6L塑料方形盆中,以功率为5W的潜水泵对藻液进行搅拌。培养温度23±2℃,自然条件下光照,藻液表面最大光照强度有90%的时间不超过84.5μmolm–2s–1。
营养丰富条件(+N):每升藻液加入NaNO32.5g。
N限制条件(-N):每升藻液加入NaCl1.72g。
培养至第4天收获,-N下生物质产量为0.41g/L,是+N下的1.2倍;-N下生物质产率达到0.020g/(L·d),比+N下提高3倍;-N下多糖含量达到细胞干重的74.3%,比+N下提高6.4倍。
此实施例说明,N限制能同时提高螺旋藻生物质和多糖产率。
实施例3
利用N限制在室外跑道池大规模培养螺旋藻,提高生物质和多糖产率。
藻种培养和多糖积累过程均在室外1亩跑道池中进行,水深30cm,水流速度20cm/s。
1)藻种的培养
螺旋藻细胞在营养丰富的天然母液碱培养基(MYJ)中培养,培养基用地下淡水水配制,每升水体含:鄂尔多斯高原天然碱湖所产母液碱6g(含NaHCO3约3.4g),NaNO31g,KCl0.5g,H3PO40.12g,FeSO4·7H2O0.01g,MgSO4·7H2O0.01g。初始接种密度OD560为0.3,培养温度32±5℃,自然条件光照,藻液表面最大光照强度3000μmolm–2s–1。
2)藻细胞生物质和多糖的同时积累
将培养至OD560为0.45的细胞经80目滤网过滤,用地下水洗涤3次,得到含水量约90%的藻泥,将其接入1亩跑道池中,用不含NaNO3的MYJ培养基重悬混匀,调整细胞密度OD560为0.4,培养温度32±5℃,自然条件光照,藻液表面最大光照强度3000μmolm–2s–1。
营养丰富条件(+N):每升藻液加入NaNO31g。
N限制条件(-N):藻液中不加N源。
培养至第3天收获,-N下生物质产量为0.15g/L,是+N下的1.25倍;-N下生物质产率和多糖产率分别达到0.056g/(L·d)和0.062g/(L·d),分别是+N下的1.4倍和21倍;-N下多糖含量达到细胞干重的51.8%,比+N下提高5.5倍;
此实施例说明,利用N限制在室外跑道池大规模培养螺旋藻,能有效提高生物质和多糖产率,具有广阔的应用前景。
Claims (4)
1.一种同时提高螺旋藻生物质和多糖产率的方法,其特征在于:
将培养至指数生长期的螺旋藻细胞作为藻种,转入营养限制性培养基,初始接种密度OD560为0.3~0.5,温度20~35℃,pH值8~12,自然条件下光照或人工光暗比12h:12h~24h:0h光照,培养液受光面光照强度80~3000μmol/(m-2·s-1),培养至稳定期收获藻细胞,多糖含量达到藻干重的45%~80%。
2.按照权利要求1所述的方法,其特征在于:转入营养限制性培养基的方式为:原藻种液经离心或过滤洗涤后得到藻泥,接入新鲜培养基并调整至所需细胞密度;或原藻种液经新鲜培养基直接稀释至所需细胞密度。
3.按照权利要求1所述的方法,其特征在于:所述营养限制性培养基中每升水体含:NaHCO33~20g,KCl0~1g,NaCl0~2g,FeSO4·7H2O0.01~0.02g,MgCl2·6H2O0~0.2g,CaCl2·2H2O0~0.05g,H3BO30~3mg,MnCl2·4H2O0~2mg,Na2MoO4·2H2O0~0.5mg,ZnSO4·7H2O0~0.3mg,CuSO4·5H2O0~0.3mg,并通过添加NaNO3控制培养基中N浓度在0~10mg/L,通过添加K2HPO4和H3PO4控制P浓度在0.04~0.16g/L,通过添加K2SO4和MgSO4·7H2O控制S浓度在0.2~0.4g/L;或通过添加NaNO3控制培养基中N浓度在0.16~0.64g/L,通过添加K2HPO4和H3PO4控制P浓度在0~1mg/L,通过添加K2SO4和MgSO4·7H2O控制S浓度在0.2~0.4g/L;或通过添加NaNO3控制培养基中N浓度在0.16~0.64g/L,通过添加K2HPO4和H3PO4控制P浓度在0.04~0.16g/L,通过添加K2SO4和MgSO4·7H2O控制S浓度在1.0~1.5mg/L。
4.按照权利要求3所述的方法,其特征在于:所述培养基的水体来源为天然盐碱水、地下水、自来水或积累多糖的藻细胞收获后的培养废水。
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Date | Code | Title | Description |
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C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
GR01 | Patent grant | ||
GR01 | Patent grant | ||
CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee | ||
CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee |
Granted publication date: 20190521 Termination date: 20211113 |