CN105624176A - 过表达尿苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶基因的工程菌及构建 - Google Patents

过表达尿苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶基因的工程菌及构建 Download PDF

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Abstract

过表达尿苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶基因的工程菌及构建,属于基因工程及微生物发酵技术领域。克隆了多糖絮凝剂合成途径的关键酶尿苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶基因,利用大肠杆菌-芽孢杆菌穿梭质粒构建重组表达载体。通过电转化的方法将重组质粒导入到地衣芽孢杆菌,构建了重组地衣芽孢杆菌HN301-2,构建的重组地衣芽孢杆菌比出发菌株的多糖絮凝剂产量提高了15.6%,发酵液絮凝活性提高了70%。可望用于多糖絮凝剂的工业化生产,提高产量,降低成本。

Description

过表达尿苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶基因的工程菌及构建
技术领域
本发明属于基因工程及微生物发酵技术领域,具体是涉及一株过表达尿苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶基因的地衣芽孢杆菌基因工程菌及其构建方法。
背景技术
尿苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶(UDP-glucosepyrophosphorylase,UGPase)在植物、动物和细菌中广泛分布,是一种与糖代谢密切相关的酶。它催化生成的尿苷二磷酸葡萄糖(UDPG)是葡萄糖的主要活化形式,可作为葡萄糖基的供体,在细胞内作为蔗糖、淀粉、纤维素、半纤维素、果胶质以及糖脂、糖蛋白、糖原、β-葡聚糖等多种碳水化合物的前体。已有研究表明尿苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶基因(gtaB)是多糖生物合成的关键酶基因(JournalofBacteriology,176(9):2611-2618;BiochemicalJournal,370(1):995-1001)。
微生物絮凝剂(Microbialflocculant,MBF)是微生物分泌的能够使悬浮液中的固体颗粒、菌体、细胞和胶状物絮凝沉淀的大分子化合物,主要成分有多糖、糖蛋白、蛋白质、纤维素和DNA等。微生物絮凝剂具有安全、高效、可生物降解和对环境无污染等优势,且能产生絮凝剂的微生物种类多、生长快、易于采用工程手段而实现产业化。因此微生物絮凝剂的开发前景十分看好。目前,多糖生物絮凝剂已经应用于去除纺织印染废水中的色素(ColloidsandSurfacesB-Biointerfaces,2005,44(4):179-186.),还可以去除工业废水中的重金属离子和其它悬浮污染物(BioresourceTechnology,2007,98(2):361-367.)。然而多糖絮凝剂产量低、成本较高,制约着它的大规模工业化应用。目前,对于培养基、培养条件、生长因子等外部因素影响多糖絮凝剂合成的报道已经很多(ProcessBiochemistry,2014,49(4:576-582;ColloidsandSurfacesB:Biointerfaces,2014,116:257-264)。而从地衣芽孢杆菌的遗传及生理学角度对其多糖絮凝剂合成量影响的报道甚是少见。由于多糖絮凝剂结构复杂,且大多数针对多糖的研究并不关注絮凝活性,所以有关多糖絮凝剂代谢途径的研究还较少,而通过分子生物学技术改造菌株提高多糖絮凝剂产量的报道几乎没有。因此通过基因工程技术构建高产优良菌株,进一步提高多糖絮凝剂活性及产量,具有重要的经济价值及社会意义。
本申请人在中国专利CN101503709中公开利用地衣芽孢杆菌制备生物絮凝剂的方法,其中,微生物地衣芽孢杆菌(Bacilluslicheniformis)已于2009年01月14日保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,保藏中心登记入册编号为CGMCCNo.2876。
发明内容
本发明的目的在于针对现有技术中多糖絮凝剂絮凝活性不高、调控机理不明等问题,提供一株过表达尿苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶基因(gtaB)的地衣芽孢杆菌基因工程菌及其构建方法。
所述过表达尿苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶基因(gtaB)是编码尿苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶的基因。尿苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶催化生成的尿苷二磷酸葡萄糖(UDPG)是葡萄糖的主要活化形式,也是合成多糖絮凝剂的必需前体,基于以上理论分析,过表达gtaB基因,能够增大多糖絮凝剂合成途径的代谢流量,有利于提高多糖絮凝剂的产量,降低成本。
利用PCR扩增克隆多糖絮凝剂合成途径的关键酶尿苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶基因gtaB。
所述过表达尿苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶基因(gtaB)的核苷酸序列如序列表中SEQIDNo:1所示。
所述过表达尿苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶基因(gtaB)的地衣芽孢杆菌基因工程菌的制备方法如下:
将过表达尿苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶基因(gtaB)片段连接到表达载体上,然后利用电转化的方法导入到地衣芽孢杆菌(Bacilluslicheniformis)中,通过抗性筛选获得目的基因的工程菌,即过表达尿苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶基因(gtaB)的地衣芽孢杆菌基因工程菌。
所述地衣芽孢杆菌(Bacilluslicheniformis)已于2009年01月14日保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,保藏中心登记入册编号为CGMCCNo.2876(参见本申请人的在先专利CN101503709)。
所述表达载体为游离载体,优选的所述表达载体为本实验室构建的表达载体PHY300PLK-PamyL-TTamyL。所述表达载体的启动子为地衣芽孢杆菌(Bacilluslicheniformis)α-淀粉酶基因的启动子PamyL。
所述过表达尿苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶基因的地衣芽孢杆菌基因工程菌的构建方法,包括以下步骤:
(1)设计PCR引物扩增尿苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶基因gtaB;
(2)将扩增得到的目的基因插入到PHY300PLK-PamyL-TTamyL组成型启动子PamyL下游多克隆位点,得到PHY300-gtaB过表达质粒;
(3)然后将PHY300-gtaB过表达质粒导入到E.coliDH5α中,以备扩增后电转化;
(4)将经提取、浓缩后的PHY300-gtaB过表达质粒电转化地衣芽孢杆菌,37℃复苏5h后,涂布四环素抗性平板,再在37℃培养12h,筛选转化子;
(5)转化子经质粒提取后,利用PCR和双酶切进行验证,从而获得过表达尿苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶基因的地衣芽孢杆菌重组菌HN301-2。
所述过表达尿苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶基因的地衣芽孢杆菌可在制备多糖絮凝剂中应用,所述多糖絮凝剂的制备方法包括以下步骤:
(1)刮一环地衣芽孢杆菌重组菌HN301-2接种于液体种子培养基中培养,得种子培养液;
(2)按体积百分比以4%的接种量接种于多糖絮凝剂发酵培养基中培养,得发酵液;
(3)将发酵液离心收集上清液,再用乙醇提取,所得提取液冷冻真空干燥后即得多糖絮凝剂。
在步骤(1)中,所述培养的条件可为:35~37℃,200r/min培养12~16h。
在步骤(2)中,所述培养的条件可为:在30~40℃,150~300r/min条件下培养50~60h,优选在37℃,200r/min的条件下培养48~56h。
在步骤(3)中,所述乙醇与上清液的体积比可为3∶1;所述提取的条件可为:离心的速度为6000~8000rpm,离心的时间为10~15min,离心的温度为4℃。
本发明的技术效果在于:本发明提供了能提高多糖絮凝剂产量的的基因工程菌的构建方法。该方法包括以下过程:克隆多糖絮凝剂合成途径的关键酶尿苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶基因(gtaB),利用大肠杆菌-芽孢杆菌穿梭质粒构建重组表达载体-。通过电转化的方法将重组质粒导入到地衣芽孢杆菌,通过四环素筛选转化子,然后通过PCR和双酶切对对基因工程菌进行验证(如图1),从而构建了地衣芽孢杆菌重组菌HN301-2,本发明构建的地衣芽孢杆菌重组菌HN301-2比出发菌株的多糖絮凝剂产量提高了15.6%,发酵液絮凝活性提高了70%(如图2)。可望用于多糖絮凝剂的工业化生产,提高产量,降低成本。
附图说明
图1为重组表达质粒PHY300-gtaB的PCR和双酶切验证结果图,其中泳道1:重组质粒PHY300-gtaB,泳道2:KpnI单酶切重组质粒PHY300-gtaB,泳道3:KpnI和SpeI双酶切重组质粒PHY300-gtaB,泳道4:PCR扩增gtaB。
图2为地衣芽孢杆菌(Bacilluslicheniformis)及其重组菌HN301-2多糖絮凝剂絮凝活性和产量比较图。
具体实施方式
根据下述实施例,可以更好理解本发明。然而本领域的技术人员容易理解,实施例所描述的内容仅限于说明本发明,而不应当也不会限制权利要求书中所详细描述的本发明。
实施例1:重组表达载体PHY300-gtaB的构建
设计PCR引物,用于扩增gtaB基因片段。
上下游引物分别为:
上游引物:TTGGTACCATGAAAAAAGTAAGAAAAG(下划线为KpnI酶切位点)
下游引物:GGACTAGTTTATATTTCTTCTTTATTTAAAAGA(下划线为SpeI酶切位点)
以BacilluslicheniformisCGMCC2876基因组DNA为模板,进行如下PCR程序:(1)94℃,5min;(2)94℃,30s;(3)55℃,30s;(4)72℃,1min,步骤(2)~(4)重复35个循环;(5)72℃,10min,4℃保存。
PCR反应体系如表1所示。
表1
将PCR产物和表达载体PHY300PLK-PamyL-TTamyL分别用限制性内切酶KpnI和SpeI双酶切,回收后,将PCR产物和表达载体以(3~5)∶1的比例用T4DNA连接酶在16℃连接12h构建重组表达载体PHY300-gtaB。
实施例2:地衣芽孢杆菌基因工程菌HN301-2的构建
将PHY300-gtaB过表达质粒经提取及浓缩后,电击转化地衣芽孢杆菌,37℃复苏5h后,涂布四环素抗性平板,再在37℃培养12h,筛选转化子。转化子经质粒提取后,利用PCR及双酶切进行验证(如图1)。从而获得过表达尿苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶基因gtaB的地衣芽孢杆菌工程菌HN301-2。
电转化具体步骤如下:
地衣芽孢杆菌感受态的制备:
(1)在50mLLB培养基中接种一环B.licheniformis,37℃,200r/min过夜培养12h;
(2)取过夜培养液1mL接入50mL生长培养基中,于37℃,200r/min培养至对数中后期,直到细胞OD600达到0.85~0.95;
(3)细胞冰浴30min,停止生长后,(取预先预冷的50mL干净离心管,加入40mL停止生长的培养液)再于4℃以6000r/min离心收获细胞;
(4)用冰冷(0℃冰水浴)的EP缓冲液40mL悬浮细胞四次(每次都在0℃冰水浴中晃动,使沉淀悬浮,可用枪轻轻吹吸),并最终将细胞悬浮于1mLEP缓冲液中,使细胞浓度达到1~1.3×1010CFUmL-1
(5)将感受态细胞分装于1.5mL离心管(预冷过的)中,每管100μL,再直接进行下一步实验或-70℃保存感受态;
地衣芽孢杆菌的电转:
(1)将感受态细胞和1~5μg质粒混合物转移到冰冷的0.1cm间隙的电击池中;
(2)以1800V、5ms脉冲转化;
(3)迅速往电击池中加入1mL复苏培养基,将菌悬液回收到5mL离心管中,于37℃,200r/min培养5h;
(4)将菌液涂布在抗性平板上,于37℃培养直到平板上出现菌落。
实施例3:利用地衣芽孢杆菌及其基因工程菌发酵制备多糖絮凝剂
将地衣芽孢杆菌CGMCC2876出发菌株和实施例2所述基因工程菌接种于液体种子培养基中,37℃,200r/min培养16h,制备种子培养液,以4%(V/V)的接种量接种于多糖絮凝剂发酵培养基中,37℃,200r/min培养,进行发酵产多糖絮凝剂实验。56h后分别测定发酵液絮凝活性及多糖絮凝剂产量(如图2)。gtaB基因过表达重组基因工程菌发酵液的最终絮凝活性为4754U/mL,比原菌株发酵液最终絮凝活性2780U/mL提高70%;gtaB基因过表达重组基因工程菌多糖絮凝剂的粗提产量为9.85g/L,较原菌株粗提产量8.52g/L提高了15.6%。
生物絮凝剂的絮凝活性可采用以下方法测定:
称取高岭土粉末0.2g与50mL刻度试管中,依次加入2.5mLCaCl2溶液(10g/L)和1mL待测液,蒸馏水加至与刻度线平齐。充分混合后,迅速置于比色皿中,静置5min后,用紫外可见分光光度计在波长550nm下测定吸光度。以蒸馏水做空白测定。计算公式如下:
絮凝活性(UmL-1)=(B-A)/B×100×D
式中,A:待测样品的OD550值,B:空白培养基的OD550值,D:发酵液稀释倍数。
生物絮凝剂的提取纯化方法:
(1)取10mL发酵液8000rpm离心5min,除菌体,收集上清液,重复操作两次。
(2)上清液中加入3倍体积的无水乙醇,4℃条件下静置12h。
(3)8000rpm离心10min,弃上清液,加10mL去离子水溶解。上清液中加入3倍体积的无水乙醇,4℃条件下静置12h后,离心弃上清液。
(4)冷冻真空干燥。
本发明克隆了多糖絮凝剂合成途径的关键酶尿苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶基因(gtaB),利用大肠杆菌-芽孢杆菌穿梭质粒构建重组表达载体。通过电转化的方法将重组质粒导入到地衣芽孢杆菌,构建了重组地衣芽孢杆菌HN301-2,本发明构建的重组地衣芽孢杆菌比出发菌株的多糖絮凝剂产量提高了15.6%,发酵液絮凝活性提高了70%。可望用于多糖絮凝剂的工业化生产,提高产量,降低成本。

Claims (10)

1.过表达尿苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶基因(gtaB),其特征在于是编码尿苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶的基因。
2.如权利要求1所述过表达尿苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶基因(gtaB),其特征在于其核苷酸序列如序列表中SEQIDNo:1所示。
3.过表达尿苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶基因(gtaB)的地衣芽孢杆菌基因工程菌的制备方法,其特征在于其具体步骤如下:
将过表达尿苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶基因(gtaB)片段连接到表达载体上,然后利用电转化的方法导入到地衣芽孢杆菌(Bacilluslicheniformis)中,通过抗性筛选获得目的基因的工程菌,即过表达尿苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶基因(gtaB)的地衣芽孢杆菌基因工程菌;所述地衣芽孢杆菌(Bacilluslicheniformis)已于2009年01月14日保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,保藏中心登记入册编号为CGMCCNo.2876。
4.如权利要求3所述方法,其特征在于所述表达载体为游离载体,所述表达载体的启动子为地衣芽孢杆菌(Bacilluslicheniformis)α-淀粉酶基因的启动子PamyL。
5.过表达尿苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶基因的地衣芽孢杆菌基因工程菌的构建方法,其特征在于包括以下步骤:
(1)设计PCR引物扩增尿苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶基因gtaB;
(2)将扩增得到的目的基因插入到PHY300PLK-PamyL-TTamyL组成型启动子PamyL下游多克隆位点,得到PHY300-gtaB过表达质粒;
(3)然后将PHY300-gtaB过表达质粒导入到E.coliDH5α中,以备扩增后电转化;
(4)将经提取、浓缩后的PHY300-gtaB过表达质粒电转化地衣芽孢杆菌,37℃复苏5h后,涂布四环素抗性平板,再在37℃培养12h,筛选转化子;
(5)转化子经质粒提取后,利用PCR和双酶切进行验证,从而获得过表达尿苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶基因的地衣芽孢杆菌重组菌HN301-2。
6.如权利要求3所述方法制备的过表达尿苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶基因的地衣芽孢杆菌在制备多糖絮凝剂中应用。
7.如权利要求6所述应用,其特征在于所述多糖絮凝剂的制备方法包括以下步骤:
(1)刮一环地衣芽孢杆菌重组菌HN301-2接种于液体种子培养基中培养,得种子培养液;
(2)按体积百分比以4%的接种量接种于多糖絮凝剂发酵培养基中培养,得发酵液;
(3)将发酵液离心收集上清液,再用乙醇提取,所得提取液冷冻真空干燥后即得多糖絮凝剂。
8.如权利要求7所述应用,其特征在于在步骤(1)中,所述培养的条件为:35~37℃,200r/min培养12~16h。
9.如权利要求7所述应用,其特征在于在步骤(2)中,所述培养的条件为:在30~40℃,150~300r/min条件下培养50~60h,优选在37℃,200r/min的条件下培养48~56h。
10.如权利要求7所述应用,其特征在于在步骤(3)中,所述乙醇与上清液的体积比为3∶1;所述提取的条件可为:离心的速度为6000~8000rpm,离心的时间为10~15min,离心的温度为4℃。
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Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN106520794A (zh) * 2016-12-07 2017-03-22 宁波大学 过表达尿苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶基因及其重组嗜酸乳杆菌的构建方法
CN106701802A (zh) * 2016-12-07 2017-05-24 宁波大学 过表达尿苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶基因及其重组大肠杆菌的构建方法和纯化方法
CN106916776A (zh) * 2017-02-23 2017-07-04 厦门大学 过表达磷酸葡萄糖变位酶基因和尿苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶基因的工程菌及构建方法
CN111518825A (zh) * 2020-04-30 2020-08-11 浙江工业大学 一种多基因组合表达制备蛹虫草多糖的方法
CN115960798A (zh) * 2022-08-11 2023-04-14 南开大学 一株生产阳离子型生物多糖絮凝剂的重组菌及其应用

Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20060263858A1 (en) * 1994-07-01 2006-11-23 Deangelis Paul L Hyaluronan synthase genes and expression thereof in Bacillus hosts
CN101503709A (zh) * 2009-03-13 2009-08-12 厦门大学 利用地衣芽孢杆菌制备生物絮凝剂的方法
CN101899536A (zh) * 2010-09-01 2010-12-01 厦门大学 地衣芽孢杆菌合成的生物絮凝剂在制糖中的应用
CN103710365A (zh) * 2014-01-03 2014-04-09 中国海洋大学 一种海带尿苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶基因
CN103937838A (zh) * 2014-04-14 2014-07-23 厦门大学 利用地衣芽孢杆菌同时合成两种不同成分生物絮凝剂的方法

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20060263858A1 (en) * 1994-07-01 2006-11-23 Deangelis Paul L Hyaluronan synthase genes and expression thereof in Bacillus hosts
CN101503709A (zh) * 2009-03-13 2009-08-12 厦门大学 利用地衣芽孢杆菌制备生物絮凝剂的方法
CN101899536A (zh) * 2010-09-01 2010-12-01 厦门大学 地衣芽孢杆菌合成的生物絮凝剂在制糖中的应用
CN103710365A (zh) * 2014-01-03 2014-04-09 中国海洋大学 一种海带尿苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶基因
CN103937838A (zh) * 2014-04-14 2014-07-23 厦门大学 利用地衣芽孢杆菌同时合成两种不同成分生物絮凝剂的方法

Non-Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
YUYAN XIONG 等: "Production and Characterization of a Novel Bioflocculant from Bacillus licheniformis", 《APPL ENVIRON MICROBIOL》 *
严珊: "地衣芽孢杆菌CGMCC2876生物絮凝剂的合成代谢途径及其基因调控研究", 《万方数据》 *
吴晓俊 等: "尿苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶", 《植物生理学通讯》 *
张帆 等: "过量表达OsUgp2基因提高紫芝多糖含量", 《菌物学报》 *

Cited By (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN106520794A (zh) * 2016-12-07 2017-03-22 宁波大学 过表达尿苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶基因及其重组嗜酸乳杆菌的构建方法
CN106701802A (zh) * 2016-12-07 2017-05-24 宁波大学 过表达尿苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶基因及其重组大肠杆菌的构建方法和纯化方法
CN106520794B (zh) * 2016-12-07 2019-08-20 宁波大学 过表达尿苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶基因及其重组嗜酸乳杆菌的构建方法
CN106916776A (zh) * 2017-02-23 2017-07-04 厦门大学 过表达磷酸葡萄糖变位酶基因和尿苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶基因的工程菌及构建方法
CN111518825A (zh) * 2020-04-30 2020-08-11 浙江工业大学 一种多基因组合表达制备蛹虫草多糖的方法
CN115960798A (zh) * 2022-08-11 2023-04-14 南开大学 一株生产阳离子型生物多糖絮凝剂的重组菌及其应用

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